張蓉 鄧煒焯 郭增良 高瞻
[摘要] 目的:探索骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞膜片的體外構(gòu)建簡(jiǎn)便方法,并評(píng)估其成骨分化潛能。方法:將兔骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞高密度接種,在成骨誘導(dǎo)條件下連續(xù)培養(yǎng)形成細(xì)胞膜片。通過(guò)組織學(xué)、堿性磷酸酶活性定量檢測(cè)、透射電鏡和掃描電鏡等方法,檢測(cè)細(xì)胞膜片的特性。結(jié)果:高密度連續(xù)培養(yǎng)及成骨誘導(dǎo)后形成骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞膜片。HE染色證實(shí)膜片是一種由多層細(xì)胞和細(xì)胞外基質(zhì)組成的聚集體;茜素紅染色呈陽(yáng)性;堿性磷酸酶定量分析含量較高;掃描電鏡及透射電鏡檢查均見(jiàn)基質(zhì)中大量的礦化結(jié)節(jié)聚集。結(jié)論:通過(guò)體外簡(jiǎn)單的連續(xù)培養(yǎng)和成骨誘導(dǎo)后,可形成具有良好成骨能力的骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞膜片。
[關(guān)鍵詞]間充質(zhì)干細(xì)胞;細(xì)胞膜片;成骨分化
[中圖分類號(hào)]Q813.1[文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼]A[文章編號(hào)]1008-6455(2012)10-0-0
組織工程技術(shù)的出現(xiàn)和興起標(biāo)志著再造時(shí)代的來(lái)臨,傳統(tǒng)的基于細(xì)胞的骨組織工程,是利用大量的種子細(xì)胞種植在支架材料上,通過(guò)活性因子等誘導(dǎo)細(xì)胞分化成骨[1]。但研究發(fā)現(xiàn)該方法存在一些缺點(diǎn),如細(xì)胞利用率低、附著效率差; 細(xì)胞在支架材料上分布不均;常用的蛋白酶消化收集細(xì)胞的方法,會(huì)改變細(xì)胞的表型和生化成分。并且,培養(yǎng)過(guò)程中細(xì)胞分泌的細(xì)胞外基質(zhì)及形成的細(xì)胞間連接蛋白也常被破壞[2]。目前這些問(wèn)題一直未能圓滿解決,已成為限制骨組織工程技術(shù)應(yīng)用于臨床的瓶頸。
1993年日本學(xué)者Okano等[3]首先報(bào)道將聚N-異丙基丙烯酰胺應(yīng)用到細(xì)胞培養(yǎng)上,創(chuàng)新性地發(fā)明了細(xì)胞膜片技術(shù)。應(yīng)用特殊的外源性溫敏聚合物材料提取完整的細(xì)胞聚集體,用于組織工程構(gòu)建。該技術(shù)借助細(xì)胞間的連接以片狀形式脫附,保留了基質(zhì)中細(xì)胞與細(xì)胞間連接、細(xì)胞表面蛋白等,細(xì)胞生物學(xué)行為和功能得以維持[4]。在本實(shí)驗(yàn)中,筆者探討體外構(gòu)建骨髓間充質(zhì)細(xì)胞膜片的培養(yǎng)方法并予以改進(jìn),試圖進(jìn)一步縮短膜片培養(yǎng)時(shí)間,同時(shí)增加膜片厚度,以利于構(gòu)建組織工程骨。
1材料
1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物:3月齡成年新西蘭大白兔,體重2.5~3.0kg,由烏魯木齊總醫(yī)院實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心提供。
1.2 實(shí)驗(yàn)儀器設(shè)備:倒置相差顯微鏡及照相系統(tǒng)(Olympas,日本);酶聯(lián)免疫檢測(cè)儀(BIO-RAD680, 美國(guó));JEM-2000EX透射電鏡 (JEOM Ltd,日本);S-3400N 掃描電鏡 (Hitachi,日本);X-射線能譜分析儀(Oxford,Link ISIS,英國(guó))。
2方法
2.1 兔骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞膜片體外構(gòu)建:按以往所報(bào)道的實(shí)驗(yàn)方法分離培養(yǎng)MSCs[5]。將第2代MSCs,按密度1×106/cm2接種到直徑10cm的培養(yǎng)皿,使用含成骨誘導(dǎo)劑的DMEM/F12培養(yǎng)液(含10%胎牛血清、地塞米松10nM、β-甘油磷酸鈉10mM、抗壞血酸 50mg/L), 置于37℃,5%CO2培養(yǎng)箱孵育,隔日換培養(yǎng)液1次。連續(xù)培養(yǎng)直至皿底形成半透明乳白色薄膜樣物。
2.2 組織學(xué)檢查:4%多聚甲醛固定膜片,分別行HE和茜素紅組織學(xué)染色。光鏡下觀察膜片顯微結(jié)構(gòu)。
