沈燦章
(湖南農(nóng)業(yè)大學(xué)植物病蟲害生物學(xué)與防控湖南重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,湖南 長沙 410128)
南方水稻黑條矮縮病毒(Southern rice black–streaked dwarf virus,SRBSDV)作為一種新近流行的大范圍爆發(fā)的病毒受到人們廣泛的關(guān)注。有研究[1–5]表明,其病原基因組含10條片段,屬于呼腸孤病毒科(Reoviridae)、斐濟(jì)病毒屬(Fijivirus)。該病害在2001年首次發(fā)現(xiàn),近年來,我國南方以及越南北部的水稻種植區(qū)發(fā)生嚴(yán)重,尤其是2009年暴發(fā)成災(zāi)。到目前為止,中國已有35個(gè)省市以及越南有過該病害發(fā)生的報(bào)道。該病害危害的癥狀與20世紀(jì)60年代和90年代報(bào)道的水稻黑條矮縮病毒有所區(qū)別,其分布和流行區(qū)域相比普通水稻黑條矮縮病更易出現(xiàn)于中國南端。
水稻黑條矮縮病在水稻各生育期均可感染,并且不同生長期都有其典型的癥狀,其癥狀表現(xiàn)為植株矮縮、葉色深綠、葉背及莖稈出現(xiàn)條狀乳白色或深褐色小突起、高位分蘗及莖節(jié)部倒生氣生須根,其中高位分蘗及莖節(jié)部氣生須根倒生這兩點(diǎn)有別于普通水稻黑條矮縮病的癥狀。觀察發(fā)現(xiàn),高位分蘗和有倒生根癥狀的病株進(jìn)行多次重復(fù)的和帶有對照的RT–PCR檢測都是呈現(xiàn)SRBSDV陰性,表現(xiàn)莖稈上白色突起癥狀的病株都呈SRBSDV陽性,由此可見,高位分蘗和倒生根不是SRBSDV的典型癥狀,只有莖上白色突起才是南方水稻黑條矮縮病的獨(dú)特癥狀。由于水稻不同生育期都可以感染SRBSDV,并且可能出現(xiàn)不同病毒病或真菌病害混合侵染的情形,到目前為止還沒有一套完整的癥狀描述標(biāo)準(zhǔn)從癥狀上將SRBSDV與其他病害區(qū)分開來。本實(shí)驗(yàn)室研究顯示,SRBSDV癥狀易與普通黑條矮縮病RBSDV癥狀相混淆,即病株矮縮、病株葉頂端螺旋狀卷曲、病葉僵直扭曲、有不規(guī)則凸起或凹陷、發(fā)病嚴(yán)重的病株不抽穗,但感染SRBSDV的植株一般在莖節(jié)處有倒生根且莖上出現(xiàn)白色燭淚狀突起。另外,感染RBSDV的病株也有表現(xiàn)出類似于水稻黃矮病葉片發(fā)黃、分蘗伸展角度大、株形松散的癥狀。本課題組曾對一些呈現(xiàn)如葉尖旋迭、葉片螺旋、葉片上窗格狀皺縮、整葉螺旋緊裹、葉脈扭曲的癥狀的病株,用SRBSDV特異性專利引物多次重復(fù)下的RT–PCR檢測呈現(xiàn)陽性。而一些表現(xiàn)出SRBSDV癥狀如典型的窗格狀皺縮,有時(shí)并不是由于SRBSDV感染所致,也可能由藥害引起,如多效唑藥害。
周國輝等[3]報(bào)道南方水稻黑條矮縮病可危害水稻(Oryza sativa)、玉米(Zea mays)、薏米(Coix chinensis)、稗草(Echinochloa crusgalli)、白草(Echinochloa crusgalli)和水莎草(Juncellus serotins)和異形莎草(Cyperus difformis)等多種作物與雜草。對采集于湖南省各地發(fā)病田塊附近禾本科作物及雜草的RT–PCR檢測中,發(fā)現(xiàn)SRBSDV可以感染高粱、野燕麥、牛筋草。自然感染該病害的寄主中玉米癥狀比較明顯,如矮縮、葉面皺褶和葉色深綠,而其他寄主癥狀不明顯。與RBSDV主要靠灰飛虱介體傳播不同的是,SRBSDV在自然條件下靠白背飛虱傳播,但室內(nèi)灰飛虱也能以較低的效率傳播,這也是SRBSDV與RBSDV在流行上最顯著的差別所在。也有研究[6–9]證實(shí)南方水稻黑條矮縮病毒不經(jīng)水稻種子傳播,這正好符合斐濟(jì)病毒屬染病植株的韌皮部,不能通過機(jī)械摩擦傳染的特征。目前主要認(rèn)可的傳毒介體為白背飛虱,由于白背飛虱的遷飛性,春季帶毒白背飛虱成為春季的初侵染源,經(jīng)過當(dāng)?shù)卦绲净蚱渌闹髦参锏姆敝常M(jìn)一步危害中晚稻,因此,被帶毒的白背飛虱侵染的水稻是下一代SRBSDV爆發(fā)的侵染源。
