趙曉霞, 宋春伶
腦缺血后的神經(jīng)、血管調(diào)節(jié)機制較為復(fù)雜,其中激肽釋放酶一激肽系統(tǒng)起重要作用。它主要通過具有血管活性的激肽與其特異受體結(jié)合,影響一系列因子及細胞,發(fā)揮擴血管,神經(jīng)保護,促進局部血管新生和神經(jīng)再生的作用,從而促進神經(jīng)功能的改善。本文總結(jié)了激肽釋放酶一激肽系統(tǒng)促進新血管生成的多種機制,為缺血性卒中的治療提供新的思路。
激肽釋放酶-激肽系統(tǒng)(KKS)包括6個成員:激肽釋放酶、激肽釋放酶抑制劑、激肽原、激肽、激肽受體、激肽酶。激肽原分為高分子量激肽原(HK)和低分子量激肽原(LK)。激肽釋放酶是該系統(tǒng)的核心成分的,也是主要的調(diào)控分子,為Abelous等于1909年首次發(fā)現(xiàn)并報道,它是絲氨酸蛋白酶超家族成員,根據(jù)其合成部位、分布、作用底物、免疫學(xué)特征、降解產(chǎn)物和生物學(xué)功能等的不同,激肽釋放酶又分為組織型激肽釋放酶(Tissue Kallikrein,TK)和血漿型激肽釋放酶(Plasma kallikrein,PK)2種。PK為單基因編碼,該基因位于4q35染色體上,由15個外顯子14個內(nèi)含子組成,它主要在肝臟合成,分布于血漿中,可裂解HK釋放出九肽的緩激肽;TK基因位于染色體19q13.4,包括261~558 bp,由15個激肽釋放酶基因組成。它分布于腎、唾液腺、胰腺、腦和心血管,裂解LK生成十肽的胰激肽,又稱血管舒張素,后者在氨基肽酶的作用催化下失去賴氨酸,成為緩激肽。緩激肽與胰激肽統(tǒng)稱為激肽。激肽是主要的效應(yīng)分子,它與血管內(nèi)皮激肽受體結(jié)合而產(chǎn)生生物學(xué)效應(yīng)。激肽受體為G蛋白偶聯(lián)受體,主要有2種:B1受體和B2受體,B2受體于正常機體中存在,是與激肽結(jié)合產(chǎn)生效應(yīng)的主要受體;B1受體為損傷誘導(dǎo)型受體,當機體處于缺血、炎癥等損傷狀態(tài)時大量生成以發(fā)揮改善循環(huán)等作用[1]。激肽釋放酶抑制劑是絲氨酸蛋白酶抑制劑家族的一個成員,能與激肽釋放酶結(jié)合成熱穩(wěn)定的復(fù)合物而抑制其功能。
KKS腦缺血時發(fā)揮多種作用以促進神經(jīng)功能的恢復(fù),如擴血管改善循環(huán),促進血管新生,加強神經(jīng)再生[2],神經(jīng)保護作用[3],抑制血管內(nèi)皮增厚、降血壓[4]等。其中,血管再生是腦組織發(fā)生缺血后所誘發(fā)的一種自我保護機制,可改善缺血區(qū)周圍的血流供應(yīng),為腦組織重建提供充足的養(yǎng)分和營養(yǎng)。胡湘蜀等用熒光劑注入股靜脈的方法檢測大鼠腦組織的血管密度,得出結(jié)論:缺血周圍區(qū)域血管密度較非缺血半球相應(yīng)區(qū)域明顯增加,梗死半球半暗帶區(qū)域血管數(shù)量有所增加,主支血管上出現(xiàn)較大的小血管盲端為新血管形成跡象[5]。另有研究通過磁共振T2加權(quán)序列也發(fā)現(xiàn)動物腦組織缺血后4w開始出現(xiàn)血管增生的現(xiàn)象[6]。因此這就為我們治療缺血性腦血管病提供了新的思路,也是目前尚需進一步研究的課題。在一般情況下,新血管的形成被稱為血管新生,其中包括血管再生、動脈形成和血管生成。血管再生是指新的毛細血管從現(xiàn)有的微血管出芽生成新的血管;動脈形成過程中是指有足夠的直徑的血管成熟的過程,通過誘導(dǎo)單核細胞聚集并促進新血管形成來實現(xiàn);而血管生成是內(nèi)皮前體細胞的分化及成熟所介導(dǎo)的血管形成過程。血管生成因子和血管再生相關(guān)細胞是新的血管形成的兩個因素。
2.1 血管生成因子