2.3 超微結(jié)構(gòu)觀察:同時(shí)選取部分膜片,以3% 戊二醛固定,分別行透射電鏡觀察及掃描電鏡觀察標(biāo)本表面的微細(xì)形貌。并選擇礦化結(jié)節(jié)中心點(diǎn)檢測(cè),通過(guò)X-射線能譜分析儀了解礦化結(jié)節(jié)表面的元素組成。
2.4 堿性磷酸酶活性定量測(cè)定:細(xì)胞膜片加入裂解液(0.2% TritonX-100),充分裂解后離心,取上清與磷酸硝基苯基磷酸鹽37℃反應(yīng)30 min,酶聯(lián)檢測(cè)儀(405 nm波長(zhǎng))測(cè)光吸收值,行ALP活性定量檢測(cè)。
3結(jié)果
3.1 膜片大體觀察:MSCs高密度接種后體外培養(yǎng)5天左右,形成薄膜樣物質(zhì),并逐漸增厚,12~14天,所獲膜片具備一定的彈性和較好的機(jī)械性能,呈現(xiàn)半透明乳白色(如圖1)。小心用細(xì)胞刮刀沿培養(yǎng)皿底刮擦,將膜狀物與皿底分離,可用眼科鑷將其完整夾持起來(lái),進(jìn)行卷曲或折疊等操作。
3.2顯微結(jié)構(gòu)觀察:MSCs增殖旺盛,3天后呈復(fù)層生長(zhǎng),逐漸由梭形變?yōu)榘w較小的立方形,并出現(xiàn)多角形成骨樣細(xì)胞,胞質(zhì)顏色變深。繼續(xù)誘導(dǎo)后,胞外基質(zhì)分泌逐漸增多,鈣鹽不斷沉積,14天左右形成不透光礦化結(jié)節(jié),見(jiàn)圖2。
3.3 組織學(xué)觀察:HE染色顯示,膜片是由12~15層細(xì)胞及細(xì)胞外基質(zhì)組成的聚集體(圖3A)。茜素紅染色見(jiàn)細(xì)胞外基質(zhì)中沉積有多個(gè)大小不等的鈣化結(jié)節(jié)(圖3B),表明膜片具有成骨能力。
3.4 超微結(jié)構(gòu)觀察:TEM觀察膜片兩面均有細(xì)胞,排列成多層結(jié)構(gòu)。高倍鏡下可見(jiàn)粗面內(nèi)質(zhì)網(wǎng)及膠原纖維豐富(圖4),說(shuō)明合成和分泌蛋白質(zhì)功能旺盛。細(xì)胞外基質(zhì)內(nèi)大量針狀鈣鹽結(jié)晶沉積,部分為局灶性的。SEM見(jiàn)成骨誘導(dǎo)分化的膜片中細(xì)胞被自己所分泌的細(xì)胞外基質(zhì)包埋,基質(zhì)中見(jiàn)大量礦化結(jié)節(jié)聚集(圖5)。礦化結(jié)節(jié)X射線能譜分析結(jié)果顯示有鈣、磷、碳、氧、鈉、鎂六種元素構(gòu)成,鈣、磷兩種元素的重量構(gòu)成分別為(10.09 ± 0.01)% 和(4.53 ± 0.01)%,比值為2.23(圖6A)。
3.5 堿性磷酸酶活性定量檢測(cè):結(jié)果表明,膜片成骨誘導(dǎo)分化后ALP活性隨著時(shí)間延長(zhǎng)而穩(wěn)步增加,至第14天ALP值達(dá)到峰值, 見(jiàn)圖6B。
4討論
目前利用細(xì)胞膜片技術(shù),已成功構(gòu)建出角膜、皮膚、肝臟、心肌、血管等多種軟組織[6]。細(xì)胞膜片技術(shù)的優(yōu)點(diǎn)在于:①種子細(xì)胞利用效率高,體外擴(kuò)增的細(xì)胞幾乎可全部被用于組織構(gòu)建;②細(xì)胞與細(xì)胞外基質(zhì)復(fù)合體可直接用于組織構(gòu)建,通過(guò)疊層實(shí)現(xiàn)三維構(gòu)建,可避免使用外源性支架材料伴隨的一些反應(yīng),更具有良好的生物相容性;③保留了細(xì)胞-細(xì)胞間、細(xì)胞-基質(zhì)間連接和細(xì)胞表面蛋白等。
近期國(guó)內(nèi)也有將骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞細(xì)胞膜片應(yīng)用于骨組織工程的研究報(bào)道[7-8],但該技術(shù)需要特殊的溫度敏感性培養(yǎng)皿和提取設(shè)備,通過(guò)溫度變化,20min左右細(xì)胞與細(xì)胞外基質(zhì)一起脫落形成完整的細(xì)胞片層。馬東洋[9]等實(shí)驗(yàn)所構(gòu)建的骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞膜片,采用DMEM培養(yǎng)基,膜片厚度僅100 μm 左右。Sonja[10]研究發(fā)現(xiàn),選擇恰當(dāng)?shù)呐囵B(yǎng)基對(duì)于細(xì)胞生長(zhǎng)和增殖非常重要,并證實(shí)了選用DMEM/F12培養(yǎng)基,MSCs增殖率最高。本實(shí)驗(yàn),改進(jìn)了以往細(xì)胞膜片的體外構(gòu)建方法,選擇DMEM/F12培養(yǎng)基促進(jìn)MSCs增殖,同時(shí)利用抗壞血酸促進(jìn)MSCs擴(kuò)增和分泌大量胞外基質(zhì),縮短了以往的培養(yǎng)時(shí)間, 4~5天即可形成薄層膜片,經(jīng)過(guò)12~14天左右的連續(xù)誘導(dǎo)培養(yǎng),HE染色顯示膜片的多層結(jié)構(gòu)厚度增加到200μm以上,膜片相應(yīng)的彈性和機(jī)械性能也隨之增加,更便于操作。用兩把鑷子就可將細(xì)胞膜片完整提起來(lái),僅僅需要幾秒鐘,不必借助特殊的材料或設(shè)備,簡(jiǎn)捷的可操作性,更利于膜片的進(jìn)一步塑形和三維構(gòu)建。
