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      內(nèi)蒙古奶豆腐中潛在益生性乳酸菌的篩選

      2014-01-30 07:35:36顧蕓佳馬文慧楊貞耐
      食品科學(xué) 2014年13期
      關(guān)鍵詞:膽鹽耐受性胃液

      王 輯,顧蕓佳,馬文慧,楊貞耐,*

      (1.北京工商大學(xué) 食品質(zhì)量與安全北京實驗室,北京 100048;2.吉林大學(xué)生物與農(nóng)業(yè)工程學(xué)院,吉林 長春 130025)

      益生菌是一類活性微生物,攝取一定量時,會對宿主產(chǎn)生確切健康功效從而改善宿主微生態(tài)平衡,發(fā)揮益生作用[1]。常見的益生菌主要包括乳桿菌(Lactobacillus)和雙歧桿菌(Bifidobacterium)[2]。據(jù)報道,益生菌具有調(diào)節(jié)腸道菌群結(jié)構(gòu)、降低膽固醇、抗氧化、預(yù)防癌癥、抑制病原菌、緩解乳糖不耐癥、增強人體免疫力、緩解過敏和抑制腫瘤生長 等生理功能[3-5]。另外,益生菌的添加還可以改善發(fā)酵乳制品的質(zhì)構(gòu),形成獨特的風(fēng)味[6]。益生菌要想在人體內(nèi)發(fā)揮功能特性,前提必須保證其在胃液的酸性環(huán)境、小腸中 的膽汁鹽環(huán)境以及厭氧環(huán)境中存活下來,同時還要對 腸道細(xì)胞具有一定的黏附性。因此,在益生菌的篩選過程中,菌株的胃液耐受性、膽鹽耐受性及細(xì)胞表面疏水性是必不可少的重要評定指標(biāo)。

      我國傳統(tǒng)發(fā)酵乳制品資源豐富,具有制作簡便、貯存時間較長、營養(yǎng)價值豐富及風(fēng)味純正等特點。此外,傳統(tǒng)發(fā)酵乳制品中還具有豐富的乳酸菌資源。截止到目前,已有部分乳酸菌被分離出來,經(jīng)研究發(fā)現(xiàn)這些菌株是安全可靠的,且具有潛在的益生性及功能特性。Li Shengyu等[7]從內(nèi)蒙古奶豆腐中分離出一株產(chǎn)胞外多糖L.plantarum C88,研究發(fā)現(xiàn)該菌株具有良好的體 外抗氧化活性。張和平等[8]從新疆馬奶酒中分離得到1株L.casei Zhang,研究表明該菌株具有降膽固醇、免疫調(diào)節(jié)及抑制病原菌等生理功能。Wang Yanping[9]和Zhang Li[10]等分別從西藏靈菇中分離出1株L.plantarum MA2和L.plantarum K25,通過體內(nèi)實驗發(fā)現(xiàn)2株菌均具有降低小鼠體內(nèi)膽固醇的能力。崔文明等[11]從傳統(tǒng)乳制品中分離得到1株自溶活性較強的保加利亞乳桿 菌LJJ。Bao Yan等[12]對從傳統(tǒng)乳制品中分離出到的90株發(fā)酵乳桿菌的耐酸性、胃液耐受性、膽鹽耐受性及抑菌活性進行了研究,指出發(fā)酵乳桿菌F6的益生性最好,具有潛在的應(yīng)用價值。

      本研究主要通過對內(nèi)蒙古奶豆腐源乳酸菌菌株的模擬人工胃液耐受性、膽鹽耐受性、疏水性、體外降膽固醇及抗氧化活性進行測定,著力于篩選出具有潛在益生特性的優(yōu)良菌株,為今后開發(fā)新型功能性益生菌制品奠定基礎(chǔ)。

