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      蘆丁稀土釤配合物的自由基清除及抑菌作用

      2013-10-25 10:23:24林建原
      關(guān)鍵詞:蘆丁蒸餾水羥基

      林建原,陸 興

      浙江萬(wàn)里學(xué)院生物與環(huán)境學(xué)院,寧波 315100

      稀土是化學(xué)元素周期表中的鑭系元素以及與鑭系的15個(gè)元素密切相關(guān)的兩個(gè)元素—鈧和釔共17種元素[1]。稀土元素具有特殊的理化性質(zhì),在石油化工、玻璃陶瓷、環(huán)境保護(hù)、醫(yī)藥等方面有廣泛的應(yīng)用[2]。近年來(lái),隨著人們對(duì)稀土元素的深入研究,發(fā)現(xiàn)稀土元素具有特殊的生物學(xué)效應(yīng)[3]。蘆丁是一種黃酮類化合物,在植物體中的根、莖、葉、種子、果實(shí)中廣泛存在[4],例如蕓香科的蕓香草,豆科的槐米,蓼科的蕎麥等都含有蘆?。?],可用于防治腦溢血、視網(wǎng)膜出血、高血壓、急性出血性腎炎,治療風(fēng)濕性頭痛等。目前,國(guó)內(nèi)外學(xué)者對(duì)于蘆丁的抗氧化性和清除自由基活性已有深入研究,但對(duì)蘆丁及其稀土配合物的相關(guān)研究鮮見(jiàn)報(bào)道。本文合成了蘆丁稀土釤配合物,測(cè)定了蘆丁及其配合物清除自由基的能力,同時(shí)通過(guò)對(duì)大腸桿菌、金黃色葡萄球菌的抑菌實(shí)驗(yàn),研究蘆丁及其稀土配合物的抑菌性能。

      1 材料與方法

      1.1 儀器與試劑

      1.1.1 實(shí)驗(yàn)儀器

      F-4500型熒光分光光度計(jì)(日本日立公司);HH-2數(shù)顯恒溫水浴鍋(常州國(guó)華電器有限公司);DZF-6020真空干燥箱(上?;厶﹥x器制造有限公司);SHZ-D(Ⅲ)循環(huán)水式真空泵(上海青浦滬西儀器制造有限公司);UV-3200PCS紫外分光光度計(jì)(上海美普達(dá)儀器有限公司);AL204電子天平(梅特勒-托利多儀器上海有限公司);DL-1電爐(上海錦凱科學(xué)儀器有限公司);TC-15套式恒溫器(新華醫(yī)療器械廠);SW-CJ-ICU無(wú)菌操作臺(tái)潔凈工作臺(tái)(蘇州安泰空氣技術(shù)有限公司);Vertex 70傅立葉紅外光譜儀(德國(guó)Bruker公司);游標(biāo)卡尺。

      1.1.2 試劑及配制

      蘆丁(BR,國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司);氧化鑭(99.99%,阿拉丁);無(wú)水乙醇(AR);濃鹽酸(AR);雙氧水(AR);小牛浸膏(杭州微生物實(shí)際有限公司);蛋白胨(BR,上海展云化工有限公司);NaCl(99.5%);瓊脂(BR,上海展云化工有限公司);無(wú)水 Na2CO3(AR);KBr(AR);苯甲酸鈉(AR,);鄰苯三酚(AR);硫酸亞鐵銨(AR);Tris(三羥甲基氨基甲烷,BR,國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司);EGTA(乙二醇-雙-(2-氨基乙醚)四乙酸,AR);DPPH·(1,1-二苯基-2-三硝基苯肼,96%,阿拉丁),合成的釤蘆丁配合物和蘆丁分別用二甲基亞砜溶解,EGTA用氫氧化鈉溶解,DPPH·用無(wú)水乙醇溶解。

      1.2 試驗(yàn)部分

      1.2.1 蘆丁-釤配合物的合成

      稱取適量氧化釤于一小燒杯中,加雙氧水3~5 mL,逐滴滴加1∶1鹽酸至固體氧化釤全部溶解,在水浴鍋中加熱至基本無(wú)氣泡,將溶液在電爐上蒸干,除去過(guò)量的雙氧水、鹽酸以及多余的水分得到稀土氯化物粉末,蒸去。

      稱取1 mmol蘆丁,加100 mL無(wú)水乙醇,微熱攪拌使蘆丁溶解,向蘆丁乙醇溶液中加入適量的2.0 mmol無(wú)水碳酸鈉,2.2 mmol稀土氯化物粉末,在100~110℃回流4 h,抽濾,經(jīng)無(wú)水乙醇洗滌固體2~3次,放入真空干燥中60℃下干燥至恒重得到棕黃色固體。

      1.2.2 羥基自由基(·OH)清除活性[6]

