馮靜靜 綜述 左秀麗 審校
山東大學(xué)齊魯醫(yī)院消化科(250012)
炎癥性腸?。╥nflammatory bowel disease,IBD)是由免疫反應(yīng)失調(diào)所致的以持續(xù)腸道炎癥為特征的一類疾病,其病情遷延、難以治愈,且發(fā)病率逐年上升。IBD的發(fā)病機(jī)制尚未完全闡明,可能與免疫、感染、遺傳、環(huán)境等因素有關(guān)。NLRP3炎性小體具有廣泛免疫調(diào)節(jié)和抗微生物作用,與自身免疫病和感染性疾病的關(guān)系正受到廣泛關(guān)注。近年研究發(fā)現(xiàn)NLRP3炎性小體亦參與IBD的發(fā)病,由此提示針對NLRP3的靶向治療可能是有前景的防治IBD的方法之一。本文就NLRP3炎性小體在IBD中的研究進(jìn)展作一綜述。
1.NLRP3炎性小體的組成:目前發(fā)現(xiàn)NLRP3炎性小體由NLRP3、凋亡相關(guān)斑點(diǎn)樣蛋白(ASC)和 caspase-1組成。NLRP3又稱cryopyrin、PYPAF1或Nalp3,由寒冷誘導(dǎo)自身炎癥綜合征(CIAS)-1基因編碼,是NLR家族成員之一,由N端PYD結(jié)構(gòu)域、C端亮氨酸重復(fù)序列和中間的NACHT結(jié)構(gòu)域三部分組成。ASC亦稱TMS1,由Pycard基因編碼,是一種連接蛋白,其結(jié)構(gòu)包括N端PYD結(jié)構(gòu)域和C端CARD(caspase recruitment domain)。NLRP3的激活可致其PYD結(jié)構(gòu)域與ASC的PYD結(jié)構(gòu)域連接,致ASC的CARD與caspase-1的CARD結(jié)合,由此完成NLRP3炎性小體的裝配。
2.NLRP3的表達(dá)部位和活化機(jī)制:NLRP3在中性粒細(xì)胞、單核細(xì)胞、淋巴細(xì)胞、樹突細(xì)胞、成骨細(xì)胞、上皮細(xì)胞(口咽部、食管、外宮頸、尿道)、皮膚角質(zhì)形成細(xì)胞等均有表達(dá)。微生物和內(nèi)、外源性刺激物均可激活NLRP3炎性小體,前者包括病毒(流感病毒、腺病毒、仙臺病毒)、細(xì)菌(金黃色葡萄球菌)、真菌(白色酵母菌、白色念珠菌)、微生物成分如胞壁酰二肽(MDP)、腫瘤壞死因子(TNF)-α、脂多糖(LPS)、細(xì)菌RNA、病毒雙鏈DNA等[1 ~ 3];內(nèi)源性刺激物包括尿酸、尿酸單鈉(MSU)結(jié)晶、雙水焦磷酸鈣(CPPD)結(jié)晶、β淀粉狀蛋白、三磷酸腺苷(ATP)、透明質(zhì)酸、細(xì)胞壞死產(chǎn)物等[4,5];外源性刺激物包括二氧化硅、石棉、疫苗佐劑等[6]。
NLRP3的活化機(jī)制尚未完全闡明,目前認(rèn)為可能與細(xì)胞內(nèi)鉀離子外流、氧自由基生成、溶酶體破壞、組織蛋白酶B釋放、P2X7受體活化、Pannexin-1半通道等有關(guān)[7,8]。
3.NLRP3炎性小體的作用:NLRP3炎性小體的活化可致無活性的caspase-1前體轉(zhuǎn)化為活性caspase-1,后者可裂解白細(xì)胞介素(IL)-1β、IL-18、IL-33 前體以形成活性形式并分泌。NLRP3已證實(shí)與人類多種自身免疫病相關(guān),如家族性冷自身炎癥綜合征(familial cold autoinflammatory syndrome,FCAS)、穆-韋綜合征(Muckle-Wells syndrome,MWS)和新生兒期多系統(tǒng)炎癥綜合征(neonatal onset multisystem inflammatory disease,NOMID),上述疾病統(tǒng)稱為隱熱蛋白-相關(guān)周期綜合征(cryopyrin-associated periodic syndrome,CAPS)。 