鄭志偉,勞海燕,余細勇,,陳紀言,林秋雄,麥麗萍,鐘詩龍,△
(1南方醫(yī)科大學藥學院,廣東 廣州 510515;2廣東省人民醫(yī)院醫(yī)學研究中心,3廣東省心血管病研究所,廣東 廣州 510080)
MicroRNA(miRNA)是一類小分子非編碼單鏈RNA,通過與靶基因互補配對影響翻譯水平,在轉(zhuǎn)錄后水平對生物體基因的表達起精細的調(diào)節(jié)作用[1]。它在生物體的生長、發(fā)育及疾病的發(fā)生發(fā)展等過程中起著十分重要的作用。目前人們關注的主要是miRNA在組織細胞內(nèi)的功能,但是近來研究發(fā)現(xiàn),血漿中也存在大量的循環(huán)miRNA,并且不同的生理疾病的狀態(tài)下血漿中的miRNA表達譜各不相同[2,3]。血漿循環(huán)miRNA在腫瘤、糖尿病等多種疾病中呈特異性表達,提示血漿miRNA可作為潛在的生物標記物用于疾病的診斷和治療。從研究發(fā)現(xiàn)循環(huán)miRNA在腫瘤、心衰、心肌梗死和糖尿病等疾病中的顯著意義以來,人們就一直致力于循環(huán)miRNA可否用于臨床疾病的無創(chuàng)診斷預警方面的應用研究,隨著檢測技術方法的不斷進步,循環(huán)miRNA在疾病診斷中的應用研究成為研究的熱點。本研究旨在檢測冠心病患者和健康對照血漿中循環(huán)miR-126和miR-16的表達,進一步通過抑制miR-126在血管內(nèi)皮細胞的表達,觀察miR-126對血管內(nèi)皮生長因子(vascular endothelial growth factor,VEGF)的影響。
Trizol LS和Trizol試劑購自Invitrogen;氯仿、異戊醇購于廣州化學試劑廠;proteinase K、glycogen、Maxima SYBR Green/Fluorescein qPCR Master Mix、TurboFectTMsiRNA transfection reagent購于 Fermentas;hsa-miR-126抑制劑由上海吉瑪制藥公司合成;莖環(huán)引物和上、下游引物由Invitrogen合成;dNTP(10 mmol/L)、RNase free 水、RNA inhibitor、M - MLV逆轉(zhuǎn)錄酶購于TaKaRa;DMEM/F12(1∶1)培養(yǎng)基購于賽默飛世爾生物化學制品(北京)有限公司;0.25%胰酶溶液購于吉諾生物醫(yī)藥技術有限公司。
AG 22331 Hamburg PCR儀及DNA Engine Opticon 2熒光定量PCR系統(tǒng)分別為Eppendorf和MJ Research產(chǎn)品;NanoDrop 1000為 Thermo Scientific產(chǎn)品。
2.1 血樣標本的收集與處理 本研究經(jīng)廣東省人民醫(yī)院倫理委員會批準,入選人群均簽署知情同意書,EDTA抗凝管收集診斷為冠心病(coronary artery disease,CAD)并且發(fā)生急性心肌梗死后48~72 h的患者血樣標本4 mL,入選者排除患有其它嚴重疾病及肝腎功能不全的患者;同時收取健康體檢者(healthy control,HC)作為健康對照。新鮮標本通過3000 r/min、4℃離心15 min,分離上層血漿和下層血細胞層,上層血漿繼續(xù)12000 r/min、4℃離心5 min,EP管分裝,-80℃保存?zhèn)溆谩?/p>
2.2 血漿總RNA的提取 104例標本各取250 μL的血漿,加入10 μL的proteinase K進行消化,然后依次加入750 μL Trizol LS和200 μL酚氯仿進行提取。具體的提取方法按照Trizol LS試劑盒的說明進行。提取總RNA用40 μL的無RNA酶水,瞬時離心。使用NanoDrop 1000檢測總RNA的濃度,采用A260/A280判斷RNA的質(zhì)量。
2.3 血漿miRNA的檢測
