許修宏,孟 琦,劉華晶,李 亮
(1.東北農(nóng)業(yè)大學(xué)資源與環(huán)境學(xué)院,哈爾濱 150030;2.黑龍江省農(nóng)業(yè)科學(xué)院大慶分院,黑龍江 大慶 161090)
黑木耳(Auricularia auricula)又稱木耳、細木耳、光木耳、云耳,分類上屬擔(dān)子菌綱,銀耳目,木耳科,木耳屬。它是我國主要栽培的食用菌之一[1]。
1972年荷蘭Vessels首次用裂解酶分離了褶皺菌原生質(zhì)體。原生質(zhì)體技術(shù)開始應(yīng)用于食用菌研究領(lǐng)域[2]。近年來,原生質(zhì)體技術(shù)取得了較大進展,而原生質(zhì)體的制備與再生是研究原生質(zhì)體融合及單核雜交技術(shù)的前提條件。本文研究了黑木耳菌絲分離原生質(zhì)體的主要酶解條件,再生條件及單核化,為以后培育新品種及基因工程研究等奠定基礎(chǔ)。
1.1.1 供試菌株
黑木耳菌株黑29由黑龍江省微生物所提供。
1.1.2 培養(yǎng)基
PDA液體培養(yǎng)基:馬鈴薯200 g(煮汁),葡萄糖 20 g,蛋白胨 3 g,KH2PO43 g,MgSO4·7H2O 2 g加水至1 000 mL用于原生質(zhì)體前菌絲的培養(yǎng)。
液體再生培養(yǎng)基:馬鈴薯200 g(煮汁),葡萄糖20 g,蛋白胨 3 g,KH2PO43 g,MgSO4·7H2O 2 g,酵母膏2 g,維生素B110 mg,甘露醇109.3 g加水至1 000 mL用于原生質(zhì)體孵育。
原生質(zhì)體再生培養(yǎng)基:
RM1:馬鈴薯200 g,葡萄糖20 g;瓊脂20 g加水至1 000 mL;
RM2:馬鈴薯200 g,葡萄糖20 g,KH2PO43 g,蛋白胨3 g,MgSO4·7H2O 2 g,瓊脂 20 g加水至1 000 mL;
RM3:馬鈴薯200 g,葡萄糖20 g,KH2PO43 g,蛋白胨 3 g,MgSO4·7H2O 2 g,酵母膏 2 g,瓊脂20 g加水至1 000 mL;
RM4:馬鈴薯200 g,葡萄糖20 g,KH2PO43 g,蛋白胨3 g,MgSO4·7H2O 2 g,酵母膏2 g,維生素B110 mg,瓊脂20 g加水至1 000 mL;
RM5:馬鈴薯200 g,葡萄糖20 g,蛋白胨3 g,KH2PO43 g,MgSO4·7H2O 2 g,酵母膏 2 g,維生素B110 mg,甘露醇109.3 g,瓊脂20 g加水至1 000 mL用于原生質(zhì)體再生;
PDA綜合培養(yǎng)基:馬鈴薯200 g,葡萄糖20 g,KH2PO43 g,蛋白胨 3 g,MgSO4·7H2O 2 g,瓊脂20 g加水至1 000 mL。
1.1.3 酶制劑
溶壁酶由廣東微生物所提供。
1.1.4 試劑
KCl、MgSO4、蔗糖、甘露醇濃度:用 0.05 mol·L-1pH 5.8的磷酸鹽緩沖液配制;酶液:用0.05 mol·L-1pH 5.8的磷酸鹽緩沖液配制 0.6 mol·L-1MgSO4,然后用MgSO4溶液配置酶溶液。
1.2.1 菌絲培養(yǎng)
將試管斜面菌絲塊接種于裝有150 mL PDA液體培養(yǎng)基三角瓶中,25℃搖床培養(yǎng)(121 r·min-1)7~11 d。
1.2.2 原生質(zhì)體的制備
無菌條件下收集黑29菌絲體,無菌水沖洗1次,用 0.6 mol·L-1MgSO4高滲液沖洗后,5 000 r·min-1,離心 10 min,收集的菌絲用 0.6 mol·L-1MgSO4高滲液再沖洗 1 次,5 000 r·min-1,離心 10 min,用無菌濾紙吸干水分。酶液用0.22 um微孔過濾膜過濾后,按菌絲體∶酶液=1∶2(m∶V)的比例添加酶液,震蕩2 min,混勻,在不同溫度下振蕩酶解不同時間,無菌條件下用無菌脫脂棉過濾,無菌管收集濾液,用0.6 mol·L-1MgSO4高滲液沖洗2次,5 000 r·min-1離心 5 min,沉淀用 0.5 mol·L-1MgSO4穩(wěn)滲劑洗滌離心,5 000 r·min-1,5 min 2次,用0.5 mol·L-1MgSO4穩(wěn)滲劑稀釋至一定體積后,血球計數(shù)板計算原生質(zhì)體數(shù)量。