研究[9]發(fā)現(xiàn)CAPS是由NLRP3基因突變致其過度活化并繼發(fā)IL-1β過度分泌所致,但I(xiàn)L-1β拮抗劑及其中和抗體在治療CAPS中的有效性和安全性尚需進(jìn)一步研究證實(shí)。此外,NLRP3與淋病奈瑟菌感染、家族性地中海熱、化膿性關(guān)節(jié)炎、壞疽性膿皮病、痛風(fēng)、石棉沉滯癥、蕁麻疹、幼年特發(fā)性關(guān)節(jié)炎等疾病相關(guān)。IL-1β拮抗劑anakinra抑制由NLRP3突變所致的IL-1β過度分泌可有效治療關(guān)節(jié)炎[10]。可見NLRP3炎性小體與多種感染性和免疫性疾病相關(guān),且在疾病治療的研究中已初見成效。隨著NLRP3炎性小體研究領(lǐng)域的逐漸擴(kuò)大,近年有研究著眼于NLRP3在IBD中的作用,以從新的視角研究IBD的發(fā)病機(jī)制和治療方法,為NLRP3炎性小體的研究帶來了新的熱點(diǎn)。
1.NLRP3基因多態(tài)性與CD的關(guān)系:2001年,McGovern等[11]發(fā)現(xiàn)了CD的第一個(gè)易感基因NOD2/CARD15,因NLRP3和NOD2蛋白同屬NLR家族成員,由此提示NLRP3亦可能與CD相關(guān)。2008年,Kastbom等[12]發(fā)現(xiàn)CARD8和NLRP3(CIAS1)聯(lián)合突變可增加患者對類風(fēng)濕性關(guān)節(jié)炎的易感性。Schoultz等[13]在此基礎(chǔ)上對498例CD患者和742例健康對照者的 CARD8(C10X)和 NLRP3(Q705K)基因多態(tài)性位點(diǎn)進(jìn)行了聯(lián)合分析,結(jié)果發(fā)現(xiàn)男性CARD8 C10X等位基因和NLRP3 Q705K等位基因聯(lián)合攜帶者的CD易感性明顯增加(OR=3.40,95%CI:1.32 ~ 8.76;P=0.011)。Roberts等[14]對 1009例 CD患者和 517例健康對照者的 CARD8(rs2043211)、NLRP3(rs35829419)和 CARD15(NOD2)基因多態(tài)性位點(diǎn)行聯(lián)合分析,結(jié)果證實(shí)CARD8罕見等位基因和NLRP3常見等位基因聯(lián)合攜帶者的CD易感性下降,且CARD15基因突變可減弱上述效應(yīng)。Villani等[15]通過對239例CD患者和107例健康對照者的研究發(fā)現(xiàn),NLRP3基因下游4.7 kb處存在與CD易感性相關(guān)的一組單核苷酸多態(tài)性(SNPs),易感基因攜帶者的NLRP3表達(dá)下調(diào),且易感基因純合子攜帶者的NLRP3表達(dá)率最低。Cummings等[16]通過對547例CD患者和465例健康對照者的分析發(fā)現(xiàn)4種NLRP3 SNPs與CD相關(guān),其中rs4925648和rs10925019與CD的相關(guān)性最強(qiáng),但其結(jié)果在 WTCCC(wellcome trust case control consortium)研究中未得到證實(shí)。上述研究結(jié)果提示NLRP3基因多態(tài)性可能影響CD易感性,但NLRP3基因是否存在其他CD相關(guān)性多態(tài)性位點(diǎn)及其與CD的具體關(guān)系,仍需進(jìn)一步研究證實(shí)。
