房保海 孫濤 賈俊濤 岳志芹 姜英輝 趙玉然 梁成珠 徐彪
摘要:本研究建立了基于量子點(diǎn)的雞新城疫病毒(NDV) sFLISA檢測方法。該方法以抗NDV多克隆抗體為捕捉抗體、以生物素標(biāo)記抗NDV單克隆抗體為檢測抗體、以量子點(diǎn)標(biāo)記的鏈霉親和素為熒光探針。該方法與其它有關(guān)禽類病毒(產(chǎn)蛋下降綜合征病毒、雞傳染性法氏囊病病毒、禽白血病病毒)無交叉反應(yīng),比血凝試驗(yàn)靈敏,為臨床早期快速檢測NDV提供了行之有效的方法。
關(guān)鍵詞:雞新城疫病毒(NDV);量子點(diǎn);雙抗夾心熒光免疫分析(sFLISA)
中圖分類號:S858.31文獻(xiàn)標(biāo)識號:A文章編號:1001-4942(2014)05-0118-04
新城疫是由新城疫病毒(Newcastal disease virus,NDV)引起的急性、高度接觸性傳染病,常呈敗血癥,主要特征是呼吸困難、下痢、神經(jīng)機(jī)能紊亂、黏膜和漿膜出血,嚴(yán)重危及禽類養(yǎng)殖業(yè)的發(fā)展,現(xiàn)流行于世界各國[1~3]。新城疫被國際獸疫局(OIE)定為A類傳染病,中國將其列為一類動物疫病[4]。
新城疫病毒的檢測主要應(yīng)用免疫方法(包括免疫傳感技術(shù)、蛋白質(zhì)芯片技術(shù)、膠體金免疫層析技術(shù)、免疫組化技術(shù)、免疫熒光技術(shù)等)和分子生物學(xué)技術(shù)(包括RT-PCR技術(shù)、基因芯片、液相芯片技術(shù)等)[5]。量子點(diǎn)(Quantum dots,QDs)是近年發(fā)展起來的一種新型熒光納米材料,與傳統(tǒng)有機(jī)熒光染料相比,具有熒光穩(wěn)定性高、吸收光譜寬、發(fā)射光譜窄而對稱、衰減壽命長、生物相容性好等特點(diǎn),已經(jīng)成為病原檢測的新工具[6~9]。
本研究以抗NDV多克隆抗體為捕捉抗體,以生物素標(biāo)記抗NDV單克隆抗體為檢測抗體,以量子點(diǎn)標(biāo)記的鏈霉親和素為熒光探針,建立了NDV sFLISA檢測方法,為養(yǎng)殖業(yè)早期發(fā)現(xiàn)NDV感染提供了有力的工具。
1材料與方法
1.1試驗(yàn)材料
滅活新城疫病毒(NDV,HA效價為256)和陽性尿囊液病毒由本試驗(yàn)室保存。雞產(chǎn)蛋下降綜合征病毒、雞傳染性法氏囊病病毒、禽白血病病毒抗原、雞新城疫病毒(La Sota株)國家參考品、抗雞新城疫病毒陽性血清和雞新城疫試驗(yàn)用陰性血清購自國家獸醫(yī)微生物菌種保藏中心。
1.2主要試劑和抗體
兔抗NDV多克隆抗體(GLOBAL BIOTECH,1 μg/μL);鼠抗NDV單克隆抗體(GLOBAL BIOTECH,1 μg/μL);量子點(diǎn)標(biāo)記的鏈霉親和素-605(QS605,武漢珈源量子點(diǎn)技術(shù)開發(fā)有限公司);包被液:0.05 mol/L碳酸鹽緩沖液(pH 9.6);洗滌液:0.5% Tween-20的磷酸鹽緩沖液(PBS);封閉液:1× BSA-PBS。
1.3主要儀器和器材
多功能熒光酶標(biāo)儀(SpectraMax M5);6930型冷凍離心機(jī)(日本KUBOTA公司);5415R 微量冷凍離心機(jī)(德國Eppendorf 公司);MS3渦流旋轉(zhuǎn)振蕩儀(德國IKA公司);黑色底透的熒光酶標(biāo)板(Thermofisher NUNC);Eppendorf移液槍(0~200 μL、0~1000 μL,德國Eppendorf 公司);冰箱[冷藏溫度(4±1)℃,中國海爾];恒溫培養(yǎng)箱[(37±1)℃、(42±1)℃,日本SANYO]。
