王春生,張志崇,張秋婷,樸善花,仇雨歌,安鐵洙
(東北林業(yè)大學(xué) 生命科學(xué)學(xué)院,黑龍江 哈爾濱 150040)
自Wilmut等[1]獲得體細(xì)胞核移植后代“多利”以來,體細(xì)胞核移植技術(shù)獲得快速發(fā)展。Baguis等[2](1999)采用體細(xì)胞核移植技術(shù)首次獲得了克隆山羊。此外,Keefer等[3]用外源基因轉(zhuǎn)染的體細(xì)胞為核供體,通過體細(xì)胞核移植方法獲得轉(zhuǎn)基因山羊。目前,利用體細(xì)胞核移植技術(shù)已成為制作轉(zhuǎn)基因動(dòng)物的有效手段。為了建立通過山羊乳汁獲得抗菌肽(Antimicrobial peptides,ABP)的方法,本研究利用在前期工作[3]獲得的中國林蛙皮膚ABP的真核表達(dá)載體Tem-GFP-pBC1,轉(zhuǎn)染山羊乳腺上皮細(xì)胞以獲得便于檢測(cè)并能在山羊乳腺特異表達(dá)Tem-GFP的轉(zhuǎn)基因陽性細(xì)胞。本研究進(jìn)一步開展通過體細(xì)胞核移植獲得山羊乳腺特異表達(dá)ABP的轉(zhuǎn)基因山羊的相關(guān)研究奠定基礎(chǔ)。
1.1.1 實(shí)驗(yàn)用細(xì)胞 山羊乳腺上皮細(xì)胞(由東北農(nóng)業(yè)大學(xué)高學(xué)軍教授饋贈(zèng))。
1.1.2 主要藥品和試劑 SalI(TaKaRa);脂質(zhì)體Lipofectamine 2000(invitrogen);基因組DNA提取試劑盒(TaKaRa);RNA提取試劑RNAiso plus(TaKaRa)。
1.1.3 重組質(zhì)粒Tem-GFP-pBC1 利用前期工作[3]中構(gòu)建的重組質(zhì)粒Tem-GFP-pBC1,即在提取中國林蛙皮膚抗菌肽Temporin-1CEa mRNA基礎(chǔ)上,通過反轉(zhuǎn)錄獲得其cDNA。利用cDNA、pEASY-T3克隆載體和GFP基因構(gòu)建獲得山羊乳腺特異表達(dá)的重組質(zhì)粒Tem-GFP-pBC1。
1.2.1 山羊乳腺上皮細(xì)胞的傳代 采用常規(guī)方法,將冷凍保存的山羊乳腺上皮細(xì)胞經(jīng)解凍復(fù)蘇后,在二氧化碳培養(yǎng)箱中(37℃,5%CO2,飽和濕度)進(jìn)行培養(yǎng)。當(dāng)細(xì)胞達(dá)到90%以上匯合時(shí),進(jìn)行傳代培養(yǎng)。
1.2.2 山羊乳腺上皮細(xì)胞的轉(zhuǎn)染及轉(zhuǎn)基因陽性細(xì)胞的篩選 采用王春生等[5]方法,用通過SalI單酶切后線性化的重組質(zhì)粒Tem-GFP-pBC1或者空載體pEASY-T3(對(duì)照組)對(duì)山羊乳腺上皮細(xì)胞進(jìn)行轉(zhuǎn)染,48 h后,利用含有400 μg/mL G418(預(yù)篩選的最佳濃度)選擇培養(yǎng)基進(jìn)行轉(zhuǎn)基因陽性細(xì)胞篩選。
1.2.3 轉(zhuǎn)基因細(xì)胞的鑒定 將上述獲得的轉(zhuǎn)基因陽性細(xì)胞進(jìn)行傳代培養(yǎng),觀察其細(xì)胞形態(tài)、生長曲線、冷凍復(fù)蘇后增殖特點(diǎn)等。此外,根據(jù)基因組DNA提取試劑盒說明提取上述篩選獲得的轉(zhuǎn)Tem-GFP-pBC1的陽性細(xì)胞的基因組DNA。采用根據(jù)Tem-GFP-pBC1序列設(shè)計(jì)的引物(5’-TCAAGGAGGATGGCAACA-3’和5’-GTGGACAGGTAGT GGTTATC-3’)對(duì)細(xì)胞基因組DNA進(jìn)行PCR檢測(cè)。
