• 
    

    
    

      99热精品在线国产_美女午夜性视频免费_国产精品国产高清国产av_av欧美777_自拍偷自拍亚洲精品老妇_亚洲熟女精品中文字幕_www日本黄色视频网_国产精品野战在线观看 ?

      美洲斑潛蠅SS-PCR檢測技術(shù)研究

      2012-10-12 08:14:02張桂芬劉萬學(xué)郭建英呂志創(chuàng)萬方浩申香菊中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院植物保護研究所植物病蟲害生物學(xué)國家重點實驗室北京009農(nóng)業(yè)部外來入侵生物預(yù)防與控制研究中心北京0008北京市順義區(qū)植保植檢站北京000
      生物安全學(xué)報 2012年1期
      關(guān)鍵詞:潛葉蠅斑潛蠅美洲

      張桂芬,劉萬學(xué),郭建英,呂志創(chuàng),萬方浩,申香菊中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院植物保護研究所,植物病蟲害生物學(xué)國家重點實驗室,北京009;農(nóng)業(yè)部外來入侵生物預(yù)防與控制研究中心,北京0008;北京市順義區(qū)植保植檢站,北京000

      美洲斑潛蠅Liriomyza sativae Blanchard,屬雙翅目潛蠅科斑潛蠅屬,是一種世界性檢疫害蟲。歐洲和地中海植物保護組織 (European and Mediterranean Plant Protection Organization,EPPO)將其列為A2 類檢疫性有害生物(http:∥www.eppo.org/);我國農(nóng)業(yè)部于1995年將其列為進境地植物檢疫潛在性害蟲,并制定了美洲斑潛蠅“九五”監(jiān)測治理規(guī)劃(陳文龍和張潤杰,2003)。美洲斑潛蠅為多食性害蟲,寄主廣泛,如僅在北京地區(qū)其寄主已涉及20科130多種植物(雷仲仁和王音,2005)。

      美洲斑潛蠅原產(chǎn)于巴西,20世紀40年代以來陸續(xù)暴發(fā)于佛羅里達、夏威夷等地,70年代后又于大洋洲的一些島嶼和阿拉伯半島南部地區(qū)發(fā)現(xiàn)該蟲。多年來該蟲隨寄主植物及其他介質(zhì)在世界范圍內(nèi)傳播蔓延,現(xiàn)已在40多個國家和地區(qū)嚴重發(fā)生(EPPO/CABI,2011)。由于美洲斑潛蠅具有繁殖能力強,發(fā)育周期短,寄主范圍廣,能傳播多種植物病毒,可在較短時間暴發(fā)成災(zāi)等特點,許多國家將其列為植物檢疫一類危險性害蟲(Deeming,1992;EPPO/CABI,2011;Zitter & Tsai,1980)。我國于1994年初在海南省三亞市蔬菜上首次發(fā)現(xiàn)美洲斑潛蠅,同年底即在華南、華中等地普遍發(fā)生(問錦曾等,1996),1997年蔓延至全國25個省/直轄市/自治區(qū);到目前為止,該蟲已廣泛分布于我國29個省/直轄市/自治區(qū),對瓜果、蔬菜、煙草、棉花等經(jīng)濟作物和花卉造成嚴重危害,已成為我國農(nóng)業(yè)生產(chǎn)上的一個突出問題(陳兵等,2002;范文中和王中武,2005;胡長效和蘇新林,2003;雷仲仁和王音,2005;王軍等,1999)。因此,加強對美洲斑潛蠅的檢疫和監(jiān)測成為維護我國對外貿(mào)易信譽,保障人民健康生活的必要前提。美洲斑潛蠅以卵和幼蟲藏匿在寄主植物組織內(nèi),隨切花、切條、帶葉的瓜、果、豆、菜、其他寄主葉片以及盆景植物進行遠距離傳播;蛹隨寄主植株土壤傳播(EPPO/CABI,2011)。因此,要加強對美洲斑潛蠅的檢疫與監(jiān)測必需建立一套快速準確的分子檢測技術(shù)。