1.4尿囊液病毒的制備
4℃反復(fù)凍融尿囊液3次,然后3 000、5 000、8 000 r/min 各離心30 min,上清經(jīng)100 000×g離心2 h,用少量 TEN 緩沖液將病毒沉淀懸浮,再用20%~60%的蔗糖溶液經(jīng)密度梯度離心純化,經(jīng)100 000×g 離心8 h,收集40%~60%梯度層內(nèi)的病毒帶,用pH 7.4、0.01 mol/L PBS 透析48 h,分裝,于-20℃凍存?zhèn)溆谩?/p>
1.5 sFLISA標(biāo)準(zhǔn)操作程序
sFLISA在NUNC酶標(biāo)板反應(yīng)微孔中完成,具體實(shí)驗(yàn)方法如圖1所示。微孔板先用100 μL含有1.25 μg/mL的抗NDV多克隆抗體在4 ℃包被過夜(包被液:0.05 mol/L、pH9.6的碳酸鹽緩沖液);洗滌液洗滌3次,200 μL/孔,每次3 min;用1×BSA-PBS封閉,300 μL/孔,37℃ 封閉2 h;洗滌液洗板3次后,加入待測樣品,100 μL/孔,37℃孵育1 h;洗板后加入1∶200稀釋的生物素標(biāo)記NDV單克隆抗體,100 μL/孔,37℃孵育1 h;洗板后加入量子點(diǎn)標(biāo)記的鏈霉親和素?zé)晒馓结槪?7℃孵育1 h,洗板后晾干。陰性對照孔加陰性血清,空白對照孔加入100 μL PBS,通過熒光分光光度計(jì)測定其相對熒光強(qiáng)度。
1.6sFLISA工作條件的優(yōu)化
1.6.1多抗包被濃度、生物素標(biāo)記單克隆抗體稀釋度的確定抗NDV多克隆抗體以10、5、2.5、1.25 μg/mL和0.625 μg/mL等5個稀釋濃度各100 μL豎排包被聚苯乙烯板,4℃過夜;洗滌封閉后加入標(biāo)準(zhǔn)抗原NDV,100 μL/孔,固定標(biāo)準(zhǔn)抗原NDV濃度;洗滌拍干,生物素標(biāo)記抗NDV單克隆抗體以1∶200、1∶400、1∶800共3個稀釋濃度各100 μL反應(yīng),37℃作用1 h;洗滌拍干,加入1∶100稀釋的量子點(diǎn)標(biāo)記的鏈霉親和素,37℃作用1 h,洗滌拍干后在多功能酶標(biāo)儀上用390 nm的激發(fā)波長、605 nm的發(fā)射波長讀取相對熒光強(qiáng)度(RFU)值。根據(jù)P/N比值,以確定包被抗體和生物素標(biāo)記抗體的最佳濃度。
1.6.2量子點(diǎn)標(biāo)記的鏈霉親和素稀釋倍數(shù)的優(yōu)化以NDV包被酶標(biāo)板,生物素標(biāo)記抗體按1∶200稀釋作為檢測抗體,量子點(diǎn)標(biāo)記的鏈霉親和素分別按照1∶50、1∶100、1∶200稀釋,100 μL/孔加入,37 ℃作用1 h,洗滌拍干后在多功能酶標(biāo)儀上用390 nm的激發(fā)波長、605 nm的發(fā)射波長讀取相對熒光強(qiáng)度(RFU)值。根據(jù)P/N比值,以確定量子點(diǎn)標(biāo)記的鏈霉親和素稀釋倍數(shù)。endprint
1.7陰陽性判定標(biāo)準(zhǔn)的確定
采用建立的sFLISA方法進(jìn)行12次陰性對照檢測,計(jì)算相對熒光單位RFU的平均值(X)和標(biāo)準(zhǔn)差(SD),陽性臨界值=陰性樣品的X+3SD。檢測時,當(dāng)樣品RFU>陽性臨界值,判斷為陽性。
1.8sFLISA敏感度檢測
