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      蛹蟲草蛋白質(zhì)的堿法提取工藝

      2012-12-25 05:55:32李晨曦范青生姜興華余宙
      食品與發(fā)酵工業(yè) 2012年12期
      關(guān)鍵詞:堿法堿液蟲草

      李晨曦,范青生,姜興華,余宙

      (南昌大學(xué)中德聯(lián)合研究院,江西南昌,330047)

      蛹蟲草(Cordyceps militaris),又名北冬蟲夏草,蛹草,蛹草菌等,為衛(wèi)生部公布的新資源食品,分類學(xué)上屬于真菌門(Eumycota),子囊菌亞門(Ascomycotinia),核菌綱(Pyrenomycetes),球殼目(Sphaeriales),麥角菌科(Claviciptiaceae),蟲草屬(Cordycps)[1]。研究表明蛹蟲草含有豐富的蛋白質(zhì),有的甚至高達39%,人體必需氨基酸的種類齊全、比例適當,占氨基酸總量的 35.47%;同時含有 VA,VB2,VE,VC,VB1,VD,VB6和菸酸[2],以及含有蟲草素、蟲草多糖、腺苷、甘露醇、麥角甾醇等藥理成分[3]。臨床研究表明,蛹蟲草具有免疫調(diào)節(jié)、抗疲勞、抗腫瘤[4-5]、抗衰老、耐缺氧、降血壓、降血脂、鎮(zhèn)靜催眠、保護心腦組織等藥理作用[6-7]。

      蛹蟲草的粗蛋白含量在30%左右,而對蛹蟲草相關(guān)產(chǎn)品的開發(fā)主要是利用其蟲草素、腺苷等功效成分,對于蛹蟲草蛋白質(zhì)的提取性研究報道及市場上出現(xiàn)的針對蛹蟲草蛋白進行研究開發(fā)的產(chǎn)品卻并不多見,本文采用響應(yīng)曲面法對蛹蟲草蛋白質(zhì)的提取進行了研究。

      1 材料與方法

      1.1 材料與設(shè)備

      蛹蟲草子實體,惠州市鑫福來實業(yè)發(fā)展有限公司;牛血清蛋白標準品,廣東市齊云生物技術(shù)有限公司,純度≥97%;考馬斯亮藍G250,上海強順化學(xué)試劑有限公司;NaOH、乙醇、85%H3PO4、HCl,天津市永大化學(xué)試劑開發(fā)中心,分析純。

      DFT-200型中藥粉碎機,溫嶺市林大機械有限公司;AR2140型分析天平,奧豪斯公司;DK-S 24型電熱恒溫水浴鍋,上海森信實驗儀器有限公司;PB-10型pH計,德國賽多利斯;TL-04型離心機,北京路科順科技發(fā)展有限公司;KDY-9820凱氏定氮儀,廈門精藝興業(yè)公司;普析通用T6新世紀紫外分光光度計。

      1.2 實驗方法

      1.2.1 分析測定

      (1)粗蛋白含量的測定[8]:凱氏定氮法。

      (2)蛋白質(zhì)檢測:Bradford 檢測方法[9]。

      將提取液稀釋10倍,取0.25 mL的提取液,補充水到1 mL,加入5.0 mL考馬斯亮藍G250試劑,搖勻靜置10 min,在紫外分光光度計595 nm波長下測定吸光值,計算蛋白得率:

      蛋白得率/%=(提取液中蛋白質(zhì)的質(zhì)量/原料蛹蟲草的質(zhì)量)×100

      1.2.2 蛹蟲草蛋白提取工藝

      將蛹蟲草子實體粉碎成粉末,過80目篩,用一定量一定濃度NaOH溶液浸提一段時間后,在3 500 r/min條件下離心30 min。取濾液透析后調(diào)節(jié)等電點,在3 000 r/min條件下離心20 min得沉淀。將沉淀進行真空冷凍干燥得到粗蛋白。

      1.2.3 蛋白提取工藝優(yōu)化

      1.2.3.1 單因素實驗

      確定堿液濃度、提取時間、提取溫度、料液比4個因素,每個因素進行6水平梯度處理,以蛋白得率為指標進行單因素實驗研究分析。

      1.2.3.2 Box-Behnken實驗

      在單因素實驗的基礎(chǔ)上,確定三因素三水平的最佳參數(shù)進行響應(yīng)曲面分析。

      2 結(jié)果與討論

      2.1 原料蛹蟲草中粗蛋白的含量

      經(jīng)過凱氏定氮法測定所選取的蛹蟲草中粗蛋白的含量為28.7%。

      2.2 牛血清蛋白標準曲線

      圖1 牛血清蛋白標準曲線

      結(jié)果表明,蛋白吸光度值在15~150 μg/mL濃度內(nèi)線性關(guān)系良好,回歸方程為:Y=5.413 8X+0.036 2,R2=0.997 9。