      1 材料與方法

      1.1 材料與試劑

      內(nèi)蒙古各地區(qū)牧民自制的奶豆腐。

      牛膽鹽、膽固醇、胃蛋白酶、1,1-二苯基-2-三硝基苯 肼(1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl,DPPH) 美國Sigma公司;鄰苯二甲醛、氫氧化鉀 國藥集團化學(xué)試劑有限公司;正己烷、冰醋酸、濃硫酸 北京化工廠;亮綠 上海捷瑞生物工程有限公司;溶菌酶 中國醫(yī)科院友誼開發(fā)公司;蛋白酶K 美國Amresco公司;PCR反應(yīng)所需相關(guān)試劑 北京鼎國生物有限公司;乳酸菌16S rDNA通用引物 中國農(nóng)業(yè)大學(xué)提供。

      1.2 儀器與設(shè)備

      U-3900紫外-可見分光光度計 日本日立公司;BX53F正置熒光顯微鏡 日本奧林巴斯公司;T100TM Thermal Cycler PCR儀 美國Bio-Rad公司;MTN-2800W氮吹儀 北京華瑞博遠(yuǎn)科技發(fā)展有限公司;JY92-ⅡDN超聲波細(xì)胞粉碎機 寧波新芝生物科技股份有限公司。

      1.3 培養(yǎng)基

      MRS液體培養(yǎng)基(g/L):大豆蛋白胨1 0.0、牛肉膏 10.0、酵母粉5.0、葡萄糖20.0、吐溫-80 1.0、磷酸氫二鉀2.0、乙酸鈉5.0、檸檬酸鈉5.0、硫酸鎂0.2、硫酸錳0.054,蒸餾水1 000 mL,1 mol/L乙酸調(diào)pH值為6.5,121℃滅菌15 min。

      MRS-THIO液體培養(yǎng)基:向100 mL MRS培養(yǎng)基中加入0.2 g 巰基乙酸鈉,待充分溶解后,用1 mol/L乙酸調(diào)pH值為6.5,121℃滅菌15 min。

      1.4 方法

      1.4.1 菌株的分離純化

      稱取1 g內(nèi)蒙古奶豆腐樣品,加入99 mL pH 6.5無菌磷酸鹽緩沖液(phosphat buffered saline,PBS)中,充分振蕩混勻后,稀釋到10-4、10-5,取100 μL稀釋液涂布于MRS瓊脂平板上,置于37℃厭氧培養(yǎng)24~72 h,挑取典型單菌落,劃線分離純化。對分離所得的菌株進行革蘭氏染色和過氧化氫酶實驗。

      1.4.2 菌株的16S rDNA分子鑒定

      提取菌株的基因組DNA進行片段擴增:采用乳酸菌16S rDNA基因的通用引物,正向引物:A27F:5’-AGC GGATCACTTCACACAGGACTACGGCTACCTTGTTAC GA-3’,反向引物:A1495R:3’-GCAGAGTTCTCGGA GTCACGAAGAGTTTGATCCTGGCTCAG-5’,1.5%瓊脂糖凝膠電泳,目標(biāo)片段長度約1 500 bp。聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(polymerase chain reaction,PCR)產(chǎn)物委托北京鼎國生物有限公司進行測序,將測序結(jié)果與國家生物技術(shù)信息中心(National Center for Biotechnology Info rmation,NCBI)數(shù)據(jù)庫中的核酸序列進行比對。

      1.4.3 菌株在模擬人工胃液中的耐受性測定

      取活化好的菌液,4℃、6 000×g離心10 min,收集菌體。用無菌PBS緩沖液(pH6.5)洗滌2次,加入5 mL PBS緩沖液(pH 6.5)制成菌懸液。取1 mL菌懸液接入含9 mL pH 3.0的模擬人工胃液(0.2 g/100 mL NaCl,0.35 g/100 mL胃蛋白酶,過濾除菌)試管中,置于37℃厭氧培養(yǎng)。分別于接種后0 h和3 h取樣,稀釋涂布于MRS瓊脂平板上,37℃厭氧培養(yǎng)48 h后,進行活菌計數(shù)[13]。菌株存活率計算見公式(1)[14]。

