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      響應(yīng)曲面法優(yōu)化金絲桃素提取工藝的研究

      2014-07-11 10:57薛曉麗等
      江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué) 2014年4期
      關(guān)鍵詞:提取

      薛曉麗等

      摘要:優(yōu)化從貫葉連翹粗提取物中提取金絲桃素的工藝條件。在單因素試驗基礎(chǔ)上,采用響應(yīng)曲面法,以金絲桃素的提取率為響應(yīng)值,通過回歸分析各工藝參數(shù)與響應(yīng)值之間的關(guān)系,預(yù)測最佳提取工藝條件。結(jié)果表明:金絲桃素最佳提取條件為:浸提溫度80 ℃,浸提時間 105 min,液料比 75 mL ∶1 g,甲醇體積分?jǐn)?shù)85%,比條件下提取率為 372%。驗證試驗證明此法合理高效,預(yù)測準(zhǔn)確,方便可行。

      關(guān)鍵詞:響應(yīng)曲面法;金絲桃素;提??;工藝條件優(yōu)化

      中圖分類號: R284.2 文獻標(biāo)志碼: A 文章編號:1002-1302(2014)04-0221-03

      收稿日期:2013-08-27

      基金項目:長白山動植物資源利用與保護吉林省高校重點實驗室2012年一般基金(編號:吉農(nóng)院合字[2012]第706號)。

      作者簡介:薛曉麗(1970—),女,吉林永吉人,碩士,高級實驗師,主要從事天然產(chǎn)物化學(xué)的教學(xué)與科研工作。E-mail:lilyxue4222@hotmail.com。金絲桃素屬駢苯二蒽酮類物質(zhì),分子式C30H16O8,廣泛分布于貫葉金絲桃(Hypericum perforatum)、烏腺金絲桃(H. attenuatum)、長柱金絲桃(H. ascyron)等植物中。近年來,金絲桃素在抗腫瘤的光化學(xué)治療、抗病毒(包括HIV)、抗抑郁機制研究等方面十分活躍。已有研究表明,金絲桃素作為有效的光敏劑,通過光動力學(xué)治療可以有效地誘導(dǎo)腫瘤細胞凋亡,臨床上已用于治療基體細胞癌、胰腺癌、膀胱癌甚至腦瘤等[1-4]。另外,近年來大量試驗已證明,金絲桃素為廣譜抗病毒的中草藥活性單體,對多種畜禽傳染病有良好防治效果。已有不少文獻報道了用金絲桃素防治豬高熱病、雞新城疫、鴨病毒性肝炎等[5-9]的事例,使其成為繼紅豆杉、人參和銀杏葉之后,國內(nèi)外研究的又一個熱點,在新藥開發(fā)上具有重大意義[10]。金絲桃素具有特殊理化性質(zhì)及其在光和熱的作用下易分解、易氧化變質(zhì)的特性,故其提取率和產(chǎn)品純度都較低,制約了其深入研究和制藥工藝的發(fā)展。本試驗以甲醇為溶劑,采用易于工業(yè)化生產(chǎn)的熱浸提取方法,以金絲桃素提取率為考察指標(biāo),以提取時間、液固比、提取溫度、甲醇體積分?jǐn)?shù)為提取工藝的主要影響因素,通過單因素試驗確定影響較大的3個因素,采用響應(yīng)曲面法(response surface methodology)進行優(yōu)化,確定從貫葉連翹粗提物中提取金絲桃素的最佳工藝。響應(yīng)曲面法是目前廣泛應(yīng)用于天然產(chǎn)物中有效化學(xué)成分提取工藝優(yōu)化的一種數(shù)據(jù)處理方法[11-13],具有簡便、試驗精度高的優(yōu)點,使用該方法優(yōu)化后的的金絲桃素提取率有明顯的提高,為金絲桃素提取的工業(yè)化生產(chǎn)提供一定的理論依據(jù)。