①cDNA逆轉(zhuǎn)錄 用M-MLV逆轉(zhuǎn)錄酶進行逆轉(zhuǎn)錄合成cDNA,逆轉(zhuǎn)錄的反應體系如下:4.875 μL水、2 μL 10×RT 緩 沖 液、0.375 μL dNTP Mix、RNA 酶 抑制劑 0.25 μL、逆轉(zhuǎn)錄莖環(huán)引物(1 μmol/L)0.5 μL、反轉(zhuǎn)錄酶 0.25 μL及總 RNA 樣品 2 μL,共計 10 μL,混勻后稍離心在 PCR儀中進行反應。RT參數(shù)設置為16℃ 30 min,42℃ 30 min,85℃ 1 min滅活反轉(zhuǎn)錄酶,產(chǎn)物置-4℃凍存?zhèn)溆?。反應設置無模板對照體系。hsa-miR-126莖環(huán)引物:5'-GTCGTATCCAGTGCGTGTCGTGGAGTCGGCAATTGCACTGGATACGACCGCATT-3'。hsa-miR-16莖環(huán)引物:5'-GTCGTATCCAGTGCGTGTCGTGGAGTCGGCAATTGCACTGGATACGACCGCCAATA -3'。
② 熒光定量檢測 取 cDNA 2 μL,依次加 Maxima SYBR Green/Fluorescein qPCR Master Mix 5 μL,上、下游引物(5 μmol/L)各0.25 μL,水2.5 μL,共計10 μL,用DNA Engine Opticon 2熒光定量PCR進行定量擴增,循環(huán)參數(shù)設定為95℃ 5 min進行預變性,然后95℃ 12 s,65℃ 50 s,共40個循環(huán),最后做熔解曲線,標本做復管PCR反應,重復2次。同時做陰性對照和不加模板cDNA,而以水代替的反應,用于檢驗是否存在PCR污染和較高的引物二聚體污染。hsa-miR-126上游引物5'-GTCCGCTCGTACCGTGAGTAATA -3',下游引物 5'-GTGCGTGTCGTGGAGTC-3';hsa-miR-16上游引物5'-GTCCGCTAGCAGCACGTAAATATT -3',下游引物 5'-TGGTGTCGTGGAGTCG -3'。
2.4 內(nèi)皮細胞EA.hy926培養(yǎng)及轉(zhuǎn)染
①EA.hy926細胞培養(yǎng) 細胞用含10%胎牛血清的DMEM/F-12培養(yǎng),37℃、5%CO2常規(guī)培養(yǎng),細胞鋪滿瓶底80%~90%時進行常規(guī)傳代。
② 轉(zhuǎn)染miR-126 inhibitor 轉(zhuǎn)染前1 d,取對數(shù)生長期細胞,胰酶消化,DMEM/F12培養(yǎng)基懸浮細胞至密度為1×108/L,鋪板于6孔板中,每孔1 mL,補加DMEM/F12培養(yǎng)基至2 mL,37℃,5%CO2培養(yǎng)。培養(yǎng)24 h后,6孔板換培養(yǎng)基,采用陽離子脂質(zhì)體TurboFectTMsiRNA transfection reagent介導,加入miR-126抑制劑(終濃度為100 nmol)進行轉(zhuǎn)染,同時轉(zhuǎn)染陰性對照(negative control,NC),每孔平行4次。
③轉(zhuǎn)染后檢測miR-126和血管內(nèi)皮生長因子的表達 細胞轉(zhuǎn)染30 h,棄培養(yǎng)基,用PBS洗滌3次,用Trizol提取細胞RNA,NanoDrop 1000檢測總RNA的濃度和質(zhì)量,實時定量PCR檢測miR-126及VEGF的表達情況。
采用SPSS 13.0軟件統(tǒng)計分析,數(shù)據(jù)用均數(shù)±標準差()表示,以兩獨立樣本t檢驗分析病例組與正常對照組均數(shù)間的差異。
收集的血樣標本均為診斷冠心病心肌梗死型的患者 52例,其中男 43例,女 9例,平均年齡為(61.46±12.11)歲;同期收取體檢健康對照52例,其中男42例,女10例,平均年齡為(62.58±2.32)歲。所選患者的年齡(P>0.05)和性別(P>0.05)經(jīng)過t檢驗和χ2檢驗無顯著差異。入選者排除患有其它嚴重疾病及肝腎功能不全的患者,52例冠心病患者肝腎功能的生化指標如下:谷丙轉(zhuǎn)氨酶:(34.52±21.54)U/L;谷草轉(zhuǎn)氨酶:(45.66±54.40)U/L;血肌酐:(88.88±20.60)μmoI/L;尿素氮:(4.81±1.47)mmol;總蛋白:(65.66±7.89)g/L;白蛋白:(35.30±3.29)g/L。
將收集的標本分為2組:心肌梗死組和健康對照組。提取血漿總RNA,采用莖環(huán)熒光定量檢測方法檢測miR-126和miR-16,結(jié)果顯示血漿循環(huán)miR-126在兩組之間的表達差異顯著(P<0.05),血漿循環(huán)miR-126在冠心病患者的血漿中表達明顯下降;而血漿循環(huán)miR-16在血漿中表達豐度較高,在兩組間表達無顯著差異(P>0.05),見圖1、2。