1.2.3 原生質(zhì)體制備最佳條件的選擇
以黑29為供試菌株在不同酶濃度、酶解時間、酶解溫度、滲透壓穩(wěn)定劑種類及其濃度、菌齡、條件下進行酶解脫壁,根據(jù)原生質(zhì)體數(shù)確定最佳條件。
1.2.4 原生質(zhì)體再生培養(yǎng)基的選擇
將制備的原生質(zhì)體溶液稀釋至2×104個·mL-1后加入等體積的液體再生培養(yǎng)基,25℃靜置孵育24 h,取孵育好的原生質(zhì)體0.1 mL涂培養(yǎng)皿,使每培養(yǎng)皿原生質(zhì)體數(shù)目達到103個,采用不同的再生培養(yǎng)基,25℃下靜置培養(yǎng)15~20 d,觀察培養(yǎng)皿中的再生菌落數(shù)。
原生質(zhì)體再生率計算:再生率(%)=再生菌落數(shù)/原生質(zhì)體總數(shù)×100%。
1.2.5 滲透壓穩(wěn)定劑對原生質(zhì)體再生的影響
選擇不同的滲透壓穩(wěn)定劑稀釋原生質(zhì)體后涂皿,25℃下靜置培養(yǎng)20 d,觀察平皿中的再生菌落數(shù)。
1.2.6 原生質(zhì)體再生菌株的培養(yǎng)
挑取涂布于再生培養(yǎng)基中萌發(fā)的菌落,于PDA斜面上25℃培養(yǎng)10 d,將所獲得的菌株編號,4℃保藏備用。
1.2.7 單核鑒定
挑取原生質(zhì)體再生的菌絲接種到PDA綜合培養(yǎng)基的平皿上,25℃靜止培養(yǎng)。待菌絲長滿整個平皿后,用剪刀剪邊長1 cm的正方形大小的透明膠布,用其粘平皿內(nèi)的菌絲并在顯微鏡下觀察。
選擇1.0%、1.5%、2.0%、2.5%、3%五種不同的溶壁酶濃度,水浴處理黑木耳菌絲體,結(jié)果為:濃度為1.0%、1.5%、2.0%、2.5%、3.0%溶壁酶產(chǎn)生的原生質(zhì)體數(shù)量分別為 8.4×107、9.8×107、11.5×107、10.9×107、10.2×107個·mL-1。濃度 2.0%效果最好,2.5%~3%次之。由此可知,在其他條件不變的情況下,原生質(zhì)體的數(shù)量隨酶濃度的增大而增加,但達到一定產(chǎn)量后,沒有明顯改變。酶中有對原生質(zhì)體有害的酶類,隨著酶量的增加,雜酶的濃度也會隨之增加,當達到一定濃度后,會影響原生質(zhì)體的活性。酶濃度過高會使酶體脫壁過于徹底,會影響原生質(zhì)體的再生能力。
由圖1可見,在其他條件不變的情況下,原生質(zhì)體的數(shù)量在酶解4 h時產(chǎn)量達到最高,最高值為11.5×107個·mL-1。4 h 后原生質(zhì)體的數(shù)量基本無明顯降低。若酶解時間過長原生質(zhì)體的產(chǎn)量和再生率都會降低,可能是因為脫壁的時間太久或雜酶的影響。
圖1 酶解時間對原生質(zhì)體釋放量的影響Fig.1 Effect of digesting time on protoplast yield
黑木耳菌絲加入2.0%的溶壁酶后分別放入27、29、31、33、35℃的水浴中酶解4 h。由圖2可見,浴溫度在31℃時原生質(zhì)體的數(shù)量最多,溫度太高或太低對原生質(zhì)體的數(shù)量都會有影響,原因可能是酶的溫度過高或過低會影響酶的活性。酶解溫度依不同的食用菌和不同的酶而有所不同,對于一般食用菌來講,一般酶解溫度在28~35℃,溫度太高或太低多不利于原生質(zhì)體的釋放。在低于最適酶解溫度時,隨著溫度的升高,原生質(zhì)體制備率不斷提高;高于最適酶解溫度時,原生質(zhì)體的產(chǎn)量明顯減少。在本試驗中,水浴溫度在31℃時原生質(zhì)體的數(shù)量最多,在27~31℃之間,隨著溫度的增加原生質(zhì)體產(chǎn)量逐漸升高,在31~35℃之間,原生質(zhì)體產(chǎn)量隨著溫度的增高而降低。
圖2 溫度對原生質(zhì)體產(chǎn)量的影響Fig.2 Effect of enzymolysis temperature on protoplast yield
