周 成，鄔應龍，夏曉杰，唐 淼，廖 杰

日糧氧化魔芋葡甘露聚糖對齊口裂腹魚生長、血脂和脂肪代謝酶活性的影響

周 成，鄔應龍*，夏曉杰，唐 淼，廖 杰

（四川農(nóng)業(yè)大學食品學院，四川 雅安 625014）

目的：研究日糧氧化魔芋葡甘露聚糖（oxidized konjac glucomannan，OKGM）對齊口裂腹魚生長、血脂以及脂肪代謝酶活性的影響。方法：選用初始體質(zhì)量為（79.54±8.12）g的齊口裂腹魚300 尾，隨機分成5 組，每組3 個重復，每重復20 尾魚，分別飼喂OKGM添加量為0（對照組D1）、4、8、16、32 g/kg，養(yǎng)殖60 d后，考察OKGM對齊口裂腹魚生長性能、血脂水平及脂肪代謝酶活性的影響。結(jié)果：與對照組D1相比，日糧添加8～16 g/kg OKGM可顯著提高魚體增重率（P＜0.05）、特定生長率（P＜0.05），添加16 g/kg OKGM能夠顯著提高蛋白質(zhì)效率（P＜0.05），降低餌料系數(shù)（P＜0.05），會顯著降低肌肉水分含量（P＜0.05），添加8 g/kg OKGM可顯著降低肌肉和肝胰臟脂肪含量（P＜0.05），添加4～16 g/kg OKGM能夠顯著提高魚體腸脂比（P＜0.05）；在血脂方面，日糧中OKGM添加量對齊口裂腹魚總膽固醇、甘油三酯、高密度脂蛋白、低密度脂蛋白沒有明顯的劑量效應，添加4～8 g/kg OKGM能夠顯著降低血清中游離脂肪酸含量（P＜0.05）；在脂肪代謝酶方面，添加16 g/kg OKGM顯著提高脂蛋白酯酶、肝脂酶和總脂酶活性（P＜0.05），在腸道消化酶方面，添加8～32 g/kg OKGM能顯著提高齊口裂腹魚腸道脂肪酶活性（P＜0.05）。結(jié)論：日糧中添加適量OKGM能改善齊口裂腹魚生長性能，提高飼料利用率，降低肌肉脂肪含量，提高脂肪代謝酶和脂肪酶活性。建議齊口裂腹魚飼料中OKGM添加量為4～16 g/kg。

氧化魔芋葡甘露聚糖；齊口裂腹魚；生長；血脂；脂肪代謝酶

氧化魔芋葡甘露聚糖是魔芋葡甘聚糖（konjac glucomannan，KGM）經(jīng)適當?shù)难趸瘎┭趸笾频玫模哂挟a(chǎn)品安全性高、污染少、高效率、低成本，適應工業(yè)化生產(chǎn)的特點，保留了KGM的生理功能，同時克服了KGM穩(wěn)定性差等缺點，開拓了KGM的應用領(lǐng)域。KGM是一種來自植物魔芋的、由D-葡萄糖（G）和D-甘露糖（M）按1∶1.6或1∶1.69的物質(zhì)的量比通過β-1, 4-吡喃糖苷鍵結(jié)合而成的復合多糖[1-2]，KGM及其改性物質(zhì)作為一種膳食纖維和功能性糖（益生元）在體內(nèi)不會被消化吸收且不含熱量，其功能性主要包括以下幾個方面：促進動物的生長發(fā)育、提高餌料的利用率、增強動物的體液和細胞免疫功能、降低死亡率和調(diào)節(jié)腸道微生態(tài)環(huán)境等功能[3-4]；同時還能有效的減少有害微生物的數(shù)量和腸道內(nèi)有毒發(fā)酵產(chǎn)物，保護肝臟、清除有害物質(zhì)，降低血清膽固醇、提高抗病力等作用[5]。KGM、甘露寡糖（mannose-oligosaccharides，MOS）在畜禽生物飼料中已有較多研究[6-7]，但OKGM的研究多集中于在成膜性和流變性及膠凝性和穩(wěn)定性的探討[8-11]，對氧化改性后產(chǎn)物的生理活性、免疫功能[12]以及對魚類的生長性能、血脂水平和脂肪代謝相關(guān)酶等研究上還鮮見報道。

