• 
    

    
    

      99热精品在线国产_美女午夜性视频免费_国产精品国产高清国产av_av欧美777_自拍偷自拍亚洲精品老妇_亚洲熟女精品中文字幕_www日本黄色视频网_国产精品野战在线观看

      ?

      微血管周細(xì)胞在缺血性腦損傷中的作用

      2012-01-29 17:27:52陳繼興錢加強(qiáng)
      關(guān)鍵詞:微血管腦缺血內(nèi)皮細(xì)胞

      陳繼興 錢加強(qiáng)

      周細(xì)胞包繞著內(nèi)皮細(xì)胞并與內(nèi)皮細(xì)胞共同構(gòu)成微血管的基本結(jié)構(gòu),其分布廣泛,幾乎所有的組織、器官的血管壁均有周細(xì)胞覆蓋。長久以來,這類細(xì)胞一直被認(rèn)為是微血管的支持結(jié)構(gòu),類似于動(dòng)靜脈的平滑肌細(xì)胞。然而,現(xiàn)代免疫細(xì)胞化學(xué)和生物化學(xué)研究揭示了周細(xì)胞在體內(nèi)可調(diào)節(jié)多種重要的生物學(xué)功能[1]。由于周細(xì)胞在腦組織中的分布密度最高[2],因而提示這些細(xì)胞在腦組織中也必然起著不可忽視的作用。

      作為神經(jīng)血管單元的重要組成部分,已有大量的研究發(fā)現(xiàn),周細(xì)胞對維持毛細(xì)血管及血腦屏障的穩(wěn)定和成熟起著重要的作用[2-4]。近幾年的研究進(jìn)一步發(fā)現(xiàn),體外培養(yǎng)的中樞神經(jīng)系統(tǒng)周細(xì)胞在某些細(xì)胞外有害刺激(如酸中毒、高糖、活性氧自由基等)的作用下異?;钴S,并表現(xiàn)出數(shù)量、結(jié)構(gòu)和功能的改變[5-7]。研究還發(fā)現(xiàn),這些細(xì)胞同時(shí)具有多向分化潛能[8-9]。因此,當(dāng)腦梗死發(fā)生后,外周血或局部微環(huán)境中的周細(xì)胞大量募集繼而遷移至缺血壞死組織周圍,這極有可能與其參與梗死后腦組織的修復(fù)及血管重建有關(guān)[4,10]。然而也有許多學(xué)者發(fā)現(xiàn),在梗死的急性期,這些細(xì)胞結(jié)構(gòu)和功能的改變是加重局部腦缺血損傷的重要因素[11]。本文就目前中樞神經(jīng)系統(tǒng)周細(xì)胞在腦缺血期及缺血后期的作用作一綜述。

      1 周細(xì)胞與腦缺血后微循環(huán)障礙

      在大腦中,周細(xì)胞表達(dá)大量的α-actin收縮蛋白使其具有與平滑肌細(xì)胞相類似的收縮功能,這在缺乏平滑肌細(xì)胞的腦微動(dòng)脈及毛細(xì)血管中尤為重要。正常生理情況下,周細(xì)胞通過動(dòng)態(tài)的收縮和松弛作用精確調(diào)控微血流的變化并以此應(yīng)對復(fù)雜的神經(jīng)活動(dòng)[12]。然而在病理情況下,周細(xì)胞對細(xì)胞外刺激信號非常敏感,這些刺激信號如低氧、酸中毒、氧自由基等均可導(dǎo)致周細(xì)胞功能紊亂而發(fā)生過度收縮,這種過度收縮引起紅細(xì)胞通過障礙繼而導(dǎo)致微循環(huán)障礙。在人腦周細(xì)胞體外培養(yǎng)中,已證實(shí)活性氧自由基持續(xù)性刺激引起細(xì)胞內(nèi)鈣離子超載是引起周細(xì)胞過度收縮的重要原因[5,7]。在腦缺血大鼠模型中,缺血后的氧化物-亞硝基脅迫作用可引起周細(xì)胞持續(xù)收縮并導(dǎo)致微循環(huán)血流障礙[11]。Dalkara等[13]對局灶性腦缺血大鼠模型研究發(fā)現(xiàn),周細(xì)胞的收縮發(fā)生在腦中動(dòng)脈閉塞期間,而且這種現(xiàn)象持續(xù)存在,甚至當(dāng)閉塞動(dòng)脈恢復(fù)血流后這種收縮效應(yīng)仍然存在。由此可見,腦缺血后活性氧自由基引起的周細(xì)胞過度而持續(xù)收縮可能是導(dǎo)致局部微循環(huán)障礙,這也可能是腦缺血后再灌注損傷發(fā)生的重要病理機(jī)制。