      目前,世界上的斑潛蠅屬昆蟲約有300種,但真正危害農(nóng)作物的僅有23種(Parrella,1987),我國已知有14種(楊龍龍,1995)。斑潛蠅屬害蟲體型較小(如美洲斑潛蠅成蟲體長1.3 ~2.3 mm,卵0.2~0.3 mm),且外部形態(tài)極為相似,卵、幼蟲和蛹更難以從形態(tài)上加以區(qū)分(附錄)。然而,檢疫工作中截獲的斑潛蠅多為卵、幼蟲或蛹。通常斑潛蠅屬害蟲幼期階段多因形態(tài)不穩(wěn)定或特征不明顯而難以鑒定分類,無法及時進行種類識別,為檢疫工作帶來諸多不便(陳萍等,2002;Frick,1952;Sasakawa,1961),而分子生物學(xué)技術(shù)的發(fā)展與應(yīng)用為檢疫害蟲的及時鑒定提供了快捷而準確的途徑。本研究以重要檢疫害蟲美洲斑潛蠅為靶標,以我國菜田常見潛葉蠅類害蟲,包括南美斑潛蠅Liriomyza huidobrensis Blanchard、三葉斑潛蠅Liriomyza trifolli Brugess、蔥斑潛蠅Liriomyza chinensis Kato、豌豆?jié)撊~蠅Phytomyza horticola Goureau等為參照,采用種特異性PCR(speciesspecific PCR,SS-PCR)進行快速鑒定技術(shù)的研究,旨在為有效阻截美洲斑潛蠅的進一步傳播擴散,保障國家貿(mào)易信譽和農(nóng)業(yè)生產(chǎn)安全提供技術(shù)支撐。

      1 材料與方法

      1.1 供試蟲源

      美洲斑潛蠅飼養(yǎng)于中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院植物保護研究所南區(qū)溫室,寄主植物為菜豆Phaseolus vulgaris L.;南美斑潛蠅采自云南省昆明市呈貢縣蔬菜生產(chǎn)基地,寄主植物為芹菜Apium graveolens L.;三葉斑潛蠅由華南農(nóng)業(yè)大學(xué)資源環(huán)境學(xué)院昆蟲生態(tài)研究室提供;蔥斑潛蠅采自市售大蔥Allium fistulosum L.,產(chǎn)地為山東省章丘市;豌豆?jié)撊~蠅采自北京市密云縣河南寨鄉(xiāng),寄主植物為二月蘭Orychophragmus violaceus(L.)Schulz。

      1.2 潛葉蠅總DNA的制備

      參照王莉萍等(2007)和周志湘等(2007)的方法并稍加改動。取美洲斑潛蠅、南美斑潛蠅、三葉斑潛蠅、蔥斑潛蠅和豌豆?jié)撊~蠅各1頭(粒),置于滴有20 μL DNA 提取緩沖液(pH 8.0,0.05 mol Tris-HCl、0.001 mol EDTA、0.02 mol NaCl、1%SDS)的Parafilm膜上,用0.2 mL的PCR管底部作為勻漿器充分研磨勻漿,勻漿液用微量移液器移入1.5 mL離心管;然后用100 μL提取緩沖液分2次沖洗勻漿器,并移入同一離心管,混勻;向管中加入8 μL(20 mg·mL-1)蛋白酶K,充分混勻后,于60℃水浴1.5 h(中途混勻1次);然后沸水浴8 min,加入220 μL氯仿/異戊醇(v∶v=24∶1)抽提液,輕柔混勻數(shù)10次后,冰浴30 min;4 ℃、12000 r·min-1離心 20 min,取上清液,加入440 μL預(yù)冷無水乙醇,輕輕混勻,待出現(xiàn)少量絮狀沉淀后于-20℃放置30 min;4℃、12000 r·min-1離心15 min,棄去上清液。加入400 μL 75%預(yù)冷乙醇洗滌,4 ℃、12000 r·min-1離心 15 min,棄去上清液;然后將離心管倒扣于潔凈濾紙上,自然干燥30 min后每管加入30 μL超純水(其中美洲斑潛蠅的蛹以及1~3齡幼蟲以20 μL超純水復(fù)溶,卵以10 μL超純水復(fù)溶),充分溶解后于-20℃保存?zhèn)溆谩?/p>

