晏 強(qiáng) 姜 華 眭維國 羅 皓 王?,?梁桂榮 鄒貴勉 陳懷周 鄒和群
在不同腎臟疾病中,包括慢性移植腎失功(CRAD),慢性炎癥反應(yīng)是導(dǎo)致腎單位進(jìn)行性丟失的共同病理過程[1]。在炎癥性腎臟疾病中(包括CRAD),核因子κB(NF-κB)的活化是一個重要的細(xì)胞信號事件,它控制著一系列炎癥介質(zhì)的轉(zhuǎn)錄。目前,已經(jīng)有大量研究表明糖原合成酶激酶 3β(GSK-3β)是 NF-κB 活化必不可少的要素[2,3]。尚無研究顯示GSK-3β和NF-κB在抗體介導(dǎo)的排斥反應(yīng)(ABMR)患者移植腎組織中的表達(dá)情況,因此,本研究主要通過免疫組化方法對ABMR導(dǎo)致CRAD的移植腎組織中GSK-3β、NF-κB的表達(dá)進(jìn)行檢測,并分析它們與腎間質(zhì)纖維化/小管萎縮(IF/TA)分級的關(guān)系,探討其在ABMR引起的CRAD發(fā)病機(jī)制中的作用,為移植腎慢性纖維化的發(fā)生和治療提供一定理論依據(jù)。
臨床資料 收集桂林解放軍第181醫(yī)院2002年01月至2013年04月住院的腎移植受者116例,其中尸體供腎98例,活體供腎8例,供受者腎移植術(shù)前均行乙型及丙型肝炎標(biāo)志物檢查為陰性,且術(shù)后復(fù)查亦均為陰性。術(shù)后出現(xiàn)肌酐爬行升高,反復(fù)蛋白尿定性檢查呈陽性(﹢﹢~﹢﹢﹢﹢),定量檢查均≥0.20 g/24h,予血管緊張素轉(zhuǎn)換酶抑制劑類降壓、活血護(hù)腎等處理,復(fù)查均未好轉(zhuǎn)。行移植腎穿刺活檢術(shù),按照Banff 2009移植腎病理分級診斷標(biāo)準(zhǔn)[4],病理診斷為 ABMR,包括 65 例男性,平均48±11歲;51例女性,平均42±8歲,腎穿時間為腎移植術(shù)后0.3~13.6年,血清肌酐563±137 μmol/L。其中58例接受環(huán)孢素+嗎替麥考酚酯+潑尼松三聯(lián)免疫抑制治療方案,58例接受他克莫司+嗎替麥考酚酯+潑尼松三聯(lián)方案治療。所有供、受者血型相同,抗供者特異性抗體(DSA)檢測陰性,群體反應(yīng)性抗體(PRA)<10%,淋巴細(xì)胞毒交叉配型試驗(CDC)<10%,HLA-A、HLA-B、HLA-Dr位點至少有二個位點相配。對照組為10例正常腎組織(年齡19~53歲)零點穿刺標(biāo)本病理檢查無異常。
病理分級診斷標(biāo)準(zhǔn) 依據(jù)Banff 2009移植腎病理分級診斷標(biāo)準(zhǔn)[4],將移植腎IF/TA的嚴(yán)重程度分為:Ⅰ級輕度間質(zhì)纖維化和腎小管萎縮(<25%的皮質(zhì)受累);Ⅱ級中度間質(zhì)纖維化和腎小管萎縮(26%~50%的皮質(zhì)受累);Ⅲ級重度間質(zhì)纖維化和腎小管萎縮(>50%的皮質(zhì)受累)。
ABMR 診斷標(biāo)準(zhǔn)[4]:C4d 陽性,循環(huán)中存在DSA,慢性組織損傷的形態(tài)學(xué)證據(jù),如腎小球基膜雙軌征和(或)腎小管周圍毛細(xì)血管基膜多層和(或)IF/TA和(或)動脈纖維性內(nèi)膜增厚。
腎小管間質(zhì)炎癥細(xì)胞浸潤程度分度:輕度(少量散在炎癥細(xì)胞浸潤);中度(炎癥細(xì)胞呈局灶性浸潤);重度(大片、彌漫性炎癥細(xì)胞浸潤)。
