李冰茹,李美琪,李皎琪,王濟瀚,李曉安,李富軍,張新華
(山東理工大學(xué)農(nóng)業(yè)工程與食品科學(xué)學(xué)院,山東 淄博 255049)
火龍果(Hylocereus undatus)因其外觀奇特、口感清甜、富含膳食纖維、酚類物質(zhì)和甜菜苷等營養(yǎng)物質(zhì),且具有抗氧化、抗糖尿病、預(yù)防心腦血管疾病或癌癥等功效而廣受歡迎[1-2]。前期研究發(fā)現(xiàn),切割處理可誘導(dǎo)鮮切火龍果中酚類物質(zhì)的積累,提高其在一定貯藏期內(nèi)的抗氧化能力,而鮮切處理可激活果蔬自身的防御反應(yīng),通過調(diào)節(jié)其應(yīng)答機制生成酚類物質(zhì)等次生代謝產(chǎn)物,防御和修復(fù)機械傷害[3-4]。但由于果蔬鮮切處理會引發(fā)汁液流出、呼吸增強、組織褐變、微生物生長等現(xiàn)象,加速品質(zhì)下降。因此,開發(fā)減輕鮮切產(chǎn)品品質(zhì)劣變的方法是一個迫切需要解決的問題。目前,鮮切果蔬的保鮮主要有化學(xué)法(保鮮劑、可食性涂膜、植物內(nèi)源活性物質(zhì)等)、物理法(低溫、氣調(diào)、熱處理、非熱殺菌等)及生物法(拮抗菌)等[5-6]。
冷激是指將果蔬置于不會造成冷害的低溫條件下進(jìn)行短時間處理的一種物理方法,常用的有空氣冷激和冰水混合物冷激[7]。有研究表明,冷激處理可以減緩黃瓜的黃變,降低黃瓜腐爛率[8]、保持甜櫻桃的花青素含量[9]、抑制西葫蘆葉綠素含量降低和紅度(a*值)、黃度(b*值)的升高[10]。冷激處理可通過降低膜脂過氧化程度和細(xì)胞膜通透性、提高抗氧化能力提高木瓜[11]、桃[12]和茄子[13]果實的抗冷性,減輕果實在低溫貯藏期間的品質(zhì)劣變。劉洪竹等[14]使用0 ℃冰水處理鮮切甘藍(lán)、洋蔥和胡蘿卜以增加它們的抗氧化酶活性,保持鮮切果蔬的品質(zhì)。唐文等[15]發(fā)現(xiàn)用-18 ℃冷空氣處理鮮切青椒可保持其品質(zhì)和抗壞血酸含量,延長鮮切青椒的貯藏期。本實驗主要從研究冷激預(yù)處理對鮮切果蔬品質(zhì)影響的機理入手,旨在為鮮切火龍果的品質(zhì)保持提供理論依據(jù)。
供試白肉火龍果‘莞華白’(Hylocereus undatuscv.Guanhuabai)購自山東博發(fā)農(nóng)副產(chǎn)品綜合批發(fā)市場,選擇大小和顏色均勻、無機械傷的果實備用。
福林-酚 上海源葉生物科技有限公司;甲醇煙臺市遠(yuǎn)東精細(xì)化工有限公司;磷酸二氫鉀、磷酸氫二鉀 天津市雙船化學(xué)試劑廠;1,1-二苯基苦基苯肼(1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl,DPPH)、抗壞血酸上海阿拉丁生化科技股份有限公司;Tris 生工生物工程(上海)股份有限公司;反轉(zhuǎn)錄試劑盒RR036A PrimeScriptTMRT Master Mix、實時熒光定量聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(real-time quantitative polymerase chain reaction,qPCR)試劑盒RR420B TB Green?Premix ExTaqTM日本Takara公司。
CR400色差儀 日本柯尼卡-美能達(dá)公司;DDS-307A電導(dǎo)率儀 上海光學(xué)儀器廠;Sorvall ST 16R高速冷凍離心機 美國賽默飛世爾科技有限公司;UV-2102PCS紫外分光光度計 尤尼柯(上海)儀器有限公司;1260高效液相色譜儀 美國安捷倫公司;FQD-96A實時熒光定量PCR檢測系統(tǒng) 杭州博日科技有限責(zé)任公司。
1.3.1 原料處理
