介明沙,張衛(wèi)民,于 斐,玉崧成,吳擁軍*,張洪權(quán)
(1.鄭州大學(xué) 公共衛(wèi)生學(xué)院,河南 鄭州 450001;2.鄭州大學(xué) 化學(xué)與分子工程學(xué)院,河南 鄭州 450001;3.河南天方藥業(yè)有限公司,河南 駐馬店 463002)
伏馬菌素(Fumonisins)是一類主要由串珠鐮刀菌產(chǎn)生的真菌毒素[1],主要存在于玉米、小麥等谷物及其制品中.FB1是伏馬菌素的主要組分,是導(dǎo)致Fumonisins 產(chǎn)生毒性的主要因素,其促癌性和致癌性已得到證實[2].國際癌癥研究中心(IARC)把FB1劃分到2B 組,即人類可能的致癌物[3].目前常用的檢測方法主要有薄層色譜法(TLC)[4],高效液相色譜法(HPLC)[5-6]和酶聯(lián)免疫吸附法(ELISA)[7-8]等;TLC 法應(yīng)用較早,但其操作繁瑣、靈敏度和特異性也較差;儀器檢測靈敏、準確,研究與應(yīng)用較多的是HPLC 法,但其成本高、需要昂貴的設(shè)備、樣品前處理過程復(fù)雜、需要專業(yè)人員操作,推廣使用受到一定限制;ELISA 法快速、靈敏、特異強,檢測生物毒素殘留安全、可靠,其規(guī)?;Y選特點使其更能滿足常規(guī)化檢測的需要[9].但是,目前常用的間接競爭ELISA 試驗存在檢測時間長、步驟繁瑣等缺陷.本研究針對這一問題,通過HRP-FB1的制備和應(yīng)用,建立直接競爭ELISA 檢測方法,目的在于簡化檢測步驟、縮短檢測時間、提高谷物中FB1殘留的檢測水平.
WELLSCAN MK3 酶標儀:Thermo;高效液相色譜儀:安捷倫;C18固相微萃取柱:Agela Technologies;UV-1606 紫外分光光度儀、Irprestige-21 型傅立葉紅外分光光度儀:日本島津;FW-100 型高速萬能粉碎機:北京中興偉業(yè)儀器有限公司;XK96-A型快速混勻器:姜堰市新康醫(yī)療機械有限公司.
用于加標試驗的玉米樣品購自洛陽市某超市(經(jīng)HPLC 檢測不含F(xiàn)B1殘留).
用于HPLC 檢測的玉米樣品取自河南駐馬店、新鄉(xiāng)等地區(qū)糧油公司.
辣根過氧化物酶HRP(RZ>3.0,活性>250 U/mg):ROCHE Inc,SANLAND;FB1單抗(Abcam)、FB1標準品、卵清蛋白(OVA):Sigma 公司;酶標抗原HRPFB1為自制;ELISA 顯色液A、B:河南華美生物公司;其他試劑均為分析純.
取2 mL 0.1 mg/mL 的HRP 溶液逐滴加入到3 mL 1.6×10-3mg/mL 的FB1溶液中,混勻后逐滴加入2.5%的戊二醛溶液1.6 mL,避光攪拌4 h 后向此溶液中加入0.8 mL 1 mol/L 的乙醇胺,室溫溫育15~20 min,將所得溶液裝入透析袋中,用PBS 緩沖溶液(0.01 mol/L,pH7.2)透析3 d.
首先將玉米樣品用高速粉碎機粉碎,過300 目分子篩,然后進行四分法縮分,取5 g 樣品,放入100 mL 的具塞試管中,加入75%的甲醇溶液10 mL,振蕩提取30 min,5 000 r/min 條件下離心15 min,濾紙過濾,保留濾液,用PBS 進行5 倍稀釋,4 ℃保存,供ELISA 檢測所用.
(1)包被:用Tris-HCl 緩沖溶液(pH 9.6,0.1 mol/L)將FB1單抗1∶8 000 稀釋后包被到96 孔酶標板上,每孔200 μL,37 ℃溫育2 h;(2)洗滌:每孔用洗滌液PBST 洗滌2 次,棄去洗滌液,在吸水紙上拍干;(3)封閉:用1%的OVA-PBS 緩沖液封閉,每孔300 μL,37 ℃溫育2 h,洗滌3 次后拍干;(4)競爭性免疫反應(yīng):每孔加入100 μL 的FB1標準品溶液或谷物樣品提取液和100 μL 的HRP-FB1溶液,37 ℃溫育1 h,重復(fù)洗滌過程;(5)顯色反應(yīng):各孔依次加入顯色液A、B 各50 μL,37 ℃避光反應(yīng)20 min;(6)終止反應(yīng):每孔加入50 μL 2 mol/L的H2SO4終止液;(7)吸光度測定:酶標儀在490 nm波長處測定各孔吸光度A(參比吸光度為630 nm).