      1材料與方法

      1.1材料與試劑

      供試材料為貫葉連翹粗粉,購于西安康培基生物科技有限公司。材料陰干至恒重,備用。金絲桃素對照品,購于上海融禾醫(yī)藥科技有限公司,純度>98%。

      試劑包括甲醇、石油醚,均購于天津永大化學(xué)試劑有限公司,去離子水由實驗室自制。

      1.2儀器

      紫外分光光度計(島津 UV-2450);恒溫水浴鍋(金壇醫(yī)療儀器廠HH-S4);分析天平(梅特勒 AL204);超純水機(密理博-Q3)等。

      1.3方法

      1.3.1金絲桃素提取將貫葉連翹粗粉陰干樣品過20目篩,用石油醚在55 ℃脫脂3 次,干燥備用。精確稱取一定量樣品,加入到一定量、一定體積分?jǐn)?shù)的甲醇溶液中,置于一定溫度的水浴鍋中,浸提一定時間后,離心,定容。將提取液稀釋10倍后,置紫外分光光度計中590 nm下檢測吸光度。每個試驗3次平行,取平均值,結(jié)果以提取率(E)表示。E=[(C×V)/m]×f×100%,式中:C為金絲桃素的質(zhì)量濃度(μg/mL);V為加入溶劑的體積(mL);m為樣品的質(zhì)量(g);f為稀釋倍數(shù)。

      1.3.2標(biāo)準(zhǔn)曲線繪制精確稱取金絲桃素對照品5.1 mg,加入到甲醇定容至25 mL的容量瓶中,搖勻,配成質(zhì)量濃度為0.204 mg/mL的對照品溶液,將此溶液稀釋10倍后做為標(biāo)準(zhǔn)母液。準(zhǔn)確量取適量標(biāo)準(zhǔn)母液,定容至10 mL容量瓶中,配成濃度為1.280~20.40 μg/mL的標(biāo)準(zhǔn)溶液。置紫外分光光度計中590 nm下檢測吸光度,繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,得回歸曲線y=0.599 2x+0.248 7,r2=0.999 9。

      2結(jié)果與分析

      2.1單因素試驗

      2.1.1液固比對金絲桃素提取率的影響在溫度80 ℃、甲醇體積分?jǐn)?shù)85%、提取時間110 min的條件下,考察液固比25 ∶1~125 ∶1(mL/g)對提取率的影響,結(jié)果如圖1所示。

      2.1.2提取溫度對金絲桃素提取率影響在液固比 75 mL ∶1 g、甲醇體積分?jǐn)?shù)85%、提取時間110 min的條件下,考察提取溫度60、70、75、80、85 ℃對金絲桃素提取率的影響,結(jié)果見圖2。由圖2可以看出,在80 ℃之前,隨溫度的升高,金絲桃素提取率不斷增加,在80 ℃時提取率達到最大;80 ℃ 后提取率迅速下降。主要是由于溫度過高,金絲桃素迅速分解,使提取率大大下降,因此選擇提取溫度為80 ℃。

      2.1.3提取時間對金絲桃素提取率的影響在液固比 75 mL ∶1 g、提取溫度80 ℃、甲醇體積分?jǐn)?shù)85%的條件下,考察提取時間50、70、90、110、130 min對金絲桃素提取率的影響,結(jié)果見圖3。由圖3可以看出,金絲桃素提取率隨提取時間延長而逐漸增加,在提取110 min時達到最大值,隨后減小。這可能是由于提取時間過長,金絲桃素有部分分解,另外一些糖類和蛋白質(zhì)雜質(zhì)慢慢溶出,使得溶液黏度增大,金絲桃素被吸附在固體基質(zhì)上而不易被提取出來。因此應(yīng)選擇 110 min 作為最佳的提取時間。endprint