將挑選好的白肉火龍果隨機分為兩組,每組9 0 個果實,分別在相對濕度9 0%的恒溫箱中使用(-2.0±0.5)℃冷空氣(冷激組)、(20.0±0.5)℃空氣(對照組)處理3 h后,將兩組果實置于20 ℃條件下貯存3 h,再用質(zhì)量分?jǐn)?shù)0.02%次氯酸鈉溶液浸泡2 min,無菌水沖洗后晾干表面水分。根據(jù)Li Xiao’an等[4]的方法去除果皮,將其切成厚度為1 cm的1/4片狀,分別放置于無菌聚丙烯保鮮盒(16 cm×11 cm×5 cm)內(nèi),每盒10 片,質(zhì)量約200 g,于(20±1)℃、相對濕度85%~90%條件下貯藏,并分別于0、6、12、24、36、48 h取樣測定,每次取樣6 盒,其中3 盒用于拍照、測定果肉顏色,其余樣品液氮速凍后于-80 ℃保存用于其他指標(biāo)測定。每組處理取3 次數(shù)據(jù)的平均值。
1.3.2 果肉顏色測定
鮮切火龍果的果肉顏色使用色差儀進(jìn)行測定,記錄亮度(L*)、紅綠度(a*)、黃藍(lán)度(b*)值,參照Coklar等[16]的方法,按式(1)、(2)計算褐變指數(shù)(browning index,BI)。
1.3.3 電導(dǎo)率及丙二醛含量測定
電導(dǎo)率(electrical conductivity,EC)的測定參照Luo Zisheng等[17]的方法。使用打孔器從火龍果切片上獲取圓片(厚度1 mm、直徑10 mm)10 片,置于25 mL蒸餾水中浸泡60 min,使用電導(dǎo)率儀測定初始EC并記為C1/(S/cm),沸水浴5 min并冷卻至室溫后,再次測定EC并記為C2/(S/cm)。相對電導(dǎo)率結(jié)果表示為C1/C2×100%。
丙二醛(malondialdehyde,MDA)含量的測定參照Min Dedong等[18]的方法。稱取2 g凍樣用5 mL 10 g/100 mL三氯乙酸溶液研磨后離心。取相同體積的上清液與0.6 g/100 mL硫代巴比妥酸溶液混勻,沸水浴15 min后立即置于冰上冷卻。用紫外分光光度計測定反應(yīng)體系在600、532 nm和450 nm波長處吸光度。MDA含量單位為mmol/kg。
1.3.4 總酚及總黃酮含量的測定
稱取2 g凍樣充分研磨后用5 mL甲醇在4 ℃下避光抽提24 h,離心后取上清液用于測定總酚和總黃酮含量??偡雍康臏y定參照Swain等[19]的方法,記錄765 nm波長處吸光度的變化,以沒食子酸為標(biāo)準(zhǔn)品繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線方程計算總酚含量,單位為g/kg??傸S酮含量的測定參照Chang等[20]的方法,測定430 nm波長處吸光度的變化,以蘆丁為標(biāo)準(zhǔn)品繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線方程計算總黃酮含量,單位為g/kg。
1.3.5 抗氧化能力的測定
通過DPPH自由基和羥自由基(·OH)清除能力反映抗氧化能力。DPPH自由基清除能力的測定參照Brand-Williams等[21]的方法,樣品的提取方法與總酚相同。上清液(0.15 mL)與120 μmol/L DPPH溶液(1.85 mL)混勻后于25 ℃避光反應(yīng)15 min,以甲醇代替上清液的反應(yīng)體系作為對照,記錄515 nm波長處吸光度的變化,按式(3)計算DPPH自由基清除能力。
式中:A1為0.15 mL上清液與1.85 mL DPPH反應(yīng)后吸光度;A2為0.15 mL上清液與1.85 mL甲醇反應(yīng)后吸光度;A3為0.15 mL甲醇與1.85 mL DPPH溶液反應(yīng)后吸光度。
·OH清除能力的測定參照Richmond等[22]的方法,稱取2 g凍樣加入5 mL體積分?jǐn)?shù)70%乙醇溶液研磨,離心后取1.0 mL上清液與2.0 mL 18 mmol/L硫酸亞鐵溶液、0.2 mL 0.3% H2O2、1.3 mL 18 mmol/L水楊酸溶液混合均勻后,于37 ℃反應(yīng)25 min,測定510 nm波長處吸光度的變化,以70%乙醇溶液代替上清液的反應(yīng)體系作為對照。按式(4)計算·OH清除能力。