GSK-3β免疫組化染色 采用EnVision法,石蠟切片3μm,常規(guī)烤片,脫蠟至水,3%過氧化氫清除內(nèi)源性過氧化物酶,GSK-3β經(jīng)微波修復(fù)15 min。滴加一抗(兔抗人GSK-3β多克隆抗體,1∶100稀釋,武漢博士德公司產(chǎn)品,編號BA-0906),4℃過夜,PBS液沖洗,滴加二抗(福州邁新公司提供),37℃溫箱孵育30 min,PBS液沖洗,DAB顯色,蘇木素復(fù)染,脫水,封片。
NF-κB p65免疫組化染色 采用EnVision法,石蠟切片3μm,常規(guī)烤片,脫蠟至水,3%過氧化氫清除內(nèi)源性過氧化物酶,10 mmol/L檸檬酸鈉(pH 6.0)緩沖液修復(fù)抗原,煮沸20 min。滴加一抗(鼠抗人 NF-κB p65 單克隆抗體,1∶100稀釋,Santa Cruz公司產(chǎn)品,編號ZS-8008)。余步驟同前。
RANTES免疫組化染色 采用EnVision法,石蠟切片3μm,常規(guī)烤片,脫蠟至水,3%過氧化氫清除內(nèi)源性過氧化氫酶,RANTES經(jīng)微波修復(fù)15 min,滴加一抗(RANTES兔抗人單克隆抗體,1∶200稀釋,武漢博士德公司產(chǎn)品,編號BA-1383)。余步驟同前。
單核趨化蛋白1(MCP-1)免疫組化染色 采用EnVision法,石蠟切片3μm,常規(guī)烤片,脫蠟至水,3%過氧化氫清除內(nèi)源性過氧化物酶,MCP-1經(jīng)微波修復(fù)15 min。滴加一抗(兔抗人MCP-1單克隆抗體,1∶100稀釋,武漢博士德公司產(chǎn)品,編號 BA-1254)。余步驟同前。
C4d免疫組化染色 采用EnVision法,石蠟切片3μm,常規(guī)烤片,脫蠟至水,3%過氧化氫清除內(nèi)源性過氧化氫酶,C4d經(jīng)微波修復(fù)15 min。一抗為兔抗人C4d多克隆抗體(工作液,Santa Cruz公司,編號ZA-0415),余步驟同前。
對照組 對照組以PBS緩沖液替代一抗作為陰性對照。同時均行 Masson,PASM,IgA,IgG,IgM,C1q,C4c等免疫組化檢測。
結(jié)果評價 組織中C4d陽性標(biāo)準(zhǔn):腎小管周圍50%毛細(xì)血管呈線性沉積。組織標(biāo)本中RANTES、MCP-1及Ⅳ型膠原陽性標(biāo)準(zhǔn):腎小管上皮細(xì)胞及間質(zhì)細(xì)胞胞質(zhì)內(nèi)出現(xiàn)淺黃、棕黃、黃褐色顆粒。
免疫組化染色半定量分析 采用德國Leica(DMR+Q550型)真彩色病理圖像分析系統(tǒng)對染色結(jié)果進(jìn)行半定量分析,隨機(jī)選取10個不連續(xù)(避開腎小球和大血管)的腎小管間質(zhì)視野(×400),每例腎小管總數(shù)>60個。使用ImagePro-Plus 6.0軟件計算平均光密度,取其均值表示該種成分在腎小管和間質(zhì)的相對含量。
統(tǒng)計學(xué)分析 數(shù)據(jù)均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差表示,應(yīng)用SPSS13.0統(tǒng)計軟件分析,計量資料采用 one way ANOVA,兩兩比較用LSD法(t檢驗);兩變量相關(guān)性分析采用Spearman等級相關(guān)分析;不同治療方案中的差異比較用獨立樣本t檢驗。P<0.05為統(tǒng)計學(xué)意義,P<0.01為統(tǒng)計學(xué)差異顯著。
組織學(xué)觀察 腎小球節(jié)段硬化,系膜區(qū)增寬,系膜細(xì)胞及基質(zhì)中~重度增生,節(jié)段囊壁增厚、分層,基膜增厚,基膜呈連環(huán)樣改變和假雙軌征;腎間質(zhì)中度纖維化伴炎癥細(xì)胞浸潤,灶性單核細(xì)胞聚集;腎小管萎縮。