2.NLRP3影響CD易感性的可能機(jī)制和對CD治療的啟發(fā):NLRP3致CAPS的機(jī)制已得到證實(shí),且對其靶向治療的研究亦初見成效[9],但其在CD發(fā)病機(jī)制中的研究剛起步。Villani等[15]通過對CD患者和三硝基苯磺酸(TNBS)誘導(dǎo)的小鼠結(jié)腸炎模型的研究發(fā)現(xiàn),兩者結(jié)腸黏膜NLRP3表達(dá)均較正常對照組明顯升高,但CD易感基因攜帶者的NLRP3表達(dá)卻下降,此現(xiàn)象可能與易感人群NLRP3低表達(dá)損傷固有免疫,致腸道清除病原體的能力下降,由此誘發(fā)CD而致NLRP3表達(dá)反應(yīng)性上調(diào)有關(guān),并使caspase-1和IL-1β表達(dá)增加,可在一定程度上解釋CD發(fā)病前后NLRP3表達(dá)水平不一致的現(xiàn)象。Roberts等[14]亦認(rèn)為NLRP3炎性小體活化致IL-1β過度分泌可增加CD易感性??紤]到NLRP3炎性小體在識別和抵抗白色念珠菌入侵中起關(guān)鍵性作用,且半數(shù)健康人群的消化道可見白色念珠菌定植,Rehaume等[17]通過對白色念珠菌致病機(jī)制和NLRP3炎性小體作用機(jī)制進(jìn)行研究后提出,NLRP3炎性小體缺陷可致腸道白色念珠菌等一系列致腸道肉芽腫形成的微生物過度繁殖,由此誘發(fā)與CD相關(guān)的腸道免疫損傷,從而提示CD與白色念珠菌等真菌感染亦有關(guān)??梢奛LRP3在CD發(fā)病機(jī)制中的作用是多方面的,一方面其低表達(dá)可增加CD易感性從而誘發(fā)CD,另一方面其過度活化又可致CD持續(xù)進(jìn)展。此效應(yīng)與真菌感染、IL-1β過度分泌等均相關(guān),但尚需進(jìn)一步研究證實(shí),一旦明確揭示其具體機(jī)制,將為CD的治療提供新的方向。
1.NLRP3表達(dá)水平與 UC的關(guān)系:Zaki等[18]通過對NLRP3 炎性小體不同成分(NLRP3、ASC、caspase-1)基因缺陷小鼠的研究發(fā)現(xiàn),上述小鼠對口服3%葡聚糖硫酸鈉(DSS)和TNBS灌腸所誘導(dǎo)的結(jié)腸炎的易感性均明顯增加,表現(xiàn)為腸上皮完整性破壞、小鼠死亡率增加等,提示NLRP3炎性小體在保持腸道內(nèi)環(huán)境穩(wěn)態(tài)、緩解結(jié)腸炎中起重要作用。Hirota等[19]亦研究發(fā)現(xiàn),NLRP3基因缺陷小鼠對口服2.5%DSS和TNBS灌腸所誘導(dǎo)的結(jié)腸炎的易感性均明顯增加。但Bauer等[20]卻發(fā)現(xiàn)NLRP3基因缺陷小鼠對口服2%DSS所誘導(dǎo)的結(jié)腸炎的易感性明顯降低。提示NLRP3炎性小體在結(jié)腸炎發(fā)病中起重要作用,其有望成為IBD治療的新靶點(diǎn);但NLRP3炎性小體表達(dá)水平改變對結(jié)腸炎的影響仍存在爭議,NLRP3基因缺陷會增加小鼠對口服2.5%或3%DSS和TNBS灌腸所誘導(dǎo)的結(jié)腸炎的易感性,但對2%DSS所誘導(dǎo)的結(jié)腸炎則起相反作用,因此尚需進(jìn)一步研究證實(shí)其中的關(guān)系,以盡快將此類研究應(yīng)用于臨床。
