劉振平,陳祥貴*,彭海燕,楊文宇,何宇新,楊 瀟,李玉鋒
(西華大學生物工程學院,食品生物技術四川省高校重點實驗室,四川 成都 610039)
反相高效液相色譜法測定石榴籽中鞣花酸的含量
劉振平,陳祥貴*,彭海燕,楊文宇,何宇新,楊 瀟,李玉鋒
(西華大學生物工程學院,食品生物技術四川省高校重點實驗室,四川 成都 610039)
目的:建立檢測石榴籽中鞣花酸的含量測定方法。方法:采用反相高效液相色譜法,Arcus EP-C18(250mm×4.6mm,5μm)色譜柱,以甲醇-0.1% TFA溶液為流動相梯度洗脫,流速1.0mL/min,檢測波長254nm。結果:鞣花酸0.004~0.064μg之間線性關系良好,平均加樣回收率為100.49%。結論:本方法精密可靠,可作為檢測石榴籽中鞣花酸含量的方法。
石榴籽;鞣花酸;反相高效液相色譜法
石榴(Punica granatumL.)在我國多個地區(qū)廣泛種植,是一種藥食兩用的植物資源。石榴各部位含有多種功能性成分,具有廣泛的藥理活性。石榴籽作為石榴的重要部位,其含的多酚是一種強的抗氧化劑,國內外大量的研究表明石榴鞣質在預防和治療心腦血管疾病、腫瘤、糖尿病等方面具有顯著效果[1]。近幾年來,“多酚”類保健品在保健品行業(yè)越發(fā)受到人們關注[2],石榴籽含有豐富的多酚類成分,有研究表明石榴籽多酚提取物的抗氧化作用強于VE[3],因此對其保健價值的開發(fā)也具有十分重要的意義。目前大多數研究和實踐中主要測定石榴籽總多酚,少有對特異性和特征性成分進行測定,尚未見到檢測石榴籽中特定酚類成分的報道。本實驗采用反相高效液相色譜法(reverse phase high-performance liquid chromatography,RP-HPLC),建立檢測石榴籽中鞣花酸(ellagic acid)的方法。
1.1 材料與試劑
新鮮石榴,產地四川西昌市;鞣花酸對照品(純度≥98%) 山東中藥化學標準品工程技術研究中心;甲醇為色譜純;其他試劑均為分析純;所用水均為Milli-Q超純水。
1.2 儀器與設備
LC-20AB高效液相色譜系統(SPD-M20A紫外檢測器)日本島津公司;Mnli-Q Biocel超純水系統美國 Millipore公司;JJ1004小型超聲波清洗器 東莞市嘉勁機械有限公司;BS 200S萬分之一電子天平 北京賽多利斯儀器系統有限公司。
1.3 方法
1.3.1 色譜條件
色譜柱:Arcus EP- C18(250mm×4.6mm,5μm);流動相:甲醇(A),0.1%三氟乙酸(TFA)溶液(B),梯度洗脫條件:0~10min,B 95%~85%;10~16min,B 85%;16~16.5min,B 85%~60%;16.5~36.5min,B 60%;36.5~37min,B 60%~95%;37~45min,B 95%;柱溫:35℃;流速:1.0mL/min;進樣量:10μL;檢測波長:254nm。在此色譜條件下,鞣花酸特征峰峰型良好,其色譜圖如圖1所示。
圖1 鞣花酸對照品高效液相色譜圖Fig.1 HPLC chromatogram of ellagic acid standard
1.3.2 對照品溶液的制備
精密稱取鞣花酸對照品適量溶于甲醇,制成40μg/mL的溶液,取上述對照品溶液100μL稀釋至1mL作為對照品溶液,其中鞣花酸質量濃度為4μg/mL,備用。
1.3.3 待測樣品的提取
將新鮮石榴去皮去汁,收集石榴籽,常溫條件下干燥。將干燥的石榴籽粉碎,過60目篩,參考文獻[4]提取方法:取石榴籽粉末2 g,加入甲醇、乙醇、丙酮和水各10mL超聲提取30min;取上清液10000r/min離心3min后再取上清液,備用。
2.1 線性關系考察