      式中:N1為胃液處理3 h后活菌數(shù)(lg(CFU/mL));N0為胃液處理0 h活菌數(shù)(lg(CFU/mL))。

      1.4.4 菌株對高質(zhì)量濃度膽鹽的耐受性測定

      將活化好的菌株按3%(V/V)接種量分別接種于含有0.3、0.5、1.0 g/100 mL膽鹽的MRS液體培養(yǎng)基中,37℃厭氧培養(yǎng)24 h,測定各培養(yǎng)基在560 nm波長處的吸光度(A560nm),以不添加膽鹽的培養(yǎng)基為對照,測定菌株的存活情況。

      1.4.5 菌株的疏水性測定

      取活化好的菌液,4℃、6 000×g離心10 min,收集菌體,用無菌的PBS緩沖液(pH6.5)洗滌2次。緩沖液作空白對照,用緩沖液調(diào)整菌體濃度,使其A560nm值為1.00。取3 mL調(diào)整后的菌液,分別加入0.6 mL的甲苯和十六烷,渦旋振蕩,靜置分層后,取下層水相,緩沖液作空白對照,在560 nm波長處測吸光度[15]。疏水率計算見公式(2)。

      式中:A0為菌液與吸附劑混勻前的吸光度;A1為菌液與吸附劑混勻后的吸光度。

      1.4.6 菌株的體外降膽固醇能力測定

      將活化好的菌株按3%接種量分別接種于含0.01 g/100 mL膽固醇的MRS-THIO液體培養(yǎng)基中,37℃培養(yǎng)24 h,4℃、6 000×g離心10 min,收集上清。采用鄰苯二甲醛比色法測定上清液中膽固醇含量[13],并計算菌株的膽固醇降解率,見公式(3)。

      式中:A0為未接菌的高膽固醇培養(yǎng)基在550 mm波長處的吸光度;A1為發(fā)酵上清液在550 mm波長處的吸光度。

      1.4.7 菌株的體外抗氧化活性測定

      1.4.7.1 無細(xì)胞提取液的制備

      將活化好的菌株按3%接種量接種于MRS液體培養(yǎng)基,37℃培養(yǎng)16 h,4℃、6 000×g離心10 min,收集菌體,無菌PBS緩沖液(pH 6.5)洗滌3次,重懸于PBS中,調(diào)整菌液濃度至108、109、1010CFU/mL。向各濃度菌液中添加溶菌酶至質(zhì)量濃度0.1 g/100 mL,37℃恒溫水浴30 min,冰浴超聲破碎菌體細(xì)胞(超聲波功率800 W,超聲波每次輻射2 s,間隔2 s,總時間15 min)至顯微鏡下觀察無完整菌體,4℃、8 000×g離心10 min,收集上清液即為無細(xì)胞提取液,4℃保存?zhèn)溆谩?/p>

      主要采用BA樓控控制的方式,通過硬接點的形式接入DDC模塊實現(xiàn),要了解風(fēng)機盤管控制原理。風(fēng)機盤管的電氣設(shè)計情況(見圖2)不同于通常的動力設(shè)備,風(fēng)機盤管的功率較小,一般不單獨設(shè)置控制箱,電氣設(shè)計類似照明設(shè)計,單獨設(shè)置回路,且同時并接多個風(fēng)機盤管設(shè)備,設(shè)置的數(shù)量與回路功率有關(guān),只要保持功率在合理范圍內(nèi)即可。

      1.4.7.2 菌株對過氧化氫的耐受性測定

      將活化好的菌株按1%接種量接種于含不同濃度(0、0.4、0.7、1.0 mmol/L)過氧化氫的MRS液體培養(yǎng)基中,37℃培養(yǎng)8 h,4℃、6 000×g離心10 min,收集菌體,無菌PBS緩沖液(pH6.5)洗滌3次,重懸于PBS中,于600 nm波長處測定其吸光度。