1.2.4 轉(zhuǎn)基因陽性細(xì)胞的Tem-GFP基因RT-PCR檢測(cè) 根據(jù)Genbank中山羊GAPDH基因序列和插入基因 Tem-GFP 序列,利用 Oligo6.0和Primer 6.0軟件,分別設(shè)計(jì)1對(duì)RT-PCR引物(GAPDH:5’-ATCACTG CCACCCAGAAGACT-3’和 5’-CATGCCAGTGAGCTTCCCGTT-3’;Tem-GFP:5’-TCAAGGAGGATGGCAACA-3’和5’-GTGGACAGGTAGTGGT TATC-3’);采用Trizol法分別提取轉(zhuǎn)染前后細(xì)胞的總RNA,并經(jīng)反轉(zhuǎn)錄獲得cDNA;。聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng):采用25μL反應(yīng)體系進(jìn)行,反應(yīng)混合物包括10×buffer 2.5μL(含 MgCl2),cDNA1.5μL,引物各 0.5μL,dNTP 0.5μL,Taq 酶 0.3μL,ddH2O 19.7μL。反應(yīng)條件為:94℃預(yù)變性5min,94℃變性30 s,60℃復(fù)性30 s,72℃延伸30 s,30個(gè)循環(huán);72℃延伸10min后保存于4℃。擴(kuò)增結(jié)束后,取5μL PCR產(chǎn)物于1.0%瓊脂糖凝膠進(jìn)行電泳,并用凝膠成像系統(tǒng)記錄結(jié)果。
將乳腺特異性表達(dá)質(zhì)粒Tem-GFP-pBC1經(jīng)SalI單酶切進(jìn)行線性化,并通過瓊脂糖凝膠電泳進(jìn)行鑒定,其結(jié)果,與未經(jīng)SalI單酶切的Tem-GFP-pBC1(陰性對(duì)照)的雙條帶不同,Tem-GFP-pBC1經(jīng)SalI單酶切后,僅能觀察到1條條帶(圖1)。
當(dāng)傳代培養(yǎng)的山羊乳腺上皮細(xì)胞(圖2)達(dá)到90%以上匯合時(shí),采用脂質(zhì)體法轉(zhuǎn)染經(jīng)線性化的山羊乳腺特異表達(dá)載體Tem-GFP-pBC1,其結(jié)果,在轉(zhuǎn)染后的第24 h,在熒光倒置顯微鏡下可觀察到表達(dá)GFP的細(xì)胞,在轉(zhuǎn)染后的第48 h,約有60%細(xì)胞表達(dá)GFP(圖3)。
圖1 Tem-GFP-pBC1的線性化電泳圖Fig.1 SalI digestion of Tem-GFP-pBC1
圖2 傳代培養(yǎng)的山羊乳腺上皮細(xì)胞(50×)Fig.2 Subculture goat mammary epithelial cells(50×)
將上述經(jīng)轉(zhuǎn)染48 h的轉(zhuǎn)Tem-GFP-pBC1陽性細(xì)胞,利用G418進(jìn)行陽性細(xì)胞篩選,其結(jié)果,獲得在熒光倒置顯微鏡下發(fā)出綠色熒光(表達(dá)GFP)的轉(zhuǎn)基因陽性細(xì)胞(圖4)。
