魯杏華,朱中武,談志祥,何世成,范仲鑫,劉道新,邱立新
(1.湖南省動物疫病預(yù)防控制中心,湖南長沙410007;2.湖南出入境檢驗檢疫局,湖南長沙410003)
2008年5月,湖南省湘南地區(qū)某年出欄生豬2萬頭左右的規(guī)?;B(yǎng)豬場發(fā)生較為嚴(yán)重的母豬死亡及繁殖障礙、仔豬發(fā)病率和死亡率均較高的豬傳染病,經(jīng)發(fā)病情況調(diào)查、臨床癥狀、病理變化、實驗室診斷,確定為豬圓環(huán)病毒 2型、副豬嗜血桿菌混合感染。
該場飼養(yǎng)繁殖母豬400多頭,存欄商品豬2 000多頭,為了品種改良于2008年3月上旬從異地引入3月齡種豬60頭,引入后28 d注射高致病性藍耳病滅活疫苗,7 d后開始發(fā)病,并快速傳染至原存欄仔豬和母豬。到4月底,共有發(fā)病仔豬376頭,死亡282頭;母豬發(fā)病34頭,死亡18頭。采用常用抗生素和中藥制劑進行治療,無明顯療效。
發(fā)病生豬精神倦怠,反應(yīng)遲鈍,被毛粗亂,體溫升高至40℃~42℃,食欲減少或廢絕;體表皮膚出現(xiàn)紫斑,有些病例出現(xiàn)皮膚蒼白、局部發(fā)紺;結(jié)膜潮紅,呼吸困難,咳嗽,少數(shù)病例張口呼吸,呈犬坐姿勢,有些病例出現(xiàn)明顯的顫抖、關(guān)節(jié)腫脹、跛行、共濟失調(diào)、活動量減少等癥狀,隨后出現(xiàn)死亡;病豬體質(zhì)消瘦,仔豬病程約10~30 d。感染母豬流產(chǎn)或產(chǎn)弱仔等繁殖障礙癥狀,公豬出現(xiàn)跛行,繁殖性能降低,其中18頭母豬于高熱、食欲不振或廢絕4 d后因嚴(yán)重的呼吸障礙治療無效死亡,死亡前四肢劃動呈游泳姿勢[1-2]。
眼觀可見:四肢、下腹、耳尖、會陰等末梢部位皮膚發(fā)紺,可視黏膜蒼白或黃染;剖檢眼觀病變可見腹膜、心包膜、胸膜等漿液性和纖維素性滲出,滲出物置空氣中呈膠凍狀,肺實質(zhì)性病變,病程較長的病例肺表面有大量纖維素性滲出,有些病例出現(xiàn)胸腔與胸壁粘連;肝腫大,表面有黃白色纖維素性滲出物;脾臟表面覆蓋有纖維素性滲出物;腎腫大,有多量白色斑塊;全身淋巴結(jié)腫大。腫大關(guān)節(jié)內(nèi)有多量關(guān)節(jié)積液。
組織學(xué)病變主要特點是纖維素化膿性炎癥,肺泡腔縮小,腔內(nèi)可見少量的紅細胞,肺泡間質(zhì)增寬,間質(zhì)中充滿有大量的紅細胞、嗜中性粒細胞、少量的淋巴細胞、單核細胞以及白細胞碎片;肝索紊亂,肝細胞顆粒變性或水泡變性,部分細胞出現(xiàn)核皺縮、破裂或溶解,肝竇變寬,可見較多嗜中性粒細胞、少量淋巴細胞和單核細胞浸潤[1-2,5]。
4.1.1 細菌分離 用一次性注射器無菌采取豬肺、肝、脾、肺表面纖維素性滲出物、關(guān)節(jié)液,接種于巧克力平板培養(yǎng)基,37℃培養(yǎng)36~48 h后,巧克力平板內(nèi)均生長灰白色、光滑、透明的小菌落。該菌在普通鮮血瓊脂平板、普通營養(yǎng)瓊脂內(nèi)不生長,革蘭染色為陰性細小桿菌,具有多種不同的形態(tài)。再用巧克力瓊脂對細菌進行純化,取典型菌落進行生化鑒定[2-4]。
4.1.2 細菌生化鑒定 取經(jīng)巧克力平板純化的可疑菌落,進行煙酰胺腺嘌呤二核苷酸(NAD)生長依賴試驗、尿素酶試驗、CAMP試驗,結(jié)果表明該分離菌對NAD生物依賴,尿素酶試驗陰性,不溶血、CAMP試驗陰性,不發(fā)酵甘露醇、乳糖、木糖、L-阿拉伯糖,但能發(fā)酵葡萄糖、蔗糖和D-核糖。
