李博玲,馬恒東,王 貞
(四川農(nóng)業(yè)大學動物科技學院,四川 雅安 625014)
本試驗旨在研究褪黑素、谷胱甘肽兩種抗氧化劑對精子冷凍的保護效應。通過對冷凍過程中活性氧(ROS)的檢測以及凍后精子活率、活力、頂體完整性、線粒體活性的檢測,篩選出較佳的抗氧化劑添加搭配組合,為豬凍精技術(shù)的發(fā)展提供參考。
1.1 材料
1.1.1 試驗對象 健康、性欲旺盛成年杜洛克公豬,2008年10月至2009年4月 ,共采精13次。
1.1.2 試劑及耗材 主要試劑:褪黑素(MLT)、碘化炳碇(PI)、羅丹明 123,均為 Sigma公司產(chǎn)品;谷胱甘肽(GSH)、ROS初級熒光檢測試劑盒購自成都溶海生物技術(shù)有限公司;甘油為Amresco公司產(chǎn)品;乳糖購自成都科龍化工試劑廠。
主要耗材:低溫溫度計為北京市宇時技術(shù)開發(fā)公司生產(chǎn);倒置熒光顯微鏡為尼康公司生產(chǎn);電子天平為沈陽龍騰電子有限公司生產(chǎn);全自動酶標儀為Thermo公司生產(chǎn);0.5mL冷凍細管為沈陽富士平工業(yè)有限公司生產(chǎn)。
1.1.3 冷凍稀釋液和解凍液的配制 見表1。
表1 冷凍稀釋液和解凍液的成分和劑量
1.2 試驗設(shè)計 實驗一:在稀釋液中分別單獨添加MLT、GSH,觀察對精液冷凍保存的影響。
實驗二:在稀釋液中聯(lián)合添加MLT、GSH,觀察對精液冷凍保存的影響。
實驗三:聯(lián)合添加與單獨添加兩種抗氧化劑的比較。
1.3 方法
1.3.1 精液預處理及冷凍 用手握法采集中段精液濃稠部分,并立即用BTS等溫稀釋(1∶1),鏡檢活力在0.7以上的用保溫瓶帶回實驗室。室溫靜置2h,用50mL 離心管分裝、離心(2400×g,3min),去上清后加入乳糖-卵黃稀釋Ⅰ液(1∶1),放入4℃冰箱緩慢降溫、平衡約 2h,再加入乳糖-卵黃稀釋Ⅱ液(1∶1)4℃平衡20min后,裝管,液氮熏蒸(離液氮面 5cm,20min),投入液氮保存。
1.3.2 解凍后精液質(zhì)量評定
(1)精子活力檢測:精子活力狀態(tài)利用BI-靜態(tài)分析系統(tǒng)進行觀察、錄像,之后逐一評估。
(2)精子活率和線粒體活性檢測:將解凍的精液用等溫BTS液稀釋,調(diào)整精子密度為3×106個/mL。先取等溫的100μL HEPES/BSA緩沖液置于預溫的1.5mL離心管中,然后加入10μL PI貯存液(取0.004g PI溶于2 mL PBS中,0.45 μm濾膜過濾后,-20℃避光貯存)和1μL羅丹明123貯存液(0.004g羅丹明123溶于2mL DMSO中,0.45μm有機相濾膜過濾后,避光保存),避光孵育10min,最后加入50μL精液,在37℃、黑暗潮濕環(huán)境下孵育30min。取10μL精子懸液于載玻片上,加蓋玻片,熒光顯微鏡(200×)下觀察。死精子在波長540~580nm紫外光激發(fā)下頭部核區(qū)發(fā)出紅色熒光,活精子和有活性線粒體的精子在波長511~534nm紫外光激發(fā)下頭部不發(fā)光,而尾巴線粒體部分(中段)有亮綠色熒光。計算精子活率(活精子百分率)和有線粒體活性的精子百分率。
(3)頂體完整性檢查:進行姬姆薩染色制片鏡檢。①制片:取10μL精液于載玻片一頭,用一邊緣整齊的玻片呈35°角將精液樣品均勻拖布于載玻片上,自然風干,制成精液涂片。②固定:立即吸取10%福爾馬林固定液1~2mL滴于自然風干的涂片上,固定15min,用水輕輕沖洗,洗去固定液,再自然風干。③染色:將姬姆薩染液滴于涂片上,染色1.5h,然后用水輕輕沖洗,晾干備檢。
判定:頂體完整的精子頭部外形正常,細胞膜和頂體完整著色均勻,頂脊、赤道段清晰。鏡檢計數(shù)200個精子,計算頂體完整精子的百分率。頂體完整率=頂體完整精子數(shù)/總精子數(shù)×100%
(4)ROS測定:利用ROS初級熒光測定試劑盒進行檢測,按說明進行。結(jié)果判定:熒光單位(RFU)值越高,ROS含量越高。
1.4 數(shù)據(jù)處理 應用SPSS13.0 One-Way ANOVA軟件進行數(shù)據(jù)分析。
2.1 單獨添加MLT、GSH對精液冷凍保存的影響
2.1.1 MLT對解凍后精液質(zhì)量的影響 由表2可以看出,添加0.125mg/mL、0.25mg/mL的褪黑素均能顯著提高精子活率(P<0.05),但兩種濃度之間差異不顯著。當加入0.25mg/mL褪黑素時,能顯著提高精子活力(P<0.05);添加 0.125 mg/mL、0.25 mg/mL、0.5 mg/mL褪黑素均能顯著提高凍后精子的頂體完整性(P<0.05),其中以 0.25 mg/mL 的效果最佳(P<0.05);加入0.25 mg/mL褪黑素能顯著提高凍后線粒體活性(P<0.05)。說明褪黑素對頂體的保護作用較好,同時也能改善活率、活力以及線粒體活性。添加0.125mg/mL、0.25mg/mL的褪黑素,解凍后精子中的ROS含量下降,較對照組差異顯著(P<0.05),且添加0.25mg/mL的效果最佳(P<0.05)。
表2 添加不同濃度的MLT對解凍后精子質(zhì)量的影響
2.1.2 GSH對解凍后精液質(zhì)量的影響 由表3可以看出,添加5mmol/L的GSH能極顯著提高精子凍后活率、活力、線粒體活性(P<0.01);添加 1mmol/L、5mmol/L的GSH均能顯著提高凍后精子的頂體完整性(P<0.05),但兩濃度之間差異不顯著;添加GSH能顯著降低凍后精子內(nèi)ROS的含量。當加入10mmol/L GSH時,精子質(zhì)量指標有所下降,說明GSH添加不能過量。