2.4.1 轉(zhuǎn)基因陽性細(xì)胞的形態(tài) 在熒光倒置顯微鏡下,轉(zhuǎn)基因陽性細(xì)胞(圖5)和傳代培養(yǎng)的山羊乳腺上皮(圖2)一樣,分散的細(xì)胞呈現(xiàn)梭形,而堆積存在的細(xì)胞呈現(xiàn)圓形或橢圓形。當(dāng)細(xì)胞達(dá)到90%以上匯合時(shí),細(xì)胞的形態(tài)呈現(xiàn)圓形或橢圓形(圖6)。
圖3 轉(zhuǎn)染Tem-GFP-pBC1后第48 h的表達(dá)GFP的山羊乳腺上皮細(xì)胞(50×)Fig.3 goat mammary epithelial cells could express GFP after transfection 48h(50×)
圖4 篩選特異表達(dá)GFP的轉(zhuǎn)基因陽性細(xì)胞(50×)Fig.4 G418-resistant cells express GFP specially(50×)
圖5 傳代培養(yǎng)的轉(zhuǎn)基因陽性細(xì)胞(50×)Fig.5 Subculture of positive transgenic cells(50×)
圖6 90%以上匯合的轉(zhuǎn)基因陽性細(xì)胞(50×)Fig.6 above 90%confluence transgenic cell(50×)
圖7 轉(zhuǎn)基因細(xì)胞的生長曲線Fig.7 The growth curve of goat mammary epithelial cells transfected by Tem-GFP-pBC1
2.4.2 轉(zhuǎn)基因陽性細(xì)胞的生長曲線 將獲得的轉(zhuǎn)基因陽性細(xì)胞進(jìn)行續(xù)培養(yǎng)時(shí),于續(xù)培養(yǎng)后的第24 h開始貼壁,前4 d生長緩慢,第9天時(shí)細(xì)胞匯合至約90%,而第10天始趨于平穩(wěn),其生長曲線呈“S”形,符合細(xì)胞生長的生物學(xué)規(guī)律(圖7)。
2.4.3 轉(zhuǎn)基因陽性細(xì)胞的冷凍復(fù)蘇后的生物學(xué)特性 將冷凍保存的轉(zhuǎn)基因細(xì)胞經(jīng)復(fù)蘇后進(jìn)行續(xù)培養(yǎng),并在熒光倒置顯微鏡下觀察其形態(tài),其結(jié)果,和正常傳代培養(yǎng)的山羊乳腺上皮細(xì)胞一樣,分散時(shí)呈現(xiàn)梭形,當(dāng)?shù)竭_(dá)90%以上匯合時(shí),呈現(xiàn)圓形或橢圓形(圖未顯示);當(dāng)對(duì)復(fù)蘇的細(xì)胞進(jìn)行續(xù)培養(yǎng)時(shí),培養(yǎng)后24 h開始貼壁,前4 d生長緩慢,第9天時(shí)細(xì)胞匯合達(dá)到90%以上,10 d后趨于平穩(wěn),整個(gè)過程呈現(xiàn)“S”型(圖7)。
2.4.4 轉(zhuǎn)基因陽性細(xì)胞的PCR鑒定 轉(zhuǎn)染Tem-GFP-pBC1后,收集利用含G418的培養(yǎng)基篩選的具有正常增殖能力的山羊乳腺上皮細(xì)胞,提取其基因組,利用特異性引物進(jìn)行PCR擴(kuò)增,可得與陽性對(duì)照(Tem-GFP-pBC1質(zhì)粒)相一致的約240 bp的目的條帶(圖8)。
圖8 轉(zhuǎn)基因細(xì)胞的PCR鑒定Fig.8 PCR identification of transgenic cells
圖9 RT-PCR產(chǎn)物電泳圖Fig.9 Electrophoresis of RT-PCR product