      2.1.4甲醇體積分?jǐn)?shù)對金絲桃素提取率的影響在液固比 75 mL∶1 g、提取時間110 min、提取溫度80 ℃的條件下,考察甲醇體積分?jǐn)?shù)70%、75%、80%、85%、90%、95%對提取率的影響,結(jié)果見圖4。由圖4可知,金絲桃素在甲醇體積分?jǐn)?shù)85%時提取率最高。主要與樣品中有很多極性不同的化合物有關(guān),不同化合物最適合的溶劑極性各不相同。因此,金絲桃素提取率會隨著甲醇體積分?jǐn)?shù)的增加先增大后減小,因此,甲醇體積分?jǐn)?shù)以85%為最佳。

      2.2響應(yīng)曲面法優(yōu)化金絲桃素的提取工藝

      2.2.1響應(yīng)曲面試驗設(shè)計及結(jié)果為優(yōu)化金絲桃素的提取工藝條件,采用經(jīng)典的3因素3水平 Box-Behnken Design(BBD)試驗設(shè)計。在單因素試驗基礎(chǔ)上,精確稱取 0.200 g 貫葉連翹粗提物于具塞塑料管中,選取對金絲桃素提取率有較大影響的提取時間(A)、提取溫度(B)、甲醇體積分?jǐn)?shù)(C)3因素進行優(yōu)化。具體方案及結(jié)果見表1、表2。

      2.2.3響應(yīng)曲面分析由圖5可以看出,提取率隨提取溫度的變化幅度較大,其次是提取時間變化對提取率的影響,而甲醇體積分?jǐn)?shù)的變化對提取率的影響幅度較平緩??梢?,提取溫度對提取率的影響最為顯著。通過優(yōu)化分析,最佳的提取條件為:提取溫度78.8 ℃,甲醇體積分?jǐn)?shù)87.5%,提取時間103.78 min,液固比75 mL ∶1 g,預(yù)測金絲桃素提取率為372%。但考慮到實際操作的局限性,將金絲桃素的提取工藝修正為:提取溫度80 ℃,甲醇體積分?jǐn)?shù)90%,提取時間 105 min,液固比75 mL ∶1 g。在此條件下提取3次,金絲桃素的平均提取率為3.714%,與預(yù)測值基本相符,證實了該方程的準(zhǔn)確性和實用性。

      3結(jié)論

      采用單因素試驗及響應(yīng)曲面法對金絲桃素提取工藝條件進行優(yōu)化,通過回歸分析建立相關(guān)性良好的方程,得到的最佳的提取工藝為:提取溫度80 ℃,甲醇體積分?jǐn)?shù)90%,提取時間105 min,液固比75 mL ∶1 g。試驗值與預(yù)測值相符,證實該方程的準(zhǔn)確性和實用性。

      需要注意的是,在配制金絲桃素標(biāo)準(zhǔn)溶液時應(yīng)注意其不易溶及見光易分解的問題,操作時要求操作者能熟練掌握儀器的使用及藥品的配制。

      參考文獻:

      [1]高麗芳,孟艷,趙雪儉,等. 光活化的金絲桃素對人前列腺癌細胞 PC3M的生長抑制作用[J]. 吉林大學(xué)學(xué)報:醫(yī)學(xué)版,2004,30(1):97-99.

      [2]王曉利,劉金釧,張俊松,等. 光源對金絲桃素光動力體外抗腫瘤作用的影響[J]. 華西藥學(xué)雜志,2008,23(1):47-49.

      [3]王曉利,王彩虹,郭懿,等. 光誘導(dǎo)金絲桃素對人鼻咽癌細胞CNE-2的毒作用和凋亡研究[J]. 中成藥,2010,32(8):1296-1300.

      [4]王曉利,張俊松,劉金釧,等. 貫葉金絲桃中金絲桃素提取物對人肺癌細胞A549的體外殺傷效應(yīng)[J]. 中成藥,2007,29(7):1058-1061.