      在燒杯中依次加入0.4 mL 3.8 mmol/L的EGTA(乙二醇二乙醚二胺四乙酸)、0.2 mL 0.01 mol/L的苯甲酸鈉溶液、3.2 mL的蒸餾水、2 mL 3.8 mmol/L的硫酸亞鐵銨溶液、0.2 mL的雙氧水,快速搖勻并且倒入石英比色皿中,以300 nm為激發(fā)波長(zhǎng),415 nm為發(fā)射波長(zhǎng),立即測(cè)定在此波長(zhǎng)處的熒光強(qiáng)度,繪制動(dòng)力學(xué)曲線,該曲線于0~6 min部分的斜率為k0。

      蘆丁和蘆丁-釤配合物的熒光動(dòng)力學(xué)曲線測(cè)定:分別配制6種不同濃度的蘆丁和蘆丁-釤配合物濃度,按照上述試劑加入順序,蒸餾水加入量依次變?yōu)?.0、2.8、2.6、2.4、2.2、2.0 mL,且在加入雙氧水之前分別加入樣品 0.2、0.4、0.6、0.8、1.0、1.2 mL,用2.2.2同方法測(cè)定該曲線0~6 min的斜率為k。以下列公式計(jì)算蘆丁和蘆丁-釤配合物對(duì)羥基自由基的抑制率:

      研究氧自由基的清除有直接法和間接法[9]。在燒杯中依次加入4 mL的Tris.HCl緩沖液、1.4 mL的蒸餾水、0.6 mL的鄰苯三酚,快速搖勻并且倒入石英比色皿中,以448 nm為激發(fā)波長(zhǎng),500 nm為發(fā)射波長(zhǎng),立即測(cè)定在此波長(zhǎng)的熒光強(qiáng)度,繪制動(dòng)力學(xué)曲線,該曲線0~6 min部分的斜率為k0。

      測(cè)定蘆丁和蘆丁-釤配合物的熒光動(dòng)力學(xué)曲線:分別配制6種不同濃度的蘆丁和蘆丁-釤配合物,用上述同方法測(cè)定,該曲線0~6 min部分的斜率為k。按下列公式計(jì)算蘆丁和蘆丁-釤配合物對(duì)氧自由基的抑制率:

      1.2.4 DPPH·自由基清除活性[6]

      取2.0 mL 0.3 mmol/L的DPPH·自由基,加蒸餾水定容至10 mL。放置30 min,以蒸餾水為空白,測(cè)定517 nm波長(zhǎng)處的吸光度,此為A0,另取12個(gè)比色管,加入2.0 mL的DPPH·自由基和不同量的樣品液,用蒸餾水定容至10 mL,按上述相同方法測(cè)定其吸光度,此為A,按下列公式計(jì)算蘆丁和蘆丁-釤配合物對(duì)DPPH·自由基的抑制率:

      1.2.5 抑菌能力

      1.2.5.1 制備培養(yǎng)基[7]

      稱取蛋白胨10 g,氯化鈉5 g,牛肉膏3 g,瓊脂15~20 g于燒杯中,加入蒸餾水1000 mL用電爐加熱溶解至顏色呈透明,在加熱過(guò)程中不斷用玻璃棒攪拌,用氫氧化鈉或鹽酸調(diào)節(jié)pH至7.2~7.4,倒入錐形瓶中在121℃高壓滅菌鍋中滅菌30 min備用。

      1.2.5.2 接種

      將培養(yǎng)基加入1000 mL錐形瓶中,在121℃滅菌后倒平板放到37℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h,去除染菌的培養(yǎng)基,然后在無(wú)菌室內(nèi)接入大腸桿菌、金黃色葡萄球菌。接種完畢后在37℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h。

      1.2.5.3 抑菌試驗(yàn)

      (1)樣品的制備:將蘆丁用乙醇溶解,配制濃度為2.6 mg/mL的溶液,蘆丁-釤配制成2.5 mg/mL濃度的溶液。

      (2)紙片的制備:剪取直徑約6 mm的紙片在121℃的滅菌鍋中滅菌后,于無(wú)菌室中將紙片分別浸泡于蒸餾水、DMSO溶液,蘆丁、蘆丁-稀土釤中,取出置干燥箱中干燥后保存。

      2 結(jié)果與分析

      2.1 配合物的光譜表征

      2.1.1 紅外光譜分析

      用KBr壓片法測(cè)得蘆丁-釤配合物和蘆丁的紅外特征吸收光譜,見(jiàn)圖1。

      圖1 蘆丁-釤配合物(1)與蘆丁(2)的紅外光譜Fig.1 The IR-VIS spectra of Rutin-Sm complex(1)and rutin(2)