齊口裂腹魚屬鯉形目，鯉科，裂腹魚亞科，裂腹魚屬，裂腹魚亞屬。俗稱雅魚, 齊口，細甲魚，齊口細鱗魚。主要分布于長江上游、金沙江、岷江、大渡河、酉水、青衣江和漢江的上游[13]，是川西高原特有的冷水性魚類之一，它是繼虹鱒、黑龍江鱘科魚類、青海湖裸鯉等冷水魚之后又一條具有開發(fā)潛力的冷水魚[14]。其肉質(zhì)細嫩、味道鮮美，具有較高的營養(yǎng)價值和經(jīng)濟價值，是產(chǎn)區(qū)名貴的野生經(jīng)濟魚類[15-16]。國內(nèi)外研究人員對齊口裂腹魚的研究主要表現(xiàn)在生物學特性、肌肉營養(yǎng)學、生理生化、種群遺傳多態(tài)性和人工養(yǎng)殖等方面[17]，目前，齊口裂腹魚的人工繁殖技術(shù)已經(jīng)基本成熟[14]，并逐步開始了集約化養(yǎng)殖。

研究發(fā)現(xiàn)魚類脂肪的大量沉積不僅會降低飼料轉(zhuǎn)化率，造成不必要的浪費，而且嚴重的還可引發(fā)營養(yǎng)性脂肪肝，因此，研究魚類脂肪代謝及脂肪代謝相關(guān)酶，對提高養(yǎng)殖效率，改善養(yǎng)殖魚類的肉質(zhì)和口味有重要的意義。本實驗將以經(jīng)H2O2氧化降解改性后的OKGM為實驗材料，以齊口裂腹魚為研究對象，通過喂養(yǎng)60 d，初步探討OKGM對齊口裂腹魚生長性能、血脂水平和脂肪代謝酶活性的影響，目的是進一步了解OKGM的生理活性，以期為進一步開發(fā)OKGM的應用價值，大規(guī)模養(yǎng)殖齊口裂腹魚提供一定的理論依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

齊口裂腹魚，四川省雅安天泉雅魚場購得，為2011年孵化的同一批魚種，體質(zhì)量（79.54±8.12）g/尾。選擇體質(zhì)健壯的實驗魚300 尾，暫養(yǎng)馴食14 d后開始實驗；魚粉、豆粕、玉米、麩皮、魚用多維、礦物添加劑、磷酸二氫鈣，四川農(nóng)業(yè)大學動物營養(yǎng)研究所提供；菜油、面粉 雅安市農(nóng)貿(mào)市場；OKGM四川農(nóng)業(yè)大學食品學院功能性食品實驗室自制，將KGM經(jīng)H2O2氧化降解而得到[11]。

血清總膽固醇（total cholesterol，TC）試劑盒、甘油三酯（triglyceride，TG）試劑盒、高密度脂蛋白膽固醇（high density lipoprotein cholesterol，HDL-C）試劑盒、低密度脂蛋白膽固醇（low density lipoprotein cholesterol，LDL-C）試劑盒、游離脂肪酸（free fat acid，F(xiàn)FA）試劑盒、總脂酶（total lipase，TL）試劑盒、考馬斯亮藍蛋白測定試劑盒 南京建成生物工程研究所；其他試劑均為國產(chǎn)分析純。

1.2 儀器與設備

ST16R型冷凍離心機 美國Thermo公司；HHS-9S型恒溫水浴鍋 上海光地儀器設備有限公司；BWFJ7200型分光光度計 上海尤尼柯儀器有限公司；T124S型電子天平 北京賽多利斯儀器系統(tǒng)有限公司。

1.3 方法

1.3.1 動物分組

暫養(yǎng)14 d后，選擇健康無傷病的齊口裂腹魚隨機分組，設1 個對照組（D1組），4 個OKGM處理組（D2、D3、D4、D5 組），每個處理組設3個平行組。每個處理組投放20 尾魚，每個重復組投入1 個魚缸（規(guī)格為0.70 m×0.50 m×0.50 m），共15 個魚缸，按實驗設計分別編號。每天以體質(zhì)量2.5 g/100 g的量投喂飼料，定時、定質(zhì)、定量投喂飼料，實驗期間水溫為 18～22 ℃，pH值為7.4～7.6。實驗期間保持微流水，各試驗池水體每天的交換量為30%。實驗結(jié)束時禁食24 h，進行各種指標的測定。