取1.3.2節(jié)制備的對照品溶液分別進樣1、2、4、6、8、1 2、1 6μL。以進樣量/μg為橫坐標,峰面積(A)為縱坐標繪制標準曲線,得線性回歸方程分別為:y=11252.7x-10821.7,r=0.9995;鞣花酸進樣量在0.004~0.064μg之間與峰面積呈良好的線性關系。
2.2 精密度實驗
連續(xù)進樣樣品溶液5次,每次進樣量為10μL,得鞣花酸的峰面積的RSD為2.398%,說明儀器精密度良好。
2.3 穩(wěn)定性實驗
取樣品溶液按上述色譜條件分別在(0、3、6、9、16)h進樣,進樣量為10μL,計算得鞣花酸的峰面積的RSD為1.352%,說明樣品在16h內穩(wěn)定。
2.4 重復性實驗
取石榴籽粉末5份按1.3.3節(jié)方法平行制取供試品溶液并測定,鞣花酸峰面積的RSD為0.845%,重復性良好。
2.5 回收率實驗
精密稱取適量鞣花酸對照品,取已知質量濃度(含鞣花酸36.00μg/g)的供試品6份,加入適量對照品。按照1.3.1節(jié)方法測定,計算鞣花酸的回收率為100.49%,RSD為2.816%。
2.6 樣品含量測定
按照1.3.3節(jié)方法提取后,進樣,色譜圖如圖2所示。結果表明,鞣花酸能很好地與其他成分分離,分離度大于1.5,鞣花酸的含量為36.82μg/g。
圖2 樣品高效液相色譜圖Fig.2 HPLC analysis of the extract from pomegranate seeds
圖3 石榴皮鞣素、安石榴苷、鞣花酸對照品高效液相色譜圖Fig.3 HPLC chromatogram of a mixture of punicalin, punicalagin and ellagic acid standard samples at a ratio of 1:3:1
多酚類成分是石榴藥用及保健價值的重要物質基礎,一般認為以鞣花酸為代表。因此,相對于其他多酚類成分,鞣花酸的藥理學、提取和檢測方法的研究報道要多得多。研究表明,眾多多酚類成分中,人口服后只有鞣花酸可以直接被人體吸收利用[5]。已有多篇文獻報道了檢測石榴皮中鞣花酸的高效液相色譜法和高效毛細管電泳法[6-7]。Jimenez等[8]通過研究認為以安石榴苷是石榴皮多酚類成分的主體,其含量遠高于鞣花酸和石榴皮鞣素,但是,由于石榴部位的不同各多酚類成分的含量可能具有較大的變化。對石榴籽中總多酚含量的測定[9]已有報道,但尚未見到關于石榴籽中特定多酚類成分檢測的報道。因此,本實驗建立的檢測石榴籽中鞣花酸的定量方法對石榴籽的開發(fā)及質量評價具有一定的參考意義。結果表明,石榴籽中鞣花酸的含量約為3.6%。如圖2、3所示,樣品中的石榴皮鞣素和安石榴苷在與對照品相同的保留時間處高效液相色譜分析系統未能檢測到石榴皮鞣素和安石榴苷的特征峰,由此可以表明,石榴籽中石榴皮鞣素和安石榴苷的含量遠低于鞣花酸或者石榴籽中根本不含有石榴皮鞣素和安石榴苷。因此,可以繼續(xù)從探索石榴籽中是否含有石榴皮鞣素和安石榴苷甚至更多其他多酚類成分及其定量方法上做進一步研究。
流動相的選擇是建立HPLC方法的關鍵。石榴籽樣品中成分復雜,與待檢成分性質相似者較多,這些特點都給本檢測方法的建立帶來了挑戰(zhàn)。參考多種石榴多酚類成分檢測方法,如李海霞等[10]檢測石榴皮中安石榴苷的方法等。最后采用Zhou Hongtao等[11]報道的關于對石榴皮中石榴皮鞣素的分離與純化以及Lu Jingjing[12]等報道的對石榴皮中安石榴苷的分離與純化方法中流動相甲醇-三氟乙酸(TFA)(0.1%),通過優(yōu)化調整,建立了能很好的將待檢測成分分離的色譜條件。
[1]JURENKA J S. Therapeutic applications of pomegranate (Punica granatumL.): a review[J]. Altern Med Rev, 2008, 13(2): 128-144.