      1.4.7.3 菌株清除羥自由基(?OH)能力的測定

      采用Fenton法測定菌株對?OH的清除作用[15]。Fenton反應(yīng)體系:0.435 mmol/L的亮綠1 mL,0.5 mmol/L的硫酸亞鐵2 mL,3 g/100 mL的過氧化氫1.5 mL。向Fenton反應(yīng)體系中加入1 mL不同濃度菌株(108、109、1010CFU/mL)的無細(xì)胞提取液,混合均勻后,37℃恒溫水浴20 min,4℃、8 000×g離心10 min,取上清液,于624 nm波長處測吸光度。?OH清除率計算見公式(4)。

      式中:A為無Fenton試劑、無樣品、有亮綠的吸光度;A0為有Fenton試劑、無樣品、有亮綠的吸光度;As為有Fenton試劑、有樣品、有亮綠的吸光度。

      1.4.7.4 菌株清除DPPH自由基能 力的測定

      取1 mL不同濃度的菌液(109、1010CFU/mL)加入2 mL DPPH甲醇溶液(0.5 mmol/L),混合均勻后室溫下避光反應(yīng)30 min,4℃、8 000×g離心10 min,取上清液,于517 nm波長處測吸光度,無菌水空白調(diào)零??瞻捉M以等體積甲醇代替DPPH溶液,對照組以等體積無菌水代替菌液[16]。DPPH自由基清除率計算見公式(5)。

      式中:A為空白組的吸光度;A0為對照組的吸光度;As為樣品組的吸光度。

      1.5 數(shù)據(jù)分析

      2 結(jié)果與分析

      2.1 菌株的分離純化

      從內(nèi)蒙古奶豆腐中共分離得到16株革蘭氏染色陽性、過氧化氫酶陰性的菌株。其中桿菌2株,球菌14株。

      2.2 菌株16S rDNA分子鑒定

      圖1 菌株的16S rDNA PCR擴增結(jié)果Fig.1 Electrophoregram of 16S rDNA amplification products of the strains

      對提取菌株的總DNA進行PCR擴增,結(jié)果如圖1所示,擴增出16 條特異的、大小約為1 500 bp的條帶。獲得的特異性片段純化后進行測序,將測序結(jié)果用BL AST進行序列同源性比對,根據(jù)比對結(jié)果可鑒定菌株到屬。其中5株菌鑒定為屎腸球菌,分別是菌株M1-1、M6-2、M7-1、M8-1和M8-2;9株鑒定為乳酸片球菌,分別是菌株M1-3、M2-1、M2-2、M3-1、M4-1、M4-2、M5-1、M5-2和M5-3;1株鑒定為植物乳桿菌(M1-2);1株鑒定為鼠李糖乳桿菌(M6-1),結(jié)果見表1。

      表1 菌株鑒定結(jié)果Table1 Identification of screened strains

      2.3 菌株在模擬人工胃液中的耐受性

      圖2 菌株在模擬人工胃液中的耐受性Fig.2 The tolerance of the strains to simulated artificial gastric juice

      由圖2可知,16株菌表現(xiàn)出不同程度的模擬人工胃液耐受性。L.plantarum M1-2、L.rhamnosus M6-1、E.faecium M1-1和M6-2耐受性較好,在pH 3.0模擬人工胃液中培養(yǎng)3 h后的存活率均超過了80%,其中E.faecium M6-2的耐受性最高,存活率達(dá)到了96.90%。有10株菌的耐受性一般,存活率在60%~80%之間。而P.acidilactici M3-1和M5-3的耐受性較差,存活率僅為36.09%和49.81%。