2.不同部位NLRP3表達(dá)的作用:研究[19]發(fā)現(xiàn)NLRP3基因缺陷小鼠的巨噬細(xì)胞對細(xì)菌MDP無應(yīng)答,但中性粒細(xì)胞表現(xiàn)為趨化能力降低和自發(fā)凋亡增加。Zaki等[18]發(fā)現(xiàn)在緩解由DSS所誘導(dǎo)的結(jié)腸炎時(shí),結(jié)腸上皮細(xì)胞表達(dá)的NLRP3遠(yuǎn)較造血細(xì)胞表達(dá)的NLRP3重要。但Allen等[21]發(fā)現(xiàn)在抑制由結(jié)腸炎所致的結(jié)腸癌時(shí),造血細(xì)胞表達(dá)的NLRP3遠(yuǎn)較腸上皮細(xì)胞重要。可見不同部位表達(dá)的NLRP3在各疾病中所起的作用亦不同,研究時(shí)需綜合考慮,區(qū)別對待。
3.NLRP3研究對UC發(fā)病機(jī)制和治療的啟發(fā):Zaki等[18]發(fā)現(xiàn)NLRP3炎性小體可通過增加IL-18分泌,以抑制由DSS所誘導(dǎo)的結(jié)腸炎的發(fā)生。Bauer等[20]則發(fā)現(xiàn)DSS可致溶酶體破壞,可通過向胞質(zhì)釋放其內(nèi)容物以激活NLRP3炎性小體,致caspase-1活化和IL-1β釋放,其中活性氧簇(ROS)亦參與此過程。此外,研究[19,20]尚發(fā)現(xiàn)NLRP3炎性小體對TNF-α、干擾素(IFN)-γ、IL-10、轉(zhuǎn)化生長因子(TGF)-β、干擾素誘導(dǎo)蛋白10、髓過氧化物酶、β-防御素和腸道菌群均有影響。Allen等[21]發(fā)現(xiàn)NLRP3基因缺陷小鼠并發(fā)結(jié)腸癌的風(fēng)險(xiǎn)明顯增加,由此提示NLRP3炎性小體的研究亦可用于結(jié)腸癌的預(yù)防。由此可見NLRP3參與結(jié)腸炎的機(jī)制復(fù)雜,與caspase-1、IL-1β、IL-18等均相關(guān),且 caspase-1拮抗劑pralnacasan對DSS誘導(dǎo)的結(jié)腸炎有明顯治療作用[20],但其具體作用機(jī)制及其如何指導(dǎo)臨床實(shí)踐尚需進(jìn)一步研究。
近年,NLRP3炎性小體在IBD發(fā)生、發(fā)展中的機(jī)制研究突飛猛進(jìn),但其具體作用機(jī)制和靶向治療研究多集中于動物模型和免疫細(xì)胞,對臨床患者的研究剛起步,未來有望將研究重點(diǎn)轉(zhuǎn)向IBD患者,以分析結(jié)腸上皮表達(dá)的NLRP3炎性小體與腸道菌群、腸道致炎因子和外界微生物的關(guān)系,并可考慮將其應(yīng)用于IBD的診斷和治療,上述機(jī)制研究可有助于發(fā)現(xiàn)更有效的IBD治療方法。
1 Allen IC,Scull MA,Moore CB,et al.The NLRP3 inflammasome mediates in vivo innate immunity to influenza A virus through recognition of viral RNA.Immunity,2009,30(4):556-565.
2 Owen DM,Gale M Jr.Fighting the flu with inflammasome signaling.Immunity,2009,30(4):476-478.
3 Gross O,Poeck H,Bscheider M,et al.Syk kinase signalling couples to the Nlrp3 inflammasome for antifungal host defence.Nature,2009,459(7245):433-436.
