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      神經(jīng)生長因子對 Aβ致 AD細胞模型中神經(jīng)元內(nèi)酸堿度改變及細胞凋亡的影響

      2010-08-25 03:55:52方伯言
      中風與神經(jīng)疾病雜志 2010年8期
      關鍵詞:酸化孵育生長因子

      李 華, 方伯言, 高 峰

      阿爾茨海默病 (Alzheimer's disease,AD)是老年人最常見的神經(jīng)系統(tǒng)退行性疾病,神經(jīng)元缺失為其3大病理特征之一,其病因及其發(fā)病機制尚不完全清楚。研究[1]證實自發(fā)的中樞神經(jīng)細胞死亡與不可逆轉(zhuǎn)的細胞損傷有關。細胞凋亡被認為與 AD神經(jīng)元退行性變過程中幾個階段有關,所以有些研究者[2,3]認為 AD中神經(jīng)細胞死亡是由凋亡介導的。細胞內(nèi)酸化是細胞凋亡過程中的一種細胞內(nèi)信號變化,通過影響核酸內(nèi)切酶的活性、影響原癌基因在凋亡過程中的作用、影響細胞凋亡發(fā)生率等途徑促進細胞凋亡。本實驗利用體外培養(yǎng)大鼠大腦皮質(zhì)神經(jīng)元細胞,應用 Aβ25-35誘導大鼠皮層神經(jīng)元凋亡,檢測細胞內(nèi) pH值變化及膜上 Na+/H+交換蛋白 1(NHE1)、神經(jīng)元凋亡的特異標志蛋白鈣調(diào)蛋白(CaM)表達,闡明細胞內(nèi)酸化與神經(jīng)元凋亡的關系。并在制模前后分別加用神經(jīng)生長因子(nerve growth factor,NGF)干預,明確 NGF可能通過激活 NHE1來抑制神經(jīng)元凋亡,起到神經(jīng)保護的作用,從而為NHE1激活劑應用于 AD的治療提供新的理論依據(jù)。

      1 材料及方法

      1.1 材料及試劑 Aβ25-35、胎牛血清、馬血清、DMEM、F12培養(yǎng)基、兔抗 CaM單克隆抗體、兔抗NHE1單克隆抗體,以上藥品試劑均購自北京中杉金橋生物技術(shù)有限公司;酸堿度熒光探針 2',7'-二(羧乙基)-5(6)羧基熒光黃酯(BCECF/AM)購自Calbiochem公司。

      1.2 方法

      1.2.1 神經(jīng)元細胞培養(yǎng) 取出生 24h內(nèi)的 SD大鼠乳鼠(遼寧醫(yī)學院動物實驗中心提供),75%酒精浸泡消毒,無菌條件下取出大腦皮層,置于培養(yǎng)基中,剔除血管和軟腦膜,剪成 1mm3左右的小塊。加入 0.125%胰蛋白酶 37℃消化 10min。待細胞分散后,加入含 10%胎牛血清和 10%馬血清的 DMEM/F12培養(yǎng)基終止消化。200目篩網(wǎng)過濾,1000轉(zhuǎn)離心 10min,用含 10%胎牛血清和 10%馬血清的DMEM/F12制成細胞懸液,調(diào)整細胞密度為 1×105~1×106/ml,接種在鋪有 L-多聚賴氨酸的 6孔培養(yǎng)板中,置于 37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。培養(yǎng) 48h后加入含阿糖胞苷(終濃度為 5mg/L)的培養(yǎng)基,抑制非神經(jīng)元細胞增殖。以后每 3d換液一次,培養(yǎng)7d后加用 Aβ25-35處理,并按不同的實驗分組加用NGF處理。

      1.2.2 構(gòu)建 AD細胞模型 AD組:利用Aβ25-35誘導大腦皮層神經(jīng)元細胞建立 AD細胞模型,Aβ25-35終濃度為 20μmol/L,接觸 24h。 NGF預防組:加用 Aβ25-35前 72h加用 NGF培養(yǎng),NGF終濃度為50μg/L。 NGF治療組:加入 Aβ25-35片段接觸 24h后加用 NGF繼續(xù)培養(yǎng),NGF終濃度 50μg/L。以上各組在 Aβ25-35脫離接觸后 12、24、48、72h收集細胞用于實驗。