      1.3 美洲斑潛蠅SS-PCR引物的設(shè)計

      在GenBank中調(diào)用已知的美洲斑潛蠅線粒體DNA細胞色素氧化酶亞基I基因(mitochondrial DNA cytochrome oxidase I,mtDNA COⅠ)序列(GenBank 登錄號為 EU219613)(Shang et al.,2008),運用 Primer Premier 5軟件將美洲斑潛蠅COⅠ序列與其近緣種南美斑潛蠅、三葉斑潛蠅、蔥斑潛蠅的COⅠ序列進行比較分析,選取美洲斑潛蠅與其他潛葉蠅類昆蟲同源性最低的區(qū)段,根據(jù)該區(qū)段的堿基序列設(shè)計1對美洲斑潛蠅特異性引物LSCZE1/LSCZF1,上游引物堿基序列為TCGAGCAGAATTAGGACAT,下游引物堿基序列為ATTGAAGAAAGTGGAGGGT(上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司協(xié)助合成),引物擴增片段大小為294 bp。

      1.4 SS-PCR引物的種特異性檢驗

      分別以單頭南美斑潛蠅、三葉斑潛蠅、蔥斑潛蠅、豌豆?jié)撊~蠅的DNA為模板,美洲斑潛蠅為陽性對照,檢驗美洲斑潛蠅特異片段擴增引物LSCZE1/LSCZF1的種特異性。PCR反應(yīng)體系為20 μL,其中超純水 11.4 μL、10 × 緩沖液 2.0 μL、10 mmol·L-1dNTP 0.4 μL、5 U·μL-1L Taq 聚合酶 0.2 μL(美國NEB 公司)、20 ng·μL-1上游引物和下游引物各 2.0 μL、模板DNA 2.0 μL。擴增程序:94 ℃預(yù)變性3 min;94 ℃ 60 s,68 ℃ 60 s,72 ℃ 60 s,40 個循環(huán);最后72 ℃延伸5 min。擴增反應(yīng)在ABI-9700 PCR基因擴增儀上運行。取5 μL PCR擴增產(chǎn)物在1.5%(重量)瓊脂糖(amresco)凝膠上以80 V電泳(Bio-Rad Power-Pac Basic)分離 50 min,然后以 GelDoc Universal Hood II型凝膠成像系統(tǒng)(Bio-Rad Laboratories)分析電泳結(jié)果。每個種類分別檢測10頭,并隨機以其他2種型號(Bio-Rad iCycler和 ABI Veriti)的PCR儀進行驗證。

      1.5 SS-PCR引物對不同蟲態(tài)的擴增效果以及最低檢測閾值的測定

      分別以提取的不同性別(雌性成蟲、雄性成蟲)與蟲態(tài)(卵、1~3齡幼蟲和蛹)的美洲斑潛蠅DNA為模板,進行靶標片段擴增效果檢驗,每種性別或蟲態(tài)分別檢測10頭。此外,取單頭雌性成蟲原模板DNA溶液2 μL(即1/15頭成蟲)以2倍濃度遞減梯度稀釋至1/30720頭成蟲DNA,然后以不同濃度的成蟲 DNA 模板(即 1/15、1/30、1/60、1/120、1/240、1/480、1/960、1/1920、1/3840、1/7680、1/15360、1/30720頭成蟲)進行最低檢出閾值的測定,每個濃度共計檢測10頭。

      2 結(jié)果與分析

      2.1 美洲斑潛蠅SS-PCR引物的種特異性檢驗

      以美洲斑潛蠅及其近緣種屬潛葉蠅類昆蟲的DNA為模板,以所設(shè)計的特異性引物LSCZE1/LSCZF1進行PCR擴增。檢測結(jié)果顯示,該引物只對美洲斑潛蠅具有擴增能力,對其他種類的潛葉蠅沒有擴增能力,表明該引物為美洲斑潛蠅的特異性引物(圖1)。

      圖1 SS-PCR引物LSCZE1/LSCZF1對美洲斑潛蠅及其近緣種屬潛葉蠅的PCR擴增結(jié)果Fig.1 Amplification pattern of mitochondrial DNA of L.sativae and its related leafminer species using SS-PCR primers LSCZE1/LSCZF1

      2.2 SS-PCR引物對美洲斑潛蠅不同蟲態(tài)的擴增效果

      以不同性別和蟲態(tài)的美洲斑潛蠅DNA為模板,以SS-PCR引物LSCZE1/LSCZF1進行擴增,結(jié)果顯示,不同性別與蟲態(tài)的美洲斑潛蠅均能穩(wěn)定擴增出294 bp的特異性片段(圖2)。