不符合急性排斥反應(yīng)、免疫抑制劑慢性腎毒性損傷、慢性腎小球腎炎等其他類型腎臟病病理改變。
C4d的表達(dá) 正常腎組織中C4d主要表達(dá)于的腎小球、腎小管基膜及系膜區(qū),而在管周毛細(xì)血管(PTC)的內(nèi)皮細(xì)胞中未發(fā)現(xiàn)C4d沉積;在ABMR移植腎組織標(biāo)本中,C4d主要呈陽性表達(dá)于PTC的內(nèi)皮細(xì)胞(≥50%)。
GSK-3β的表達(dá) 在正常腎組織中,GSK-3β無表達(dá)或表達(dá)較低或。在ABMR患者移植腎組織中,GSK-3β的表達(dá)顯著增加,主要表達(dá)于腎小管細(xì)胞胞質(zhì)中。隨著GSK-3β平均光密度的增加,IF/TA分級、NF-κB p65、RANTES和 MCP-1平均光密度亦增大,且呈正相關(guān)(r分別為 0.884、0.812、0.804 和0.788,P <0.001),表明其表達(dá)水平亦隨之增加。GSK-3β的表達(dá)同炎癥細(xì)胞浸潤及血清肌酐水平亦呈正相關(guān)(r分別為 0.905 和 0.847,P <0.001)(表1、2,圖1、2)。
NF-κB p65的表達(dá) 正常腎組織中可在腎小球系膜細(xì)胞、腎小管上皮細(xì)胞偶見NF-κB p65表達(dá)。在ABMR患者移植腎組織中,NF-κB p65主要表達(dá)在包囊上皮細(xì)胞、系膜細(xì)胞和腎小管上皮細(xì)胞,表達(dá)水平較對照組明顯增加,其表達(dá)水平同炎癥性細(xì)胞因子RANTES、MCP-1及IF/TA分級呈正相關(guān)(r分別為 0.791、0.813 和0.914,P 均 <0.001)(表1,圖3);NF-κB p65的表達(dá)同炎癥細(xì)胞浸潤及血清肌酐水平亦呈正相關(guān)(r分別為 0.868 和 0.831,P <0.001)(表2,圖4)。
RANTES的表達(dá) 正常腎組織中的RANTES表達(dá)量低或無。在ABMR患者移植腎組織中RANTES大量表達(dá)于腎小管上皮細(xì)胞、腎小球系膜區(qū)及腎間質(zhì)內(nèi)的單核巨噬細(xì)胞,血管內(nèi)皮細(xì)胞亦可見RANTES陽性細(xì)胞。腎小管損傷愈嚴(yán)重、間質(zhì)炎癥細(xì)胞浸潤愈多的部位,表達(dá)愈強(qiáng)。并且RANTES的表達(dá)隨著IF/TA的程度加重而增多,具有正相關(guān)性(r=0.888,P <0.001)(表1);RANTES 的表達(dá)同炎癥細(xì)胞浸潤亦具有正相關(guān)性(r=0.931,P<0.001)(表2)。
MCP-1在腎組織中的表達(dá)和血清肌酐水平 正常腎組織中MCP-1表達(dá)較少。而在ABMR患者移植腎組織中,MCP-1表達(dá)顯著增加,主要位于腎小管上皮細(xì)胞胞質(zhì)、腎小球系膜區(qū)及毛細(xì)血管袢內(nèi)皮側(cè),MCP-1與IF/TA病理分級亦呈正相關(guān)(r=0.868,P<0.001)(表1)。ABMR患者血清肌酐升高的水平同纖維化程度分級的增加一致(r=0.898,P<0.001);MCP-1的表達(dá)同炎癥細(xì)胞浸潤亦具有正相關(guān)性(r=0.897,P <0.001)(表2)。
GSK-3β、NF-κB p65、RANTES 和 MCP-1 在不同免疫抑制方案組間的表達(dá)情況在環(huán)孢素和他克莫司兩種為主的免疫抑制劑方案組之間GSK-3β、NF-κB p65、RANTES和MCP-1的表達(dá)無均無明顯統(tǒng)計學(xué)差異(表3)。