EA.hy926轉(zhuǎn)染miR-126 inhibitor 30 h后,與陰性對照組相比,抑制劑組miR-126的表達明顯下調(diào),miR-126在抑制劑組的表達為陰性對照組的0.0052倍(P<0.05),而陰性對照組跟不加任何干預的空白組miR-126的表達沒有明顯差異(P>0.05);轉(zhuǎn)染后檢測VEGF的表達,抑制劑組VEGF的表達明顯增加,與陰性對照組相比,VEGF的表達上升了2.08倍(P<0.05),而陰性對照組跟不加任何干預的空白組VEGF的表達無顯著差異(P>0.05),見表 1、圖3。
Figure 1.Plasma circulating miR -126 level in patients with CAD and heal-thy volunteers..n=52.*P<0.05 vs healthy control.Expression of miR - 126 in EDTA-plasma obtained from patients with CAD and healthy volunteers was determined by real-time PCR.圖1 血漿循環(huán)miR-126在冠心病患者和健康人群中的表達
Figure 2.Plasma circulating miR-16 level in patients with CAD and healthy volunteers..n=52.Expression of miR-16 in EDTA-plasma obtained from patients with CAD and healthy volunteers was determined by real-time PCR.圖2 血漿循環(huán)miR-16在冠心病患者和健康人群中的表達
miRNA是一類長約22 nt的非編碼單鏈小RNA分子,可以通過與靶基因3'UTR區(qū)互補結(jié)合,促進目標mRNA的降解或者抑制靶基因翻譯成蛋白質(zhì),進而在細胞、組織或個體水平上影響生物體的生長發(fā)育,并參多種疾病發(fā)生和發(fā)展過程[4]。大量研究表明miRNA在細胞生長、發(fā)育、分化、增殖和凋亡等過程中發(fā)揮重要作用,且與心血管疾病如高血壓、心律失常、心肌肥厚等密切相關[5]。
目前已經(jīng)發(fā)現(xiàn)并被miRBase[6]數(shù)據(jù)庫收錄的人類miRNA分子有16772種(http://www.mirbase.org/index.shtml)。其中絕大部分的miRNA分子在不同病理和生理狀況下進行表達,并且許多miRNA能夠在人體液中檢出。Chen等[7]應用Solexa測序技術對正常的中國人血清miRNA進行測序分析,在男性和女性血清中分別發(fā)現(xiàn)了100種和91種miRNA分子,并且通過實驗證明了血漿中內(nèi)源性miRNA是比較穩(wěn)定的。Mitchell等[8]采用基于莖環(huán)的RTPCR方法證明了血漿中miRNA比較穩(wěn)定,并且血漿和血清中的樣本檢測有很好的相關性,都很適合作為血液基礎的標志物。
表1 轉(zhuǎn)染miR-126抑制劑30 h后EA.hy926細胞中miR-126的表達Table 1.The miR -126 expression in EA.hy926 cells 30 h after transfeced with miR-126 inhibitor(.n=4)
表1 轉(zhuǎn)染miR-126抑制劑30 h后EA.hy926細胞中miR-126的表達Table 1.The miR -126 expression in EA.hy926 cells 30 h after transfeced with miR-126 inhibitor(.n=4)