式中:A1為對照組吸光度;A2為實驗組吸光度。
1.3.6 主要酚類化合物含量的測定
參照Surjadinata等[23]的方法。稱取5 g凍樣,使用20 mL甲醇研磨,離心后取上清液利用旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀在35 ℃條件下濃縮至5 mL,利用活化的Waters C18Sep-pak萃取小柱將濃縮后的上清液進(jìn)行固相萃取。萃取純化后的樣品經(jīng)過0.45 μm濾膜過濾后使用高效液相色譜儀進(jìn)行分析。色譜柱為反向C18柱(6 mm×150 mm),柱溫38 ℃;流動相A為鹽酸(pH 2.3),流動相B為乙腈;梯度洗脫程序:0 min 10% B,25 min 15% B,40 min 20% B,45 min 25% B,50 min 85% B,55 min 10% B;流速0.6 mL/min;進(jìn)樣量20 μL;檢測波長280 nm。根據(jù)各標(biāo)準(zhǔn)品的保留時間和標(biāo)準(zhǔn)曲線方程進(jìn)行定性和定量分析,酚類化合物含量單位為mg/kg。
1.3.7 苯丙烷代謝關(guān)鍵酶活力測定及基因表達(dá)水平分析
參考Li Xiao’an等[24]的方法測定苯丙氨酸解氨酶(phenylalanine ammonia lyase,PAL)、肉桂酸-4-羥基化酶(cinnamate-4-hydroxylase,C4H)、4-香豆酸輔酶A連接酶(4-coumarate coenzyme A ligase,4CL)活力。稱取2 g凍樣分別用5 mL不同緩沖液進(jìn)行研磨提取。PAL活力測定所用提取液為含2 mmol/L乙二胺四乙酸、5 mmol/Lβ-巰基乙醇、40 g/L聚乙烯吡咯烷酮的硼酸緩沖液(0.1 mol/L、pH 8.7)。C4H所用提取液為含15 mmol/Lβ-巰基乙醇、5 mmol/L抗壞血酸、4 mmol/L MgCl2、1 mmol/L苯甲基磺酰氟、10 μmol/L亮異酶肽的Tris-HCl緩沖液(50 mmol/L、pH 8.9)。4CL所用提取液為含5 mmol/L MgCl2、5 mmol/L ATP、0.6 mmol/Lp-香豆酸、0.4 mmol/L輔酶A的Tris-HCl緩沖液(50 mmol/L、pH 8.0)??扇苄缘鞍踪|(zhì)含量的測定參照Bradford等[25]的方法,以牛血清白蛋白為標(biāo)準(zhǔn)品,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線方程計算結(jié)果。PAL、C4H、4CL活力均以蛋白質(zhì)量計,單位為U/mg。
根據(jù)前期研究[26],選取火龍果中傷脅迫反應(yīng)較強的3 個苯丙烷代謝關(guān)鍵基因HuPAL(HU06G02082.1)、HuC4H(HU02G01415.1)、Hu4CL(HU04G01601.1)進(jìn)行qPCR分析。根據(jù)火龍果基因組數(shù)據(jù)庫(http://www.pitayagenomic.com./)中的基因序列設(shè)計引物(表1)。參考Chang Shujun等[27]的方法提取鮮切火龍果總RNA,使用反轉(zhuǎn)錄試劑盒PrimeScriptTMRT Master Mix合成cDNA。使用qPCR試劑盒TB Green?Premix ExTaqTM并按照其說明書操作,利用qPCR儀進(jìn)行檢測,以HuUBQ(HU04G01722.1)為內(nèi)參基因,按照2-ΔΔCt法計算基因的相對表達(dá)量。
表1 qPCR引物序列Table 1 Primer sequences used for qPCR analysis