      2 周細(xì)胞與腦缺血后血管新生

      血管新生(angiogenesis)是指新生毛細(xì)血管自成體血管出芽形成的復(fù)雜過程,包括內(nèi)皮細(xì)胞的活化、遷移和增生,管狀結(jié)構(gòu)和基底膜的重建,內(nèi)皮細(xì)胞對周細(xì)胞的募集,從而形成有周細(xì)胞包繞的穩(wěn)定的血管。較大血管的形成還需要合適的信號以完成血管平滑肌細(xì)胞的募集。其中周細(xì)胞在調(diào)節(jié)血管形成、穩(wěn)定和功能中均起著關(guān)鍵的作用。

      2.1 周細(xì)胞參與缺血后血管新生及成熟 研究證實(shí),在人類或嚙齒類動(dòng)物缺血腦組織中,血管生成相關(guān)基因及血管原性生長因子明顯增加[14]。應(yīng)用基因研究及組織化學(xué)方法,研究者發(fā)現(xiàn),在大鼠或小鼠短暫或持續(xù)性腦缺血模型中,調(diào)節(jié)血管新生的某些因子及受體如血管內(nèi)皮生長因子及其受體(VEGF/VEGFR),血管生成素及其受體(Angiopoietin/Tie),血小板衍生的生長因子及其受體(BPDGF-β/PDGFR-β),轉(zhuǎn)化生長因子(TGF-β)以及纖維母細(xì)胞生長因子(FGF)等表達(dá)明顯改變[15-16]。由于這些血管原性因子與周細(xì)胞的功能關(guān)系密切,也就意味著周細(xì)胞極有可能通過調(diào)節(jié)新生血管的形成和成熟而參與腦缺血后血管的新生和重建[4,17-18]。

      當(dāng)腦缺血發(fā)生后,缺血灶邊緣血管內(nèi)皮細(xì)胞活化,活化后的內(nèi)皮細(xì)胞可降解細(xì)胞外基質(zhì)并遷移至梗死周圍組織,這些細(xì)胞繼而擴(kuò)增并自成體血管以出芽的方式形成不成熟的管腔(或稱為未成熟毛細(xì)血管)[16,19]。隨后,活化的內(nèi)皮細(xì)胞及局部缺氧產(chǎn)生的自由基等可誘導(dǎo)周細(xì)胞募集并迅速遷移至缺血周圍腦組織[4]。周細(xì)胞募集后遷移至血管周圍,并覆蓋新形成的管腔,以促進(jìn)毛細(xì)血管的成熟和穩(wěn)定。在此過程中,許多血管生成相關(guān)基因及血管原性生長因子參與其中。PDGF-β/PDGFR-β通路在周細(xì)胞的募集中起著關(guān)鍵作用,Renner等[20]研究小鼠腦中動(dòng)脈缺血損傷模型發(fā)現(xiàn),PDGF-β及其受體PDGFR-β表達(dá)均明顯升高,其中新生的內(nèi)皮細(xì)胞分泌PDGF-β,而周細(xì)胞表達(dá)PDGFR-β,兩者結(jié)合促進(jìn)周細(xì)胞的增殖和遷移。Angiopoietin-1/Tie是另一組重要的生長因子,AP-1由成熟血管中的周細(xì)胞產(chǎn)生,AP-1與內(nèi)皮細(xì)胞上的受體Tie2結(jié)合,促進(jìn)受體的自身磷酸化(活化),表達(dá)活化Tie2的內(nèi)皮細(xì)胞吸引平滑肌細(xì)胞、周細(xì)胞等血管周圍細(xì)胞包圍、支持內(nèi)皮細(xì)胞形成完整的血管壁,促進(jìn)血管重塑、成熟、維持血管的完整性和調(diào)節(jié)血管功能[17]。