確定單抗和多抗的最佳工作濃度,將純化的尿囊液病毒在1∶10、1∶20、1∶40、1∶80、1∶160、1∶320、1∶640、1∶1280等8個稀釋度進(jìn)行測定,同時進(jìn)行原倍毒液試驗(yàn),設(shè)陰性和空白對照。
1.9sFLISA特異性試驗(yàn)
用建立的檢測方法對NDV、雞產(chǎn)蛋下降綜合征病毒、雞傳染性法氏囊病病毒、禽白血病病毒抗原、雞新城疫病毒(La Sota株)國家參考品進(jìn)行檢測,確定所建立檢測方法的特異性。
1.10重復(fù)性試驗(yàn)
在同一個酶標(biāo)板內(nèi)檢測NDV、NDV國家標(biāo)準(zhǔn)品和尿囊液制備的NDV,每樣重復(fù)3次;選取3塊不同酶標(biāo)板,每個板重復(fù)3孔,按1.5的步驟進(jìn)行sFLISA,分別計(jì)算樣品的板內(nèi)和板間變異系數(shù)(CV)。
1.11阻斷試驗(yàn)
將陽性NDV用滅菌生理鹽水按1∶10、1∶20、1∶40、1∶80、1∶160、1∶320稀釋后,50 μL分別加入等量的標(biāo)準(zhǔn)陽性血清(1∶10稀釋),37℃作用1 h,10 000 r/min離心,取上清進(jìn)行檢測,以NDV為陽性對照。
2結(jié)果與分析
2.1包被多克隆抗體與生物素標(biāo)記抗體稀釋度的確定
包被抗體分別以10、5、2.5、1.25 μg/mL和0.625 μg/mL進(jìn)行包被,生物素標(biāo)記抗體分別進(jìn)行1∶200、1∶400、1∶800的稀釋,量子點(diǎn)標(biāo)記的鏈霉親和素以1∶100的稀釋度進(jìn)行偶聯(lián)。結(jié)果表明,包被抗體單抗為1.25 μg/mL,生物素標(biāo)記的檢測抗體1∶200時,其P/N值最大,為56.028。因此,選擇1.25 μg/mL作為包被抗體的濃度,1∶200 作為生物素標(biāo)記抗體的最佳稀釋度(見表1)。
2.2量子點(diǎn)標(biāo)記的鏈霉親和素稀釋倍數(shù)優(yōu)化
以上述優(yōu)化的條件,即包被抗體濃度為1.25 μg/mL,生物素標(biāo)記的檢測抗體稀釋倍數(shù)為1∶200,對量子點(diǎn)標(biāo)記的鏈霉親和素稀釋倍數(shù)進(jìn)行優(yōu)化。結(jié)果(表2)表明,在1∶100時,P/N值為61.453,最大,故選擇此稀釋倍數(shù)為最優(yōu)稀釋倍數(shù)。
2.3 sFLISA陰陽性界限的確定
在上述優(yōu)化的反應(yīng)參數(shù)條件下,進(jìn)行12次陰性血清sFLISA試驗(yàn),得到陰性試驗(yàn)平均值為0.361,標(biāo)準(zhǔn)差為0.037,X+3SD =0.472,從而確定RFU 值在0.472及以上為陽性,RFU值在0.361~0.471之間為疑似,RFU值在0.361以下為陰性(表3)。
2.4 敏感性分析
將制備好的尿囊液NDV以1∶10、1∶20、1∶40、1∶80、1∶160、1∶320、1∶640、1∶1 280等8個稀釋度稀釋,按照優(yōu)化sFLSA的條件檢測結(jié)果表明,隨著病毒含量的降低,其RFU 值呈下降趨勢,但當(dāng)病毒1∶640 稀釋時,結(jié)果仍為陽性(RFU值為0.725),表明該方法靈敏度較好。
2.5 特異性試驗(yàn)
在已優(yōu)化的sFLISA反應(yīng)條件的基礎(chǔ)上,對雞產(chǎn)蛋下降綜合征病毒、雞傳染性法氏囊病病毒、禽白血病病毒抗原、雞新城疫病毒(La Sota株)國家參考品進(jìn)行了檢測,結(jié)果只有雞新城疫病毒(La Sota株)國家參考品為陽性,其它病毒均為陰性,表明本方法具有較好的特異性(表5)。
2.6重復(fù)性試驗(yàn)