      2.3 SS-PCR引物對美洲斑潛蠅成蟲的最低檢測閾值

      當將單頭雌性成蟲的DNA模板進行遞減梯度稀釋至1/3840頭時,所有的個體均能擴增出特異性的靶標片段;當稀釋為1/7680頭時,仍有60%的個體可擴增出清晰的條帶(圖3)。

      圖2 SS-PCR引物LSCZE1/LSCZF1對美洲斑潛蠅不同蟲態(tài)和性別的PCR擴增結(jié)果Fig.2 Amplification pattern of mitochondrial DNA from different developmental stages and sexes of L.sativae using SS-PCR primers LSCZE1/LSCZF1

      圖3 SS-PCR引物LSCZE1/LSCZF1對美洲斑潛蠅的最低檢出閾值Fig.3 The detection efficiency for L.sativae,using a dilution series of mitochondrial DNA isolated from a single adult,using the specifically designed SS-PCR primers LSCZE1/LSCZF1

      3 討論

      種類鑒定是害蟲檢疫的首要工作。目前,斑潛蠅屬昆蟲的識別主要依據(jù)成蟲的形態(tài)特征(Sasakawa,1961;Shiao et al.,1991;Spencer,1986);成蟲前各時期(卵、幼蟲、蛹)的鑒定由于形態(tài)不穩(wěn)定或特征不明顯而無法實施(陳萍等,2002;Frick,1952;Sasakawa,1961),通常的做法是將其進行室內(nèi)飼養(yǎng),待羽化后再做鑒定,不僅耗時長,而且常因標本數(shù)量少而使鑒定工作無法完成(邱一中等,2000)。因此,研究開發(fā)快速、簡便、準確且適用于昆蟲不同發(fā)育時期的害蟲鑒定新技術(shù),是有效阻止危險性害蟲進一步傳播擴散,增強檢驗檢疫和檢測監(jiān)測能力的必要前提。

      目前,以分子生物學(xué)技術(shù)進行檢疫性害蟲種類鑒定識別以及檢測監(jiān)測的研究時有報道并逐漸得以推廣應(yīng)用,其中RAPD(random amplification of polymorphic DNA)(邱一中等,2000;??l et al.,2006)、RFLP(restriction fragment length polymorphism)(陳萍等,2002;Scheffer et al.,2001)、多重 PCR(mutiplex PCR)(Miura et al.,2004)以及DNA條形編碼(DNA barcoding)(Scheffer et al.,2006)等技術(shù)均已用于斑潛蠅屬害蟲的鑒定研究,并取得良好成效。但是,RAPD標記技術(shù)對環(huán)境因子的變化較為敏感,擴增產(chǎn)物的可重復(fù)性相對較差,結(jié)果的可靠性低,因此目前已較少使用;RFLP技術(shù)由于所需DNA量大,步驟多,周期長,而且制備探針及檢測中要用到放射性同位素,雖可利用非放射性同位素標記方法代替,但成本高,成功率低,因此影響了其推廣使用。mtDNA COⅠ基因為多拷貝,母系遺傳基因,既具有相對的保守性又有足夠的變異性,進化速率比核DNA快,很少存在插入和缺失,檢測靈敏度高,適用于種間鑒別(Hoelzel,1991;Hoy,1994)?;?COⅠ基因的DNA條形編碼技術(shù)盡管需要經(jīng)過產(chǎn)物回收、純化、測序以及序列比對等步驟,但目前已成為物種鑒定的新方法。SS-PCR技術(shù)由COⅠ標記技術(shù)轉(zhuǎn)化而來,具有重現(xiàn)性強、譜帶單一等優(yōu)點,適宜于大規(guī)??焖贆z測分析。