      [5]王玲,索朗斯珠,馬俊英.金絲桃素的提取分離及其藥理活性研究現(xiàn)狀[J]. 動物醫(yī)學(xué)進展,2005,26(5):32-35.

      [6]胡冬華,高穎,邵琛,等. 貫葉連翹有效成分金絲桃素與HIV逆轉(zhuǎn)錄酶相互作用的研究[J]. 分子科學(xué)學(xué)報,2008,24(4):280-283.

      [7]曲曉波,蘇忠民,胡冬華,等. 金絲桃素分子結(jié)構(gòu)及其與HIV病毒蛋白酶作用的分子動力學(xué)研究[J]. 高等學(xué)?;瘜W(xué)學(xué)報,2009,30(7):1402-1405.

      [8]周廣生. 中藥金絲桃素口服液防治雞新城疫的試驗[J]. 上海畜牧獸醫(yī)通訊,2008(6):65.

      [9]周廣生. 中藥金絲桃素口服液治療鴨病毒性肝炎的試驗研究[J]. 中國畜牧獸醫(yī),2008,35(12):128-129.

      [10]湯國祥. 使用金絲桃素聯(lián)合用藥治療豬高熱病[J]. 湖南農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報:自然科學(xué)版,2009,10(增刊1):129-130.

      [11]孔濤,范杰平,胡小芳,等. 響應(yīng)面法優(yōu)化超聲輔助提取車前草中的熊果酸[J]. 食品科學(xué),2011(6):80-84.

      [12]肖衛(wèi)華,韓魯佳,楊增玲,等. 響應(yīng)面法優(yōu)化黃芪黃酮提取工藝的研究[J]. 中國農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報,2007,12(5):52-56.

      [13]胡成旭,侯欣彤,馮永寧,等. 響應(yīng)面法優(yōu)化云芝多糖提取條件的研究[J]. 食品工業(yè)科技,2007,7(7):124-126,130.endprint

      2.1.4甲醇體積分?jǐn)?shù)對金絲桃素提取率的影響在液固比 75 mL∶1 g、提取時間110 min、提取溫度80 ℃的條件下,考察甲醇體積分?jǐn)?shù)70%、75%、80%、85%、90%、95%對提取率的影響,結(jié)果見圖4。由圖4可知,金絲桃素在甲醇體積分?jǐn)?shù)85%時提取率最高。主要與樣品中有很多極性不同的化合物有關(guān),不同化合物最適合的溶劑極性各不相同。因此,金絲桃素提取率會隨著甲醇體積分?jǐn)?shù)的增加先增大后減小,因此,甲醇體積分?jǐn)?shù)以85%為最佳。

      2.2響應(yīng)曲面法優(yōu)化金絲桃素的提取工藝

      2.2.1響應(yīng)曲面試驗設(shè)計及結(jié)果為優(yōu)化金絲桃素的提取工藝條件,采用經(jīng)典的3因素3水平 Box-Behnken Design(BBD)試驗設(shè)計。在單因素試驗基礎(chǔ)上,精確稱取 0.200 g 貫葉連翹粗提物于具塞塑料管中,選取對金絲桃素提取率有較大影響的提取時間(A)、提取溫度(B)、甲醇體積分?jǐn)?shù)(C)3因素進行優(yōu)化。具體方案及結(jié)果見表1、表2。

      2.2.3響應(yīng)曲面分析由圖5可以看出,提取率隨提取溫度的變化幅度較大,其次是提取時間變化對提取率的影響,而甲醇體積分?jǐn)?shù)的變化對提取率的影響幅度較平緩。可見,提取溫度對提取率的影響最為顯著。通過優(yōu)化分析,最佳的提取條件為:提取溫度78.8 ℃,甲醇體積分?jǐn)?shù)87.5%,提取時間103.78 min,液固比75 mL ∶1 g,預(yù)測金絲桃素提取率為372%。但考慮到實際操作的局限性,將金絲桃素的提取工藝修正為:提取溫度80 ℃,甲醇體積分?jǐn)?shù)90%,提取時間 105 min,液固比75 mL ∶1 g。在此條件下提取3次,金絲桃素的平均提取率為3.714%,與預(yù)測值基本相符,證實了該方程的準(zhǔn)確性和實用性。