2.1.1 血管內(nèi)皮生長因子(VEGF) VEGF是一個有效地促血管生成因子,它是分子量介于34000~45000Da之間的糖基化二聚體。體內(nèi)許多細胞都可分泌VEGF,它的調(diào)節(jié)是通過多種細胞因子實現(xiàn)的,如白介素-1β(IL-1β)、轉(zhuǎn)化生長因子-β(TGF-β)、血小板源性生長因子(PDGF)等,它參與內(nèi)皮細胞的增殖、分化和毛細血管的形成。人類VEGF基因位于染色體6p21.3,至少有 5種表型(VEGF121,VEGF145,VEGF165,VEGF189和 VEGF206)。VEGF與其受體(以VEGFR2為主)結(jié)合后誘導(dǎo)微血管滲漏、內(nèi)皮細胞增殖、浸潤、分化和存活[7]。有實驗表明,由重組腺病毒轉(zhuǎn)導(dǎo)的VEGF的過度表達可顯著激活血管再生,同時增加成年大鼠血腦屏障的滲漏[8]。先前有報道說,VEGF可被緩激肽超激活,隨之激活內(nèi)皮細胞上的eNOS[9,10]以發(fā)揮促血管生成的作用。經(jīng)流式細胞儀檢測,HK可明顯增加VEGF的水平,還誘導(dǎo)VEGFR-2的表達少量但顯著增高。首先,激肽與B2受體結(jié)合后通過磷脂酰肌醇3激酶-蛋白激酶B--糖原合酶激酶-3β信號通路 (phosphoimsitide 3 kinase-Akt-glycogen synthase kinase-3β pathway,PI3K-Akt-GSK-3β)增加 VEGF 和 VEGFR2在血管內(nèi)皮細胞上的表達,抑制B2受體的激活,則阻礙了激肽釋放酶對血管網(wǎng)生成和內(nèi)皮細胞遷移的作用[11]。此外,激肽B1受體在血管再生中的作用可能是由VEGF介導(dǎo)的[12]。
2.1.2 血管生成素(Angiopoietins) 血管生成素也是血管重塑的過程中關(guān)鍵因子,促進平滑肌細胞和周細胞聚集。其中最重要的是Ang-1和Ang-2,它們均與Tie2受體結(jié)合,但作用不同。Ang-1促進內(nèi)皮細胞存活和血管成熟[13],降低血管通透性[14],增加血管的穩(wěn)定性。Ang-2抑制Ang-1的穩(wěn)定性和成熟,誘導(dǎo)內(nèi)皮細胞/周細胞之間的連接變得疏松,因而使血管的可塑性增強。Ang-2促進VEGF誘導(dǎo)的血管生成,并且增加基質(zhì)金屬蛋白酶-9(MMP-9)的表達。Ang-2與VEGF協(xié)同作用時促進血管再生,而當缺乏VEGF時則導(dǎo)致內(nèi)皮細胞死亡和血管退化。KKS可使eNOS上調(diào),NO釋放增多,經(jīng)PI3K/Akt通路介導(dǎo)了Ang-1誘導(dǎo)的血管再生[15]。
2.1.3 一氧化氮合酶(Nitric oxide synthases,NOS)NOS以3種亞型存在,其中2種(nNOS,eNOS)是長期存在的,還有1種(iNOS)是誘導(dǎo)生成的。nNOS在中樞神經(jīng)系統(tǒng)和周圍神經(jīng)系統(tǒng)的組織內(nèi)產(chǎn)生NO。iNOS既存在免疫系統(tǒng)里,也存在于心血管系統(tǒng)。eNOS也被稱為NOS3,在血管內(nèi)產(chǎn)生NO,由此產(chǎn)生的NO在調(diào)節(jié)全身血壓、血管緊張性、血管重塑和血管再生方面起關(guān)鍵作用[16,17]。缺乏eNOS的鼠腦缺血區(qū)血管再生減少[18]。曾有實驗給予卒中后24h的大鼠NO生成物-DETANONOate,結(jié)果增大了血管半徑,增加了分化的大腦內(nèi)皮細胞的數(shù)量和缺血區(qū)新生血管的數(shù)量[19]。BK、VEGF與其受體結(jié)合后通過PI3-AKt信號通路刺激eNOS的磷酸化,從而使其活化并發(fā)揮重要作用[20]。BK與B2R結(jié)合可上調(diào)eNOS,介導(dǎo)血管再生效應(yīng)[21]。
