• 
    

    
    

      99热精品在线国产_美女午夜性视频免费_国产精品国产高清国产av_av欧美777_自拍偷自拍亚洲精品老妇_亚洲熟女精品中文字幕_www日本黄色视频网_国产精品野战在线观看

      ?

      林可霉素生物合成基因簇中調(diào)控基因lmbU的功能研究

      2011-07-27 01:48:44王增亮趙群飛高淑紅葉蕊芳
      化學(xué)與生物工程 2011年11期
      關(guān)鍵詞:林可霉素效價(jià)條帶

      陳 林,王增亮,趙群飛,高淑紅,葉蕊芳

      (1.華東理工大學(xué) 生物反應(yīng)器工程國家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,上海 200237;2.中國科學(xué)院上海有機(jī)化學(xué)研究所,上海 200032)

      林可霉素(Lincomycin)是由林可鏈霉菌(Streptomyceslincolnensis)產(chǎn)生的第一代林可酰胺類抗生素,主要用于治療革蘭氏陽性菌所引起的感染。因其對組織和細(xì)胞穿透力強(qiáng),應(yīng)用方便(不需皮試),廣泛應(yīng)用于臨床[1,2]。我國自1975年工業(yè)生產(chǎn)林可霉素以來,通過菌種選育和工藝改進(jìn),生產(chǎn)水平不斷提高,但仍然與國際先進(jìn)水平存在較大的差距。

      近年來,隨著基因組學(xué)和DNA重組技術(shù)的快速發(fā)展,人們可以合理、定向且高效地對微生物細(xì)胞內(nèi)生物合成相關(guān)的基因進(jìn)行遺傳改造。相比盲目、隨機(jī)的傳統(tǒng)誘變方法(如自然選育、誘變育種、原生質(zhì)體融合等),合理的遺傳改造更能特異地提高目標(biāo)產(chǎn)物的產(chǎn)量和純度。

      遺傳改造的關(guān)鍵是在基因和蛋白功能水平上認(rèn)識和理解復(fù)雜天然產(chǎn)物的生物合成和調(diào)控機(jī)制。早在20世紀(jì)90年代,35 kb包含完整林可霉素生物合成基因簇的DNA序列就已被克隆[3,4],但到目前為止,對林可霉素生物合成基因功能的相關(guān)研究仍然很少,基本上都局限在序列比對和生物信息學(xué)分析基礎(chǔ)上進(jìn)行的推測。

      根據(jù)對林可霉素生物合成基因的生物信息學(xué)分析,推測該基因簇中的基因lmbU是林可霉素生物合成的調(diào)控基因。作者采用同框敲除和基因倍增的方式對S.lincolnensisN9的lmbU基因功能進(jìn)行初步的研究,為遺傳改造林可霉素生產(chǎn)菌以提高林可霉素的產(chǎn)量做出有益的探索。

      1 實(shí)驗(yàn)

      1.1 菌種與質(zhì)粒

      林可鏈霉菌S.lincolnensisN9,自行保藏;大腸桿菌E.coliDH5α、E.coliET12567(pUZ8002)[5]、克隆質(zhì)粒pSP72、溫敏性質(zhì)粒pKC1139[6]、整合型載體pSOK804[7][含有接合轉(zhuǎn)移復(fù)制子oriT和安普霉素Apramycin抗性基因aac(3)IV]、質(zhì)粒pLL6214(攜帶紅色糖多孢菌紅霉素強(qiáng)啟動子ermE*),中科院上海有機(jī)化學(xué)研究所生命有機(jī)化學(xué)國家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室。分子生物學(xué)常規(guī)操作方法參照文獻(xiàn)[8]。

      1.2 培養(yǎng)基

      LB(Luria-Bertani)培養(yǎng)基:10.0 g胰蛋白胨,10.0 g酵母抽提物,5.0 g氯化鈉,蒸餾水定容至1 L。固體培養(yǎng)基另加20.0 g瓊脂。

      TSB培養(yǎng)基:30 gTSB,蒸餾水定容至1 L。

      MS培養(yǎng)基:20.0 g黃豆餅粉,20.0 g甘露醇,20.0 g瓊脂粉,自來水定容至1 L。

      1.3 重組質(zhì)粒pLIN-DU、pLIN-U的構(gòu)建

      1.3.1 引物設(shè)計(jì)