實(shí)驗(yàn)證實(shí),經(jīng)上述條件培養(yǎng)液孵育的細(xì)胞膜片具有成骨分化的潛能。經(jīng)定量分析膜片中的細(xì)胞具有較高的ALP活性。此外,茜素紅染色表明膜片基質(zhì)中有大量大小不等的鈣化結(jié)節(jié)形成,證實(shí)了MSCs向成骨細(xì)胞分化后期的表型特征。同時(shí)掃描電鏡、透射電鏡下都觀察到礦化的細(xì)胞外基質(zhì)。尤其是,對(duì)膜片中的礦化結(jié)節(jié)進(jìn)行X射線能譜分析結(jié)果顯示有鈣、磷、碳、氧、鈉、鎂六種元素構(gòu)成,鈣、磷兩種元素的重量構(gòu)成分別為(10.09±0.01)% 和(4.53±0.01)%,比值為2.23,接近于天然骨。細(xì)胞膜片工程研究將為骨組織再生重建開(kāi)辟?gòu)V闊的前景。
[參考文獻(xiàn)]
[1]Fujioka N, Morimoto Y, Takeuchi K, et al. Difference in infrared spectra from cultured cells dependent on cell-harvesting method[J].Appl Spectrosc, 2003, 57(2): 241-243.
[2]Hutmacher DW, Schantz JT, Lam CX, et al. State of the art and future directions of scaffold-based bone engineering from a biomaterials perspective[J]. J Tissue Eng Regen Med, 2007, 1(4):245-260.
[3]Okano T, Yamada N, Sakai H, et al. A novel recovery system for cultured cells using plasma-treated polystyrene dishes grafted with poly (N-isopropylacrylamide)[J].J Biomed Mater Res,1993,27(10):1243-1251.
[4]Han D, Sun X, Zhang X, et al. Ectopic osteogenesis by ex vivo gene therapy using beta tricalcium phosphate as a carrier[J]. Connect Tissue Res, 2008,49(5):343-350.
[5]張蓉,沈開(kāi)金,劉彥普.兔骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞的體外培養(yǎng)及多向誘導(dǎo)分化[J].中國(guó)組織工程研究與臨床康復(fù),2010,14(45):8382-8385.
[6]Yang J,Yamato M, Shimizu T, et al. Reconstruction of functional tissues with cell sheet engineering[J]. Biomaterials,2007, 28(34):5033-5043.
[7]高振華,李寧毅,劉鳳芝,等.骨髓基質(zhì)干細(xì)胞片層的制備及其在組織工程骨中應(yīng)用的初步研究[J]. 中華老年口腔醫(yī)學(xué)雜志,2010, 7(4) :235-238.
[8]陳濤,王艷輝,卜令學(xué),等. 應(yīng)用細(xì)胞片層技術(shù)構(gòu)建功能性組織工程骨的動(dòng)物實(shí)驗(yàn)研究[J]. 華西口腔醫(yī)學(xué)雜志,2011,29(4):442-445.
[9]馬東洋,馬敬,姜東紅,等.骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞膜片復(fù)合磷酸三鈣陶瓷構(gòu)建工程化骨組織的體內(nèi)成骨研究[J]. 中國(guó)美容醫(yī)學(xué), 2011,20(3):408-410.
[10]Schrepfer S, Deuse T, Lange C, et al. Simplified protocol to isolate, purify, and culture expand mesenchymal stem cells[J]. Stem Cells Dev,2007, 16(1):105-107.
[收稿日期]2012-06-11 [修回日期]2012-08-17
編輯/張惠娟