4.1.3 分子生物學(xué)檢測 參考Oliveira S等[6]的方法進行副豬嗜血桿菌PCR檢測。將待檢可疑菌落接種于胰蛋白胨大豆肉湯培養(yǎng)基,37℃培養(yǎng)18~36 h,取1 mL培養(yǎng)液于經(jīng)滅菌處理的1.5 mL EP管,12 000 r/min離心5 min,沉淀懸浮于 100 μ L 滅菌水中,100℃水浴中煮5~10 min,然后迅速置于冰上冷卻5 min,10 000 r/min離心2 min,上清即為PCR模板。使用 1對引物(上游:5′-GTG ATG AGG AAG GGT GGT GT-3′和 下游 :5′-GGC T TC GTC ACC CTC TGT-3′)進行 PCR 擴增。反應(yīng)體系 :10 ×Taq Buffer 2.5 μ L ,2 μ mol/L dNTPs 2 μ L ,20 μ mol/L 上 、下游引物各 0.5 μ L ,Taq DNA聚合酶 0.5 μ L ,無菌水 15 μ L ,模板 4 μ L 。PCR 反應(yīng)條件 :95℃變性 5 min,94℃ 50 s、59℃ 1 min、72℃2 min,30個循環(huán);72℃延伸 10 min。取 6 μ L PCR產(chǎn)物進行0.8%瓊脂糖凝膠電泳,可見預(yù)期大小的條帶,即副豬嗜血桿菌檢測為陽性,結(jié)果見圖1。
圖1 副豬嗜血桿菌分離株P(guān)CR產(chǎn)物電泳圖
4.1.4 藥敏試驗 用紙片法對分離菌株進行藥敏試驗,結(jié)果顯示該菌株對頭孢噻肟、氨芐西林、慶大霉素、新霉素較敏感;對磺胺二甲嘧啶、環(huán)丙沙星、阿米卡星、紅霉素、壯觀霉素、泰妙菌素不敏感。
4.2.1 DNA/RNA抽提 隨機抽取病豬病理組織樣品4份,采用QiaGen公司提供的DNA/RNA提取試劑盒提取病毒DNA或RNA。
4.2.2 豬瘟病毒實時熒光 RT-PCR檢測 根據(jù)Promega公司提供的ONE-STEP qRT-PCR System配制反應(yīng)體系,參照趙建軍等[7]的方法制備引物和探針,使用提取樣品的 RNA進行實時熒光RT-PCR檢測。反應(yīng)條件為:45℃15 min;94℃5 min;94℃30 s,58℃ 45 s,72℃ 30 s,40 個循環(huán)擴增,退火延伸時收集熒光。陽性對照擴增到明顯的S曲線,Ct值為 29.6,被檢樣品均為陰性。
4.2.3 豬繁殖與呼吸綜合征病毒檢測 應(yīng)用豬繁殖與呼吸綜合征病毒(Nsp2 1594-1680變異株)RTPCR檢測試劑盒(購自北京世紀(jì)元亨動物防疫技術(shù)有限公司)對被檢樣品RNA進行PRRSV變異株檢測,檢測結(jié)果均為陰性(見圖2)。
圖2 豬繁殖與呼吸綜合征病毒RT-PCR產(chǎn)物電泳圖
4.2.4 豬2型圓環(huán)病毒檢測 采用本實驗室建立的豬2型圓環(huán)病毒PCR檢測方法對5份被檢樣品檢測 PCV-2 ,使用 1 對引物(上游 :5′-ACTCCGT TGTCCCTGAGAT-3′和 下 游 :5′-TTACCGGCGCACT TCGGCAG-3′)對提取的 樣品 DNA 進行PCR擴增。反應(yīng)條件:95℃ 3 min;95℃ 1 min,58 ℃30 s,72℃1 min,30 個循環(huán);72℃延伸10 min。檢測結(jié)果為4份樣品PCV-2陽性,1份樣品PCV-2陰性,PCR凝膠電泳結(jié)果見圖3。