      2.2 周細(xì)胞參與缺血后血管微生態(tài)的構(gòu)建 腦缺血可刺激內(nèi)源性神經(jīng)干細(xì)胞以促進(jìn)神經(jīng)再生[21]。大體解剖學(xué)及微觀的信號通路研究均證實(shí),血管再生是神經(jīng)再生過程的重要階段。血管細(xì)胞的生成及管狀結(jié)構(gòu)的構(gòu)建可為神經(jīng)元的募集提供條件,也為神經(jīng)干細(xì)胞發(fā)育和分化提供血管微生態(tài)(niche)[22],后者又稱作“干細(xì)胞niche”,這一定義更形象描述干細(xì)胞與新生血管的依存關(guān)系。雖然目前尚未完全明確神經(jīng)前體細(xì)胞主要是以血管為介質(zhì)遷移至缺血組織,或者這些細(xì)胞直接產(chǎn)生于niche中。但大量的研究表明,niche成分的改變及niche中信號通路的改變都會(huì)對干細(xì)胞的數(shù)量及功能產(chǎn)生影響[23]。在鼠腦梗塞模型中,許多血管原性因子既可誘導(dǎo)血管生成也可促進(jìn)神經(jīng)生成[24-25]。如血管再生過程中產(chǎn)生的血管生成素-1(AP-1)和基質(zhì)細(xì)胞衍生因子-1(SDF1)同樣可促進(jìn)神經(jīng)再生[22,26]。在腦組織中,AP-1主要由周細(xì)胞分泌,細(xì)胞培養(yǎng)同樣證實(shí)SDF1表達(dá)于周細(xì)胞,而不表達(dá)于內(nèi)皮細(xì)胞[27]。已知SDF1與其特異受體CXCR4在骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞(MSCs)的動(dòng)員和歸巢、內(nèi)皮細(xì)胞的遷移以及在成人血管的發(fā)生、神經(jīng)的發(fā)生和神經(jīng)元的遷移中起重要作用[28]。因此,周細(xì)胞作為niche重要的細(xì)胞成分,可能通過分泌與歸巢相關(guān)的因子參與神經(jīng)再生。

      Piao等[29]應(yīng)用干細(xì)胞因子和粒細(xì)胞集落刺激因子聯(lián)合(SCF+G-CSF)治療慢性缺血性卒中發(fā)現(xiàn),二者可通過動(dòng)員骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞(MSCs)促進(jìn)大腦修復(fù)。他們還發(fā)現(xiàn),在組織修復(fù)過程中,骨髓源性內(nèi)皮細(xì)胞增加的同時(shí),骨髓源性周細(xì)胞數(shù)量減少??傊芗?xì)胞的動(dòng)員有助于神經(jīng)組織的修復(fù),這種修復(fù)作用可能通過與血管內(nèi)皮細(xì)胞相互作用并形成血管微生態(tài)發(fā)揮作用。在此過程中,周細(xì)胞的增殖具有自身調(diào)節(jié)作用,當(dāng)周細(xì)胞數(shù)量較少時(shí)促進(jìn)血管的再生,而當(dāng)數(shù)量較多時(shí)促進(jìn)血管的成熟。

      3 在腦組織中具有間充質(zhì)干細(xì)胞(MSCs)功能

      間充質(zhì)干細(xì)胞(mesenchymal stem cells,MSCs)是一類有多向分化潛能的干細(xì)胞,具有低免疫原性和獨(dú)特的免疫調(diào)節(jié)作用,能逃避免疫識別、抑制免疫應(yīng)答?;谏鲜錾飳W(xué)特性使其有望用于組織修復(fù)、抑制免疫排斥反應(yīng)的發(fā)生和代謝性疾病的細(xì)胞治療。近幾年來,隨著干細(xì)胞移植技術(shù)的發(fā)展,MSCs在缺血性腦損傷動(dòng)物實(shí)驗(yàn)?zāi)P椭芯@示出了一定的治療效果[30-31]。Bang等[32]研究發(fā)現(xiàn),對嚴(yán)重腦梗死患者給予靜脈輸注自體MSCs后,在梗死后期神經(jīng)功能確有明顯改善。

      近年來,大量動(dòng)物實(shí)驗(yàn)及臨床研究表明,腦微血管周細(xì)胞與間充質(zhì)干細(xì)胞(MSCs)具有相同或相似的特征及表面標(biāo)志。Bexell等[33]應(yīng)用MSCs瘤內(nèi)植入治療腦膠質(zhì)瘤動(dòng)物實(shí)驗(yàn)?zāi)P椭邪l(fā)現(xiàn),植入的MSCs主要定位在惡性膠質(zhì)瘤血管外周,并且表達(dá)周細(xì)胞的細(xì)胞表面標(biāo)記。在人類神經(jīng)膠質(zhì)瘤中,Pisati等[34]同樣發(fā)現(xiàn),移植的皮膚來源干細(xì)胞在血管生成過程中可分化為周細(xì)胞。Chen等[35]對中動(dòng)脈閉塞大鼠模型應(yīng)用人MSCs靜脈注射研究發(fā)現(xiàn),NG2陽性細(xì)胞(周細(xì)胞)的數(shù)量及密度在新出芽的血管中明顯增加。Shen等[36]在中動(dòng)脈閉塞大鼠模型中發(fā)現(xiàn),移植的MSCs能增加NG2陽性細(xì)胞的數(shù)量及密度,并且能促進(jìn)軸索的再生和再髓鞘化過程。Fujita等[37]在雙側(cè)頸總動(dòng)脈狹窄小鼠模型中發(fā)現(xiàn),移植的骨髓單核細(xì)胞(BMMNCs)能改善腦白質(zhì)損傷,且供體細(xì)胞BMMNCs定位于微血管周圍并具有與周細(xì)胞相同的形態(tài)學(xué)特征,提示這些細(xì)胞可能分化為周細(xì)胞。腦微血管周細(xì)胞與MSCs的相似性提示二者可能起源于相同的祖細(xì)胞。Kokovay等[38]應(yīng)用綠色熒光蛋白標(biāo)記嵌合體大鼠腦缺血模型BMSCs發(fā)現(xiàn),動(dòng)物體內(nèi)可觀測到兩類BMSCs,分別定位于腦實(shí)質(zhì)及脈管系統(tǒng)血管周圍,后者具有與周細(xì)胞相同的特征。近年來大量的研究資料更進(jìn)一步表明,二者可能來源于血管周圍細(xì)胞,在許多組織器官中,血管壁被認(rèn)為是其祖細(xì)胞的儲(chǔ)存庫[39]。