      2.4 菌株對高質(zhì)量濃度膽鹽的耐受性

      小腸是人體吸收膽固醇的重要場所,同時也是乳酸菌發(fā)揮其降膽固醇作用的主要部位。正常人體小腸中膽汁鹽質(zhì)量濃度在0.03~0.3 g/100 mL范圍內(nèi)波動,乳酸菌若要定殖于小腸,就必須有一定的膽汁 鹽耐受的能力。從表2可以看出,隨著膽鹽質(zhì)量濃度的升高,各菌株的生長受到不同程度的抑制,各菌株在相同膽鹽質(zhì)量濃度下的生長情況存在顯著差異。其中E.faecium M7-1、M8-1和M8-2對膽鹽的耐受性較高,而其他菌株對膽鹽的耐受性較弱。

      表2 不同膽鹽質(zhì)量濃度下菌株的生長情況(以A56600 nnmm值表示)Table2 Tolerance of the strains to different concentrations of bile salts(represented by A560 nm)

      2.5 菌株的疏水性

      圖3 菌株的疏水性比較Fig.3 Comparison of the hydrophobicity of the strains

      由圖3可知,在以甲苯和十六烷為吸附劑時,L.rhamnosus M6-1的疏水性最高,對甲苯和十六烷的疏水率分別為20.60%和22.15%,L.plantarum M1-2的疏水性較好,對甲苯和十六烷的疏水率分別為16.73%和15.58%,而其他菌株的疏水性較弱。

      2.6 菌株的體外降膽固醇能力

      圖4 菌株的體外降膽固醇能力比較Fig.4 Comparison of the in vitro cholesterol-reducing ability of the strains

      由圖4可知,大部分菌株均有相應(yīng)降低膽固醇的能力,但其能力大小因菌株的不同有所差異。其中E.faecium M1-1、L.plantarum M1-2、P.acidilactici M1-3和M2-1的體外降膽固醇能力較高,膽固醇降解率分別為54.44%、45.56%、34.44%和42.01%。而其他菌株的降解率除了P.acidilactici M2-2為26.89%以外,均在20%以下。

      2.7 菌株的體外抗氧化活性

      過氧化氫作為?OH的前體參與氧化過程,是衡量菌體抗氧化活性的一個重要指標(biāo)。因此,本實驗通過分析菌株對過氧化氫的耐受情況,篩選具有抗氧化作用的益生菌株。受試16株菌在不同濃度過氧化氫中的生長狀況(以A600nm值表示)如表3所示,菌株對過氧化氫的耐受呈濃度依賴關(guān)系,多數(shù)菌株對低濃度過氧化氫(0.4 mmol/L)具有較強的耐受能力,37℃培養(yǎng)8 h后,A600nm大于1.0,而對高濃度過氧化氫(1 mmol/L)耐受能力較弱。其中L.plantarum M2-1、L.rhamnosus M6-1和E.faecium M8-2相比于其他菌株,對高濃度過氧化氫(1 mmol/L)的耐受性較強。

      表3 不同過氧化氫濃度下菌株的生長情況(以A60000 nnmm值表示)Table3 Tolerance of the strains to different concentrations of hydrogen peroxide (represented by A60000 nnmm))

      圖5 菌株對?OH的清除能力比較Fig.5 Comparison of the strains for scavenging activities on hydroxyl radicals

      由圖5可知,不同菌株的?OH清除能力差異顯著,且菌株的清除能力呈濃度依賴關(guān)系,隨無細(xì)胞提取液濃度的增加,?OH的清除能力不斷提高。在受試的16株菌中,L.rhamnosus M6-1在1010CFU/mL時對?OH的清除能力最高,清除率為66.87%。此外,P.acidilactici M2-1、M4-2和 M5-3也表現(xiàn)出較高的?OH清除能力,在1010CFU/mL時對?OH的清除率均在50%以上。

      圖6 菌株對DPPH自由基的清除能力比較Fig.6 Comparison of the strains for scave nging effects on DPPH free radicals