表1 在IF/TA不同病理分級中GSK-3β、NF-κB p65、RANTES和MCP-1陽性表達(dá)面積百分比及相應(yīng)SCr水平
表2 ABMR患者腎組織中GSK-3β、NF-κB p65、RANTES和MCP-1表達(dá)面積百分比和炎癥細(xì)胞浸潤的關(guān)系
圖1 ABMR移植腎組織中GSK-3β表達(dá)(↑)和IF/TA的關(guān)系
圖2 GSK-3β的表達(dá)和炎癥細(xì)胞(↑)浸潤的關(guān)系
表3 GSK-3β、NF-κB p65、RANTES和MCP-1在不同免疫抑制方案組間的表達(dá)水平
圖3 ABMR移植腎組織中NF-κB p65表達(dá)(↑)和IF/TA的關(guān)系
圖4 NF-κB p65的表達(dá)和炎癥細(xì)胞(↑)浸潤的關(guān)系
由于新型免疫抑制劑的應(yīng)用、圍手術(shù)期處理的改善,腎移植術(shù)后的近期效果已經(jīng)得到顯著改善,然而移植術(shù)后的長期生存率并不高。CRAD是移植腎功能衰竭的主要原因,包括:免疫和非免疫兩方面因素[5],本研究主要圍繞其免疫因素ABMR展開。
已知炎癥細(xì)胞浸潤在腎臟的慢性炎癥和纖維化過程中發(fā)揮重要作用,炎癥反應(yīng)是腎臟纖維化發(fā)生、發(fā)展過程中的重要始動環(huán)節(jié)之一[6],包括CRAD在內(nèi),慢性炎癥反應(yīng)是導(dǎo)致腎單位進(jìn)行性丟失的共同的病理過程[1]。有研究表明,巨噬細(xì)胞、T淋巴細(xì)胞等炎癥細(xì)胞除了能分泌炎癥因子介導(dǎo)持續(xù)性的腎小管上皮細(xì)胞、系膜細(xì)胞損傷外,還能產(chǎn)生大量致纖維化因子(如 TGF-β、PDGF等),促進(jìn)細(xì)胞外基質(zhì)(ECM)產(chǎn)生,導(dǎo)致腎臟纖維化;另外,巨噬細(xì)胞還能分泌金屬蛋白酶抑制物和纖維酶原激活物抑制劑,抑制ECM的降解,促進(jìn)腎臟纖維化的發(fā)生[7]。我們的前期研究已經(jīng)證實,在CRAD患者移植腎組織中,GSK-3β的高表達(dá)同間質(zhì)炎癥細(xì)胞浸潤和IF/TA的發(fā)生密切正相關(guān)[8]。同時,本研究結(jié)果還發(fā)現(xiàn),在ABMR引起的CRAD發(fā)病機(jī)制中,腎間質(zhì)炎癥和間質(zhì)纖維化的發(fā)生與GSK-3β和NF-κB p65的高表達(dá)密切相關(guān)。然而,GSK-3β和NF-κB p65如何介導(dǎo)ABMR引起的CRAD移植腎組織中炎癥細(xì)胞的浸潤和IF/TA的發(fā)生,尚未得到闡明。
GSK-3β是真核細(xì)胞生物體內(nèi)普遍存在的絲氨酸/蘇氨酸蛋白激酶,它不僅調(diào)節(jié)細(xì)胞糖代謝,更重要的是能夠調(diào)節(jié)細(xì)胞分化、生長、突變及凋亡等生命活動,且在多種信號傳導(dǎo)過程中也起著重要的作用,當(dāng)GSK-3β(Ser9)磷酸化為pGSK-3β(Ser9)時失活。Gong等[9]在對 CRAD 的研究中證實,GSK-3β 在CRAD的炎癥反應(yīng)發(fā)生和調(diào)節(jié)促炎癥介質(zhì)NF-κB的活化過程中起著重要的作用。GSK-3β不但能夠調(diào)節(jié)NF-κB的活化,且是 NF-κB活化必不可少的要素[2,10,11]。