1.3.2 實驗飼料

以魚粉、豆粕為蛋白源，以食用菜油為脂肪源，參照美國國家科學研究委員會（National Research Council，NRC，1994）魚類營養(yǎng)需要和段彪等[18-19]的齊口裂腹魚飼料配方設計，基礎飼料配方及營養(yǎng)水平見表1，飼料原料均過40 目篩，按飼料配方表制得基礎飼料；在基礎飼料中分別添加0、4、8、16、32 g/kg OKGM，分別記為D1（對照組）、D2、D3、D4、D5組，添加相對應的面粉質(zhì)量平衡OKGM添加的質(zhì)量，使其總量相平衡，配成5 種等氮等能（蛋白質(zhì)含量）飼料，實驗飼料充分混合后加工成1 mm的硬顆粒飼料，干燥并密封保存于4 ℃條件下備用。

表1 基礎飼料配方及營養(yǎng)組成Table 1 Formulation and nutrient composition of basal diet

注：1.每kg飼料含：VA 6 000 IU；VD 1 000 IU；VE 30 mg；VK30.46 mg；VB10.72 mg；VB25.76 mg；VB64.212 mg；尼克酸27.72 mg；泛酸27 mg；生物素0.16 mg；VC 55.8 mg；肌醇58.8 mg；氯化膽堿700 mg。2.每kg飼料含：Mn 10 mg，Zn 30 mg，F(xiàn)e 60 mg，Cu 3 mg，I 1 mg，Se 0.2 mg。

1.3.3 魚體生長指標測定

養(yǎng)殖實驗結(jié)束后，魚體饑餓24 h，以缸為單位稱其質(zhì)量，測量所有齊口裂腹魚的體長、體高，稱體質(zhì)量，解剖后稱量肝胰臟質(zhì)量和腸系膜脂肪質(zhì)量，各指標計算方法如下。

式中：m0實驗開始時魚體質(zhì)量/g；mt實驗結(jié)束時魚體質(zhì)量/g；F為飼料攝入量/g；P為飼料粗蛋白質(zhì)含量/（g/100 g）；t為養(yǎng)殖實驗時間/d。

1.3.4 樣品的采集和制備

養(yǎng)殖實驗結(jié)束后，魚體饑餓24 h，每池隨機取魚8 尾，從尾靜脈取血，在室溫下放置1 h，并置于冰箱（4 ℃）中過夜，3 500 r/min離心15 min制得血清，置于－20 ℃冰箱中備用；再迅速取出肝胰臟、前腸、肌肉（第1 根背鰭至最后1 根背鰭之間，側(cè)線以上白?。?，置于－20 ℃冰箱中保存。

每尾實驗魚取0.2 g前腸，加入9 倍體積4 ℃雙蒸水，冰浴勻漿，3 000 r/min離心10 min，取上清液測定前腸脂肪酶活性；取0.2 g肝胰臟加入9 倍體積4 ℃生理鹽水，用同上方法制備粗酶液，按照試劑盒說明書測定肝胰臟中脂蛋白脂酶、肝脂酶活性和其組織蛋白濃度。

1.3.5 魚體組成的測定

魚體粗蛋白質(zhì)按照GB/T 5009.5—2003《食品中蛋白質(zhì)的測定》凱氏定氮法測定；粗脂肪按照GB/T 5009.6—2003《食品中脂肪的測定》索氏抽提法測定；水分按照GB/T 5009.3—2003《食品中水分的測定》干燥法測定；粗灰分按照GB/T 5009.4—2003《食品中灰分的測定》馬福爐灼燒法測定。