      根據(jù)2008年6月公布的S.lincolnensisATCC 25466林可霉素生物合成基因簇序列信息(Accession No.EU 124663)設(shè)計(jì)相關(guān)引物。PCR克隆基因lmbU左臂所用引物為UL-F:5′-ATAGAATTC(EcoRⅠ)CCTGGAGGTAGTGGAACGCG-3′,UL-R:5′-ATAAAGCTT(HindⅢ)GGCACATCGCGTCGGAGTAC-3′;PCR克隆基因lmbU右臂所用引物為UR-F:5′-ATAAAGCTT(HindⅢ)GTCGCTGTACCGGGTCTGAC-3′,UR-R:5′-ATATCTAGA(XbaⅠ)CGACAGGCTCAGGAATCGGC-3′。

      同時(shí),為了利用lmbU基因自身的啟動子,設(shè)計(jì)引物時(shí)往基因lmbU上游延伸了200 bp左右。獲取基因lmbU的上游引物L(fēng)IN-4-F:5′-GCTCTAGA(XbaⅠ)GCAATGATGCTGGTTCCGCCAAGC-3′和下游引物L(fēng)IN-4-R:5′-CCCAAGCTT(HindⅢ)ACTAGT(SpeⅠ)GTGGAGGTGATGGCTGGTGGGCAG-3′。

      1.3.2 質(zhì)粒構(gòu)建過程

      PCR擴(kuò)增反應(yīng)在Eppendoff熱循環(huán)儀上進(jìn)行,條件為:94 ℃預(yù)變性4 min,94 ℃變性1 min,62 ℃退火1 min,72 ℃延伸2 min,30個循環(huán),72 ℃繼續(xù)延伸10 min;采用1%的瓊脂糖凝膠電泳回收目標(biāo)條帶;將EcoRⅠ/HindⅢ酶切后的左臂UL(1.77 kb)、HindⅢ/XbaⅠ酶切后的右臂UR(1.74 kb)、XbaⅠ/HindⅢ酶切后lmbU基因片段(0.95 kb)分別連入pSP72相應(yīng)位點(diǎn)后獲得重組克隆質(zhì)粒pCLDU-1、pCLDU-2、pCLU-1,由英駿生物技術(shù)有限公司測序驗(yàn)證。

      用限制性酶EcoRⅠ/HindⅢ和XbaⅠ/HindⅢ分別從測序正確的克隆質(zhì)粒pCLDU-1和pCLDU-2上酶切下左臂UL和右臂UR,克隆至EcoRⅠ/XbaⅠ酶切后的pKC1139質(zhì)粒上,獲得重組質(zhì)粒pLIN-DU(如圖1所示)。同理,用限制性酶XbaⅠ/HindⅢ從測序正確的克隆質(zhì)粒pCLU-1上酶切下lmbU基因片段,克隆至XbaⅠ/HindⅢ酶切后的pLL6214質(zhì)粒上,獲得質(zhì)粒pCLU-2;再用EcoRⅠ/HindⅢ酶切下1.44 kb含紅霉素啟動子和lmbU基因的目的片段,克隆至EcoRⅠ/HindⅢ酶切后的pSOK804載體上,獲得重組質(zhì)粒pLIN-U(如圖2所示)。

      圖1 重組質(zhì)粒pLIN-DU的構(gòu)建

      圖2 重組質(zhì)粒pLIN-U的構(gòu)建

      1.4 突變菌的獲得與驗(yàn)證

      將構(gòu)建正確的重組質(zhì)粒pLIN-DU、pLIN-U分別轉(zhuǎn)化到大腸桿菌E.coliET12567(pUZ8002)中,通過屬間接合轉(zhuǎn)移[9]方式導(dǎo)入到S.lincolnensisN9。獲得接合子之后,用于中斷l(xiāng)mbU基因的接合子在Am抗性篩選條件下37 ℃培養(yǎng),利用pKC1139質(zhì)粒上的溫敏性復(fù)制子,促使質(zhì)粒與鏈霉菌基因組發(fā)生第一次同源重組,然后置于無抗條件下30 ℃松弛培養(yǎng)2~3代,使兩者發(fā)生第二次同源重組,獲得發(fā)生雙交換后的突變菌LIN-DU;用于倍增lmbU基因的接合子依照pSOK804載體上的整合特點(diǎn)可直接視為突變菌LIN-U。