      由表1的主要吸收頻率可知,蘆丁和蘆丁-釤在3378 cm-1處出現(xiàn)的寬峰主要為水及醇、酚羥基的伸縮振動(dòng)吸收峰。由于蘆丁帶有多個(gè)羥基,生成配合物時(shí)對(duì)此峰基本無(wú)影響[8]。蘆丁在1655.36 cm-1處出現(xiàn)的羰基伸縮振動(dòng)吸收峰,在蘆丁-釤配合物中,該峰向低波數(shù)區(qū)位移到1624.51 cm-1處,向低波數(shù)位移了30 cm-1,這說(shuō)明羰基參與了配位反應(yīng)[9],配位作用使C=O鍵減弱,相應(yīng)吸收峰向低波數(shù)位移。蘆丁-釤中苯環(huán)兀鍵共軛體系的C=C鍵伸縮振動(dòng)吸收峰,向低波數(shù)方向位移40 cm-1,是配位反應(yīng)對(duì)苯環(huán)共軛體系的影響所致。蘆丁在1362.31、1296.21 cm-1處的兩個(gè)譜峰是酚羥基的C-O鍵伸縮振動(dòng)與O-H鍵面內(nèi)變形振動(dòng)偶合所致。配合物中這兩個(gè)峰均出現(xiàn)在1355.22、1273.00 cm-1處,均向低波數(shù)方向位移分別為7.23 cm-1,說(shuō)明酚羥基參與了配位成鍵。配體在1203.99 cm-1到1168.78 cm-1處的吸收峰是醚的C-O-C伸縮振動(dòng)吸收峰,配合物中此峰基本保留在原來(lái)的位置,排除了醚氧原子成鍵的可能。

      表1 蘆丁和蘆丁-釤的主要紅外吸收頻率Table 1 Principal characteristic IR absorption frequency of rutin and Rutin-Sm complex

      2.1.2 紫外吸收光譜分析

      圖2 蘆丁和蘆丁-釤配合物的紫外吸收光譜Fig.2 UV-VIS spectra of rutin and Rutin-Sm complex

      由紫外吸收光譜分析的吸收數(shù)據(jù)可知,在蘆丁-釤中存在桂皮?;捅郊柞;?,因此有兩個(gè)主要的紫外吸收峰Ⅰ和Ⅱ,圖2所示。實(shí)驗(yàn)表明,形成稀土釤-蘆丁配合物后,帶Ⅰ、帶Ⅱ的吸收峰發(fā)生了紅移,兩者比較發(fā)現(xiàn),蘆丁-釤配合物和蘆丁的紫外吸收峰的位置和強(qiáng)度均有改變,表明稀土離子和配體之間確有鍵合作用。

      2.2 清除自由基活性

      2.2.1 清除·OH自由基活性

      按1.2.2方法,采用Fenton反應(yīng)生成羥基自由基,再與苯甲酸反應(yīng),生成的羥基苯甲酸具有較強(qiáng)的熒光效率,可以通過(guò)測(cè)定羥基苯甲酸的生成速率間接測(cè)定羥基自由基的生成速率,其中Fenton反應(yīng)式為:Fe2++H2O2=Fe3++ ·OH+OH-。

      如圖3所示,隨著加入蘆丁和蘆丁-釤濃度的增加,抑制率也隨之增加。蘆丁-釤配合物和蘆丁均具有清除·OH的能力,且配合物的清除能力強(qiáng)于蘆丁。

      圖3 蘆丁及蘆丁釤配合物對(duì)羥基自由基(·OH)的抑制率Fig.3 Scavenging activities of rutin and Rutin-Sm complex on Hydroxyl radicalp

      利用分光光度法測(cè)定鄰苯三酚自氧化產(chǎn)物隨時(shí)間的變化曲線。按1.2.3實(shí)驗(yàn)方法分別測(cè)定蘆丁-釤配合物及蘆丁清除的能力。圖4所示,蘆丁-稀土釤配合物及蘆丁清除氧自由基的能力隨著含量的增大而增大,且配合物清除能力明顯強(qiáng)于蘆丁。

      圖4 蘆丁及蘆丁釤配合物對(duì)超氧自由基)的抑制率Fig.4 Scavenging activities of rutin and Rutin-Sm complex on superoxide anion radical

      2.2.3 清除DPPH·活性

      DPPH·是一種較穩(wěn)定的自由基,在乙醇溶液中顯紫色,在吸收波長(zhǎng)517nm處吸收強(qiáng)度最大。當(dāng)自由基清除劑存在時(shí),DPPH·的單電子配對(duì),DPPH·濃度減小而使其顏色變淺,吸光度也減小。按1.2.4實(shí)驗(yàn)方法分別測(cè)定了蘆丁-釤配合物和蘆丁對(duì)DP PH·自由基的抑制作用,如圖5所示。且配合物清除DPPH·自由基的能力高于蘆丁。