      鑒于MSCs與周細(xì)胞的相似性提示周細(xì)胞在功能上也具有與MSCs相類似的功能。這些功能包括:(1)免疫及吞噬功能:研究發(fā)現(xiàn),腦微血管周細(xì)胞可表達(dá)某些粘附分子(如細(xì)胞間粘附分子-1、血管細(xì)胞粘附分子-1),正常生理情況下這些分子呈低水平基礎(chǔ)表達(dá)。在炎性因子刺激下,其表達(dá)增加使得周細(xì)胞可作為呈遞細(xì)胞將抗原呈遞給T淋巴細(xì)胞[40]。此外,胞漿溶酶體內(nèi)大量酸性磷酸酶使其具有吞噬及調(diào)理作用[41]。這些功能可能與周細(xì)胞的在腦缺血修復(fù)過程中清除壞死組織、減少半暗帶區(qū)內(nèi)血管滲出物有關(guān)。(2)遷移功能:腦缺血發(fā)生后周細(xì)胞向內(nèi)皮細(xì)胞遷移是血管新生及組織修復(fù)的必要條件。較早的研究已證實(shí)體外細(xì)胞培養(yǎng)中的周細(xì)胞具有向內(nèi)皮細(xì)胞移動(dòng)的特性[42]。在外傷性腦損傷模型中,研究者發(fā)現(xiàn),約40%的腦微血管周細(xì)胞由外周微血管移動(dòng)至新生血管周邊。在血管發(fā)育過程中,周細(xì)胞的遷移受其自身表達(dá)的PDGFR-β及內(nèi)皮細(xì)胞表達(dá)的PDGF-β調(diào)節(jié)[43]。(3)多分化潛能:Jung等[44]對急性腦缺血患者研究發(fā)現(xiàn),隨著神經(jīng)功能的改善,循環(huán)中PDGFR-β陽性細(xì)胞明顯增加,將這些細(xì)胞分離并作體外細(xì)胞培養(yǎng)發(fā)現(xiàn)其表達(dá)間充質(zhì)干細(xì)胞表面標(biāo)志,并在不同培養(yǎng)基內(nèi)表現(xiàn)出多向分化潛能。腦血管周細(xì)胞體外與成纖維細(xì)胞生長因子共培養(yǎng)下可表達(dá)出神經(jīng)元及神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞表面標(biāo)志,表明中樞神經(jīng)系統(tǒng)周細(xì)胞可能具有成為神經(jīng)干細(xì)胞的潛能[9]。

      4 參與調(diào)節(jié)血腦屏障功能

      腦微血管周細(xì)胞與血管內(nèi)皮細(xì)胞通過緊密連接維持著血腦屏障的完整性,而其自身的收縮與舒張功能對血腦屏障的滲透性起著調(diào)節(jié)作用,因此當(dāng)缺氧及缺氧/再復(fù)氧導(dǎo)致的血腦屏障滲透性增加或細(xì)胞間緊密連接破壞發(fā)生后,周細(xì)胞無疑將發(fā)揮重要的調(diào)節(jié)作用。在內(nèi)皮細(xì)胞、周細(xì)胞及星形膠質(zhì)細(xì)胞體外混合培養(yǎng)的血腦屏障模型中,研究者發(fā)現(xiàn),由于缺氧導(dǎo)致的單層內(nèi)皮細(xì)胞滲透性增加,可因周細(xì)胞的存在而明顯減弱。同樣,當(dāng)與周細(xì)胞共培養(yǎng)時(shí),內(nèi)皮細(xì)胞對缺氧的敏感性明顯降低[45]。