      獲得突變菌后,用引物DU-F:5′-GGTCATG GAGGCGGATGTTG-3′ 和DU-R:5′-CGGTGA CCCAAAGGGCAAGA-3′以及引物PermE-F:5′-GAATTCGGTACCAGCCCGACCCGAG-3′和LIN-4-R對突變菌LIN-DU、LIN-U分別進(jìn)行PCR驗(yàn)證。

      1.5 突變菌的發(fā)酵驗(yàn)證

      突變菌發(fā)酵采用二級培養(yǎng)的方法。以出發(fā)菌S.lincolnensisN9為對照,于30 ℃、220 r·min-1下?lián)u瓶發(fā)酵,在種子培養(yǎng)基中培養(yǎng)2 d后轉(zhuǎn)接入二級發(fā)酵培養(yǎng)基,發(fā)酵7 d。為判斷不同基因型對林可霉素生物合成造成的差異,對于突變菌和出發(fā)菌采用相同的發(fā)酵條件,盡量減少發(fā)酵過程對其表型的影響。

      1.6 分析與檢測

      發(fā)酵液效價(jià)測定采用杯碟法。

      LC-MS檢測條件:采用Phenomenex Luna 5u C18色譜柱(4.6 mm×250 mm);檢測波長為210 nm;流動相為5 mmol·L-1乙酸銨水溶液∶甲醇(40∶60);恒梯度洗脫,流速為0.6 mL·min-1;進(jìn)樣量為20 μL。

      2 結(jié)果與討論

      2.1 重組質(zhì)粒pLIN-DU、pLIN-U的驗(yàn)證

      獲得重組質(zhì)粒pLIN-DU、pLIN-U后,分別用XhoⅠ和BglⅡ兩組單酶切體系、EcoRⅠ/HindⅢ和XbaⅠ/HindⅢ兩組雙酶切體系進(jìn)行酶切驗(yàn)證,結(jié)果如圖3所示。

      M.DNA Marker DL5000 1,2.pLIN-DU 3,4.pLIN-U

      用XhoⅠ單酶切pLIN-DU會形成大小分別為6.72 kb和3.30 kb的目標(biāo)條帶,用BglⅡ單酶切pLIN-DU會形成大小分別為7.92 kb和0.90 kb的目標(biāo)條帶。由圖3A可知,lmbU左右臂拼接的片段(UL和UR)成功插入質(zhì)粒pKC1139中。

      用EcoRⅠ/HindⅢ雙酶切pLIN-U會形成大小分別為6.04 kb和1.43 kb的目標(biāo)條帶;而用XbaⅠ/HindⅢ雙酶切pLIN-U會形成大小分別為3.61 kb、2.33 kb和0.94 kb的目標(biāo)條帶。由圖3B可知,外源重組基因片段ermE*+lmbU成功插入載體pSOK804中。以上驗(yàn)證結(jié)果表明重組質(zhì)粒pLIN-DU、pLIN-U均可用于后續(xù)遺傳操作。

      2.2 突變菌LIN-DU、LIN-U的PCR驗(yàn)證

      圖4 突變菌LIN-DU的同框敲除示意圖

      重組質(zhì)粒pLIN-DU導(dǎo)入出發(fā)菌S.lincolnensisN9中會與染色體發(fā)生兩次同源重組(原理如圖4所示)從而使得lmbU基因內(nèi)部序列缺失195 bp。因此,可通過在基因lmbU左右臂內(nèi)部設(shè)計(jì)一對引物DU-F和DU-R對突變菌進(jìn)行PCR驗(yàn)證。若是野生型或回復(fù)突變型菌株,染色體上lmbU基因是完整的,PCR擴(kuò)增的條帶大小約為1.10 kb左右;而突變菌LIN-DU染色體上lmbU基因內(nèi)部序列有缺失,PCR只能擴(kuò)增出大小約為0.90 kb左右的條帶。PCR驗(yàn)證結(jié)果如圖5所示。