2.1.4 成纖維細胞生長因子(fibroblast growth factor,F(xiàn)GF) FGF家族是被發(fā)現(xiàn)的第一類可刺激血管內(nèi)皮細胞生長的生長因子[22]。它們的主要作用是刺激內(nèi)皮細胞的遷移、分化、出芽和血管形成。但是它的兩個成員-酸性成纖維細胞生長因子(FGF-1)和堿性成纖維生長因子(FGF-2)都缺乏其特有的分泌信號,它們在時空上的表達不總是與血管再生的活躍相關(guān),且二者或其一的缺乏不能導(dǎo)致主要的血管缺陷[23,24]。Hara 等[25]分析了 FGF-1 在鼠大腦缺血區(qū)的表達特征,免疫染色后的FGF-1在正常動物大腦中不能被發(fā)現(xiàn),而神經(jīng)元和巨噬細胞受到缺血性損害后24h可發(fā)現(xiàn)FGF-1的表達,在血管閉塞后14d達到高峰。FGF-2與FGF-1相反,在正常腦組織神經(jīng)元內(nèi)可發(fā)現(xiàn)FGF-2mRNA表達[26],在腦梗死后1d可發(fā)現(xiàn)FGF-2水平增高[27]。Krupinski等通過分析人類腦梗死后的腦組織樣本發(fā)現(xiàn)缺血半暗帶的FGF-2表達增加[28]。BK與B1受體結(jié)合后誘導(dǎo)NOS的激活和cGMP的積聚,從而轉(zhuǎn)導(dǎo)FGF-2的上調(diào)和后毛細血管內(nèi)皮細胞的分化[29]。另外,VEGFR2拮抗劑可抑制FGF介導(dǎo)的血管再生,這表明FGF的促血管再生作用與VEGF相關(guān)[30]。
2.1.5 基質(zhì)金屬蛋白酶(matrix metalloproteinase,MMP) MMP家族的成員涉及細胞外基質(zhì)在生理和病理條件下的重塑。它們在細胞外基質(zhì)降解和內(nèi)皮細胞浸潤、遷移中起到重要作用,從而促進缺血區(qū)血管新生。VEGF可增加MMP的表達。在內(nèi)皮細胞遷移和管腔形成時生成MMP-1、MMP-2和MMP-9[31]。Stone等人通過實驗證明TK的過度表達增加組織中MMP-9的激活,而缺乏MMP-9的肢端缺血鼠經(jīng)TK治療后效果不佳,說明TK促進神經(jīng)功能恢復(fù)及血管新生的作用是通過MMP來實現(xiàn)的[32]。
2.1.6 肝細胞生長因子(Hepatocyte growth factor,HGF) HGF是由間質(zhì)細胞源性的細胞分泌的一種不活躍的前體,它是通過尿激酶(uPA)或組織型纖溶酶原激活物(tPA)的蛋白水解分離作用被激活的[33,34]。HGF結(jié)合并激活酪氨酸蛋白激酶受體c-met(主要被發(fā)現(xiàn)在上皮細胞和內(nèi)皮細胞),產(chǎn)生強大的促血管再生作用。其機制部分是由于HGF誘導(dǎo)內(nèi)皮細胞上 VEGF 的生成[35,36]。此外,Sengupta 等通過實驗抑制VEGFR2,仍可發(fā)現(xiàn)HGF介導(dǎo)的持續(xù)的血管再生效應(yīng)。這說明HGF還可誘導(dǎo)與VEGF途徑無關(guān)的促血管再生作用[37]。Shimamura等[38]通過動物實驗表明,HGF 過度表達導(dǎo)致梗死面積明顯減小,此外HGF過度表達的大鼠大腦皮質(zhì)的毛細血管密度較對照組增高。HGF對凝血酶敏感蛋白1(thrombospondin-1,TSP-1)起負性調(diào)節(jié)作用[36],而 TSP1 與包括促內(nèi)皮細胞凋亡在內(nèi)的抗血管再生途徑相關(guān)。TSP1的表達缺陷與血管生成作用減弱有關(guān)聯(lián)[39]。KKS可促進多種血管生長因子(VEGF,F(xiàn)GF等)的功能,從而間接誘導(dǎo)Ets-1的激活,Ets-1可促進HGF的生成和釋放,HGF也可促進Ets-1的激活,從而形成正反饋,促進內(nèi)皮細胞的活化[40]。
另外,KKS還可影響其他血管生成相關(guān)因子,如血小板源性生長因子(PDGF)、前列腺素(PG)、轉(zhuǎn)化生長因子(TGF)等,它們與相應(yīng)受體結(jié)合后作用于內(nèi)皮細胞,也可產(chǎn)生促血管新生的作用。