      近幾年的研究發(fā)現(xiàn),周細(xì)胞對缺氧所致的內(nèi)皮完整性損害的影響取決于缺氧的時(shí)限及嚴(yán)重程度。輕度缺氧時(shí),在混合細(xì)胞培養(yǎng)的血腦屏障模型中,周細(xì)胞在短期內(nèi)加劇屏障功能的損傷[46]。Duz等[47]對中動(dòng)脈閉塞大鼠模型超微結(jié)構(gòu)研究也發(fā)現(xiàn),在缺血發(fā)生早期,微血管基底膜結(jié)構(gòu)紊亂,周細(xì)胞從血管壁分離,這種超微結(jié)構(gòu)的改變可能是腦缺血后血管通透性增高發(fā)生的早期階段,也是周細(xì)胞在缺血早期加劇屏障功能的損傷的可能原因之一。而當(dāng)持續(xù)暴露于低氧時(shí),周細(xì)胞則表現(xiàn)出保護(hù)作用。研究發(fā)現(xiàn),周細(xì)胞的保護(hù)作用與其表達(dá)的TGF-β1和AP-1以及分泌的Ⅳ型膠原蛋白、層粘連蛋白、透明質(zhì)酸密切相關(guān),前者參與維持血腦屏障的緊密連接,后者參與基底膜的形成[48]。此外,腦微量出血患者腦組織應(yīng)用電子顯微鏡觀察發(fā)現(xiàn),血管壁周細(xì)胞胞漿內(nèi)可見鐵離子及血漿成分,因此當(dāng)血腦屏障緊密結(jié)合受到破壞周細(xì)胞可能通過噬細(xì)胞作用充當(dāng)“網(wǎng)閘”角色以起補(bǔ)救作用[49]。

      5 周細(xì)胞與缺血后腦白質(zhì)損傷

      CADASIL病,又稱為遺傳性多發(fā)梗死癡呆病,伴有皮質(zhì)下梗死和白質(zhì)腦病的常染色體顯性遺傳腦動(dòng)脈病,是近幾年來發(fā)現(xiàn)的一種特殊類型的腦血管病或血管性癡呆病。大量的研究已證實(shí),CADASIL病由Notch3基因突變所致。對人類Notch3基因研究表明,其主要表達(dá)于動(dòng)脈平滑肌細(xì)胞及周細(xì)胞上[50]。應(yīng)用電子顯微鏡對CADASIL病患者腦微血管觀察發(fā)現(xiàn),血管壁周細(xì)胞胞核腫脹,細(xì)胞呈變性改變并伴基底膜增厚[51]。免疫電鏡顯示顆粒狀嗜鋨物質(zhì)大量的沉積在周細(xì)胞與內(nèi)皮細(xì)胞之間的基底膜上[52]。雖然目前對于Notch3基因突變引起的腦白質(zhì)損傷的確切機(jī)制尚不清楚,但大量證據(jù)表明,在CADASIL等白質(zhì)損傷疾病中腦血管反應(yīng)性明顯受損,Notch3蛋白在周細(xì)胞上突變可能是導(dǎo)致這類疾病毛細(xì)血管血流調(diào)節(jié)異常病理機(jī)制的基礎(chǔ)[53]。

      周細(xì)胞可能參與高血壓病性腦微血管病變過程。對自發(fā)性高血壓大鼠研究發(fā)現(xiàn),盡管富含周細(xì)胞的毛細(xì)血管比率較正常血壓組大鼠明顯增高,但顆粒狀及絲狀周細(xì)胞在有卒中傾向的自發(fā)性高血壓大鼠腦組織中卻有明顯的差別,盡管顆粒狀細(xì)胞始終呈增長趨勢,但成熟和有功能的絲狀周細(xì)胞卻隨著高血壓病的進(jìn)展呈退化趨勢[54]。這種變化將導(dǎo)致內(nèi)皮滲透性增加,滲透性增加引起的大分子物質(zhì)如蛋白酶類、免疫球蛋白類等溢出加劇了腦白質(zhì)的損傷過程。Bell等[55]對PDGFR-β缺陷大鼠研究發(fā)現(xiàn),腦周細(xì)胞在神經(jīng)血管功能中起重要作用,并認(rèn)為周細(xì)胞的缺失可能通過兩種途徑造成神經(jīng)損傷,一是通過減少腦微循環(huán)的數(shù)量從而造成慢性灌注不足和缺氧;二是由于血腦屏障完整性的破壞及滲透性增加導(dǎo)致的血漿蛋白及血管和(或)神經(jīng)毒性物質(zhì)的大量堆積。總之,周細(xì)胞功能性的缺失在成人腦缺血后白質(zhì)損傷病理過程中發(fā)揮著重要的作用,關(guān)于二者之間的聯(lián)系仍需要更多的研究以加以闡明。