配制質(zhì)量濃度分別為200、300、400、500、600、800 ng/mL 的FB1標準溶液,以FB1質(zhì)量濃度為橫坐標,F(xiàn)B1標準樣品各濃度孔的吸光度與FB1零標準品孔吸光度的比值(OD/OD0)為縱坐標,繪制標準曲線.
在處理好的空白玉米樣品溶液(HPLC 鑒定)中,分別加入FB1標準品,配制質(zhì)量濃度為200、400、600 ng/mL 的3 個加標樣品溶液,采用本方法進行檢測,每個濃度測定6 次,考察ELISA 法檢測加標玉米樣品的精密度和準確度,并與HPLC 法進行比較.
取C18固相微萃取柱凈化后的陽性樣品溶液適量,應(yīng)用HPLC 進行確證試驗[10].
選取真菌毒素嘔吐毒素(DON)、玉米赤霉烯酮(ZEN)、黃曲霉毒素B1(AFB1),按照ELISA 操作步驟得出相應(yīng)的抑制率,計算交叉反應(yīng)率.
參照文獻[11],選用戊二醛法制備HRP-FB1偶聯(lián)物,分別采用紫外光譜法和紅外光譜法對其進行表征.利用紫外可見光譜比較FB1、HRP、FB1-HRP 的特征吸收峰:FB1在200 nm 附近有最大吸收峰,HRP 在405、265、205 nm 有特征吸收峰;而FB1-HRP 的特征吸收峰為405、265、205 nm,初步推斷偶聯(lián)成功.同時根據(jù)紅外光譜掃描情況可知,F(xiàn)B1-HRP 在3 410~3 460 cm-1范圍內(nèi)具有較強較寬的吸收峰,包括FB1分子N—H 鍵伸展振動產(chǎn)生的3 410 cm-1吸收峰和HRP 分子內(nèi)O—H 鍵伸展振動產(chǎn)生3 462 cm-1吸收峰,并且在1 612 cm-1出現(xiàn)FB1的特征吸收峰,確認偶聯(lián)成功.
按照ELISA 方法測定一系列濃度的標準溶液,根據(jù)測定結(jié)果繪制標準曲線,結(jié)果見圖1.得出標準曲線方程為Y=-0.000 8X+0.978 9,X 為FB1的質(zhì)量濃度,Y 為FB1標準樣品各濃度孔的吸光度與FB1零標準品孔吸光度的比值(OD/OD0),線性范圍在200~800 ng/mL 之間,根據(jù)OD/OD0=1.2 求得檢測限[12]為182.4 ng/mL.以200、400、600 ng/mL3 個加標樣品平行測定6 次,分別做批間變異和批內(nèi)變異試驗,得到批內(nèi)變異系數(shù)為6.4%~8.3%,平均批內(nèi)變異系數(shù)為7.4%;批間變異系數(shù)為6.2%~9.5%,平均批間變異系數(shù)為7.7%,均小于10%;應(yīng)用ELISA 法平行測定6 次,檢測加標樣品中FB1的回收率在85%~105%之間,平均回收率為98.5%.
圖1 ELISA 法測定FB1 的標準曲線
比較ELISA 法與HPLC 法的線性范圍、精密度及回收率,結(jié)果見表1.由表1 可見,ELISA 法回收率較高,其靈敏度、精密度能滿足實際需求.
表1 ELISA 與HPLC 的方法學(xué)比較(n=6)
同時采用ELISA 與HPLC 法檢測陽性樣品,相關(guān)性采用直線相關(guān)和回歸分析,以HPLC 法測得的結(jié)果為橫坐標,以ELISA 法測得的結(jié)果為縱坐標作線性回歸分析.結(jié)果顯示,二者相關(guān)性良好(r=0.999 6),ELISA 法回收率較高.