      DPPH是一種穩(wěn)定的有機自由基,當(dāng)有自由基清除劑存在時,由于與其單電子配對顏色減退,從而檢測自由基清除情況及物 質(zhì)的抗氧化能力。由圖6可知,16株菌對DPPH自由基的清除能力差異不明顯。其中L.rhamnosus M1-2對DPPH自由基的清除能力最高,清除率為55.58%,而其他菌株的清除率也均在40%以上。此外,菌株 對DPPH自由基的清除能力與菌液濃度呈依賴關(guān)系,隨菌液濃度的增加,DPPH自由基的清除能力不斷提高。

      3 討 論

      奶豆腐是我國蒙古族家庭經(jīng)常食用的傳統(tǒng)發(fā)酵乳制品,它是用生奶自然發(fā)酵,至乳清與乳酪分離后煮沸而制成[17]。奶豆腐中含有大量的乳酸菌,從中篩選具有潛在益生特性的菌株已成為目前國內(nèi)研究的熱點。本研究從內(nèi)蒙古奶豆腐中分離得到16株疑似菌株,經(jīng)革蘭氏染色、過氧化氫酶及16S rDNA鑒定,5株為屎腸球菌,9株為乳酸片球菌,植物乳桿菌和鼠李糖乳桿菌各1株。周雨霞[18]對內(nèi)蒙古地區(qū)傳統(tǒng)發(fā)酵乳制品中乳酸菌進行了分離鑒定,認(rèn)為植物乳桿菌是該地區(qū)乳制品中的優(yōu)勢菌株。旭日花[19]也做了相似的研究,結(jié)果發(fā)現(xiàn)植物乳桿菌和乳酸乳球菌乳酸亞種是該地區(qū)乳制品中的優(yōu)勢菌株。而本研究分離得到的16株菌中,乳酸片球菌占了56.3%,為優(yōu)勢菌群。

      益生菌在人體內(nèi)發(fā)揮益生特性的前提條件是保證其在胃液的酸性環(huán)境、腸道的膽鹽環(huán)境和厭氧環(huán)境中存活下來。人體空腹時胃液pH值一般在1.3~1.8之間,進食后上升到3.0左右或更高,食物在胃中停留約3 h。正常人體小腸中膽汁鹽質(zhì)量濃度在0.03~0.3 g/100 mL范圍內(nèi)波動。本研究中,除了乳酸片球菌M3-1和M5-3以外,其余菌株均表現(xiàn)出較好的模擬人工胃液耐受性,在pH3.0的模擬人工胃液中培養(yǎng)3 h后,存活率均達(dá)到60%以上。在膽鹽耐受實驗中,屎腸球菌M7-1、M8-1和M8-2對膽鹽的耐受性較高,而其他菌株對膽鹽的耐受性較弱。

      益生菌的篩選要求除了要具有耐受胃腸液的環(huán)境,還要對腸道上皮細(xì)胞具有一定的黏附性,保證其在微環(huán)境中成為優(yōu)勢菌株,有利于益生特性的發(fā)揮。有研究[20]表明,菌株的黏附性與疏水性呈正相關(guān),疏水性高有利于菌株定殖于腸道內(nèi)。本研究中篩選得到2株疏水性較好的菌株,分別為鼠李糖乳桿菌M6-1和植物乳桿菌M1-2。Zago等[21]研究發(fā)現(xiàn)多數(shù)植物乳桿菌具有良好的細(xì)胞表明疏水性。Tuo Yanfeng等[22]研究發(fā)現(xiàn)鼠李糖乳桿菌對HT-29細(xì)胞具有較高的黏附性。