      經(jīng)過精密度實驗、穩(wěn)定性實驗、重復(fù)性實驗、加樣回收率實驗表明,該方法用于測定蛹蟲草中的蛋白質(zhì)含量可靠、穩(wěn)定。

      2.3 單因素實驗結(jié)果與分析

      2.3.1 NaOH溶液的濃度對蛹蟲草蛋白得率的影響

      圖2 NaOH溶液的濃度對蛹蟲草蛋白得率的影響

      由圖2可知,隨著堿液濃度的不斷增加,蛋白提取的效果增強。當堿液濃度到達0.15 mol/L時,蛋白質(zhì)的得率最大達到8.56%,而當堿性過強時,會導(dǎo)致蛋白質(zhì)變質(zhì)使其得率下降。故在其他工藝條件一定的情況下,綜合考慮產(chǎn)量與質(zhì)量等因素,蛋白質(zhì)得率在NaOH溶液濃度為0.15 mol/L的條件下最佳。因此選取0.1,0.15,0.2 mol/L 3個水平為考察因素。

      2.3.2 浸提時間對蛹蟲草蛋白得率的影響

      由圖3可知,提取時間較短時,蛹蟲草粉不能與NaOH充分接觸,蛋白質(zhì)不易分離,從而提取物少,隨著提取時間的延長,蛋白的提取率會不斷增加。在120分鐘時最大,得率為8.21%。此后隨著時間的增加,對蛋白提取率的影響不顯著,說明蛋白質(zhì)已經(jīng)充分溶出。因此選取90,120,150 min 3個水平為考察因素。

      圖3 浸提時間對蛹蟲草蛋白得率的影響

      2.3.3 料液比對蛹蟲草蛋白得率的影響

      圖4 料液比對蛹蟲草蛋白得率的影響

      由圖4可知,隨著料液比的提高,蛹蟲草的蛋白提取率明顯升高,當料液比達到1∶17.5時,蛋白得率最高為8.66%,因此選取 1∶15,1∶17.5,1∶20 三個水平作為考察因素。

      2.3.4 提取溫度對蛹蟲草蛋白得率的影響

      圖5 提取溫度對蛹蟲草蛋白得率的影響

      由圖5可知,溫度在一定范圍內(nèi)對蛋白質(zhì)的提取有促進作用,當提取溫度低于50℃,蛋白得率隨溫度的升高而升高,而當溫度在50~70℃時,其對蛋白質(zhì)的提取率影響不大,50、60、70℃的提取率分別為8.43%、8.56%、8.61%,溫度超過70℃時,蛋白提取率逐漸降低,可能是溫度過高,使溶液的粘度變大,分子的運動速度減慢,阻止蛋白質(zhì)溶解到溶液中,從而使提取率下降。而且,蛋白質(zhì)在長時間熱的影響下易變性,由于疏水基團的暴露和展開,蛋白質(zhì)分子聚集,使蛋白質(zhì)溶解度下降,導(dǎo)致蛋白提取率下降。從工業(yè)生產(chǎn)節(jié)省資源和生產(chǎn)力的角度考慮,固定選取60℃,進行之后的響應(yīng)曲面實驗,不對其進行與其他因素的進一步交叉優(yōu)化實驗。

      2.4 響應(yīng)曲面分析法優(yōu)化提取工藝

      單因素實驗后,選取堿液濃度、料液比、浸提時間3個條件進行Box-Behnken實驗,分別以A、B和C代表,每個自變量的低、中、高試驗水平編碼分別為-1、0、1(見表1)。

      表1 試驗因素水平及編碼

      表2 Box-Behnken試驗設(shè)計以及蛋白得率的實測值與預(yù)測值

      利用Design Expert軟件,通過對表2中的數(shù)據(jù)分析得到蛋白得率試驗數(shù)據(jù)進行多元回歸擬合,獲得蛹蟲草蛋白得率對編碼自變量的二次多項回歸方程:

      蛹蟲草蛋白得率(Y)/%=8.65-0.42A-0.49B-0.11C+0.79AB-1.08AC-0.18BC-2.03A2-0.73B2-0.53C2。

      表3為回歸分析結(jié)果,由該模型的方差顯著性分析可知,本試驗所選用的二次多項模型具有極高的顯著性(PModel<0.000 1),失擬項不顯著,其校正決定系數(shù))為0.984 8,表明有約98.48%的蛋白得率變化能由此模型解釋。相關(guān)系數(shù)(R2)為0.993 4,表明堿法提取蛹蟲草蛋白得率的實測值與預(yù)測值之間具有較好的擬合度,可用于堿法提取蛹蟲草蛋白質(zhì)的分析和預(yù)測。

      表3 蛋白得率回歸方程顯著性檢驗

      回歸方程中各因素的系數(shù)值可以直接反映各試驗因子對指標值的影響程度,F(xiàn)值越大,表明該因素越重要。從表3可以看出,影響堿法提取蛹蟲草蛋白得率主次順序為:料液比>堿液濃度 >浸提時間。

      根據(jù)回歸方程做出響應(yīng)曲面分析圖(圖6~圖8),考察所擬合的圖形的形狀,分析堿液濃度、料液比、浸提時間對蛹蟲草蛋白質(zhì)的提取得率的影響。

      圖6 堿液濃度和料液比交互影響蛹蟲草蛋白得率的曲面圖

      從圖6可以看出,隨著堿液濃度的增大和料液比的提高,蛋白得率也隨之增大,達到一個最高點后,又逐漸減小。從圖7、圖8可以看出,浸提時間和堿濃度以及浸提時間和料液比有著同圖6一樣的趨勢,這也說明所要找的最佳浸提時間、堿液濃度和料液比都在設(shè)定的試驗范圍內(nèi)。圖6~圖8表明,該模型在試驗范圍內(nèi)存在穩(wěn)定點,且該穩(wěn)定點是最大響應(yīng)值。

      圖7 浸提時間和堿液濃度交互影響蛹蟲草蛋白得率的曲面圖

      圖8 浸提時間和料液比交互影響蛹蟲草蛋白得率曲面圖

      分析得到,堿法提取蛹蟲草蛋白質(zhì)的最佳工藝條件為,提取時間128 min,料液比1∶16.2,NaOH 溶液的濃度0.14 mol/L。試驗重復(fù)3次,驗證蛋白質(zhì)的得率為88.92 mg/g與預(yù)測值88.19 mg/g接近。充分驗證了所建模型的正確性。

      3 結(jié)論

      采用堿法提取蛹蟲草蛋白,通過單因素實驗和Box-Behnken中心組合設(shè)計原理,依靠響應(yīng)曲面分析優(yōu)化提取工藝,擬合了浸提時間、料液比和堿液濃度3個因素對蛹蟲草蛋白得率的回歸模型,通過驗證該模型能夠較好預(yù)測蛹蟲草蛋白得率。得到最佳的提取條件,提取時間128 min,料液比1∶16.2,NaOH 溶液的濃度0.14 mol/L,在此條件下實驗得到蛋白得率為88.92 mg/g。

      [1] 吳榮榮.蛹蟲草活性成分分析[J].現(xiàn)代農(nóng)村科技,2010(19):60.

      [2] 王建芳,楊春清.蛹蟲草有效成分及藥理作用研究進展[J].中醫(yī)藥信息,2005(5):30-32.

      [3] 孫洪斌.神奇的蛹蟲草[J].農(nóng)產(chǎn)品加工:創(chuàng)新版,2010(9):17-19.

      [4] 車振明.蛹蟲草復(fù)合運動保健飲料[J].食品工業(yè),2003(2):22-23.

      [5] Ahn Y J,Part S J,Lee S G,et al.Cordycepin:selective growth inhibitor derived from liquid culture of Cordyceps militaris against Clostridium spp[J].J Agric Food Chem,2000 48:2 744-2 748.

      [6] De Julian-Oritze J V,Galvez J,Munoz-Collado CGarcia-Domenech R,et al.Virtual combinatorial syntheses and computational screening of new protein anti-herpes compounds[J].J Med Chem 1999;3 308-3 314.

      [7] 張平.蟲草屬真菌研究進展[J].生物學(xué)雜志,2003,20(6):43-45.

      [8] 張鳳寬.食品分析[M].吉林:吉林科學(xué)技術(shù)出版社,1997.

      [9] 汪家政,范明.蛋白質(zhì)技術(shù)手冊[M].北京:科學(xué)出版社,2000.

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