1.3.6 血脂含量和脂肪代謝酶活力的測定

血清TC、TG、HDL-C、LDL-C、FFA、前腸脂肪酶、肝臟脂蛋白脂酶（lipoprotein lipase，LPL）和肝脂酶（hepatic lipase，HL）活性均采用試劑盒測定。血清中的TC、TG測定分別采用膽固醇氧化酶-過氧化物酶-4-氨基安替比林和酚法（CHOD-PAP法）和甘油磷酸氧化酶-過氧化物酶-4-氨基安替比林和酚法（GPO-PAP法），LDL-C用聚乙烯硫酸沉淀法測定，記錄546nm波長處的A值，與標準品相比計算LDL-C的含量；HDL-C含量用磷鎢酸鎂沉淀法測定，記錄546 nm波長處的A值，與標準品相比計算LDL-C的含量，單位均用mmol/L表示；游離脂肪酸（free fatty acid，F(xiàn)FA）含量采用銅試劑法測定，記錄440 nm波長處的A值，與標準品相比計算FFA的含量，單位用mmol/L表示；脂肪酶活性定義為在37 ℃條件下，每克組織蛋白在本反應體系中與底物反應1 min，每消耗1 μmol底物為一個活力單位；總脂酶活性定義：每毫克組織蛋白每小時在反應系統(tǒng)中所產(chǎn)生的1 μmol FFA為1 個酶活性單位，單位為U/mg；TL活性為LPL活力與 HL活力之和。

1.4 數(shù)據(jù)統(tǒng)計

結(jié)果用x±s表示，采用SPSS 19.0對數(shù)據(jù)進行單因素方差分析，Duncan’s多重比較，差異顯著水平為P＜0.05。

2 結(jié)果與分析

2.1 日糧OKGM對齊口裂腹魚生長性能的影響

表2 日糧OKGM對齊口裂腹魚生長性能的影響（x±s，n=20）Table 2 Effect of dietary OKGM on the growth performance of SPT (x±s, n=20)

由表2可知，經(jīng)60 d養(yǎng)殖，隨著日糧中OKGM添加量的升高，齊口裂腹魚增重率、特定生長率、蛋白質(zhì)效率先增高后降低，餌料系數(shù)先降低后增加。D3、D4組實驗魚增重率和特定生長率均顯著高于對照組D1和D5組（P＜0.05），均與D2組差異不顯著（P＞0.05）；D4組蛋白質(zhì)效率顯著高于對照組D1、D5組（P＜0.05），與D2、D3組差異不顯著（P＞0.05）；實驗魚各組的存活率沒有顯著性差異（P＞0.05）。綜合生長性能各指標，說明日糧中添加4～16 g/kg OKGM對齊口裂腹魚生長具有促進作用。

2.2 日糧OKGM對齊口裂腹魚形體指標和內(nèi)臟指數(shù)的影響

表3 日糧OKGM對齊口裂腹魚形體指標和內(nèi)臟指數(shù)的影響（x±s，n=20）Table 3 Effect of dietary OKGM on body and visceral indexes of SPT (x±s, n=20)

由表3可知，隨著日糧OKGM添加量的增加，各實驗組中的體長/體高、肥滿度、肝體比與對照組D1均差異不顯著（P＞0.05）；D2、D3、D4組腸脂比顯著高于對照組D1（P＜0.05），與D5組差異不顯著（P＞0.05），說明日糧中添加4～16 g/kg OKGM對齊口裂腹魚腸系膜脂肪沉積顯著增加。

2.3 日糧OKGM對齊口裂腹魚肌肉基本成分和肝胰臟水分、脂肪的影響

由表4可知，D4組肌肉水分含量顯著低于D1、D5組（P＜0.05），與D2、D3組卻是極顯著差異（P＜0.01）；D3組實驗魚肌肉中粗蛋白質(zhì)含量最高，與D1、D2、D4組差異不顯著（P＞0.05），說明添加日糧中適量的OKGM不影響齊口裂腹魚蛋白質(zhì)的含量；但顯著高于D5組（P＜0.05），D3組實驗魚肌肉中粗脂肪含量最低，均顯著低于其他組（P＜0.05），說明日糧中添加8 g/kg OKGM會降低齊口裂腹魚肌肉粗脂肪含量，日糧OKGM水平對實驗魚肌肉中粗灰分含量無顯著性差異（P＞0.05）。

表4 日糧OKGM對齊口裂腹魚的肌肉基本成分的影響（x±s，n=8）Table 4 Effect of dietary OKGM on muscle proximate composition of SPT (x±s, n=8)