      本研究通過在培養(yǎng)基中添加膽固醇(0.01 g/100 mL),采用鄰苯二甲醛比色法測定培養(yǎng)基中膽固醇質(zhì)量濃度變化來評價菌株的體外降膽固醇能力。結(jié)果篩選出4株具有較高體外降膽固醇能力的菌株(屎腸球菌M1-1、植物乳桿菌M1-2、乳酸片球菌M1-3和M2-1),膽固醇降解率均超過了30%。目前,有關(guān)乳酸菌的降膽固醇機理大致可分為3種:1)乳酸菌的膽鹽水解酶活性使膽鹽由結(jié)合態(tài)轉(zhuǎn)變?yōu)槊摻Y(jié)合態(tài),與膽固醇發(fā)生共沉淀[23];2)乳酸菌對膽固醇的直接吸附、吸收同化[24];3)其他機理。關(guān)于乳酸菌的降膽固醇機理之所以尚無定論,主要是因為研究中所采用的膽鹽種類和添加量,膽固醇的種類和添加量,菌種自身的特性(耐酸、耐膽鹽、降膽固醇機制),喂養(yǎng)的飼料、實驗動物以及飼喂時間不同有關(guān)。

      從表2菌株對膽鹽的耐受性結(jié)果可知,屎腸球菌M1-1、植物乳桿菌M1-2、乳酸片球菌M1-3和M2-1雖然具有較強的體外降膽固醇能力,但是這4株菌對膽鹽的耐受性均較弱。對于功能性較好而耐受性較弱的菌株,宜對菌株進行保護,如采用微膠囊化技術(shù)處理菌體,可以有效地保護菌體免受外界不良環(huán)境的影響,從而使其以活菌的形式到達(dá)人體腸道內(nèi),發(fā)揮其益生功能。Chávarri等[25]利用海藻酸和殼聚糖將格氏乳桿菌和雙歧桿菌進行微膠囊化,結(jié)果發(fā)現(xiàn)2株菌在模擬胃腸液中均表現(xiàn)出良好的存活能力。Brinques等[26]研究發(fā)現(xiàn)利用微膠囊技術(shù)可提高乳桿菌在酸奶冷藏期間的存活能力。許女等[27]研究發(fā)現(xiàn)微膠囊化的植物乳桿菌MA2的耐熱性和恒溫儲存性能都顯著高于未微膠囊化的菌體。

      抗氧化活性是益生菌非常重要的生理功能指標(biāo)。研究表明,益生菌主要是通過耐受一定濃度O2或H2O2、清除機 體內(nèi)有害自由基(DPPH自由基、?OH和超氧陰離子自由基)、抗脂質(zhì)過氧化及產(chǎn)生抗氧化物質(zhì)(超氧化物歧化酶、谷胱甘肽過氧化氫酶及過氧化氫酶)等作用發(fā)揮其抗氧化活性[28]。本研究主要通過對菌株的過氧化氫耐受性、?OH和DPPH自由基的清除能力,來評價其體外抗氧化活性。結(jié)果篩選出1株具有較強體外抗氧化活性的菌株,為鼠李糖乳桿菌M6-1。此外,本研究還發(fā)現(xiàn)菌株的體外抗氧化活性與菌液濃度呈依賴關(guān)系,隨菌液濃度的增加,?OH和DPPH自由基的清除能力不斷提高。

      4 結(jié) 論

      本研究從內(nèi)蒙古奶豆腐中分離得到16株菌,其中9株鑒定為乳酸片球菌、5株為屎腸球菌、1株為植物乳桿菌、1株為鼠李糖乳桿菌。對這些菌株進行模擬人工胃液和膽鹽耐受性、疏水性、體外降膽固醇及抗氧化活性測定的結(jié)果表明:菌株對模擬人工胃液和膽鹽具有不同程度的耐受性,對甲苯和十六烷具有不同的疏水性;腸球菌M1-1、植物乳桿菌M1-2、乳酸片球菌M1-3和M2-1的體外膽固醇降解率均超過30%;鼠李糖乳桿菌M6-1對過氧化氫的耐受性、?OH和DPPH自由基的清除能力最高。綜上所述,植物乳桿菌M1-2和鼠李糖乳桿菌M6-1具有較好的益生特性,可作為今后開發(fā)功能性產(chǎn)品的潛在益生菌資源。

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