[2]齊典, 金哲雄. 植物多酚在保健食品方面的應用[J]. 黑龍江醫(yī)藥, 2006(2): 120-123.
[3]趙國建, 李桂峰, 董周永, 等. 石榴籽中多酚的提取及其抗氧化作用研究[J]. 西北植物學報, 2008, 28(12): 2532-2537.
[4]LI Yunfeng, GUO Changjiang, YANG Jijun, et al. Evaluation of antioxidant properties of pomegranate peel extract in comparison with pomegranate pulp extract[J]. Food Chemistry, 2006, 96(2): 254-260.
[5]CERDAA B, PERIAGO P, ESPIAN J C, et al. Identification of urolithin A as a metabolite produced by human colon microflora from ellagic acid and related compounds[J]. J Agric Food Chem, 2005, 53(14): 5571-5576.
[6]周本宏, 吳振華, 劉春, 等. 張杰高效液相色譜法測定石榴皮中鞣花酸的含量[J]. 廣東藥學院學報, 2005, 21(6): 693-694.
[7]周本宏, 吳振華, 李小軍, 等. 高效毛細管電泳法測定石榴皮中鞣花酸的含量[J]. 中國藥房, 2005, 16(24): 1893-1894.
[8]JIMENEZ DEL RIO M, RAMAZANOV A, SIKORSKI S, et al. A new method of standartization of health-promoting pomegranate fruit (Punica granatum) extract[J]. J Georgian Med News, 2006, 140(12): 70-77.
[9]田樹革, 魏玉龍, 劉宏炳. Folin-Ciocalteu比色法測定石榴不同部位總多酚的含量[J]. 光譜實驗室, 2009, 26(2): 341-344.
[10]李海霞, 張紅玲, 劉延澤, 等. RP-HPLC法測定石榴皮中安石榴苷[J]. 中草藥, 2006, 37(5): 780-782.
[11]ZHOU Honghao, LJiao, YUAN Qipeng. Preparative isolation and purification of punicalin from pomegranate husk by high-speed countercurrent chromatography[J]. Separation and Purification Technology, 2010,72(2): 225-228.
[12]LU Jingjing, WEI Yun, YUAN Qipeng. Preparative isolation and purification of purification from pomegranate husk by high-speed countercurrent chromatography[J]. J Chromatogr B: Analyt Technol Biomed Life Sci, 2007, 857(1): 175-179.
Determination of Ellagic Acid in Pomegranate Seeds by RP-HPLC
LIU Zhen-ping,CHEN Xiang-gui*,PENG Hai-yan,YANG Wen-yu,HE Yu-xin,YANG Xiao,LI Yu-feng
(Key Laboratory of Food Biotechnology of Sichuan Provincial University, School of Bioengineering,Xihua University, Chengdu 610039, China)
Objective: To establish an HPLC method for the determination of ellagic acid in pomegranate seeds. Methods: The chromatographic separation was carried out on an Arcus EP-C18 column (250 mm × 4.6 mm, 5 μm) using a mobile phase composed of a mixture of methanol and 0.1% TFA at a flow rate of 1.0 mL/min by gradient elution. The detection wavelength was 254 nm.Results: The linear range was 0.004-0.064 μg for ellagic acid. The average recovery rate was 100.49%. Conclusion: This method is accurate, reproducible and applicable for quality control of ellagic acid in pomegranate seeds.
pomegranate seedsl;ellagic acid;RP-HPLC
R917
A
1002-6630(2012)18-0220-03
2011-07-12
國家星火計劃項目(2010GA810002);四川省科技攻關項目(05SG011-021)
劉振平(1986—),男,碩士研究生,研究方向為天然產物與營養(yǎng)保健。 E-mail:nping305@126.com
*通信作者:陳祥貴(1967—),男,教授,博士后,研究方向為食品營養(yǎng)與生物技術。E-mail:chenxianggui@tom.com