      本研究根據(jù)已知的美洲斑潛蠅mtDNA COⅠ基因序列,設(shè)計美洲斑潛蠅特異性引物1對,并通過SS-PCR技術(shù)證實該引物只對美洲斑潛蠅mtDNA具有擴增能力,對同域發(fā)生的其他種類的潛葉蠅類害蟲,如南美斑潛蠅、三葉斑潛蠅、蔥斑潛蠅、豌豆?jié)撊~蠅等沒有擴增能力;該技術(shù)體系不僅對美洲斑潛蠅的成蟲具有良好的擴增效果,而且對單頭1~3齡幼蟲、蛹以及單粒卵也具有同樣的擴增效果;同時,該技術(shù)體系還具有較強的靈敏性,其最低檢出閾值為1/3840頭成蟲;對靶標序列的測序及Gen-Bank比對結(jié)果顯示,該片段與美洲斑潛蠅的同源性為 100%(Shang et al.,2008;Yang et al.,2011),而與其他雙翅目昆蟲的同源性均低于96%(http:∥blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi)。此外,SS-PCR 分析技術(shù)操作簡便快捷,縮短了通關(guān)時間,提高了工作效率。因此,該技術(shù)體系可以用于美洲斑潛蠅的檢測鑒定工作,并在害蟲檢疫檢驗與檢測監(jiān)測中具有重要應(yīng)用價值。然而,由于我國菜田常見的潛葉蠅類害蟲種類較多,本研究中SS-PCR引物的特異性仍有待進一步驗證。

      致謝:北京城市學(xué)院生物技術(shù)專業(yè)的袁波同學(xué)和長江大學(xué)農(nóng)學(xué)院植物保護專業(yè)的陳婷婷同學(xué)協(xié)助完成部分試驗,特表感謝!

      陳兵,趙云鮮,康樂.2002.外來斑潛蠅入侵和適應(yīng)機理及管理對策.動物學(xué)研究,23(2):155-160.

      陳萍,溫碩洋,曾玲.2002.PCR-RFLP技術(shù)應(yīng)用于鑒定美洲斑潛蠅和番茄斑潛蠅的初步研究.武夷科學(xué),18(1):60-64.

      陳文龍,張潤杰.2003.美洲斑潛蠅生物學(xué)特性研究.中山大學(xué)學(xué)報:自然科學(xué)版,42(6):91-92.

      范文中,王中武.2005.美洲斑潛蠅的發(fā)生及防治.吉林農(nóng)業(yè)科技學(xué)院學(xué)報,14(4):11-13.

      胡長效,蘇新林.2003.我國美洲斑潛蠅發(fā)生及防治研究進展.江西農(nóng)業(yè)學(xué)報,15(1):48-54.

      雷仲仁,王音.2005.美洲斑潛蠅∥萬方浩,鄭小波,郭建英.重要農(nóng)林外來入侵物種的生物學(xué)與控制.北京:科學(xué)出版社,177-205.

      邱一中,吳文哲,蕭旭峰,石正人.2000.RAPD-PCR在六種斑潛蠅(Liriomyza spp.)(雙翅目:潛蠅科)快速鑒定技術(shù)之應(yīng)用.中華昆蟲,20(4):293-309.

      王軍,石寶才,宮亞軍,廖度,宋婧,路虹.1999.美洲斑潛蠅寄主植物調(diào)查名錄.北京農(nóng)業(yè)科學(xué),17(1):37-39.

      王莉萍,杜予州,何婭婷,陸亞娟,陸自強.2007.不同地理種群美洲斑潛蠅及近緣種的rDNA-ITS1序列分析和比較.昆蟲學(xué)報,50(6):597-603.

      問錦曾,王音,雷仲仁.1996.美洲斑潛蠅中國新紀錄.昆蟲分類學(xué)報,18(4):311-312.

      楊龍龍.1995.對斑潛蠅屬中檢疫性害蟲的研究.植物檢疫,9(1):1-5.

      周志湘,萬方浩,張桂芬,陳斌.2007.煙粉虱基因組DNA快速提取方法.植物保護,33(5):131-133.

      ??l B,Tongu? A,?zgül O,Civelek H S and Kaya B.2006.The use of RAPD-PCR analysis in characterization of Liriomyza trifolii(Burgess,1880),Liriomyza congesta(Becker 1903),Agromyza apfelbecki Strobl,1902 and Chromatomyia horticola(Goureau,1851)species collected from Turkey.Turkiye Entomoloji Dergisi,30(4):243-253.

      Deeming J C.1992.Liriomyza sativae Blanchard(Diptera:Agromyzidae)established in the old world.Tropical Pest Management,38(2):218-219.

      EPPO/CABI.2011.Liriomyza sativae.Data Sheets on Quarantine Pests.http:∥www.eppo.org/QUARANTINE/listA2.htm(2011-10-10).