4 Yamasaki K,Muto J,Taylor KR,et al.NLRP3/cryopyrin is necessary for interleukin-1beta (IL-1beta)release in response to hyaluronan,an endogenous trigger of inflammation in response to injury.J Biol Chem,2009,284(19):12762-12771.
5 Li H,Ambade A,Re F.Cutting edge:Necrosis activates the NLRP3 inflammasome.J Immunol,2009,183(3):1528-1532.
6 Aimanianda V,Haensler J,Lacroix-Desmazes S,et al.Novel cellular and molecular mechanisms of induction of immune responses by aluminum adjuvants.Trends Pharmacol Sci,2009,30(6):287-295.
7 Duncan JA,Gao X,Huang MT,et al.Neisseria gonorrhoeae activates the proteinase cathepsin B to mediate the signaling activities of the NLRP3 and ASC-containing inflammasome.J Immunol,2009,182(10):6460-6469.
8 Qu Y,Ramachandra L,Mohr S,et al.P2X7 receptorstimulated secretion of MHC class Ⅱ-containing exosomes requires the ASC/NLRP3 inflammasome but is independent of caspase-1.J Immunol,2009,182(8):5052-5062.
9 Lachmann HJ,Kone-Paut I,Kuemmerle-Deschner JB,et al;Canakinumab in CAPS Study Group.Use of canakinumab in the cryopyrin-associated periodic syndrome.N Engl JMed,2009,360(23):2416-2425.
10 Verma D,Lerm M,Blomgran Julinder R,et al.Gene polymorphisms in the NALP3 inflammasome are associated with interleukin-1 production and severe inflammation:relation to common inflammatory diseases?Arthritis Rheum,2008,58(3):888-894.
11 McGovern DP,van Heel DA,Ahmad T,et al.NOD2(CARD15),the first susceptibility gene for Crohn’s disease.Gut,2001,49(6):752-754.
12 Kastbom A,Verma D,Eriksson P,et al.Genetic variation in proteins of the cryopyrin inflammasome influences susceptibility and severity of rheumatoid arthritis(the Swedish TIRA project).Rheumatology(Oxford),2008,47(4):415-417.
13 Schoultz I,Verma D,Halfvarsson J,et al.Combined polymorphisms in genes encoding the inflammasome components NALP3 and CARD8 confer susceptibility to Crohn’s disease in Swedish men.Am J Gastroenterol,2009,104(5):1180-1188.
14 Roberts RL,Topless RK,Phipps-Green AJ,et al.Evidence of interaction of CARD8 rs2043211 with NALP3 rs35829419 in Crohn’s disease.Genes Immun,2010,11(4):351-356.
15 Villani AC,Lemire M,Fortin G,et al.Common variants in the NLRP3 region contribute to Crohn’s disease susceptibility.Nat Genet,2009,41(1):71-76.
16 Cummings JR,Cooney RM,Clarke G,et al.The genetics of NOD-like receptors in Crohn’s disease.Tissue Antigens,2010,76(1):48-56.
17 Rehaume LM,Jouault T,Chamaillard M.Lessons from the inflammasome:a molecular sentry linking Candida and Crohn’s disease.Trends Immunol,2010,31(5):171-175.
18 Zaki MH,Boyd KL,Vogel P,et al.The NLRP3 inflammasome protects against loss of epithelial integrity and mortality during experimental colitis.Immunity,2010,32(3):379-391.
19 Hirota SA,Ng J,Lueng A,et al.NLRP3 inflammasome plays a key role in the regulation of intestinal homeostasis.Inflamm Bowel Dis,2011,17(6):1359-1372.
20 Bauer C,Duewell P,Mayer C,et al.Colitis induced in mice with dextran sulfate sodium (DSS)is mediated by the NLRP3 inflammasome.Gut,2010,59(9):1192-1199.
21 Allen IC,TeKippe EM,Woodford RM,et al.The NLRP3 inflammasome functions as a negative regulator of tumorigenesis during colitis-associated cancer.J Exp Med,2010,207(5):1045-1056.