表5 日糧OKGM對齊口裂腹魚肝胰臟水分和粗脂肪含量的影響（x±s，n=8）Table 5 Effect of dietary OKGM on moisture and crude fat contents in the hepatopancreas of SPT (x±s, n=8))

由表5可知，與對照組D1相比，D2、D3組肝胰臟水分含量顯著增加（P＜0.05），D4、D5組差異不顯著（P＞0.05）；D3組肝胰臟粗脂肪含量比對照組D1顯著降低（P＜0.05），其他組與對照組D1差異不顯著（P＞0.05）。

2.4 日糧OKGM對齊口裂腹魚血脂的影響

表6 日糧OKGM對齊口裂腹魚血脂的影響（x±s，n=8）Table 6 Effect of dietary OKGM on blood lipid levels of SPT (x±s,, n=8))

由表6可知，與對照組D1相比，D2和D5組血清中TC的含量顯著低于（P＜0.05），D4組血清中TC的含量顯著升高（P＜0.05），D3組差異不顯著（P＞0.05）；隨著日糧中OKGM添加量的增加，血清中TG含量變化不是很大，與對照組D1相比，D4組血清中TG含量顯著升高（P＜0.05），其他組差異不顯著（P＞0.05）；與對照組D1相比，D2組血清中HDL-C含量顯著升高（P＜0.0 5），與D 3、D 4、D 5組差異不顯著（P＞0.05），說明添加4 g/kg OKGM對齊口裂腹魚的血清HDL-C有增加作用；D5組血清中LDL-C顯著低于D1、D2組（P＜0.05），與其他組差異不顯著（P＞0.05），說明添加32 g/kg OKGM對齊口裂腹魚的血清LDL-C有降低作用；與對照組D1相比，D2、D3、D5組血清中FFA的含量顯著降低（P＜0.05），D4組差異不顯著（P＞0.05），說明添加4～8 g/kg OKGM對齊口裂腹魚血清中FFA有降低作用。綜上血脂各指標表明日糧中OKGM添加量對齊口裂腹魚血脂水平?jīng)]有明顯的劑量效應。

2.5 日糧OKGM對齊口裂腹魚脂肪代謝酶活性的影響

表7 日糧OKGM對齊口裂腹魚脂肪代謝酶活性的影響（x±s，n=8）Table 7 Effect of dietary OKGM on lipid metabolism enzyme activities in SPTT (x±s, n=8)

由表7可知，在脂肪代謝酶方面，隨著OKGM添加量的增加，LPL活性變化不大，與對照組D1相比，D4組LPL活性顯著升高（P＜0.05），其他組差異不顯著（P＞0.05）；HL活性隨著OKGM添加量的增加先升高后降低，D4組HL活性最高，但與對照組D1差異不顯著（P＞0.05）；與對照組D1相比，D4組TL活性顯著升高（P＜0.05），其他組差異不顯著（P＞0.05）。

在腸道消化酶方面，隨著OKGM添加量的增加，腸道脂肪酶活性均升高，與對照組相比，D3、D4、D5組腸道脂肪酶活性均顯著升高（P＜0.05），D2組差異不顯著（P＞0.05）；說明日糧中添加8～32 g/kg OKGM能提高齊口裂腹魚腸道脂肪酶活性，有助于其消化吸收。

3 討 論

通過養(yǎng)殖齊口裂腹魚60 d后，與對照組相比，日糧中添加8～16 g/kg OKGM增重率和特定生長率均顯著提高（P＜0.05），添加16 g/kg OKGM蛋白質(zhì)效率顯著提高（P＜0.05），餌料系數(shù)顯著降低（P＜0.05）。因此，日糧中添加8～16 g/kg OKGM對齊口裂腹魚生長具有促進作用。向梟等[20]研究了飼料中黃芪多糖（Astragalus polysaccharides，APS）的含量對齊口裂腹魚的影響，結(jié)果表明：與對照組C相比，APS試驗組的增重率、特定生長率、飼料蛋白效率有顯著增高的趨勢（P＜0.05）；張艷秋等[21]研究了飼料中添加多糖復合物糖萜素對白鯧生長性能的影響，結(jié)果表明：與對照組相比，添加125、250 mg/kg多糖復合物糖萜素增重率顯著提高（P＜0.05），餌料系數(shù)顯著降低（P＜0.05）；這與本實驗研究結(jié)果基本一致，說明日糧中添加4～16 g/kg OKGM對齊口裂腹魚生長有促進作用。