      圖5 蘆丁及蘆丁釤配合物對(duì)DPPH·自由基的消除率Fig.5 Scavenging activities of rutin and Rutin-Sm complex on DPPH·radical

      2.3 抑菌能力分析

      2.3.1 抑菌圈的測(cè)定:在無(wú)菌室中,將培養(yǎng)好的大腸桿菌菌種涂布于培養(yǎng)基表面,然后分別將用蒸餾水、DMSO、蘆丁和蘆丁-釤浸泡過(guò)的濾紙片放入不同的培養(yǎng)基中。在37℃的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)12 h后觀察。金黃色葡萄球菌的操作如同。用游標(biāo)卡尺測(cè)量抑菌圈的大小。

      表2 抑菌圈大小(d=mm)Table 2 Inhibition zone(d=mm)

      由表2可知,蘆丁及蘆丁-稀土釤配合物能抑制大腸桿菌和金黃色葡萄球菌的生長(zhǎng),由抑菌圈直徑可知配合物蘆丁-釤的抑菌活性強(qiáng)于蘆丁。

      2.3.2 最低抑菌濃度的測(cè)定:將濃度為2.6 mg/mL的蘆丁溶液依次稀釋,將溶液用無(wú)菌吸量管取一定量加入培養(yǎng)基中涂勻培養(yǎng)基,用接種環(huán)將配置好的2種菌液分別接種于對(duì)應(yīng)的培養(yǎng)基中放入37℃恒溫箱中培養(yǎng)。蘆丁-釤的操作同上。用肉眼觀察完全沒(méi)有菌落生長(zhǎng)的最低溶液濃度作為最低抑菌濃度(MIC)。

      表3 最低抑菌濃度的抑菌能力Table 3 Antibacterial activity of minimum inhibition concentration

      “-”代表“不長(zhǎng)菌”;“+”代表“長(zhǎng)菌”?!?”means“no bacterium grow”;“+ ”means“have bacterium grow”.

      由表3可知,蘆丁-釤配合物對(duì)大腸桿菌和金黃色葡萄球菌的最低抑菌濃度可達(dá)2.6×10-3mg/mL。在低濃度下所得稀土蘆丁配合物仍然具有明顯的抑菌活性,表明蘆丁-釤的抑菌活性強(qiáng)于蘆丁。

      2.3.3 最低殺菌濃度的測(cè)定:從抑菌實(shí)驗(yàn)“不長(zhǎng)菌”培養(yǎng)基中,取出一定量培養(yǎng)物接種到不含其它樣品的培養(yǎng)基中,涂勻培養(yǎng)基,置于37℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng)12 h。觀察有無(wú)菌落生長(zhǎng),少于5個(gè)菌落的為最低殺菌濃度(MBC)。

      表4 最低殺菌濃度測(cè)定Table 4 Determination of Minimum bactericidal concentration

      根據(jù)抑菌圈大小可以初步確定物質(zhì)的抑菌能力大小,抑菌圈直徑越大表明抑菌活性越高,表4可知蘆丁和蘆丁-釤配合物濃度較高時(shí),具有強(qiáng)抑菌作用。且稀土蘆丁-釤配合物的抑菌效果明顯大于蘆丁,且對(duì)金黃色葡萄球菌抑菌活性強(qiáng)于大腸桿菌的抑菌活性。原因可能是由于蘆丁和配合物與肽鏈和細(xì)胞磷脂上的羧基具有較強(qiáng)的親和力,可以與菌的轉(zhuǎn)移核糖核酸中的磷?;I合,抑制其核酸酶的活性以及功能,使細(xì)菌的生長(zhǎng)受到抑制而達(dá)到抑菌效果;另由于蘆丁和釤形成配合物后,配合物的分子量變大,脂溶性隨之增強(qiáng),同時(shí)對(duì)細(xì)胞膜的穿透力增強(qiáng),使生物體生長(zhǎng)以及代謝需要的關(guān)鍵成分都流失,破壞生物體正常運(yùn)轉(zhuǎn)活動(dòng)[8],蘆丁和蘆丁-釤配合物的抑菌效果就是由于此原因而體現(xiàn)出來(lái)。

      3 結(jié)論

      實(shí)驗(yàn)選用菌種革蘭氏陰性菌(大腸桿菌)、革蘭氏陰性菌(金黃色葡萄球菌)進(jìn)行抑菌實(shí)驗(yàn),實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn),稀土釤蘆丁配合物的抑菌效果隨配合物濃度的增加,抑菌活性顯著增大,最低抑菌濃度可達(dá)2.6×10-3mg/mL。通過(guò)熒光動(dòng)力學(xué)曲線發(fā)現(xiàn)蘆丁和蘆丁-釤配合物對(duì)DPPH·自由基、·OH自由基及O-·2自由基均有一定的清除能力。

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