      1.2.3 Aβ25-35的孵育 選擇 Aβ25-35片段,用三蒸水配制成 100μmol/L,過濾,分裝,-20℃凍存,使用前老化處理并配制成所需濃度(將 Aβ25-35溶解在DMSO中,再用 DMEM稀釋,置于 37℃下孵育 7~14d,即為老化處理)。

      1.2.4 Western印跡分析法測 NHE1及 CaM表達 將收集的細胞用冷的 PBS沖洗,放入預冷的裂解緩沖液中裂解,用 Lowry法測定蛋白質(zhì)含量,電泳后將 PAGE凝膠中的蛋白質(zhì)電轉(zhuǎn)移至PVDF(硝酸纖維素膜)上,取出后將膜放入 3%BSA阻斷緩沖液中,封閉 60min,TBS洗膜 3次,將膜放入一抗中(1∶500稀釋),4℃過夜。TTBS沖洗后,將膜放入二抗(1∶500稀釋)中,室溫孵育 1~2h,用 TTBS洗膜 3次,最后用 TBS洗膜一次,放入 NBT/BCIP顯色液中避光顯色,直至染色出現(xiàn),終止反應。將蛋白印跡顯影圖掃描,利用凝膠自動分析成像軟件 Chem Image 5500對蛋白帶進行灰度值分析。以上試驗步驟重復 3次。

      1.2.5 細胞內(nèi) pH值的測定

      1.2.5.1 制定標準曲線 用 DMEM培養(yǎng)液清洗細胞 2次,加入終濃度 1μg/ml熒光染料 BCECF/AM,37℃孵育 30min,清洗 3次后重新懸浮于 pH值分別為 6.4、6.6、6.8、7.0、7.2、7.4、7.6的 KCl溶液(25mmol/L HEPES,145mmol/L KCl,0.8mmol/L MgCl2,1.8mmol/L CaCl2,5.5mmol/L葡萄糖),加入1μg/ml尼爾尼亞素,37℃孵育 10min,立即用激光共聚焦顯微鏡檢測,以氬激光 488nm激發(fā)細胞內(nèi)BCECF,檢測相應細胞 530nm和 640nm發(fā)射熒光,求出熒光比值,做出 pH值與熒光比值之間關系的標準曲線,pH與 530nm/640nm熒光比值之間有良好的線性關系(r>0.995)。

      1.2.5.2 細胞內(nèi) pH值測定 收集 5×106/ml細胞,用 DMEM培養(yǎng)基清洗 3次,加入 1μg/ml熒光染料 BCECF/AM,37℃孵育 30min,清洗 3次后上機檢測,記錄 530nm與 640nm發(fā)射熒光,求出兩者的比值。通過標準曲線推算細胞內(nèi) pH值。

      1.2.6 統(tǒng)計學處理 實驗數(shù)據(jù)用(均值 ±標準差)表示,實驗重復 5次,用 SPSS 11.5軟件包進行分析,兩組間比較采用 LSD,s post hoc test進行統(tǒng)計學分析,以 P<0.05表示差異有顯著性;P<0.01表示差異非常顯著。

      2 結(jié) 果

      2.1 各時間點 Western-blot結(jié)果比較

      2.1.1 與 Aβ25-35組比較 NGF預防組內(nèi) NHE1具有高表達性,與 Aβ25-35組有顯著差異(P<0.01);與 Aβ25-35組比較,NGF治療組內(nèi) NHE1具有高表達性,與對照組有顯著差異(P<0.01),而且隨培養(yǎng)時間的延長各組內(nèi) NHE1表達均有不同程度的增強(見圖1、表1)。

      2.1.2 與 AD組比較 NGF預防組內(nèi) CaM具有低表達性,與 AD組有顯著差異(P<0.01);與AD組比較,NGF治療組內(nèi)除加用神經(jīng)生長因子 12h時與對照組比較 CaM表達差異無顯著性外,其余各時間點及處理因素下與對照組比較均有低表達性,與AD組有顯著差異(P<0.01)(見圖2、表2)。

      2.2 各時間點神經(jīng)元細胞內(nèi) pH值比較 各組神經(jīng)細胞內(nèi) p H隨培養(yǎng)時間延長均呈降低趨勢,各時間點比較 NGF預防組及治療組細胞內(nèi) pH降低幅度較 AD組細胞低,兩組比較有明顯差異(P<0.01,P<0.05)(見表3)。