血脂水平是反映體內(nèi)脂肪代謝水平的重要生理指標，脂肪在魚類細胞內(nèi)主要以甘油三酯形式存在，甘油三酯是魚類脂類代謝的主要物質(zhì)[22]。實驗結(jié)果表明：日糧中OKGM添加量對齊口裂腹魚TC、TG、HDL-C和LDL-C沒有明顯的劑量效應，OKGM添加量為4～8 g/kg能降低齊口裂腹魚血清中FFA含量；張艷秋等[21]研究了飼料中添加多糖復合物糖萜素對白鯧血清膽固醇的影響，結(jié)果表明：與對照組相比，試驗組白鯧血清中膽固醇含量均差異不顯著（P＞0.05）；邱燕等[23]研究了棉子糖對草魚生長和血清生化指標的影響，結(jié)果表明：與對照組相比，實驗組草魚血清TG含量顯著升高（P＜0.05），HDL-C、LDL-C含量均顯著降低（P＜0.05），TC含量顯著降低（P＜0.05）；可能的原因是多糖能夠在有效增強機體的免疫機制，加快肝膽循環(huán)，使肝內(nèi)生成的酮體和肝外組織所能利用的限度達到很好的一個平衡[24]，從而降低了血脂在血液中的堆積。Enes等[25]研究了瓜爾膠對白鯛魚脂代謝的影響，結(jié)果表明：與對照組相比，隨著瓜爾膠添加量的增加白鯛魚血清中TC、TG含量逐漸增加，但差異均不顯著（P＞0.05）；這與上述實驗結(jié)果不完全一致，可能是魚的和多糖種類不同造成的。

在小鼠[26]和養(yǎng)殖魚[27]的研究發(fā)現(xiàn)，肝脂酶和脂蛋白脂酶活性顯著降低與脂肪肝發(fā)生密切相關(guān)。本實驗中，與對照組D1相比，日糧OKGM添加量為16 g/kg能夠顯著提高LPL、HL、PL活性（P＜0.05），這說明添加適宜OKGM能提高齊口裂腹魚肝胰臟脂肪代謝酶活性，降低肝胰臟脂肪積累。前腸脂肪酶活性是評價前腸對脂肪消化能力的重要指標[28]。本實驗中，日糧中添加8～32 g/kg OKGM均能顯著提高齊口裂腹魚腸道脂肪酶活性（P＜0.05）。吳旋[29]研究了4 種中草藥多糖對黃顙魚消化組織脂肪酶活力的影響，結(jié)果表明：對照組相比，添加黃芪多糖均能不同程度地提高黃顙魚消化組織內(nèi)脂肪酶的活力；添加枸杞多糖可顯著提高黃顆魚消化組織內(nèi)脂肪酶的活力；但酶活力與添加水平呈現(xiàn)負相關(guān)關(guān)系；靈芝多糖各實驗組均能較高地提高黃顆魚消化組織內(nèi)脂肪酶的活力；這與上述研究結(jié)果基本一致。

日糧中添加適量的OKGM對齊口裂腹魚生長性能、血脂水平和脂肪代謝酶活性有較好的影響，綜上所述，齊口裂腹魚飼料中OKGM推薦添加量為4～16 g/kg。OKGM可能作為一種新型免疫增強劑，添加到基礎飼料中，為大規(guī)模養(yǎng)殖齊口裂腹魚提供一定的理論依據(jù)；OKGM作為一種改性多糖，在保健食品的應用中極具潛力，但其生理活性研究相對較少，使用目的不明確，需要更多理論研究支撐其在保健食品中運用。

[1] KATO K, MATSUDA K. Studies on the chemical structure of konjac mannan[J]. A g r i c u l t u r a l a n d Biological Chemistry, 1969, 33: 1446-1453.

[2] ZOU X X, XIE M R. Advances in research konjac glucomannan[J]. Modern Chemical Industry, 1995, 15(12): 15-17.