*P <0.05 vs negative control.The miRNA expression is represented as cycle threshold(Ct)values from qRT - PCR analysis.The Ct values are inversely related to the expression level.Delta Ct(ΔCt)values are defined as the raw CtmiR-126- CtU6for that sample.Relative quantification(RQ)reflects the ratio of expression in the transfection group relative to the negative control and is calculated as 2 -ΔΔCt,in which ΔΔCt is defined as the ΔCttransfection-ΔCtnegative control.
Group Mean Ct ΔCt ΔΔCt RQ miR -126 inhibitor20.69±0.52 5.73±0.60 7.70±0.60 0.0052±0.0022*0±0.3300 Negative control 13.60±0.35 -1.97±0.38 7.40±0.38 1.0300±0.2500 Blank 13.72±0.49 -1.89±0.48 0.07±0.48 0.990
Figure 3.The VEGF expression in EA.hy926 cells 30 h after transfected with miR-126 inhibitor..n=4.*P< 0.05 vs negative control.Relative quantification(RQ)reflects the ratio of expression in the transfection group relative to the negative control and is calculated as 2 -ΔΔCt,in which ΔΔCt is defined as the ΔCttransfection-ΔCtnegative control.圖3 轉(zhuǎn)染 miR-126抑制劑30 h后 EA.hy926細胞中VEGF的表達
本研究采用Trizol LS提取血漿總RNA,采用莖環(huán)逆轉(zhuǎn)錄-熒光定量的方法檢測血漿循環(huán)miRNA的表達,在收集的52份冠心病心肌梗死型的血漿樣本和52份健康對照的血漿樣本檢測中,發(fā)現(xiàn)miR-126的表達在兩組之間存在顯著差異,miR-126在冠心病心肌梗死組的表達明顯下降,而miR-16的表達在兩組之間顯著差異,表達的豐度較高,在兩組人群中的表達相對較穩(wěn)定。miR-126在冠心病患者的表達下降有可能預示疾病的發(fā)生和發(fā)展。
進一步我們通過生物學信息學軟件預測VEGF可能是miR-126的靶基因,miR-126有可能通過作用于VEGF的3'UTR端而起到抑制基因表達的作用。血管新生是心肌缺血的代償性反應,促進缺血心肌的血管新生已經(jīng)成為缺血性心血管疾病治療學的研究熱點,VEGF是重要的促血管生長因子。目前發(fā)現(xiàn)VEGF具有特異性促進血管內(nèi)皮細胞有絲分裂的生長因子,它能誘導血管新生、重構(gòu),增加血管通透性,促進巨噬細胞和單核細胞向動脈粥樣硬化斑塊內(nèi)遷移[9]。急慢性心肌缺血、缺氧能夠迅速增加VEGF及其受體的表達,給予外源性VEGF或其基因可以促進缺血心肌血管新生和側(cè)枝循環(huán)的形成[10]。近年來,科學家證實VEGF在動脈粥樣硬化斑塊的增殖和活化中起著重要作用。Inoue等[11]發(fā)現(xiàn)人正常冠狀動脈壁并不表達VEGF或非常少量的表達,而在動脈粥樣硬化斑塊中卻大量表達。尹瑞興等[12]發(fā)現(xiàn)實驗性急性心肌梗死大鼠的血清VEGF水平持續(xù)顯著升高,于心肌梗死后1 h開始,6 h組顯著高于假手術對照組,24 h組達高峰,然后轉(zhuǎn)低,但梗死后14 d組仍顯著高于對照組。在本實驗中,我們在血管內(nèi)皮細胞EA.hy926細胞株中發(fā)現(xiàn),在細胞中轉(zhuǎn)染miR-126抑制劑,抑制miR-126的表達,VEGF的表達明顯上調(diào),跟陰性對照組相比差異顯著,說明miR-126有可能在轉(zhuǎn)錄后水平調(diào)節(jié)血管內(nèi)皮細胞VEGF表達。在動脈粥樣硬化斑塊的增殖過程中常伴隨滋養(yǎng)層血管的生長,VEGF的表達有可能升高,而伴隨著有可能是行負性調(diào)控的miR-126的表達降低,導致在轉(zhuǎn)錄后對VEGF的調(diào)節(jié)失調(diào),因此,血漿miR-126表達水平降低有可能成為冠心病血管病變發(fā)生發(fā)展過程中的一個重要的生物預警,對冠心病或者是急性心肌梗死發(fā)作的早期診斷和預防有一定的指示作用,其具體作用仍需擴大臨床樣本量,更進一步研究血漿miR-126表達差異在疾病發(fā)生中的具體調(diào)控機制。