      周細(xì)胞在腦缺血損傷病理過程中發(fā)揮著重要作用。在腦缺血急性期及后期,周細(xì)胞募集并可能通過調(diào)節(jié)血管新生、神經(jīng)再生及血腦屏障功能而參與受損神經(jīng)組織的修復(fù),同時(shí)在缺血早期,周細(xì)胞可能因過度收縮加劇腦缺血再灌注損傷過程。周細(xì)胞活化的結(jié)果對神經(jīng)元有益或有害與具體的神經(jīng)組織微環(huán)境有關(guān),可能因激活程度,刺激類型和存在的局部因子的不同而不同。目前,對于周細(xì)胞在缺血腦組織中的功能僅局限于動(dòng)物實(shí)驗(yàn)或臨床試驗(yàn),進(jìn)一步的研究有待從基因調(diào)控的角度來闡述周細(xì)胞在體內(nèi)發(fā)揮作用的分子機(jī)制。而且,目前對于腦缺血再灌注損傷及缺血后神經(jīng)元再生仍缺乏有效的治療措施,因此對周細(xì)胞生物學(xué)的深入研究將為腦缺血損傷提供重大的突破。

      [1]Dore-Duffy P.Pericytes:pluripotent cells of the blood brain barrier[J].Curr Pharm Des,2008,14(16):1581-1593.

      [2]Winkler EA,Bell RD,Zlokovic BV.Central nervous system pericytes in health and disease[J].Nat Neurosci,2011,14(11):1398-1405.

      [3]Fisher M.Pericyte signaling in the neurovascular unit[J].Stroke,2009,40(3):13-15.

      [4]Kamouchi M,Ago T,Kitazono T.Brain pericytes: emerging concepts and functional roles in brain homeostasis [J].Cell Mol Neurobiol,2011,31(2):175-193.

      [5]Kamouchi M,Kitazono T,Ago T,et al.Hydrogen peroxide-induced Ca2+ responses in CNS pericytes[J].Neurosci Lett,2007,416(1):12-16.

      [6]Nakamura K,Kamouchi M,Kitazono T,et al.Role of NHE1 in calcium signaling and cell proliferation in human CNS pericytes[J].Am J Physiol Heart Circ Physiol,2008,294(4):1700-1707.

      [7]Nakamura K,Kamouchi M,Kitazono T,et al.Amiloride inhibits hydrogen peroxide -induced Ca2+responses in human CNS pericytes[J].Microvasc Res,2009,77(3):327-334.

      [8]Brachvogel B,Pausch F.Isolated Anxa5+/Sca-1+ perivascular cells from mouse meningeal vasculature retain their perivascular phenotype in vitro and in vivo[J].Exp Cell Res,2007,313(12):2730-2743.

      [9]Dore-Duffy P,Katychev A.CNS microvascular pericytes exhibit multipotential stem cell activity[J].Cereb Blood Flow Metab,2006,26(5):613-624.

      [10]Lamagna C,Bergers G.The bone marrow constitutes a reservoir of pericyte progenitors[J].Leukoc Biol,2006,80(4):677-681.

      [11]Yemisci M,Gursoy-Ozdermir Y,Vural A,et al.Pericyte contraction induced by oxidative-nitrative stress impairs capillary reflow despite successful opening of an occluded cerebral artery[J].Nat Neurosci,2009,15(9):1031-1037.

      [12]Peppiatt C M,Howarth C,Mobbs P,et al.Bidirectional control of CNS capillary diameter by pericytes[J].Nature,2006,443(7112):700-704.

      [13]Dalkara T,Gursoy-Ozdemir Y,Yemisci M.Brain microvascular pericytes in health and disease[J].Acta Neuropathol,2011,122(1):1-9.

      [14]Hayashi T,Noshita N,Sugawara T,et al.Temporal profile of angiogenesis and expression of related genes in the brain after ischemia[J].Cereb Blood Flow Metab,2006,23(2):166-180.

      [15]Zhang ZG,Zhang L.Correlation of VEGF and angiopoietin expression with disruption of blood-brain barrier and angiogenesis after focal cerebral ischemia[J].Cereb Blood Flow Metab,2002,22(4):379-392.

      [16]Beck H,Plate KH.Angiogenesis after cerebral ischemia[J].Acta Neuropathol,2009,117(5):481-496.

      [17]Armulik A,Abramsson A,Betsholtz C.Endothelial/pericyte interactions[J].Circ Res,2005,97(6):512-523.

      [18]Von Tell D,Armulik A,Betsholtz C.Pericytes and vascular stability[J].Exp Cell Res,2006,312(5):623-629.