1.3.8 超氧陰離子自由基產(chǎn)生速率及H2O2含量的測定
稱取2 g凍樣加入5 mL 0.1 mol/L pH 7.8磷酸緩沖液研磨,離心后取上清液,參照Elstner等[28]的方法測定超氧陰離子自由基產(chǎn)生速率,記錄530 nm波長處吸光度的變化,以亞硝酸鉀為標(biāo)準(zhǔn)品,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線方程計算·產(chǎn)生速率,單位為μmol/(kg·s)。
稱取凍樣2 g加入5 mL冷丙酮研磨,離心后取上清液,參照Patterson等[29]的方法測定H2O2含量。單位為mmol/kg。
1.3.9 抗氧化酶活力的測定
稱取2 g凍樣加入5 mL 50 mmol/L pH 7.0磷酸緩沖液研磨,離心后取上清液,參照Zeng Kaifang等[30]的方法測定超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD)、過氧化氫酶(catalase,CAT)、抗壞血酸過氧化物酶(ascorbate peroxidase,APX)活力。SOD以抑制50%的氮藍(lán)四唑光還原反應(yīng)時所需的酶量作為一個酶活力單位。CAT以每分鐘還原1 μmol H2O2所需的酶量作為一個酶活力單位。APX以每分鐘氧化1 μmol抗壞血酸所需的酶量作為一個酶活力單位。結(jié)果均以蛋白質(zhì)量計,單位為U/mg。
實驗采用完全隨機設(shè)計,每個處理重復(fù)3 次,結(jié)果表示為平均值±標(biāo)準(zhǔn)差。使用SPSS 19.0軟件采用鄧肯多重檢驗的單因素方差分析檢驗結(jié)果的差異顯著性,P<0.05時認(rèn)為有顯著差異。
圖1A為鮮切火龍果在20 ℃貯藏48 h期間表面顏色外觀圖像,對照組鮮切火龍果的褐變程度隨著貯藏時間的延長而增加,冷激預(yù)處理顯著抑制了褐變程度的增加,貯藏48 h時這種抑制效果更為顯著。如圖1B所示,對照組和冷激預(yù)處理組的鮮切火龍果BI均逐漸上升,冷激預(yù)處理組BI在貯藏過程中均顯著低于對照組,說明冷激預(yù)處理能夠有效抑制鮮切火龍果的褐變。EC與果蔬細(xì)胞膜通透性的變化密切相關(guān),反映了細(xì)胞膜損傷的程度。MDA是膜脂過氧化作用的主要產(chǎn)物之一,其含量反映了細(xì)胞膜脂過氧化的程度。由圖1C、D可知,對照組鮮切火龍果的相對電導(dǎo)率和MDA含量在貯藏期間均呈現(xiàn)逐漸增長趨勢,冷激預(yù)處理顯著抑制了傷脅迫誘導(dǎo)的相對電導(dǎo)率和MDA含量的增加。貯藏48 h后,冷激預(yù)處理組鮮切火龍果的相對電導(dǎo)率比對照組低16.45%,MDA含量比對照組低20.11%。表明冷激預(yù)處理能夠抑制細(xì)胞膜脂過氧化作用,減輕鮮切火龍果細(xì)胞膜的損傷程度。
圖1 冷激預(yù)處理對鮮切火龍果20 ℃貯藏48 h期間表面顏色(A)、BI(B)、EC(C)、MDA含量(D)的影響Fig.1 Effect of cold shock pretreatment on surface color (A),BI (B),EC (C) and MDA content (D) of fresh-cut pitaya fruit stored at 20 ℃ for up to 48 h