2.2 血管生成相關(guān)細胞 毫無疑問,內(nèi)皮細胞增殖和遷移是成人微血管新生過程的主要部分。但是骨髓源性的內(nèi)皮祖細胞(EPCs)的發(fā)現(xiàn)與血管生成僅發(fā)生在胚胎血管形成的過程中這一觀念相抵觸?,F(xiàn)已推斷出的EPCs的成員(被定義為CD133+,CD34+和VEGF受體Ⅱ激酶結(jié)構(gòu)域激活的細胞)大部分來源于骨髓;一些研究也表明,EPCs是從脾臟,肝臟,人臍帶血,骨髓源性單核細胞,CD34或CD133陽性的造血干細胞和人外周血單核細胞中培養(yǎng)出來的。EPCs在正常情況下循環(huán)于外周血中,清除損傷的內(nèi)皮細胞以進行血管修復(fù)。此外,EPCs可向損傷組織聚集,并通過分泌多種生長因子促進神經(jīng)細胞存活,神經(jīng)發(fā)生,刺激血管再生的途徑參與損傷修復(fù)或創(chuàng)傷治療。給予EPCs可促進血管生成,減小梗死面積,增加缺血部位的血流。血液循環(huán)中EPCs向血管新生部位聚集并分化為內(nèi)皮細胞,這一過程與“血管生成”相關(guān),是胚胎血管新生的關(guān)鍵模式[41]。有人通過實驗證明骨髓源性EPCs參與腦缺血后腦血管新生[42]。許多促血管再生因子可影響外周血EPCs的數(shù)量[43]。激肽與B1、B2受體結(jié)合后上調(diào)VEGF的水平,VEGF通過與VEGFR2結(jié)合將生存和有絲分裂的信號傳遞給EPCs和造血干細胞,從而發(fā)揮血管新生的作用[44,45]。目前有研究將eNOS與血管新生過程聯(lián)系起來-獲得性血管生成,它與EPCs所介導(dǎo)的血管形成相關(guān)[46]。此外,將野生型祖細胞直接注入eNOS基因敲除可逆轉(zhuǎn)血管新生的缺陷,這表明eNOS介導(dǎo)的血管再生過程與EPCs有關(guān)[16]。
隨著對KKS作用機制的認識逐漸拓展,KKS在臨床治療中的應(yīng)用也不斷增多,不僅可增強腦保護,還可促進缺血部位血管新生。目前治療的研究重點主要在基因治療方面,Xia等將攜帶TK基因的腺病毒注入MCAO大鼠腦室內(nèi),可減輕神經(jīng)功能缺失,縮小梗死面積[3]。雖然越來越多的證據(jù)證明KKS在缺血性卒中的治療方面的成效,但仍有一些問題尚待解決。今后,在臨床治療缺血性疾病時應(yīng)用KKS中的有效成分,不僅局限于其舒張血管及神經(jīng)保護的作用,還著重利用其促血管再生的作用,這為我們積極、有效、全面的治療缺血性卒中開辟了嶄新的思維。而有關(guān)此機制的基因治療仍僅限于動物實驗階段,未來在臨床實施方面仍需進一步努力。
[1]潘傳涌,時 多,繆明永,等.激肽系統(tǒng)活性產(chǎn)物[J].生命的化學(xué),2008,28:629-632.
[2]Xia CF,Yin H,Yao YY,etal.Kallikrein protects against ischemic stroke by inhibiting apoptosis and inflammation and promoting angiogenesis and neurogenesis[J].Hum Gene Ther,2006,17:206-219.
[3]Xia CF,Yin H,Borlongan CV,etal.Kallikrein gene transfer protects afainst ischemic stroke by promoting glial cellmigration and inhibiting apoptosis[J].Hypertension,2004,43:452-459.
[4]Murakami H,Yayama K,Miao RQ,etal.Kallikrein gene delivery inhibits vascular smooth muscle cell growth and neointima formation in the rat artery after balloon angioplasty[J].Hypertension,1999,34:164-170.
[5]胡湘蜀,周 東,羅祖明.大鼠局灶腦缺血病灶周圍新血管生成的相關(guān)實驗研究[J].腦與神經(jīng)疾病雜志,2009,17:465-468.