      表1 各時間點 NHE1(130k Da)的表達±s)

      表1 各時間點 NHE1(130k Da)的表達±s)

      與 AD組比較*P<0.01,△P<0.05

      AD組NGF預防組NGF治療組3.38±0.215.63±0.45*4.03±0.35△4.40±0.336.71±0.79*5.44±0.37*5.62±0.777.80±0.56*6.67±0.65*6.64±0.577.92±0.78*7.77±0.23*

      表2 各時間點 CaM(49k Da)的表達 ±s)

      表2 各時間點 CaM(49k Da)的表達 ±s)

      與 AD組比較*P<0.01

      AD組NGF預防組NGF治療組1.33±0.220.99±0.23*1.24±0.281.77±0.111.33±0.22*1.48±0.32*1.89±0.231.61±0.34*1.68±0.17*2.1±0.191.80±0.11*1.90±0.24*

      表3 各時間點神經(jīng)元細胞內(nèi)pH值比較 ±s)

      表3 各時間點神經(jīng)元細胞內(nèi)pH值比較 ±s)

      與 AD組比較*P<0.01,△P<0.05

      AD組NGF預防組NGF治療組6.92±0.127.07±0.11*6.97±0.28△6.75±0.227.03±0.22*6.92±0.32*6.71±0.176.94±0.34*6.91±0.17*6.74±0.256.88±0.11*6.81±0.23*

      圖1 NHE1的 Western-blot檢測

      圖2 CaM的 Western-blot檢測

      3 討 論

      阿爾茨海默病(AD)是一種進行性發(fā)展的致死性神經(jīng)退行性疾病,嚴重影響患者的工作能力和生活質(zhì)量,也為家庭和社會帶來沉重的負擔。關于 AD的發(fā)病進展存在許多假說,如老年變性病、遺傳、病毒感染、炎癥、鋁中毒[4]、膽堿系統(tǒng)功能缺陷、細胞骨架改變及顱腦外傷等假說,但均不完善,針對以上病因采取的抗炎、抑制膽堿酯酶、調(diào)控退化谷氨酸能神經(jīng)元的突觸活性及擴血管改善供血、營養(yǎng)神經(jīng)和抗氧化治療等治療措施,也僅是對癥治療,不能延緩病程的進展。因此,尋找針對病因的治療藥物和手段,是當今研究的難點和熱點。深入研究 AD的發(fā)病機制和治療措施成為醫(yī)務工作者刻不容緩的責任。

      AD的主要病理特征為老年斑、神經(jīng)原纖維纏結(jié)、區(qū)域選擇性神經(jīng)元數(shù)目減少和顆??张葑冃?神經(jīng)元細胞減少與神經(jīng)系統(tǒng)的不可逆轉(zhuǎn)的神經(jīng)元凋亡有關[1]。由于各種物理和化學刺激因素誘導的細胞凋亡都同時出現(xiàn)細胞內(nèi)酸化,細胞酸化與細胞凋亡之間的關系就成為人們關注的熱點[5,6]。Ibarreta D[7]等利用 AD患者的淋巴母細胞研究證明,α-IgM誘導的細胞內(nèi)酸化在 AD更為明顯,這就說明 AD患者的淋巴母細胞對酸負荷后細胞內(nèi) H+緩沖能力和質(zhì)子外流率都降低。本實驗中無論 AD組還是 NGF治療組、NGF預防組隨造模時間的延長,細胞內(nèi) pH值持續(xù)降低,AD組 pH值降低趨勢尤其明顯,以上研究結(jié)果說明,細胞內(nèi)的 p H降低在 AD的病理生理進程中起著重要作用。