分別用KCl、MgSO4、蔗糖、甘露醇作為穩(wěn)滲劑,并分別用 0.3、0.5、0.7 mol·L-1濃度對其處理。由圖3可見,0.5 mol·L-1的MgSO4做穩(wěn)滲劑原生質(zhì)體的產(chǎn)量最高。脫去了細胞壁的原生質(zhì)體是很脆弱的,如果胞外的滲透壓比胞內(nèi)的低,再生質(zhì)體就會因吸水而漲破,所以,需要特定的高滲溶液來懸浮原生質(zhì)體,這類高滲液就是滲透壓穩(wěn)定劑。
圖3 滲透壓穩(wěn)定劑種類及其濃度對原生質(zhì)體釋放量的影響Fig.3 Effect of osmotic pressure stabilizer and its concentration on protoplast yield
無機鹽做滲透壓穩(wěn)定劑較糖及醇合適,這與制備真菌原生質(zhì)體的多數(shù)報導(dǎo)相一致。
由圖3可見,培養(yǎng)了8 d的菌絲原生質(zhì)體數(shù)量最高。其次分別為7、9、10 d。菌齡影響菌體生理狀態(tài)如細胞壁的結(jié)構(gòu)、菌體的代謝水平與菌體的活力,從而影響原生質(zhì)體形成與再生。從形態(tài)學(xué)上看,新合成的細胞壁物質(zhì)淤積在菌絲的頂尖部位,而新生的細胞壁較薄,易于被降解,所以在菌絲生長速度最快的時期是原生質(zhì)體釋放最有利的階段。培養(yǎng)時間較短的菌絲體,菌絲生長量不夠。不易制得較多原生質(zhì)體,而培養(yǎng)時間過長,菌體老化,細胞壁加厚,比較牢固,不易被酶解。菌體的不同生理狀況直接影響到細胞壁的結(jié)構(gòu)及菌體的活力等,它是影響原生質(zhì)體產(chǎn)量的內(nèi)在因素。
圖4 菌齡對原生質(zhì)體產(chǎn)量的影響Fig.4 Effect of culture time on protoplast yield
結(jié)果見圖5~6。
圖5 最佳條件下原生質(zhì)體Fig.5 Highest yield of protoplast
RM1、RM2、RM3、RM4、RM5培養(yǎng)基原生質(zhì)體的再生率分別為0.88%、1.27%、1.40%、1.42%、1.63%。其中RM5再生率最高。原生質(zhì)體的再生包括細胞壁的再生和復(fù)原,在分離的原生質(zhì)體中,有的帶有細胞核,有的沒有細胞核,只有具有細胞核的原生質(zhì)體才能再生出新的細胞壁進而恢復(fù)成為一個完整的具有勝利功能的細胞。影響原生質(zhì)體再生的因素很多,例如原生質(zhì)體自身的活性,原生質(zhì)體自身的狀態(tài),再生是的培養(yǎng)條件等。本試驗通過調(diào)整再生培養(yǎng)基的組分,往里面加一些適于作為細胞壁合成前體的物質(zhì)或可加速細胞合成的營養(yǎng)因子來培養(yǎng)原生質(zhì)體。
圖6 原生質(zhì)體再生菌株Fig.6 Protoplast regeneration
分別選用不同的滲透壓穩(wěn)定劑觀察原生質(zhì)體的再生率,蔗糖作為滲透壓穩(wěn)定劑再生率為1.59%,甘露醇做滲透壓穩(wěn)定劑再生率為1.55,硫酸鎂做滲透壓穩(wěn)定劑再生率為1.63%,氯化鉀做滲透壓穩(wěn)定劑再生率達1.43%。結(jié)果表明硫酸鎂做滲透壓穩(wěn)定劑再生率最高。
雙核菌絲及單核菌絲表達見圖7~8。單核菌絲經(jīng)過3代培養(yǎng)后觀察菌絲形態(tài),若仍是單核菌絲即可用于培育新品種及基因工程方面的研究。單核體菌絲生長速度通常慢于雙核體,且菌絲較稀疏,氣生菌絲相對旺盛。通過鎖狀聯(lián)合觀察較容易對再生菌株的單核或雙核菌絲進行判斷。
圖7 雙核菌絲Fig.7 Nuclei of A.auricula dikaryons
圖8 單核菌絲Fig.8 Nuclei of A.auricula monokaryons