      3結(jié)論

      采用單因素試驗及響應(yīng)曲面法對金絲桃素提取工藝條件進行優(yōu)化,通過回歸分析建立相關(guān)性良好的方程,得到的最佳的提取工藝為:提取溫度80 ℃,甲醇體積分?jǐn)?shù)90%,提取時間105 min,液固比75 mL ∶1 g。試驗值與預(yù)測值相符,證實該方程的準(zhǔn)確性和實用性。

      需要注意的是,在配制金絲桃素標(biāo)準(zhǔn)溶液時應(yīng)注意其不易溶及見光易分解的問題,操作時要求操作者能熟練掌握儀器的使用及藥品的配制。

      參考文獻:

      [1]高麗芳,孟艷,趙雪儉,等. 光活化的金絲桃素對人前列腺癌細胞 PC3M的生長抑制作用[J]. 吉林大學(xué)學(xué)報:醫(yī)學(xué)版,2004,30(1):97-99.

      [2]王曉利,劉金釧,張俊松,等. 光源對金絲桃素光動力體外抗腫瘤作用的影響[J]. 華西藥學(xué)雜志,2008,23(1):47-49.

      [3]王曉利,王彩虹,郭懿,等. 光誘導(dǎo)金絲桃素對人鼻咽癌細胞CNE-2的毒作用和凋亡研究[J]. 中成藥,2010,32(8):1296-1300.

      [4]王曉利,張俊松,劉金釧,等. 貫葉金絲桃中金絲桃素提取物對人肺癌細胞A549的體外殺傷效應(yīng)[J]. 中成藥,2007,29(7):1058-1061.

      [5]王玲,索朗斯珠,馬俊英.金絲桃素的提取分離及其藥理活性研究現(xiàn)狀[J]. 動物醫(yī)學(xué)進展,2005,26(5):32-35.

      [6]胡冬華,高穎,邵琛,等. 貫葉連翹有效成分金絲桃素與HIV逆轉(zhuǎn)錄酶相互作用的研究[J]. 分子科學(xué)學(xué)報,2008,24(4):280-283.

      [7]曲曉波,蘇忠民,胡冬華,等. 金絲桃素分子結(jié)構(gòu)及其與HIV病毒蛋白酶作用的分子動力學(xué)研究[J]. 高等學(xué)?;瘜W(xué)學(xué)報,2009,30(7):1402-1405.

      [8]周廣生. 中藥金絲桃素口服液防治雞新城疫的試驗[J]. 上海畜牧獸醫(yī)通訊,2008(6):65.

      [9]周廣生. 中藥金絲桃素口服液治療鴨病毒性肝炎的試驗研究[J]. 中國畜牧獸醫(yī),2008,35(12):128-129.

      [10]湯國祥. 使用金絲桃素聯(lián)合用藥治療豬高熱病[J]. 湖南農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報:自然科學(xué)版,2009,10(增刊1):129-130.

      [11]孔濤,范杰平,胡小芳,等. 響應(yīng)面法優(yōu)化超聲輔助提取車前草中的熊果酸[J]. 食品科學(xué),2011(6):80-84.

      [12]肖衛(wèi)華,韓魯佳,楊增玲,等. 響應(yīng)面法優(yōu)化黃芪黃酮提取工藝的研究[J]. 中國農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報,2007,12(5):52-56.