      [19]Xiong Y,Mahmood A,Chopp M.Angiogenesis,neurogenesis and brain recovery of function following injury[J].Curr Opin Investig Drugs,2010,11(3):298-308.

      [20]Renner O,Tsimpas A,Kostin S,et al.Time-and cell type-specific induction of plateletderived growth factor receptor-beta during cerebral ischemia[J].Brain Res Mol Brain Res,2003,113(1-2):44-51.

      [21]Burns TC,Verfaillie CM,Low WC.Stem cells for ischemic brain injury: a critical review[J].Comp Neurol,2009,515(1):125-144.

      [22]Thored P,Wood J,Arvidsson A,et al.Long-term neuroblast migration along blood vessels in an area with transient angiogenesis and increased vascularization after stroke[J].Stroke,2007,38(11):3032-3039.

      [23]Okano H,Sakaguchi M,Ohki K,et al.Regeneration of the central nervous system using endogenous repair mechanisms[J].Neurochem,2007,102(5):1459-1465.

      [24]Wang L,Zhang Z,Wang Y,et al.Treatment of stroke with erythropoietin enhances neurogenesis and angiogenesis and improves neurological function in rats[J].Stroke,2006,35(7):1732-1737.

      [25]Li L,Jiang Q,Zhang L,et al.Angiogenesis and improved cerebral blood flow in the ischemic boundary area detected by MRI after administration of sildenafil to rats with embolic stroke[J].Brain Res,2007,1132(1):185-192.

      [26]Ohab JJ,F(xiàn)leming S,Blesch A,et al.A neurovascular niche for neurogenesis after stroke[J].Neurosci,2006,26(50):13007-13016.

      [27]Seo J,Kim YO,Jo I.Differential expression of stromal cellderived factor 1 in human brain microvascular endothelial cells and pericytes involves histone modifications[J].Biochem Biophys Res Commun,2009,382(3):519-524.

      [28]Hattori K,Heissig B,Rafii S.The regulation of hematopoietic stem cell and progenitor mobilization by chemokine SDF1[J].Leuk Lymphoma,2003,44(4):575-582.

      [29]Piao CS,Gonzalez-Toledo ME,Xue YQ,et al.The role of stem cell factor and granulocyte-colony stimulating factor in brain repair during chronic stroke[J].Cereb Blood Flow Metab,2009,29(4):759-770.

      [30]Bliss T,Guzman R,Daadi M,et al.Cell transplantation therapy for stroke[J].Stroke,2007,38:817-826.

      [31]Zhang ZG,Chopp M.Neurorestorative therapies for stroke: underlying mechanisms and translation to the clinice[J].LancetNeurol,2009,8(5):491-500.

      [32]Bang OY,Lee JS,Lee PH,et al.Autologous mesenchymal stem cell transplantation in stroke patients[J].Ann Neurol,2005,57(6):874-882.

      [33]Bexell D,Gunnarsson S.Bone marrow multipotent mesenchymal stroma cells act as pericyte-like migratory vehicles in experimental gliomas[J].Mol Ther,2009,17(1):183-190.

      [34]Pisati F,Belicchi M.Effect of human skin-derived stem cells on vessel architecture,tumor growth,and tumor invasion in brain tumor animal models[J].Cancer Res,2007,67(7):3054-3063.

      [35]Chen J,Zhang ZG.Intravenous administration of human bone marrow stromal cells induces angiogenesis in the ischemic boundary zone after stroke in rats[J].Circ Res,2003,92(6):692-699.

      [36]Shen LH,Li Y.Intracarotid transplantation of bone marrow stromal cells increases axon-myelin remodeling after stroke[J].Neuroscience,2006,137(2):393-399.

      [37]Fujita Y,Ihara M.Early protective effect of bone marrow mononuclear cells against ischemic white matter damage through augmentation of cerebral blood flow[J].Stroke,2010,41(12):2938-2943.

      [38]Kokovay E,Li L,Cunningham LA.Angiogenic recruitment of pericytes from bone marrow after stroke[J].Cereb Blood Flow Metab,2006,26(4):545-555.

      [39]Caplan AI.Why are MSCs therapeutic? New data: new insight[J].Pathol,2009,217(2):318-324.

      [40]Balabanov R,Beaumont T,Dore-Duffy P.Role of central nervous system microvascular pericytes in activation of antigen-primed splenic T-lymphocytes[J].Neuroscience Research,1999,55(5):578-587.

      [41]Armulik A,Genové G,Betsholtz C.Pericytes: developmental,physiological,and pathological perspectives,problems,and promises[J].Dev Cell,2011,21(2):193-215.