選取真菌毒素嘔吐毒素(DON)、玉米赤霉烯酮(ZEN)、黃曲霉毒素B1(AFB1),用PBS 配制一系列質(zhì)量濃度的溶液,按照ELISA 標準曲線的操作步驟得到相應(yīng)的抑制率,計算交叉反應(yīng)率(Cross-reactivity,CR),過程如下:以不同濃度的抗原和結(jié)構(gòu)類似抗原物質(zhì)分別求各自IC50,按下列公式計算交叉反應(yīng)率,結(jié)果見表2.
式中:CR 為交叉反應(yīng)率;y 為FB1抗原的IC50;Z 為結(jié)構(gòu)類似抗原的IC50.
表2 ELISA 方法檢測FB1 的特異性
由表2 可知,伏馬菌素FB1單抗對其他真菌毒素?zé)o特異性反應(yīng),說明建立的ELISA 方法測定FB1特異性良好.
從ELISA 與HPLC 方法學(xué)比較數(shù)據(jù)來看,國標方法在靈敏度、精密度、線性范圍上都優(yōu)于ELISA,但是ELISA 方法前處理簡單、省時,而HPLC 前處理極其復(fù)雜,處理過程中待測毒素有一定程度損失,造成回收率偏低.從確證試驗看,二者相關(guān)性良好.ELISA 方法具有實際推廣意義.
綜上所述,本研究采用自制的HRP-FB1建立的dc-ELISA 方法雖在靈敏度和精密度方面較國標方法稍差,但其前處理簡單、檢測時間短,可實現(xiàn)大批量樣品的檢測;相比間接競爭ELISA(idc-ELISA),其檢測速度較快,可以應(yīng)用于檢測玉米等谷物中的FB1含量,其準確、高效、成本低,適于在非實驗室或半實驗室條件下對大批量樣品進行初篩檢測.
[1]Gelderblom W C,Marasas W F,Jaskiewicz K,et al.Cancer promoting potential of different strains of Fusarium moniliforme in a short term cancer initiation promotion assay[J].Carcinogenesis,1988,9(8):1405 -1409.
[2]Gelderblom W C,Cawood M E,Snyman S D,et al.Fumonisin B1dosimetry in relation to can-cer initiation in rat liver[J].Carcinogenesis,1994,15(2):209-214.
[3]Yazdanpanah H,Shephard G S,Marasas W F O,et al.Human dietary exposure to fumonisin B1from Jranian maize harvested during 1998-2000[J].Mycopathologia,2006,161(6):395-401.
[4]Rottinghaus G E,Coatney C E,Minor H C.A rapid,sensitive thin layer chromatography procedure for the detection of fumonisin B1and B2[J].J Vet Diagn Invest,1992,4(3):326-329.
[5]Zinedine A,Brera C,Elakhdari S,et al.Natural occurrence of mycotoxins in cereals and spices commercialized in Morocco[J].Food Control,2006,17:868-874.
[6]Ghali R,Ghorbel H,Hedilli A.Fumonisin determination in tunisian foods and feeds.ELISA and HPLC methods comparison[J].J Agric Food Chem,2009,57(9):3955-3960.
[7]Ildik Barna-Vetr,Erzsbet Szab,Bla Fazekas,et al.Development of a sensitive ELISA for the determination of fumonisin B1in cereals[J].J Agric Food Chem,2000,48(7):2821-2825.
[8]Kulisek E S,Hazebroek J P.Comparison of extraction buffers for the detection of fumonisin B1in corn by immunoassay and high -perfo -mance liquid chromatography[J].J Agric Food Chem,2000,48(1):65-69.
[9]Valtonen P,Karppi J,Nyyss?nen K,et al.Comparison of HPLC method and commercial ELISA assay for asymmetric dimethylarginine(ADMA)determination in human serum[J].J Chromatogr B,2005,828(1-2):97-102.
[10]GB/T 25228—2010,玉米及其制品中伏馬菌素含量的測定免疫親和柱凈化高效液相色譜法和熒光光度法[S].
[11]權(quán)英,詹月華,張根華,等.谷物中伏馬毒素B1化學(xué)發(fā)光酶免疫檢測[J].中國公共衛(wèi)生,2011,27(5):552-553.
[12]陳飛,邵景東.伏馬菌素B1間接競爭ELISA檢測方法的建立和應(yīng)用[J].江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué),2007(6):278-281.
河南工業(yè)大學(xué)學(xué)報(自然科學(xué)版)2013年3期