      而重組質(zhì)粒pLIN-U導(dǎo)入出發(fā)菌S.lincolnensisN9中后,外源重組片段ermE*+lmbU會隨著載體pSOK804與染色體上特異位點(diǎn)的整合而一并插入菌株染色體中??衫猛庠粗亟M片段ermE*+lmbU兩端的引物PermE-F和LIN-4-R對突變菌的總DNA進(jìn)行PCR驗(yàn)證。若是質(zhì)粒成功導(dǎo)入出發(fā)菌株,則會擴(kuò)增出大小約為1.66 kb的目標(biāo)條帶,而出發(fā)菌株S.lincolnensisN9則不會。PCR驗(yàn)證結(jié)果如圖5所示。

      M.DNA Marker DL5000 1.突變菌LIN-DU的總DNA 2,3.出發(fā)菌S.lincolnensis N9的總DNA 4.突變菌LIN-U的總DNA

      由圖5可知,PCR驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)結(jié)果與預(yù)想的完全一致,突變菌LIN-DU中l(wèi)mbU基因內(nèi)部序列發(fā)生了缺失、突變菌LIN-U中成功倍增了lmbU基因,均可用于后續(xù)的發(fā)酵驗(yàn)證。

      2.3 突變菌LIN-DU、LIN-U的發(fā)酵驗(yàn)證

      對照菌N9、突變菌LIN-DU、LIN-U發(fā)酵液效價(jià)測定結(jié)果如圖6所示。由圖6可知,對照菌N9的效價(jià)為3204 U·mL-1,突變菌LIN-DU、LIN-U的效價(jià)分別為100.30 U·mL-1、3219 U·mL-1。由于突變菌LIN-DU杯碟法測其效價(jià)非常低,又對其發(fā)酵液進(jìn)行了LC-MS測定,結(jié)果如圖7所示。由圖7可知,突變菌LIN-DU仍產(chǎn)生微量的林可霉素A(質(zhì)荷比為407),但產(chǎn)量較出發(fā)菌株S.lincolnensisN9明顯下降,僅為出發(fā)菌株的1/30。

      圖6 對照菌N9、突變菌LIN-DU、LIN-U發(fā)酵液效價(jià)測定結(jié)果

      圖7 突變菌LIN-DU和對照菌S.lincolnensis N9 LC-MS圖譜對比

      以上表型結(jié)果表明,lmbU為林可霉素生物合成的正調(diào)控基因,但單獨(dú)倍增lmbU基因?qū)τ诹挚擅顾禺a(chǎn)量和組分比例影響不顯著。

      2.4 討論

      有文獻(xiàn)報(bào)道,lmbU基因敲除能夠使S.lincolnensis野生菌株失去林可霉素生物合成能力,lmbU基因是林可霉素生物合成的關(guān)鍵基因[10]。作者通過序列分析,發(fā)現(xiàn)lmbU基因與幾種抗生素產(chǎn)生菌中調(diào)節(jié)基因具有很高的同源性。

      本研究通過對lmbU基因的同框敲除,發(fā)現(xiàn)得到的突變菌的林可霉素產(chǎn)量明顯下降,LC-MS分析表明其仍能產(chǎn)生微量的林可霉素,證明lmbU基因是負(fù)責(zé)林可霉素生物合成的正調(diào)控基因。同時(shí)嘗試對lmbU基因進(jìn)行倍增以提高林可霉素的產(chǎn)量,結(jié)果表明得到的突變菌的林可霉素產(chǎn)量沒有明顯提高。可能lmbU基因并非是途徑特異性的調(diào)節(jié)基因,而是處于一個相對復(fù)雜的調(diào)控環(huán)境中,有待于進(jìn)一步探索和研究。

      3 結(jié)論

      研究了林可霉素生物合成基因簇中調(diào)控基因的功能。通過構(gòu)建重組質(zhì)粒pLIN-DU和pLIN-U分別對林可霉素工業(yè)生產(chǎn)菌株Streptomyceslincolnensis的lmbU基因進(jìn)行同框敲除和基因倍增,獲得相應(yīng)突變菌LIN-DU和LIN-U后,對突變菌發(fā)酵液進(jìn)行生物效價(jià)測定和LC-MS分析,探討lmbU基因?qū)α挚擅顾禺a(chǎn)量和組分的影響。結(jié)果發(fā)現(xiàn),基因敲除突變菌LIN-DU的林可霉素生物合成能力大幅削弱;基因倍增突變菌LIN-U的林可霉素生物合成相對出發(fā)菌株沒有明顯變化。表明lmbU基因?qū)α挚擅顾厣锖铣删哂姓蛘{(diào)控作用。

      參考文獻(xiàn):

      [1] 張永信,吳永樂,吳菊芳,等.國產(chǎn)克林霉素的抗菌作用和臨床療效[J].上海醫(yī)藥,1998,19(9):8-11.