[3] 劉紅梅. 魔芋葡甘聚糖對肥胖及糖尿病小鼠的治療作用[J]. 營養(yǎng)學報, 2002, 24(4): 437-438.

[4] 賓石玉, 周安國, 程培安. 寡糖對動物免疫功能的作用[J]. 中國獸醫(yī)學報, 2006, 26(3): 344-346.

[5] 董澄. 寡糖的生物學功能及其在畜牧業(yè)中的應用[J]. 飼料博覽, 2008(5): 16-18.

[6] 唐勝球, 董小英, 鄒曉庭, 等. 畜禽生物飼料添加劑魔芋葡甘聚糖的研究與應用[J]. 飼料工業(yè), 2005, 26(2): 37-39.

[7] 路璐. 一種通過在飼料中添加葡甘露聚糖來消除肉雞和雛鴨黃曲霉毒素中毒癥的生物學方法[J]. 中國家禽, 2005, 27(5): 28-32.

[8] 李斌, 謝筆鈞. 魔芋葡甘聚糖的H2O2氧化改性及其流變性能研究[J].湖北化工, 2002, 19(1): 9-11.

[9] 龐杰, 李斌, 謝筆鈞, 等. 氧化魔芋葡甘聚糖的結(jié)構(gòu)研究[J]. 結(jié)構(gòu)化學, 2004, 23(8): 912-917.

[10] 董紅兵, 李斌, 謝筆鈞. 氧化魔芋葡甘聚糖/Ca(OH)2雜化膜的制備與性能[J]. 化學與生物工程, 2005(9): 22-24.

[11] 吳波, 陳運中, 徐凱, 等. 魔芋葡甘聚糖的氧化改性及其性質(zhì)研究[J].糧油深加工及食品, 2008(5): 15-16.

[12] 趙勤, 鄔應龍. 氧化魔芋葡甘露聚糖對小鼠免疫功能影響的研究[J].營養(yǎng)學報, 2011, 33(5): 492-496; 501.

[13] 楊義, 李山友, 周小寧, 等. 裂腹魚的生物學及養(yǎng)殖[J]. 水利漁業(yè), 2003, 23(4): 22-23.

[14] 若木, 王鴻泰, 殷啟云, 等. 齊口裂腹魚人工繁殖的研究[J]. 淡水漁業(yè), 2001, 31(6): 3-5.

[15] 溫安祥, 曾靜康, 何濤. 齊口裂腹魚肌肉的營養(yǎng)成分分析[J]. 水利漁業(yè), 2003, 23(1): 13-15.

[16] 宋昭彬. 齊口裂腹魚和巖原鯉野生種群遺傳多樣性研究[D]. 成都:四川大學, 2005.

[17] 謝佳燕. 我國齊口裂腹魚的研究現(xiàn)狀[J]. 安徽農(nóng)業(yè)科學, 2010, 38 (25): 13721-13722; 13726.

[18] 段彪, 向梟, 周興華, 等. 齊口裂腹魚飼料中適宜脂肪需要量的研究[J].動物營養(yǎng)學報, 2007, 19(3): 232-236.

[19] 何雷. 齊口裂腹魚幼魚對蛋白質(zhì)、脂肪和糖適宜需要量的研究[D].雅安: 四川農(nóng)業(yè)大學, 2008.

[20] 向梟, 陳建, 周興華, 等. 黃芪多糖對齊口裂腹魚生長、體組成和免疫指標的影響[J]. 水生生物學報, 2011, 35(2): 291-299.

[21] 張艷秋, 詹勇, 黃磊. 多糖復合物糖萜素對淡水白鯧生長和肉質(zhì)指標作用的初級報告[J]. 飼料工業(yè), 2005, 26(4): 57-59.

[22] 何福林, 向建國, 李常健, 等. 水溫對虹鱒血液學指標影響的初步研究[J]. 水生生物學報, 2007, 31(3): 363-369.

[23] 邱燕, 葉元土, 蔡春芳, 等. 棉子糖對草魚生長性能和血清生化指標的影響[J]. 動物營養(yǎng)學報, 2010, 22(2): 393-400.