[1]Hobert O.Gene regulation by transcription factors and microRNAs[J].Science,2008,319(5871):1785 -1786.
[2]Rong H,Liu TB,Yang KJ,et al.MicroRNA -134 plasma levels before and after treatment for bipolar mania[J].J Psychiatr Res,2011,45(1):92 -95.
[3]Fichtlscherer S,De Rosa S,F(xiàn)ox H,et al.Circulating microRNAs in patients with coronary artery disease[J].Circ Res,2010,107(5):677 -684.
[4]魏 聰,胡 兵,申 鍔.MicroRNAs在心臟發(fā)育和疾病中的作用[J].中國病理生理雜志,2011,27(3):611-615.
[5]Zheng L,Xu CC,Chen WD,et al.MicroRNA -155 regulates angiotensin II type 1 receptor expression and phenotypic differentiation in vascular adventitial fibroblasts[J].Biochem Biophys Res Commun,2010,400(4):483 -488.
[6]Griffiths-Jones S,Saini HK,van Dongen S,et al.miRBase:tools for microRNA genomics[J].Nucleic Acids Res,2008,36(Suppl 1):D154 - D158.
[7]Chen X,Ba Y,Ma L,et al.Characterization of microRNAs in serum:a novel class of biomarkers for diagnosis of cancer and other diseases[J].Cell Res,2008,18(10):997-1006.
[8]Mitchell PS,Parkin RK,Kroh EM,et al.Circulating microRNAs as stable blood-based markers for cancer detection[J].Proc Natl Acad Sci U S A,2008,105(30):10513-10518.
[9]Yamada M,Kim S,Egashira K,et al.Molecular mechanism and role of endothelial monocyte chemoattractant protein-1 induction by vascular endothelial growth factor[J].Arterioscler Thromb Vasc Biol,2003,23(11):1996-2001.
[10]張玉英,范維琥,馬宇瀅,等.心肌梗死大鼠缺血心肌中內(nèi)皮抑素的表達[J].中國病理生理雜志,2006,22(10):1957-1959.
[11]Inoue M,Itoh H,Ueda M,et al.Vascular endothelial growth factor(VEGF)expression in human coronary atherosclerotic lesions:possible pathophysiological significance of VEGF in progression of atherosclerosis[J].Circulation,1998,98(20):2108 -2116.
[12]尹瑞興,馮建章,姚 震.急性心肌梗死大鼠血清血管內(nèi)皮生長因子含量的變化[J].中國病理生理雜志,2000,16(1):30-32.