目前,SRBSDV的爆發(fā)情況與白背飛虱的流行狀況密切相關(guān),防治條件必須立足于白背飛虱的防治。隨著SRBSDV新的寄主的發(fā)現(xiàn),將能為預(yù)測病害流行和切斷白背飛虱的傳毒鏈,有效控制該病毒病的流行蔓延提供更多依據(jù)。
關(guān)于SRBSDV序列分析主要用于病原的鑒定和株系分類上的比較,以及進(jìn)一步研究該病毒的進(jìn)化和變異。目前已有廣東和海南以及越南的SRBSDV全序列測定,在與斐濟(jì)病毒屬內(nèi)其他病毒成員的全序列對比時(shí)發(fā)現(xiàn),與其親緣關(guān)系最近的是與其核苷酸同一率達(dá)70%以上的水稻黑條矮縮病毒,其次是馬德里約柯托病毒和斐濟(jì)病病毒。在序列比對時(shí)發(fā)現(xiàn),根據(jù)各自基因組片段編碼功能的不同呈現(xiàn)出不同的同一性,與RBSDV相比,S1,S2 和 S10 相對保守,而S5和S6是最不保守的,這也說明了斐濟(jì)病毒科中各條片段是獨(dú)立進(jìn)化的。相對保守的片段功能一般關(guān)系到病毒的復(fù)制和適應(yīng)性,而相對多樣性的片段可能決定了病毒的寄主范圍及致病性。
有研究發(fā)現(xiàn)RBSDV的S6編碼沉默抑制子,也有在分析中發(fā)現(xiàn)S6是基因組片段中最不保守的,牛顏冰等[5]用農(nóng)桿菌介導(dǎo)的瞬時(shí)抑制分析法,證明了SRBSDV的S6編碼一個(gè)沉默抑制子具有抑制基因沉默的作用。利用昆蟲表達(dá)的桿狀病毒在昆蟲細(xì)胞中表達(dá),發(fā)現(xiàn)其形成與病毒侵染時(shí)產(chǎn)生的相類似的微管結(jié)構(gòu),驗(yàn)證了生物信息預(yù)測到其具有自身互作的功能。所以,病毒進(jìn)化上各個(gè)片段的相對獨(dú)立性使得根據(jù)不同地理環(huán)境不同寄主上個(gè)別片段的差異來分析病毒的致病性和寄主的變化的關(guān)系成為可能。
干擾SRBSDV識別的病毒主要是RBSDV,由于SRBSDV與RBSDV在癥狀、寄主范圍和傳播介體以及兩種病毒粒子在形態(tài)結(jié)構(gòu)上具有相似性,使得一般的生物學(xué)和電鏡的觀察鑒定較為困難。
在血清學(xué)檢測上,前人研究[10–12]表明,用原核表達(dá)技術(shù)表達(dá)RBSDV S8和S9的編碼蛋白用Western blot可見到病株上相應(yīng)蛋白,制備RBSDV特異性抗血清用ELISA檢測到病株上的該病毒,為RBSDV的血清學(xué)快速檢測提供了條件。除此之外,還可以將血清學(xué)與PCR檢測的方法結(jié)合起來,如制備RBSDV 外殼蛋白的多克隆抗體建立了Dot–blot ELISA和免疫捕獲RT–PCR等檢測方法。為了增強(qiáng)血清學(xué)反應(yīng)的特異性,用來制備抗血清的免疫原必須盡可能的單一,在RBSDV的血清學(xué)檢測中,因?yàn)槠浜卸鄠€(gè)結(jié)構(gòu)蛋白,用來制備抗血清使得其與多個(gè)結(jié)構(gòu)蛋白反應(yīng),而且由于RBSDV外殼蛋白和表面突起的不穩(wěn)定性,很難提取完整的病毒粒子,所以要獲得高特異性的抗血清,通過原核表達(dá)病毒的特異性蛋白是必須的手段,SRBSDV全基因組序列的測定,對編碼蛋白質(zhì)的序列的獲得與分析為利用單個(gè)高含量且特異性的免疫原而獲得特異性抗血清提供了可能,但目前應(yīng)用于RBSDV上的血清學(xué)檢測技術(shù)由于因抗血清效價(jià)和特異性較低等問題并未廣泛應(yīng)用。