酚類物質(zhì)作為果蔬中重要的次生代謝產(chǎn)物,在防御和修復(fù)機械傷害、清除活性氧(reactive oxygen species,ROS)、增強抗氧化能力方面發(fā)揮重要作用,酚類物質(zhì)的合成是果蔬傷脅迫應(yīng)答反應(yīng)的普遍現(xiàn)象[4]。如圖2A、B所示,鮮切火龍果中總酚和總黃酮含量均呈先上升后下降的趨勢,冷激預(yù)處理顯著提高了總酚和總黃酮含量。貯藏48 h時冷激預(yù)處理組的總酚含量比對照組高9.04%,總黃酮含量比對照組高10.02%。DPPH自由基清除能力和·OH清除能力是表征果蔬抗氧化能力的重要指標(biāo)。如圖2C、D所示,對照組鮮切火龍果DPPH自由基和·OH清除能力先隨貯藏時間的延長而逐漸升高,在24 h達(dá)到峰值后緩慢下降。冷激預(yù)處理顯著提高了DPPH自由基和·OH清除能力,在48 h時冷激預(yù)處理組的DPPH自由基清除能力比對照組高11.05%,·OH清除能力比對照組高14.48%。綜上,冷激預(yù)處理有效促進(jìn)了鮮切火龍果酚類物質(zhì)的積累,增強了鮮切火龍果的抗氧化能力。
圖2 冷激預(yù)處理對鮮切火龍果20℃貯藏48 h期間總酚含量(A)、總黃酮含量(B)、DPPH自由基清除能力(C)、·OH清除能力(D)的影響Fig.2 Effect of cold shock pretreatment on the contents of total phenolics(A) and total flavonoids (B),and DPPH (C) and hydroxyl (D) radical scavenging capacity in fresh-cut pitaya fruit stored at 20℃ for up to 48 h
酚類物質(zhì)是含有苯酚基本結(jié)構(gòu)的一類化合物,含有多個酚羥基,其中酚酸類、黃酮類及花色苷類等是果蔬中常見的酚類物質(zhì),與果蔬的營養(yǎng)價值、抗氧化活性等密切相關(guān)。如圖3所示,鮮切火龍果中共檢測到4 種酚酸(沒食子酸、原兒茶酸、咖啡酸、綠原酸)和4 種黃酮類化合物(根皮苷、蘆丁、山柰酚、表兒茶素)?;瘕埞兄饕宇愇镔|(zhì)種類和含量會因品種、生長環(huán)境等的不同而存在差異,本研究中測得的主要酚類化合物種類與前人的研究結(jié)果[31-32]類似,而含量略有不同。對照組中原兒茶酸、咖啡酸含量在貯藏前期逐漸上升,在不同貯藏時間達(dá)到最大值后呈下降趨勢,沒食子酸、綠原酸含量隨貯藏時間的延長呈波動增長的趨勢。冷激預(yù)處理促進(jìn)了沒食子酸、原兒茶酸和咖啡酸含量的積累,提高了其在貯藏期間的水平,延緩了綠原酸含量的增加。對照組中根皮苷和山柰酚含量整體呈上升趨勢,蘆丁和表兒茶素含量隨貯藏時間的延長先增加后下降。冷激預(yù)處理促進(jìn)了根皮苷、山柰酚、蘆丁含量在貯藏期間的積累,延緩了表兒茶素含量的增加。
圖3 冷激預(yù)處理對鮮切火龍果20℃貯藏48 h期間主要酚類化合物含量的影響Fig.3 Effect of cold shock pretreatment on phenolic compound contents in fresh-cut pitaya fruit stored at 20℃ for up to 48 h
苯丙烷代謝途徑是酚類物質(zhì)合成的重要途徑,PAL、C4H、4CL作為苯丙烷代謝途徑的關(guān)鍵酶直接參與酚類物質(zhì)的合成,在果蔬逆境脅迫防御反應(yīng)中發(fā)揮重要作用。在L-苯丙氨酸進(jìn)入苯丙烷代謝后,經(jīng)PAL催化轉(zhuǎn)化為反式肉桂酸,C4H催化反式肉桂酸對位點發(fā)生位置特異性的羥基化反應(yīng),生成p-香豆酸,4CL將p-香豆酸轉(zhuǎn)化為p-香豆酰輔酶A,進(jìn)而轉(zhuǎn)化為其他下游酚類物質(zhì)[33]。如圖4A~C所示,隨貯藏時間的延長,各組鮮切火龍果中的PAL、C4H、4CL活力均先上升后下降。冷激預(yù)處理顯著提高了這3 種酶活力,48 h時冷激預(yù)處理組的PAL、C4H、4CL活力分別比對照組高9.16%、12.34%和10.63%?;虮磉_(dá)結(jié)果顯示,兩組鮮切火龍果HuPAL表達(dá)量均被傷脅迫顯著誘導(dǎo),并于6 h時達(dá)到峰值,之后隨著貯藏時間的延長逐漸降低。冷激預(yù)處理進(jìn)一步提高了HuPAL的表達(dá)量,并在整個貯藏過程中保持較高水平(圖4D)。