      [2] Spizek J,Rezanka T.Lincomycin,clindamycin and their applications[J].Appl Microbiol Biotechnol,2004,64(4):455-464.

      [3] Peschke U,Schmidt H,Zhang H Z,et al.Molecular characterization of the lincomycin-production gene cluster ofStreptomyceslincolnensis78-11[J].Mol Microbiol,1995,16(6):1137-1156.

      [4] Koberska M,Kopecky J,Olsovska J,et al.Sequence analysis and heterologous expression of the lincomycin biosynthetic cluster of the type strainStreptomyceslincolnensisATCC25466[J].Folia Microbiol,2008,53(5):395-401.

      [5] Flett F,Mersinias V.High efficiency intergeneric conjugal transfer of plasmid DNA fromEscherichiacolito methyl DNA-restricting streptomycetes[J].Microbiol Lett,2006,155(2):223-229.

      [6] Bierman M,Logan R,O′brien K,et al.Plasmid cloning vectors for the conjugal transfer of DNA fromEscherichiacolitoStreptomycesspp.[J].Gene,1992,116(1):43-49.

      [7] Bohdan O,Roman Makitrinskyy,Suzanne W,et al.Identification and characterization ofStreptomycesghanaensisATCC14672 integration sites for three actinophage-based plasmids[J].Plasmid,2009,61(3):171-175.

      [8] 薩姆布魯克 J,拉塞爾 D W.分子克隆實(shí)驗(yàn)指南(第三版)[M].北京:科學(xué)出版社,2002:96-105.

      [9] 王增亮,趙群飛,高淑紅,等.Streptomyceslincolnensis新遺傳操作方法的建立以及l(fā)mbQ基因功能研究[J].生物技術(shù)通報(bào),2010,(11):186-190.

      [10] 呂彩霞,楊捷,葉江,等.林可霉素生物合成基因lmbU的敲除及其遺傳回補(bǔ)[J].華東理工大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版),2008,34(1):60-65.

      猜你喜歡
      林可霉素效價(jià)條帶
      滲透壓對林可霉素發(fā)酵效價(jià)影響的研究
      林可霉素基因工程研究的新進(jìn)展
      情緒效價(jià)的記憶增強(qiáng)效應(yīng):存儲或提取優(yōu)勢?
      應(yīng)用HyD在仔豬斷奶早期可提高維生素D的效價(jià)
      基于條帶模式GEOSAR-TOPS模式UAVSAR的雙基成像算法
      基于 Savitzky-Golay 加權(quán)擬合的紅外圖像非均勻性條帶校正方法
      如何提高抗生素效價(jià)管碟測定法的準(zhǔn)確性
      生物效價(jià)法測定大黃炮制品活血化瘀功效
      中成藥(2014年9期)2014-02-28 22:28:58
      鹽酸林可霉素片溶出度測定方法的研究
      一種基于MATLAB的聲吶條帶圖像自動拼接算法
      海岸工程(2014年4期)2014-02-27 12:51:28
      星子县| 博野县| 玛多县| 山西省| 牙克石市| 方山县| 巢湖市| 蕲春县| 泽普县| 邯郸市| 余干县| 日喀则市| 乐平市| 临西县| 柯坪县| 永泰县| 沙雅县| 墨玉县| 黄浦区| 泰兴市| 额济纳旗| 阜新市| 杭锦后旗| 禄丰县| 涟水县| 万州区| 穆棱市| 开平市| 启东市| 丽江市| 西华县| 唐海县| 临泉县| 万宁市| 潮安县| 克东县| 丁青县| 青河县| 沙湾县| 榆林市| 于田县|