      [13]胡成旭,侯欣彤,馮永寧,等. 響應(yīng)面法優(yōu)化云芝多糖提取條件的研究[J]. 食品工業(yè)科技,2007,7(7):124-126,130.endprint

      2.1.4甲醇體積分?jǐn)?shù)對金絲桃素提取率的影響在液固比 75 mL∶1 g、提取時間110 min、提取溫度80 ℃的條件下,考察甲醇體積分?jǐn)?shù)70%、75%、80%、85%、90%、95%對提取率的影響,結(jié)果見圖4。由圖4可知,金絲桃素在甲醇體積分?jǐn)?shù)85%時提取率最高。主要與樣品中有很多極性不同的化合物有關(guān),不同化合物最適合的溶劑極性各不相同。因此,金絲桃素提取率會隨著甲醇體積分?jǐn)?shù)的增加先增大后減小,因此,甲醇體積分?jǐn)?shù)以85%為最佳。

      2.2響應(yīng)曲面法優(yōu)化金絲桃素的提取工藝

      2.2.1響應(yīng)曲面試驗設(shè)計及結(jié)果為優(yōu)化金絲桃素的提取工藝條件,采用經(jīng)典的3因素3水平 Box-Behnken Design(BBD)試驗設(shè)計。在單因素試驗基礎(chǔ)上,精確稱取 0.200 g 貫葉連翹粗提物于具塞塑料管中,選取對金絲桃素提取率有較大影響的提取時間(A)、提取溫度(B)、甲醇體積分?jǐn)?shù)(C)3因素進行優(yōu)化。具體方案及結(jié)果見表1、表2。

      2.2.3響應(yīng)曲面分析由圖5可以看出,提取率隨提取溫度的變化幅度較大,其次是提取時間變化對提取率的影響,而甲醇體積分?jǐn)?shù)的變化對提取率的影響幅度較平緩??梢姡崛囟葘μ崛÷实挠绊懽顬轱@著。通過優(yōu)化分析,最佳的提取條件為:提取溫度78.8 ℃,甲醇體積分?jǐn)?shù)87.5%,提取時間103.78 min,液固比75 mL ∶1 g,預(yù)測金絲桃素提取率為372%。但考慮到實際操作的局限性,將金絲桃素的提取工藝修正為:提取溫度80 ℃,甲醇體積分?jǐn)?shù)90%,提取時間 105 min,液固比75 mL ∶1 g。在此條件下提取3次,金絲桃素的平均提取率為3.714%,與預(yù)測值基本相符,證實了該方程的準(zhǔn)確性和實用性。

      3結(jié)論

      采用單因素試驗及響應(yīng)曲面法對金絲桃素提取工藝條件進行優(yōu)化,通過回歸分析建立相關(guān)性良好的方程,得到的最佳的提取工藝為:提取溫度80 ℃,甲醇體積分?jǐn)?shù)90%,提取時間105 min,液固比75 mL ∶1 g。試驗值與預(yù)測值相符,證實該方程的準(zhǔn)確性和實用性。

      需要注意的是,在配制金絲桃素標(biāo)準(zhǔn)溶液時應(yīng)注意其不易溶及見光易分解的問題,操作時要求操作者能熟練掌握儀器的使用及藥品的配制。

      參考文獻:

      [1]高麗芳,孟艷,趙雪儉,等. 光活化的金絲桃素對人前列腺癌細胞 PC3M的生長抑制作用[J]. 吉林大學(xué)學(xué)報:醫(yī)學(xué)版,2004,30(1):97-99.

      [2]王曉利,劉金釧,張俊松,等. 光源對金絲桃素光動力體外抗腫瘤作用的影響[J]. 華西藥學(xué)雜志,2008,23(1):47-49.

      [3]王曉利,王彩虹,郭懿,等. 光誘導(dǎo)金絲桃素對人鼻咽癌細胞CNE-2的毒作用和凋亡研究[J]. 中成藥,2010,32(8):1296-1300.

      [4]王曉利,張俊松,劉金釧,等. 貫葉金絲桃中金絲桃素提取物對人肺癌細胞A549的體外殺傷效應(yīng)[J]. 中成藥,2007,29(7):1058-1061.

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