兩組鮮切火龍果HuC4H表達(dá)量均隨貯藏時間的延長呈先增加后下降的趨勢,對照組HuC4H表達(dá)量在12 h時達(dá)到最大值,冷激組HuC4H表達(dá)量在36 h時達(dá)到最大值,且冷激預(yù)處理顯著促進(jìn)了HuC4H表達(dá)量的上升并抑制其下降,極大提高了HuC4H的表達(dá)水平(圖4E)。兩組鮮切火龍果的Hu4CL表達(dá)量在貯藏期間也呈先上升后下降的趨勢,對照組在24 h時達(dá)到峰值,冷激組在36 h時達(dá)到峰值,與對照組相比,冷激預(yù)處理顯著提高了鮮切火龍果前36 hHu4CL的表達(dá)量,然后其表達(dá)量迅速下降,在48 h時與對照組無顯著差異(圖4F)。綜上,冷激預(yù)處理可以誘導(dǎo)提高苯丙烷代謝途徑關(guān)鍵酶的活力和關(guān)鍵基因表達(dá),從而促進(jìn)鮮切火龍果中酚類物質(zhì)的合成。
圖4 冷激預(yù)處理對鮮切火龍果20℃貯藏48 h期間苯丙烷代謝途徑關(guān)鍵酶活力及其基因相對表達(dá)量的影響Fig.4 Effect of cold shock pretreatment on the activities and relative gene expression of key enzymes in the phenylpropanoid pathway in freshcut pitaya fruit stored 20℃ for up to 48 h
圖5 冷激預(yù)處理對鮮切火龍果20℃貯藏48 h期間·產(chǎn)生速率(A)、H2O2含量(B)的影響Fig.5 Effect of cold shock pretreatment on superoxide anion production rate (A) and H2O2 content (B) in fresh-cut pitaya fruit stored 20℃ for up to 48 h
SOD、CAT、APX是果蔬體內(nèi)ROS清除酶促防御系統(tǒng)中的重要酶,SOD能通過歧化反應(yīng)將·轉(zhuǎn)化為H2O2和O2,從而清除·,H2O2可被CAT催化分解為H2O和O2,降低H2O2對果蔬造成的氧化損傷。H2O2還可通過APX的催化被抗壞血酸還原清除[13]。如圖6所示,鮮切處理提高了兩組鮮切火龍果SOD、CAT、APX活力,冷激預(yù)處理組3 種酶活力在貯藏期間始終高于對照組。在48 h時冷激預(yù)處理組SOD、CAT、APX活力分別比對照組高14.87%、11.85%和14.88%。這些結(jié)果表明冷激預(yù)處理能夠通過提高鮮切火龍果SOD、CAT、APX活力促進(jìn)·和H2O2的清除,減輕ROS對鮮切火龍果造成的氧化損傷和組織褐變。
圖6 冷激預(yù)處理對鮮切火龍果20℃貯藏48 h期間SOD(A)、CAT(B)、APX(C)活力的影響Fig.6 Effect of cold shock pretreatment on the activities of SOD (A),CAT (B) and APX (C) in fresh-cut pitaya fruit stored 20℃ for up to 48 h
冷激(-2 ℃冷空氣、3 h)預(yù)處理通過上調(diào)苯丙烷代謝關(guān)鍵酶PAL、C4H、4CL活力及其相關(guān)基因的表達(dá),促進(jìn)鮮切火龍果酚類物質(zhì)的合成積累并抑制貯藏后期酚類物質(zhì)含量的下降,增強其抗氧化能力;此外,冷激預(yù)處理可以誘導(dǎo)提高SOD、CAT、APX抗氧化酶活力,有效清除過多的ROS。綜上,冷激預(yù)處理通過調(diào)控苯丙烷途徑和ROS代謝,提高抗氧化能力,緩解鮮切火龍果氧化過程,從而有效抑制其果肉褐變。冷激預(yù)處理安全高效、操作簡單,在鮮切火龍果品質(zhì)保持方面具有較好的應(yīng)用前景。