      Frick K E.1952.A generic revision of the family Agromyzidae(Diptera)with a catalogue of New World species.University of California Publications in Entomology,8:339-452.

      Hoelzel A R.1991.Analysis of regional mitochondrial DNA variation in the killer whale:implications for conservation∥Hoelzel A R.Genetic Ecology of Whales and Dolphins.Report to the International Whaling Commission.UK:Cambridge,225-233.

      Hoy M A.1994.Insect Molecular Genetics:An Introduction to Principles and Applications.San Diego,California:Academic Press.

      Miura K,Tagami Y,Ohtaishi M and Iwasaki A.2004.Application of molecular techniques to distinguish Liriomyza trifolii from L.sativae(Diptera:Agromyzidae)on tomato cultivation in Japan.Journal of Economic Entomology,97(3):964-969.

      Parrella M P.1987.Biology of Liriomyza.Annual Review of Entomology,32:201-224.

      Sasakawa M.1961.A study of the Japanese Agromyzidae(Diptera),Part 2.Pacific Insects,3:307-472.

      Scheffer S J,Lewis M L and Joshi R C.2006.DNA barcoding applied to invasive leafminers(Diptera:Agromyzidae)in the Philippines.Annals of the Entomological Society of America,99(2):204-210.

      Scheffer S J,Wijesekara A,Visser D and Hallett R H.2001.Polymerase chain reaction-restriction fragment-length polymorphism method to distinguish Liriomyza huidobrensis from L.langei(Diptera:Agromyzidae)applied to three recent leafminer invasions.Journal of Economic Entomology,94(5):1177-1182.

      Shang H,Zhao Y,Cui X,Li H,Zhou J and Huang T.2008.Polymerase chain reaction-restriction fragment length polymorphism assays to distinguish Liriomyza trifolii(Diptera:Agromyzidae)from associated species in China.http:∥www.ncbi.nlm.nih.gov/protein/163867295(2011-11-02).

      Shiao S F,Lin F J and Wu W J.1991.Redescription of four Liriomyza species(Diptera:Agromyzidae)from Taiwan.Chinese Journal of Entomology,11:65-74.

      Spencer K A.1986.Agromyzidae(Diptera)from Thailand:new species,revisionary notes and new records.Proceedings of the Indian Academy of Sciences,95:487-507.

      Yang F,Du Y Z,Wang L P,Cao J M and Yu W W.2011.The complete mitochondrial genome of the leafminer Liriomyza sativae(Diptera:Agromyzidae):great difference in the A+T-rich region compared to Liriomyza trifolii.Gene,485(1):7-15.

      Zitter T A and Tsai J H.1980.Flies∥Harris K F and Maramorosch K.Vectors of Plant Pathogens.New York,USA:Academic Press,165-176.

      猜你喜歡
      潛葉蠅斑潛蠅美洲
      2020年天津地區(qū)水稻潛葉蠅重發(fā)原因及防控措施
      安圖水稻潛葉蠅易發(fā)生氣象條件及噴藥氣象適宜度模型
      美洲野牛當寵物
      美洲動物
      不同誘捕裝置對美洲斑潛蠅誘捕效果比較
      美洲大蠊化學(xué)成分的研究
      中成藥(2018年2期)2018-05-09 07:19:51
      水稻潛葉蠅綜合防治技術(shù)
      溫室菜豆生產(chǎn)中斑潛蠅的綜合防治
      吉林蔬菜(2015年8期)2015-05-30 10:48:04
      美洲斑潛蠅識別與防治口訣
      長江蔬菜(2015年3期)2015-03-11 15:10:33
      誰發(fā)現(xiàn)了美洲
      新津县| 炉霍县| 罗源县| 崇仁县| 黄龙县| 界首市| 桃园市| 望都县| 息烽县| 阿勒泰市| 柘荣县| 黄陵县| 阿鲁科尔沁旗| 城步| 山西省| 桂平市| 辛集市| 汾阳市| 清苑县| 雅安市| 正镶白旗| 云南省| 芮城县| 东辽县| 贵德县| 西安市| 南宫市| 义乌市| 苍溪县| 大方县| 闵行区| 新津县| 盖州市| 呼图壁县| 磐安县| 吴忠市| 安吉县| 治多县| 汽车| 瑞安市| 滨州市|