表3 添加不同濃度的GSH對解凍后精子質(zhì)量的影響
2.2 MLT與GSH聯(lián)合添加對解凍后精液質(zhì)量的影響 多重比較結(jié)果表明,對于活率,M1G1、M1G2顯著優(yōu)于 M2G1,M2G2顯著優(yōu)于 M2G1(P<0.05),M1G1、M1G2顯著優(yōu)于M2G2(P<0.05);對于活力,M1G1顯著優(yōu)于M2G1和M2G2,M1G2顯著優(yōu)于M2G1(P<0.05);對于頂體完整率和線粒體活性,各組之間差異顯著,M1G1顯著優(yōu)于其他各組(P<0.05)??偟膩碚f,M1G1為聯(lián)合添加最佳組合。
表4 MLT與GSH交互作用的組內(nèi)比較
2.3 單獨添加與聯(lián)合添加抗氧化劑的比較 由表5可以看出,聯(lián)合添加MLT與GSH較單獨添加,其精子活率、活力、頂體完整性有顯著提高(P<0.05);線粒體活性無顯著差異;單獨添加與聯(lián)合添加MLT、GSH均能顯著降低ROS含量(P<0.05)。聯(lián)合添加與單獨添加的效果差異顯著(P<0.05),說明MLT與GSH之間存在顯著的交互效應。
表5 單獨添加與聯(lián)合添加的比較
MLT在本次試驗中是第一次用于豬精液的冷凍保存。商學軍等(2004)曾在精子模型中加入MLT共同孵育,觀察其對線粒體功能的保護作用,結(jié)果顯示MLT通過清除ROS,對精子線粒體具有重要的保護作用。本試驗在冷凍稀釋液中加入MLT,結(jié)果發(fā)現(xiàn)加入0.25mg/mL時,精子活率、活力、線粒體活性、頂體完整性都有顯著提高(P<0.05),且解凍后精子ROS含量顯著下降(P<0.05)。GSH是一種重要的抗氧化劑,其本身易受某些物質(zhì)氧化,所以它在體內(nèi)能夠保護許多蛋白質(zhì)和酶等分子中的巰基不被自由基等有害物質(zhì)氧化。GSH能直接與過氧化氫等氧化劑結(jié)合,生成水和氧化型谷胱甘肽。本試驗在冷凍稀釋液中加入5mmol/L的GSH,結(jié)果顯著提高了凍后精子的活率、活力及線粒體活性(P<0.05)。
褪黑素與谷胱甘肽具有顯著的交互效應,褪黑素的存在提高了谷胱甘肽的抗氧化效率,因此,只有將兩種抗氧化劑同時用于豬精液冷凍保存,才能更好地保護豬精子免受抗氧化損傷,達到提高解凍后精子質(zhì)量的目的。
[1]Guthriee H D,Welch G R,LONG J A.Mitochondrial function and reactive oxygen species action in relation to boar motility[J].Theriogenology,2008,70:1209-1215.
[2]Petrunkina A M,Volker G,Weitze K F,et al.Detection of cooling-induced membrane changes in the response of boar sperm to capacitating conditions[J].Theriogenology,2005,63:2278-2299.
[3]Bailey J L,Bilodeau J F,Cormier N.Semen cryopr-eservation indomestic animals: adamaging and capacitating phenomenon[J].Androl,2000,21:1-7.
[4]任俊玲.冷凍稀釋液中添加抗氧化劑對豬精液冷凍保存效果的影響[D].四川農(nóng)業(yè)大學碩士學位論文,2007.
[5]商學軍,黃宇烽,葉章群,等.褪黑素在活性氧致精子線粒體功能損傷中的保護作用 [J].中華男科學雜志,2004,10(8):604-607.
[6]馬忠蘭.不同稀釋液對豬精液保存效果的研究[J].黑龍江畜牧獸醫(yī),2004,(4):31-32.
[7]董 偉.動物繁殖學[M].北京:農(nóng)業(yè)出版社,1998:146.
[8]Reiter R J,Tan D X,Burkhardt S.Reactive oxygen and nitrogen species and cellular and organismal decline:amelioration with melatonin[J].Mech Ageing Dev.,2002,123(8):1007-1019.
[9]Miguel M,Manuel M,Germaine E,et al.Melatonin but not vitamins C and E maintains glutathione hom-eostasis in t-butyl hydroperoxide-induced mitochond-rial oxidative stress[J].FASEB,2000,14:1677-1679.
[10] Gadea J, Elena S, Antonio M, et al. Decrease inglutathione content in boar sperm aftercryopreservation. Effect of the addition of reducedglutathione to the freezing and thawing extenders [J].Theriogenology,2004,62:690-701.