已知 NF-κB 是眾多炎癥性細(xì)胞因子轉(zhuǎn)錄的共同調(diào)節(jié)蛋白,對人體最重要及通常所說的NF-κB是 p50/RelA(p50/p65),其中 NF-κB p65 是其主要的功能亞基[12]。相關(guān)研究已證實,NF-κB的活化對于 RANTES[13]和 MCP-1[14]的表達(dá)非常重要,它能夠調(diào)節(jié)RANTES和MCP-1的表達(dá),從而影響單核/巨噬細(xì)胞、淋巴細(xì)胞等炎癥細(xì)胞的聚集和活化,在ECM的產(chǎn)生和腎臟纖維化的病程中起著重要的作用。
在本實驗中,GSK-3β在正常對照組腎組織中的表達(dá)較低或無,而在ABMR引起的CRAD移植腎組織中的表達(dá)明顯增高,主要表達(dá)于腎小管細(xì)胞質(zhì)中,同非ABMR引起的CRAD相關(guān)研究一致[9],且隨著IF/TA分級的增加表達(dá)增多;同時GSK-3β的升高與 NF-κB p65、RANTES、MCP-1 及血清肌酐的上升水平一致,具有正相關(guān)性(r分別為 0.812、0.804、0.788 和 0.847,P <0.001);NF-κB p65 主要表達(dá)于腎小球系膜細(xì)胞、包囊上皮細(xì)胞和腎小管上皮細(xì)胞,其表達(dá)水平同IF/TA分級的增加和血清肌酐升高呈正比(r分別為0.914 和0.831,P <0.001)(表1,圖2、4、6、8)。提示 GSK-3β 和 NF-κB p65 的異常高表達(dá)可能和ABMR引起的移植腎纖維化的發(fā)生和腎功能的惡化有關(guān),故有必要進(jìn)一步探討GSK-3β和NF-κB在ABMR所導(dǎo)致的移植腎纖維化中的致病機(jī)制及相關(guān)臨床意義。
Schwabe等[15]研究發(fā)現(xiàn),NF-κB p65 的氨基酸序列包含了多個潛在的GSK-3β磷酸化的共同序列,RelA/p65是GSK-3β的同源底物,GSK-3β能夠通過磷酸化NF-κB p65而使其激活,從而促進(jìn)下游炎癥介質(zhì)RANTES和MCP-1基因的轉(zhuǎn)錄。而高選擇性的GSK-3β抑制劑可降低NF-κB p65的磷酸化和NF-κB依賴的炎癥介質(zhì)MCP-1的表達(dá),減少包括腎臟在內(nèi)的多器官的損傷[16]。同時,Steinbrecher等[17]報道,在 GSK-3β敲除或抑制后的小鼠中,NF-κB DNA結(jié)合活性降低,且抑制了包括MCP-1、白細(xì)胞介素6在內(nèi)的眾多促炎癥基因的轉(zhuǎn)錄。在內(nèi)毒素血癥所致急性腎衰竭模型中,GSK-3β抑制劑能夠抑制內(nèi)素素誘導(dǎo)的NF-κB的活化,抑制炎癥的發(fā)生,從而保護(hù)腎臟[18]??梢?,GSK-3β主要是通過調(diào)節(jié)下游信號分子NF-κB p65的表達(dá)和磷酸化,進(jìn)而影響 NF-κB依賴的相關(guān)趨化因子 RANTES和MCP-1的表達(dá),調(diào)節(jié)腎臟炎癥反應(yīng)的發(fā)生。
本研究亦發(fā)現(xiàn),在ABMR所致的CRAD移植腎中,隨著 GSK-3β、NF-κB p65、MCP-1 和 RANTES 表達(dá)的增加,間質(zhì)炎癥細(xì)胞的浸潤亦隨之增多,它們之間具有正相關(guān)性(r分別為 0.905、0.868、0.897 和0.931,P <0.001)(表2,圖3、5、7、9)。