[6]Ding G,Jiang Q,Li L,etal.Angiogenesis detected after embolic stroke in rat brain using magnetic resonance T2*WI[J].Stroke,2008,39:1563-1568.
[7]Hicklin DJ,Ellis LM.Role of the vascular endothelial growth factor pathway in tumor growth and angiogenesis[J].Clin Oncol,2005,23:1011-1027.
[8]Yang GY,Xu B,Hashimoto T,etal.Induction of focal angiogenesis through adenoviral vector mediated vascular endothelial cell growth factor gene transfer in the mature mouse brain[J].Angiogenesis,2003,6:151-158.
[9]Thuringer D,Maulon L,F(xiàn)relin C.Rapid transactivation of the vascular endothelial growth factor receptor KDR/Flk-1 by the bradykinin B2 receptor contributes to endothelial nitric-oxide synthase activation in cardiac capillary endothelial cells[J].Biol Chem,2002,277:2028-2032.
[10]Miura S,Matsuo M,Saku S.Transactivation of KDR/Flk-1 by the B2 receptor induces tube formation in human coronary endothelial cells[J].Hypertension,2003,41:1118-1123.
[11]Yao YY,Yin H,Shen B.Tissue kallikrein promotes neovascularization and improves cardiac function by the Akt-glycogen synthase kinase-3b pathway[J].Cardiovasc Res,2008,80:354-364.
[12]Souza DG,Lomez ES,Pinbo V,etal.Role of Bradykinin B2 and B1 Receptors in the Local,Remote and Systemic Inflammatory Responses That Follow Intestinal Ischemia and Reperfusion Injury[J].Immunol,2004,172:2542-2548.
[13]Suri C,Jones PF,Patan S,etal.Requisite role of angiopoietin-1,a ligand for the TIE2 receptor,during embryonic angiogenesis[J].Cell,1996,87:1171-1180.
[14]Thurston G,Rudge JS,Ioffe E,etal.Angiopoietin-1 protects the adult vasculature against plasma leakage[J].Nat Med,2000,6:460-463.
[15]Babaei S,Teichert-Kuliszewska K,Zhang Q,etal.Angiogenic Actions of Angiopoietin-1 Require Endothelium-Derived Nitric Oxide[J].Am JPathol,2003,162:1927-1936.
[16]Murohara T,Asahara T,Silver M,etal.Nitric oxide synthasemodulates angiogenesis in response to tissue ischemia[J].Clin Invest,1998,101:2567-2578.
[17]Rudic RD,Shesely EG,Maeda N,etal.Direct evidence for the importance of endothelium-derived nitric oxide in vascular remodeling[J].Clin Invest,1998,101:731-736.
[18]Chen J,Zacharek A,Zhang C,etal.Endothelialnitric oxide synthase regulates brain-derived neurotrophic factor expression and neurogenesis after stroke in mice[J].Neurosci,2005,25:2366-2375.
[19]Zhang R,Wang L,Zhang L,etal.Nitric oxide enhances angiogenesis via the synthesis of vascular endothelial growth factor and cGMP after stroke in the rat[J].Circ Res,2003,92:308-313.
[20]Harris MB,Ju H,Venema VJ,etal.Reciprocal Phosphorylation and Regulation of Endothelial Nitric-oxide Synthase in Response to Bradykinin Stimulation[J].JBiol Chem,2001276:16587-16591.
[21]Silvestre JS,Bergaya S,Tamarat R,etal.Proangiogenic Effectof Angiotensin-Converting Enzyme Inhibition Is Mediated by the Bradykinin B2 Receptor Pathway[J].Circ Res,2001,89:678-683.
[22]Carmeliet P.Fibroblastgrowth factor-1 stimulatesbranching and survival ofmyocardial arteries:a goal for therapeutic angiogenesis[J].Circ Res,2000,87:176-178.
[23]Gerwins P,Skoldenberg E,Claesson-Welsh L.Function ofWbroblast growth factors and vascular endothelial growth factors and their receptors in angiogenesis[J].Crit Rev Oncol Hematol,2000,34:185-194.
[24]Miller DL,Ortega S,Bashayan O,etal.Compensation by fibroblast growth factor1(FGF1)does notaccount for themild phenotypic defects observed in FGF2 nullmice[J].Mol Cell Biol,2000,20:2260-2268.
[25]Hara Y,Tooyama I,Yasuhara O,etal.Acidic fibroblast growth factor-like immunoreactivity in rat brain following cerebral infarction[J].Brain Res,1994,664:101-107.