目前,SRBSDV 的檢測方法主要是RT–PCR,周國輝等[3]建立巢式RT–PCR檢測技術(shù)對SRBSDV進(jìn)行檢測,周倩等通過SRBSDV的S10序列設(shè)計(jì)引物能一步法RT–PCR快速檢測SRBSDV,相對減少了實(shí)驗(yàn)步驟,縮短了檢測時(shí)間。運(yùn)用RT–PCR對RBSDV的檢測也是比較常見的方法。季英華等[12]報(bào)道了一種加入3條引物只需一次RT–PCR ,即可實(shí)現(xiàn)對SRBSDV和RBSDV同時(shí)檢測與鑒別的方法?,F(xiàn)有研究報(bào)道顯示,開發(fā)基于YBR Green I的一步法檢測SRBSDV 的方法,其靈敏度較之傳統(tǒng)的RT–PCR方法提高了100倍。利用RT–LAMP技術(shù)能夠從來源于帶毒寄主和介體的提取的最低達(dá)1.2 × 10-6μg的總RNA中檢測出SRBSDV,并且可以區(qū)別于RBSDV,該技術(shù)使用方便,費(fèi)用低靈敏度高,適于運(yùn)用,但操作過程中要克服其環(huán)境中和實(shí)驗(yàn)器材上病毒核酸的污染。
[1]陳聲祥,張巧艷.我國水稻黑條矮縮病和玉米粗縮病研究進(jìn)展[J].植物保護(hù)學(xué)報(bào),2005,32(1):97–103.
[2]Zhou G H,Wen J J,Cai D J,et al.Southern rice black– streaked dwarf virus:A new proposed Fijivirus species in the family Reoviridae [J].Chinese Science Bulletin,2008,53(20):2500–2508.
[3]周國輝,張曙光,鄒壽發(fā),等.水稻新病害南方水稻黑條矮縮病發(fā)生特點(diǎn)及危害趨勢分析[J].植物保護(hù),2010,36(2):144–146
[4]Matsukura K,Towata T,Sakai J,et al.Dynamics of Southern rice black–streaked dwarf virus in rice and implication for virus acquisition[J].Phytopathology,2013,103(5):509–512.
[5]牛顏冰,青玲,王德富,等.植物病毒抑制子抑制RNA沉默的機(jī)制及生物學(xué)應(yīng)用[J].分子植物育種,2009,7(1):137–142.
[6]陳聲祥,張巧艷.我國水稻黑條矮縮病和玉米粗縮病研究進(jìn)展[J].植物保護(hù)學(xué)報(bào),2005,32(1):97–103.
[7]龔祖塤,沈菊英,陳巽禎,等.玉米粗縮病病原的研究[J].生物化學(xué)與生物物理進(jìn)展,1981,13(1):55–60.
[8]周益軍,范永堅(jiān),程兆榜,等.玉米粗縮病的發(fā)生與病原初步鑒定[J].江蘇農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào),1998,14(4):246–248.
[9]吳淑華,王朝輝,范永堅(jiān),等.江蘇省玉米粗縮病病原病毒的RTPCR檢測[J].農(nóng)業(yè)生物技術(shù)學(xué)報(bào),2000,8(4):369–372.
[10]王朝輝,周益軍,范永堅(jiān),等.從單頭灰飛虱中檢測水稻黑條矮縮病毒簡單快速的方法[J].上海交通大學(xué)學(xué)報(bào):農(nóng)業(yè)科學(xué)版,2002,20(4):340–343.
[11]呂永平,雷娟利,金登迪,等.水稻黑條矮縮病毒的RT–PCR檢測[J].浙江農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào),2002,14(2):117–119.
[12]季英華,高瑞珍,張野,等.一種快速同步檢測水稻黑條矮縮病毒和南方水稻黑條矮縮病毒的方法[J].中國水稻科學(xué),2011,25(1):91–94.
湖南農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版)2013年1期