高表達(dá)的GSK-3β主要通過誘導(dǎo)促炎癥介質(zhì)NF-κB p65的表達(dá)和活化,導(dǎo)致趨化因子MCP-1和RANTES的表達(dá)增加,誘導(dǎo)單核/巨噬細(xì)胞、T淋巴細(xì)胞的浸潤和活化,促進(jìn) ECM的產(chǎn)生并抑制其降解,最終參與ABMR所致的CRAD的進(jìn)程中。另外,已知NF-κB的活化是α平滑肌肌動蛋白(α-SMA)表達(dá)的始動因素,且α-SMA的出現(xiàn)是成纖維細(xì)胞分化為肌成纖維細(xì)胞的標(biāo)志[19],肌成纖維細(xì)胞的生成可在腎間質(zhì)產(chǎn)生膠原等ECM成分。可見,NF-κB除了通過誘導(dǎo)炎癥細(xì)胞的浸潤,產(chǎn)生大量致纖維化因子外,還能夠促進(jìn)肌成纖維細(xì)胞的生成,合成大量的ECM,最終導(dǎo)致移植腎纖維化。
此外,通過比較兩種不同的免疫抑制治療方案發(fā)現(xiàn),不同的治療方案對 GSK-3β、NF-κB p65、MCP-1和RANTES的表達(dá)無顯著影響(表3)。在ABMR引起CRAD的發(fā)病機(jī)制中,GSK-3β和NF-κB等促炎因子主要參與了相關(guān)炎癥細(xì)胞的浸潤和活化,與不同的免疫抑制方案無相關(guān)性,同時也提示,通過調(diào)整免疫抑制治療方案不能有效地阻斷GSK-3β/NF-κB信號通路,即不能阻斷炎癥反應(yīng)和腎間質(zhì)纖維化的發(fā)生。
在以腎間質(zhì)炎癥反應(yīng)[20]和間質(zhì)纖維化為主[21,22]的其他腎病模型中,通過抑制 GSK-3β 的表達(dá)證實GSK-3β發(fā)揮了重要作用。本研究也發(fā)現(xiàn),在ABMR導(dǎo)致的CRAD中,GSK-3β與移植腎間質(zhì)炎癥細(xì)胞浸潤、活化和IF/TA的發(fā)生密切相關(guān),提示,GSK-3β可成為減輕移植腎間質(zhì)炎癥反應(yīng)和抗纖維化治療的潛在靶點,通過抑制移植腎間質(zhì)炎癥反應(yīng)和IF/TA的發(fā)生,延長移植腎功能。
綜上所述,在ABMR引起的CRAD患者移植腎組織中,GSK-3β介導(dǎo)的炎癥反應(yīng)參與了CRAD的病變過程,同CRAD的發(fā)展關(guān)系密切,移植腎組織主要表現(xiàn)炎癥反應(yīng)和IF/TA。GSK-3β在移植腎組織中表達(dá)較正常腎組織明顯增高,其主要通過誘導(dǎo)下游促炎癥介質(zhì) NF-κB的活化及相關(guān)炎癥介質(zhì)(RANTES和 MCP-1)的表達(dá),介導(dǎo)了炎癥反應(yīng)和IF/TA的發(fā)生和發(fā)展;作為GSK-3β的下游信號分子,NF-κB的激活介導(dǎo)了GSK-3β的促炎效應(yīng)和促進(jìn)了肌成纖維細(xì)胞的生成。因此,GSK-3β對于間質(zhì)炎癥的發(fā)生和ECM的合成有著重要的作用,對于治療炎癥損傷性慢性移植腎腎病、減少ECM的產(chǎn)生和預(yù)防移植腎丟失,GSK-3β可望成為一種新的治療靶點,在一定程度上為延長移植腎存活時間提供了一條新的途徑。
1 Ferenbach D,Kluth DC,Hughes J.Inflammatory cells in renal injury and repair.Semin Nephrol,2007,27(3):250-259.
2 Hoeflich KP,Lou J,Rubie EA,et al.Requirement for glycogen synthase kinase-3beta in cell survival and NF-kappaB activation.Nature,2000,406(6791):86-90.