[24] MICHAEL MILLER M D. Raising an isolated low HDL-C level: why, how, and when?[J]. Cleveland Clinic Journal of Medicine, 2003, 70(6): 553-560.

[25] ENES P, POUSAO F P, SALMERóN C, et al. Effect of guar gum on glucose and lipid metabolism in white sea bream Diplodus sargus[J]. Fish Physiology and Biochemistry, 2013, 39(2): 159-169.

[26] REUE K, DOOLITTLE M H. Naturally occurring mutations in mice affecting lipid transport and metabolism[J]. Journal of Lipid Research, 1996, 37:1387-1405.

[27] 楊鴻昆, 黃凱, 阮棟儉. 養(yǎng)殖魚類脂肪肝及防治研究進展[J]. 水利漁業(yè), 2007, 27(1): 4-6.

[28] 朱瑞俊, 李小勤, 謝駿, 等. 飼料中添加氯化膽堿對草魚成魚生長、脂肪沉積和脂肪代謝酶活性的影響[J]. 中國水產(chǎn)科學, 2010, 17(3): 527-534.

[29] 吳旋. 四種中草藥多糖對黃顙魚生長、體成分及部分生理生化指標的影響[D]. 天津: 天津農(nóng)學院, 2011.

Effect of Dietary Oxidized Konjac Glucomannan on Growth Performance, Blood Lipid and Lipid Metabolism Enzymes Activities in Schizothorax prenanti Tchang

ZHOU Cheng, WU Ying-long*, XIA Xiao-jie, TANG Miao, LIAO Jie
(College of Food Science, Sichuan Agricultural University, Ya’an 625014, China)

Objective: To study the effect of dietary oxidized konjac glucomannan (OKGM) on growth performance, blood lipid and lipid metabolism enzyme activities in Schizothorax prenanti Tchang (SPT). Methods: Three hundred SPT with initial body weigh of (79.54 ± 8.12) g were randomly divided into 5 groups with 3 replicates of 20 fish in each group. The feed for control group (D1) was free of OKGM, and that for treatment groups contained 4, 8, 16 and 32 g/kg OKGM, respectively. The experiment lasted for 60 days. Results: Compared with the control group, body weight gain rate and specific growth rate were significantly improved by adding 8 g/kg and 16 g/kg OKGM in the SPT diet (P ＜ 0.05). Addition of 16 g/kg OKGM in the SPT diet could significantly increase protein efficiency ratio, and reduce feed conversion ratio and muscle moisture (P ＜ 0.05). Meanwhile, addition of 8 g/kg OKGM resulted in a significant reduction in the fat content in muscle and hepatopancreas (P ＜ 0.05). In addition, addition of 4–16 g/kg OKGM in the SPT diet significantly enhanced intraperitoneal fat ratio (P ＜ 0.05). Moreover, addition of OKGM in the SPT diet affected the contents of total cholesterol, triglyceride, high-density lipoprotein cholesterol and low-density lipoprotein cholesterol in serum without any dose-response relationship. OKGM addition at a dose of 4–8 g/kg in the SPT diet could significantly decrease the content of free fatty acids. Furthermore, the activities of lipoprotein lipase, hepatic lipase and total lipase were significantly increased by adding 16 g/kg OKGM (P ＜ 0.05). On the other hand, the activity of intestinal lipase was significantly improved due to addition of OKGM at a dose of 8–32 g/kg (P ＜ 0.05). Conclusion: Feed containing appropriate amounts of OKGM can improve the growth performance of SPT, increase thefeed conversion ratio, decrease muscle fat content, and improve the activities of lipid metabolism enzymes and lipase. Meanwhile, OKGM at a dose of 4–16 g/kg is the optimal concentration in SPT feed.

oxidized konjac glucomannan; Schizothorax prenanti Tchang; growth; blood lipid; lipid metabolism enzyme activity

TS254.1

A

1002-6630（2014）09-0250-06

10.7506/spkx1002-6630-201409049

2013-08-11

四川農(nóng)業(yè)大學“211”工程雙支計劃項目（2013）

周成（1986—），男，碩士研究生，研究方向為功能性食品。E-mail：806888397@qq.com

*通信作者：鄔應龍（1963—），男，教授，博士，研究方向為功能性食品。E-mail：wuyinglong99@163.com