圖3 PCV-2 PCR產(chǎn)物電泳圖
采用該場使用較少的慶大霉素、氟甲硯霉素、環(huán)丙沙星、恩諾沙星等抗生素進行治療(按說明書中治療劑量使用),飼料中添加金霉素和泰樂菌素,飲水中添加口服補液鹽并同時注射維生素C,兩星期后該場疫情得到控制。
根據(jù)以上實驗室檢測結(jié)果,結(jié)合臨床癥狀和病理學(xué)變化及臨床治療效果,診斷該病例是由豬圓環(huán)病毒2型和副豬嗜血桿菌混合感染而引起的豬傳染病。
6.1 隔離已感染病豬,及時淘汰失去經(jīng)濟價值的病豬,在進行病死豬尸體處理過程中嚴(yán)格遵守生物安全管理條例。
6.2 加強環(huán)境衛(wèi)生消毒,對空閑圈舍采用清水沖洗、有效藥物消毒、火焰消毒等消毒措施,消毒空閑3~7 d。舍內(nèi)走廊過道每周用有效藥物消毒1~2次。豬群視豬舍溫度不同,每月對豬消毒1~2次。生產(chǎn)用具每批豬或在每月消毒1次。各棟舍、生產(chǎn)單元、場門口等人員出入處設(shè)消毒池。常用的消毒藥物有火堿等?,F(xiàn)場監(jiān)測表明,火堿的消毒效果較好。但濃度需在4%以上??臻e豬舍可熏蒸消毒。對健康豬群加強管理,定期消毒,搞好通風(fēng)換氣,飼料內(nèi)添加黃芪多糖和多種維生素,提高健康豬群的免疫力。密切關(guān)注豬群健康動態(tài),對剛發(fā)病豬迅速隔離的同時注射干擾素,連用3 d。
6.3 加強引種管理,引種前對種豬場疫病情況進行系統(tǒng)全面了解,引種時逐頭采集引入種豬血樣對豬瘟病毒、豬圓環(huán)病毒2型、豬繁殖與呼吸綜合征病毒、豬偽狂犬病病毒、胸膜肺炎放線桿菌等進行血清抗體檢測,檢測結(jié)果均為陰性者方可引入。種豬引入后隔離飼養(yǎng)45 d后方可混群。
6.4 保持衛(wèi)生和適當(dāng)通風(fēng),及時清理糞便等污物,降低因污物發(fā)酵和腐敗產(chǎn)生的有害氣體對豬呼吸系統(tǒng)的損害。在進行走廊和圈舍清掃時應(yīng)盡量避免塵埃向空氣中擴散。
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[3] 中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院哈爾濱獸醫(yī)研究所.獸醫(yī)微生物學(xué)[M].北京:中國農(nóng)業(yè)出版社,1998.
[4] R E布坎南,N E吉本斯.伯杰細菌鑒定手冊[M].中國科學(xué)院微生物研究所《伯杰細菌鑒定手冊》翻譯組,譯.8版.北京:科學(xué)出版社,1984.
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[6] Oliveira S,Galina L,PijoanC.Development of a PCR test to diagnose Haemophilus parasuis infections[J].J Vet Diag Invest,2001(13):495-501.
[7] 趙建軍,成丹,李娜,等.豬瘟病毒實時熒光定量RT-PCR的建立及其對人工感染豬體內(nèi)豬瘟病毒的檢測[J].畜牧獸醫(yī)學(xué)報,2007,38(7):685-693.