3 Doble BW,Woodgett JR.GSK-3:tricks of the trade for a multi-tasking kinase.JCell Sci,2003,116(Pt 7):1175-1186.
4 Sis B,Mengel M,Haas M,et al.Banff'09 meeting report:antibody mediated graft deterioration and implementation of Banff working groups.Am JTransplant,2010,10(3):464-471.
5 Ahsan N,Cheung JY.Pathogenesis and molecular mechanisms of chronic allograft nephropathy.Contrib Nephrol,2003,139:187-204.
6 Filiopoulos V,Vlassopoulos D.Inflammatory syndrome in chronic kidney disease:pathogenesis and influence on outcomes.Inflamm Allergy Drug Targets,2009,8(5):369-382.
7 Yang N,Wu LL,Nikolic-Paterson DJ,et al.Local macrophage and myofibroblast proliferation in progressive renal injury in the rat remnant kidney.Nephrol Dial Transplant,1998,13(8):1967-1974.
8 Yan,Q,Wang B,Sui W,et al.Expression of GSK-3beta in renal allograft tissue and its significance in pathogenesis of chronic allograft dysfunction.Diagn Pathol,2012,7:5.
9 Gong R,Ge Y,Chen S,et al.Glycogen synthase kinase 3beta:a novel marker and modulator of inflammatory injury in chronic renal allograft disease.Am JTransplant,2008,8(9):1852-1863.
10 Jope RS,Johnson GV.The glamour and gloom of glycogen synthase kinase-3.Trends Biochem Sci,2004,29(2):95-102.
11 Kim SD,Yang SI,Kim HC,et al.Inhibition of GSK-3beta mediates expression of MMP-9 through ERK1/2 activation and translocation of NF-kappaB in rat primary astrocyte.Brain Res,2007,1186:12-20.
12 史艷暉,盧圣棟.轉(zhuǎn)錄因子NF-κB的研究現(xiàn)狀及其應(yīng)用前景.中國生物工程雜志,2007,27(4):110-114.
13 Gong R,Rifai A,Tolbert EM,et al.Hepatocyte growth factor ameliorates renal interstitial inflammation in rat remnant kidney by modulating tubular expression of macrophage chemoattractant protein-1 and RANTES.J Am Soc Nephrol,2004,15(11):2868-2881.
14 Tashiro K,Tamada S,Kuwabara N,et al.Attenuation of renal fibrosis by proteasome inhibition in rat obstructive nephropathy:possible role of nuclear factor kappaB.Int JMol Med,2003,12(4):587-592.
15 Schwabe RF,Brenner DA.Role of glycogen synthasekinase-3 in TNF-alpha-induced NF-kappaB activation and apoptosis in hepatocytes.Am JPhysiol Gastrointest Liver Physiol,2002,283(1):G204-211.
16 Dugo L,Collin M,Allen DA,et al.GSK-3beta inhibitors attenuate the organ injury/dysfunction caused by endotoxemia in the rat.Crit Care Med,2005,33(9):1903-1912.
17 Steinbrecher KA,Wilson W 3rd,Cogswell PC,et al.Glycogen synthase kinase 3beta functions to specify gene-specific,NF-kappaB-dependent transcription.Mol Cell Biol,2005,25(19):8444-8455.
18 Wang Y,Huang WC,Wang CY,et al.Inhibiting glycogen synthase kinase-3 reduces endotoxaemic acute renal failure by down-regulating inflammation and renal cell apoptosis.Br JPharmacol,2009,157(6):1004-1013.
19 B?rgeson E,Godson C.Molecular circuits of resolution in renal disease.Scientific World Journal,2010,10:1370-1385.
20 Obligado SH,Ibraghimov-Beskrovnaya O,Zuk A,et al.CDK/GSK-3 inhibitors as therapeutic agents for parenchymal renal diseases.Kidney Int,2008,73(6):684-690.
21 Gong R,Rifai A,Ge Y,et al.Hepatocyte growth factor suppresses proinflammatory NFkappaB activation through GSK3beta inactivation in renal tubular epithelial cells.J Biol Chem,2008,283(12):7401-7410.
22 Yoshino J,Monkawa T,Tsuji M,et al.Snail1 is involved in the renal epithelial-mesenchymal transition.Biochem Biophys Res Commun,2007,362(1):63-68.