2.4.5 轉(zhuǎn)基因細(xì)胞的Tem-GFP相對(duì)表達(dá)量的檢測(cè) 將RT-PCR的產(chǎn)物進(jìn)行瓊脂糖凝膠電泳后,轉(zhuǎn)染前后GAPDH基因表達(dá)量持平,未轉(zhuǎn)染細(xì)胞沒有檢測(cè)到抗菌肽基因的表達(dá),而轉(zhuǎn)染細(xì)胞可以檢測(cè)到與理論值一致的目的條帶(如圖9)。
ABP是廣泛存在于生物體內(nèi)的一種由20~60個(gè)氨基酸構(gòu)成的具有生物活性的小分子多肽[6-8]由于ABP具有相對(duì)分子質(zhì)量低、較好的水溶性、低抗原性和較強(qiáng)的熱穩(wěn)定性,且抗菌肽是通過增加原核細(xì)胞膜的通透性而誘發(fā)抑菌或殺菌,不易引起病原體對(duì)其產(chǎn)生耐藥性等生物學(xué)特性[9-10]。為了獲取ABP的方法,許多學(xué)者探索了直接利用昆蟲、兩棲類動(dòng)物組織等提取ABP的方法,但是,存在操作復(fù)雜、產(chǎn)量低、成本高等缺陷,難以獲得大量高純度的ABP[11]。
自Simons等[12,13]首次利用轉(zhuǎn)基因小鼠的乳腺表達(dá)綿羊β-球蛋白獲得成功以來,該項(xiàng)技術(shù)已不斷完善。以乳腺作為生物反應(yīng)器大量生產(chǎn)生物活性蛋白變得可能[14]。隨著體細(xì)胞克隆技術(shù)的不斷完善,通過外源 DNA 轉(zhuǎn)染的體細(xì)胞為核供體的體細(xì)胞核移植轉(zhuǎn)基因綿羊[15]、牛[16]、豬[17,18]和山羊[3]相繼獲得成功。上述結(jié)果表明,如果利用目的基因構(gòu)建乳腺特異的表達(dá)載體,經(jīng)轉(zhuǎn)染體細(xì)胞后獲得轉(zhuǎn)基因陽性細(xì)胞,再通過體細(xì)胞核移植的方法就有可能獲得目的基因在乳腺中特異表達(dá)的轉(zhuǎn)基因動(dòng)物。
為了建立通過山羊乳汁獲得中國林蛙抗菌肽的方法,本研究在對(duì)前期工作中獲得山羊乳腺特異表達(dá)的真核表達(dá)載體Tem-GFP-pBC1轉(zhuǎn)染傳代培養(yǎng)的山羊乳腺上皮細(xì)胞,并經(jīng)G418篩選獲得轉(zhuǎn)基因陽性細(xì)胞。其結(jié)果,將線性化的Tem-GFP-pBC1(圖1)轉(zhuǎn)染傳代培養(yǎng)的山羊成纖維細(xì)胞(圖2,3)后,經(jīng)G418篩選獲得轉(zhuǎn)基因陽性細(xì)胞(圖4);轉(zhuǎn)基因陽性細(xì)胞和經(jīng)冷凍復(fù)蘇的轉(zhuǎn)基因陽性細(xì)胞進(jìn)行續(xù)培養(yǎng)后,其細(xì)胞形態(tài)(圖5,6)和生長曲線(圖7)均正常;經(jīng)PCR檢測(cè)Tem-GFP-pBC1已整合入山羊乳腺上皮細(xì)胞的基因組中(圖8),且與對(duì)照組相比,轉(zhuǎn)基因細(xì)胞大量表達(dá)抗菌肽基因Tem(圖9)。上述結(jié)果表明,本研究獲得了能夠在山羊乳腺中特異表達(dá)Tem-GFP融合蛋白的轉(zhuǎn)基因陽性細(xì)胞。能否利用該細(xì)胞通過體細(xì)胞核移植方法獲得乳腺特異表達(dá)中國林蛙抗菌肽的轉(zhuǎn)基因山羊有待于探討。
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