      鈉氫離子交換蛋白(Na+/H+Exchanger,NHE)是維持細胞內(nèi)環(huán)境的細胞膜蛋白,它是存在于所有真核細胞的一種跨膜蛋白,該蛋白涉及細胞的多種功能,包括調(diào)節(jié)細胞內(nèi) pH值(intracellur pH,pHi)、細胞體積的控制以及離子轉(zhuǎn)運等。Urcelay E等[8]研究證明,AD患者淋巴母細胞細胞膜上 NHE的激活可以促進淋巴母細胞的增殖,這種效應與表面受體介導的鈣調(diào)蛋白信號途徑有關,它可以被 NHE的抑制劑所抑制。NHE激活或表達增多,可導致細胞內(nèi)的 p H升高,而 NHE的抑制或表達下調(diào),則使細胞內(nèi)的 pH降低,細胞酸化。本實驗中各組細胞隨模上NHE1表達的增強,細胞內(nèi) p H值下降趨勢減慢,但并沒完全停止,更沒有出現(xiàn)隨 NHE1表達增強細胞內(nèi) pH上升的情況,這說明在實驗時間段內(nèi) NHE1表達增強不能完全對抗 Aβ25-35誘導神經(jīng)元凋亡的毒性作用。越來越多的資料表明鈣調(diào)蛋白與許多神經(jīng)系統(tǒng)疾病有關,AD的發(fā)生已被證實部分是由于腦細胞內(nèi) CaM以及依賴于 CaM的激酶(PKC,PLA)等活性增高所致[9]。NHE1的 C端功能域存在與鈣調(diào)蛋白結(jié)合的兩個位點,鈣調(diào)蛋白能與 NHE1特異性結(jié)合,是其必要的活性調(diào)節(jié)亞單位,CaM的啟動與激活可抑制 NHE表達。實驗結(jié)果顯示隨造模時間的延長各組內(nèi)細胞 CaM與 NHE1的表達均是持續(xù)性增強的,這可能 Aβ25-35的細胞毒性持續(xù)作用有關。

      神經(jīng)生長因子(NGF)是最早發(fā)現(xiàn)和最典型的神經(jīng)營養(yǎng)因子,其生物學效應可以分為神經(jīng)系統(tǒng)和非神經(jīng)系統(tǒng)兩大類,有促進神經(jīng)元分化、保護效應神經(jīng)元、誘導神經(jīng)纖維定向生長和再生等多種效應。本實驗各組數(shù)據(jù)顯示,NGF預防組與 NGF治療組內(nèi)NHE1均具有高表達性,與 AD組比較有顯著差異(P<0.01,P<0.05),而且隨培養(yǎng)時間的延長各組內(nèi)NHE1表達均有不同程度的增強。這說明作為NHE1激動劑,神經(jīng)生長因子作用明顯。與 NHE1表達相對應,在 NGF作用下,預防組及治療組內(nèi) pH值較 AD組明顯增高,差異具有顯著性(P<0.01)。相反,NGF預防組與治療組內(nèi)各時間點細胞 CaM表達較 AD組明顯要低,差異有顯著性(P<0.01)。以上研究結(jié)果說明神經(jīng)生長因子能顯著增強 NHE1表達,有效地對抗 Aβ25-35對離體培養(yǎng)的神經(jīng)元細胞的毒性作用。

      總之,神經(jīng)生長因子可通過增強細胞膜上 NHE1的表達,有效地提高細胞內(nèi) pH值,對抗 Aβ25-35對離體培養(yǎng)的神經(jīng)元細胞的毒性作用,達到抗神經(jīng)元細胞凋亡的目的。神經(jīng)生長因子分子量大,不易通過血腦屏障,這是神經(jīng)生長因子應用于 AD治療的最大的困擾。相信隨著受體介導轉(zhuǎn)運的經(jīng)鼻腔腦靶向給藥、促進內(nèi)源性 NGF合成的化合物、增強內(nèi)源性NGF作用的化合物、NGF基因治療、NGF聯(lián)合治療等幾方面研究[10]的不斷進展,神經(jīng)生長因子及其它類型的 NGF激動劑如咪唑等在 AD治療中得到應用。

      [1] Harguindey S,Reshkin SJ,Orive G,et al.Growth and trophic factors,pH and the Na+/H+exchanger in Alzheimer's disease,other neurodegenerative diseases and cancer:new therapeutic possibilities and potential dangers[J].Curr Alzheimer Res,2007,4(1):53-65.

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      [10] 馬東亮,胡海濤,王建明.人腦源性神經(jīng)營養(yǎng)因子重組腺伴隨病毒的制備[J].西安交通大學學報(醫(yī)學版),2003,24(5):431-437.

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