      [42]Minakawa T,Bready J,Berliner J,et al.In vitro interaction of astrocytes and pericytes with capillary-like structures of brain microvessel endothelium[J].Lab Investigation,1991,65(1):32-40.

      [43]Dore-Duffy P,Owen C,Balabanov R,et al.Pericyte migration from the vascular wall in response to traumatic brain injury[J].Microvascular Research,2000,60(1):55-69.

      [44]Jung KH,Chu K,Lee ST,et al.Multipotent PDGFRb-expressing cells in the circulation of stroke patients[J].Neurobiol Dis,2011,41(2):489-497.

      [45]Hayashi K,Nakao S,Nakaoke R,et al.Effects of hypoxia on endothelial/pericytic co-culture model of the blood-brain barrier[J].Regul Pept,2004,123(1-3):77-83.

      [46]Al Ahmad A,Gassmann M,Ogunshola OO.Maintaining bloodbrain barrier integrity:pericytes perform better than astrocytes during prolonged oxygen deprivation[J].Cell Physiol,2009,218(3):612-622.

      [47]Duz B,Oztas E,Erginay T,et al.The effect of moderate hypothermia in acute ischemic stroke on pericytemigration: an ultrastructural study[J].Cryobiology,2007,55(3):279-284.

      [48]Zacharek A,Chen J,Cui X,et al.Angiopoietin1/Tie2 and VEGF/Flk1 induced by MSC treatment amplifies angiogenesis and vascular stabilization after stroke[J].Cereb Blood Flow Metab,2007,27(10):1684-1691.

      [49]Fisher M,F(xiàn)rench S,Ji P,et al.Cerebral microbleeds in the elderly: a pathological analysis[J].Stroke,2010,41(12):2782-2785.

      [50]Claxton S,F(xiàn)ruttiger M.Periodic Delta-like 4 expression in developing retinal arteries[J].Gene Expr Pattern,2004,5(1):123-127.

      [51]Haritoglou C,Hoops JP,Stefani FH,et al.Histopathological abnormalities in ocular blood vessels of CADASIL patients[J].Am J Ophthalmol,2004,138(2):302-305.

      [52]Lewandowska E,Leszczynska A,Wierzba-Bobrowicz T,et al.Ultrastructural picture of blood vessels in muscle and skin biopsy in CADASIL[J].Folia Neuropathol,2006,44(4):265-273.

      [53]Joutel A.Pathogenesis of CADASIL: transgenic and knock-out mice to probe function and dysfunction of the mutated gene,Notch3,in the cerebrovasculature[J].Bioessays,2010,33(1):73-80.

      [54]Ueno M,Tomimoto H,Akiguchi I,et al.Blood-brain barrier disruption in white matter lesions in a rat model of chronic cerebral hypoperfusion[J].Cereb Blood Flow Metab,2002,22(1):97-104.

      [55]Bell RD,Winkler EA,Sagare AP,et al.Pericytes control key neurovascular functions and neuronal phenotype in the adult brain and during brain aging[J].Neuron,2010,68(3):409-427.

      猜你喜歡
      微血管腦缺血內(nèi)皮細(xì)胞
      乙型肝炎病毒與肝細(xì)胞癌微血管侵犯的相關(guān)性
      淺議角膜內(nèi)皮細(xì)胞檢查
      雌激素治療保護(hù)去卵巢對血管內(nèi)皮細(xì)胞損傷的初步機(jī)制
      原花青素對腦缺血再灌注損傷后腸道功能的保護(hù)作用
      細(xì)胞微泡miRNA對內(nèi)皮細(xì)胞的調(diào)控
      血必凈對大鼠腦缺血再灌注損傷的保護(hù)作用及其機(jī)制
      細(xì)胞外組蛋白與腦缺血再灌注損傷關(guān)系的初探
      IMP3在不同宮頸組織中的表達(dá)及其與微血管密度的相關(guān)性
      上皮性卵巢癌組織中miR-126、EGFL7的表達(dá)與微血管密度的檢測
      痰瘀與血管內(nèi)皮細(xì)胞的關(guān)系研究
      应用必备| 哈尔滨市| 辛集市| 双江| 诏安县| 红原县| 丰都县| 双桥区| 林西县| 阜平县| 武隆县| 高州市| 调兵山市| 阜新市| 神池县| 辉南县| 于都县| 高唐县| 都江堰市| 临泉县| 博乐市| 九江市| 仪征市| 广宁县| 白水县| 将乐县| 土默特左旗| 新蔡县| 延川县| 新龙县| 金秀| 神农架林区| 利辛县| SHOW| 饶河县| 增城市| 肥西县| 新化县| 武强县| 万山特区| 鄂伦春自治旗|