[26]Lin TN,Te J,Lee M,etal.Induction of basic fibroblastgrowth factor(bFGF)expression following focal cerebral ischemia[J].Brain Res Mol Brain Res,1997,49:255-265.
[27]Chen HH,Chien CH,Liu HM.Correlation between angiogenesisand basic fibroblast growth factor expression in experimental brain infarct[J].Stroke,1994,25:1651-1657.
[28]Issa R,AlQteishat A,Mitsios N,etal.Expression of basic fibroblast growth factormRNA and protein in the human brain following ischaemic stroke[J].Angiogenesis,2005,8:53-62.
[29]Parenti A,Morbidelli L,Ledda F,etal.The bradykinin/B1 receptor promotes angiogenesis by up-regulation of endogenous FGF-2 in endothelium via the nitric oxide synthase pathway[J].FASEB J,2001,15:1487-1489.
[30]Onimaru M,Yonemitsu Y,Tanii M,etal.Fibroblast growth factor-2 gene transfer can stimulate hepatocyte growth factor expression irrespective of hypoxia-mediated downregulation in ischemic limbs[J].Circ Res,2002,91:923-930.
[31]Haas TL.Endothelial cell regulation of matrix metalloproteinases[J].Can JPhysiol Pharmacol,2005,83:1-7.
[32]Stone OA,Richer C,Emanueli C,etal.Critical role of tissue kallikrein in vessel formation and maturation:implications for therapeutic revascularization[J].Arterioscler Thromb Vasc Biol,2009,29:657-664.
[33]Zhang YW,VandeWou de GF.HGF/SF-met signaling in the control of branchingmorphogenesis and invasion[J].Cell Biochem,2003,88:408-417.
[34]Peek M,Moran P,Mendoza N,etal.Unusual proteolytic activation of pro-hepatocyte growth factor by plasma kallikrein and coagulation factor Xia[J].Biol Chem,2002,277:47804-47809.
[35]Reisinger K,Kaufmann R,Gille J.Increased Sp1 phosphorylation as amechanism of hepatocyte growth factor(HGF/SF)-induced vascular endothelial growth factor(VEGF/VPF)transcription[J].Cell Sci,2003,116:225-238.
[36]Zhang YW,Su YL,VolpertOV,etal.Hepatocyte growth factor/scatter factormediates angiogenesis through positive VEGF and negative thrombospondin 1 regulation[J].Proc Natl Acad Sci USA,2003,100:12718-12723.
[37]Sengupta S,Gherardi E,Sellers L A,etal.Hepatocyte growth factor/scatter factor can induce angiogenesis independently of vascular endothelialgrowth factor[J].Arterioscler Thromb Vasc Biol,2003,23:69-75.
[38]Shimamura M,Sato N,Oshima K,etal.Novel therapeutic strategy to treat brain ischemia:overexpression of hepatocyte growth factor gene reduced ischemic injury without cerebral edema in rat model[J].Circulation,2004,109:424-431.
[39]Sargiannidou I,Zhou J,Tuszynski GP.The role of thrombospondin-1 in tumor progression[J].Exp Biol Med,2001,226:726-733.
[40]Milkiewicz M,Ispanovic E,Doyle JL,etal.Regulators of angiogenesis and strategies for their therapeutic manipulation[J].Int JBiochem Cell Biol,2006,38:333-357.
[41]Asahara T,Kawamoto A.Endothelial progenitor cells for postnatal vasculogenesis[J].Am J Physiol Cell Physiol,2004,287:572-579.
[42]Zhang ZG,Zhang L,Jiang Q,etal.Bonemarrowderived endothelial progenitor cells participate in cerebral neovascularization after focal cerebral ischemia in the adultmouse[J].Circ Res,2002,90:284-288.
[43]Liew A,Barry F,O’Brien T.Endothelial progenitor cells:diagnostic and therapeutic considerations[J].Bioessays,2006,28:261-270.
[44]Larrivee B,Lane DR,Pollet I,etal.Vascular endothelial growth factor receptor-2 induces survival of hematopoietic progenitor cells[J].Biol Chem,2003,278:22006-22013.
[45]Gerber HP,Malik AK,Solar GP,etal.VEGF regulates haematopoietic stem cell survival by an internal autocrine loop mechanism[J].Nature,2002,417:954-958.
[46]Aicher A,Heeschen C,Mildner-Rihm C,etal.Essential role of endothelial nitric oxide synthase formobilization of stem and progenitor cells[J].Nat Med,2003,9:1370-1376.