影響原生質(zhì)體數(shù)量的因素大小依次為酶解溫度酶濃度、菌齡和酶解時間。選擇RM5培養(yǎng)基及硫酸鎂為滲透壓為穩(wěn)滲劑原生質(zhì)體再生率較高。影響原生質(zhì)體再生的因素還有很多,例如,原生質(zhì)體本身的活性,原生質(zhì)體制備的狀態(tài),操作方式等都必須考慮。原生質(zhì)體在結(jié)構(gòu)上并不完全等同于缺失了細胞壁的細胞,可能造成許多結(jié)果和功能上的改變,從而影響了自身的活力,造成再生能力的差異。
在本研究中,通過對黑木耳原生質(zhì)體的分離、再生以及對再生后的菌絲單核體的鑒定。試驗結(jié)果表明:液體培養(yǎng) 8 d,以 0.6 mol·L-1MgSO4·7H2O作滲透壓穩(wěn)定劑,加入2.0%溶壁酶在31℃下酶解4 h,分離原生質(zhì)體效果最佳,原生質(zhì)體產(chǎn)量可達11.5×107個·mL-1。對五種不同再生培養(yǎng)基進行比較試驗。結(jié)果表明,再生培養(yǎng)基配方為馬鈴薯200.0 g,葡萄糖 20.0 g,蛋白胨 3.0 g,KH2PO43.0 g,MgSO4·7H2O 2.0 g,酵母膏 2.0 g,維生素B110.0 mg,甘露醇109.3 g,瓊脂20.0 g加水至1 000 mL的再生培養(yǎng)基原生質(zhì)體再生率最高,再生率可達1.63%。
[1]汪興安.黑木耳段木栽培[J].安徽林業(yè),2001(4):19.
[2]Vriesomh D E,Wessels J G H.Release of prot oplasts f rom Schizop hyllum commune by a lyticenzyme p rep aration f rom Trichoderma viride[J].J Gen Microbiol,1972,73:13222.
[3]何培新.木耳原生質(zhì)體技術(shù)的研究及應(yīng)用[J].河南職技師院學(xué)報,2001(2):21.
[4]劉祖同,羅信昌.食用蕈菌生物技術(shù)及應(yīng)用[M].北京:清華大學(xué)出版社,1999.
[5]張卉,劉長江.姬松茸原生質(zhì)體形成和再生的研究[J].微生物學(xué)雜志,2003(23):18.
[6]鹿桂花.食用菌原生質(zhì)體技術(shù)的研究進展[J].生物技術(shù),2008,18(1):87.
[7]劉方.靈芝原生質(zhì)體單核化雜交育種[D].福州:福建農(nóng)林大學(xué),2009:22-32.
[8]韓增華,張丕奇,戴肖東,等.黑木耳原生質(zhì)體制備、再生及單核體熒光鑒定[J].食用菌學(xué)報,2008,15(3):13-17.
[9]孫溪,郭成金.雙胞蘑菇原生質(zhì)體制備條件的優(yōu)化[J].天津師范大學(xué)學(xué)報:自然科學(xué)版,2006,26(4):32-35.
[10]李楠,許修宏.黑木耳原生質(zhì)體制備及再生的研究[J].東北農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報,2009(7):47.
[11]李琳,周國英,劉君昂,等.雙胞蘑菇遺傳育種研究進展[J].食用菌學(xué)報,2007,14(1):62-66.
[12]江力,劉國慶,竇偉.茶樹菇原生質(zhì)體制備及融合研究[J].食品科學(xué),2008,348-351.
[13]孫劍秋,周東坡.微生物原生質(zhì)體技術(shù)[J].生物學(xué)通報.2002,37(7):9-11.
[14]李剛,李寶健.靈芝原生質(zhì)體分離與再生研究[J].菌物系統(tǒng),1999,18(1):79-88.
[15]梁枝榮.香菇原生質(zhì)體分離誘變育種研究[J].微生物學(xué)通報,2001,28(2):38-39.
[16]司夢琦,彭強,許修宏.不同黑木耳菌株在松木屑培養(yǎng)基上菌絲生長和子實體產(chǎn)量研[J].東北農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報,2009(5):42-45.