在同一酶標(biāo)板內(nèi),對NDV、NDV國家標(biāo)準(zhǔn)品和尿囊液制備的病毒進(jìn)行板內(nèi)重復(fù)性試驗(yàn),每份樣品重復(fù)3次。重復(fù)性分析結(jié)果顯示:板內(nèi)變異系數(shù)為1.5%~4.1%,板間變異系數(shù)為1.5%~3.0%(表6),變異程度很小,均小于10%,表明該方法具有較好的重復(fù)性。
2.7阻斷試驗(yàn)
結(jié)果表明(表7),經(jīng)稀釋的NDV作為被檢材料,標(biāo)準(zhǔn)陽性血清能特異性地阻斷NDV與包被抗體的結(jié)合,病毒1∶40稀釋后檢測結(jié)果呈陰性。
量子點(diǎn)作為一種新型的熒光探針,被越來越多地應(yīng)用到病原生物檢測中[8],但應(yīng)用于動物病毒檢測的研究較少。本研究應(yīng)用量子點(diǎn)標(biāo)記的鏈霉親和素作為熒光探針、生物素標(biāo)記單克隆抗體作為檢測抗體,通過生物素-親和素之間的特異性互作,建立了一種基于量子點(diǎn)熒光探針的NDV sFLISA檢測方法。通過對已知陽性樣品的比較測定,陽性樣品稀釋至640倍還能檢出;與其它有關(guān)禽類病毒無交叉反應(yīng)(產(chǎn)蛋下降綜合征病毒、雞傳染性法氏囊病病毒、禽白血病病毒抗原),說明此檢測方法對NDV特異性較強(qiáng),靈敏度高。該方法的建立為NDV的監(jiān)測和診斷提供了新方法,在進(jìn)出口檢疫上也將發(fā)揮良好的作用。
參考文獻(xiàn):
[1]包紅梅, 田國彬, 陳化蘭,等. 禽流感的診斷技術(shù)與防制措施[J]. 中國獸醫(yī)科技, 2003(33):75-79.
[2]陳創(chuàng), 陳良冬, 張志凌,等. 量子點(diǎn)在腫瘤標(biāo)志物研究中的應(yīng)用進(jìn)展[J]. 中國癌癥雜志, 2007(17):813-818.
[3]魏祥法, 劉輝, 井慶川,等. 抗雞新城疫、傳染性法氏囊病免疫球蛋白的研究[J]. 山東農(nóng)業(yè)科學(xué), 2007(2):97-98.
[4]陳宏偉, 劉紅莉, 王一理,等. 量子點(diǎn):新的熒光標(biāo)記物質(zhì)[J]. 中華病理學(xué)雜志, 2005,34(1):47-49.
[5]杜景嬌, 薛強(qiáng), 鄒明強(qiáng),等. 新城疫檢測技術(shù)的研究新進(jìn)展[J]. 中國畜牧獸醫(yī), 2012, 39(2): 187-191.
[6]Murphy C J. Optical sensing with quantum dots[J]. Analytical Chemistry, 2002, 74: 520-526.
[7]Niemeyer C M. Nanoparticles, proteins, and nucleic acids: biotechnology meets materials science[J]. Angew.Chem .Int. Edn. Eng.,2001, 40: 4128-4158.
[8]Alivisatos P. The use of nanocrystals in biological detection[J]. Nature Biotechnol., 2004, 22(1): 47-52.
[9]Akerman M E, Chan W C W, Laakkonen P, et al. Nanocrystal targeting in vivo[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 2002, 99(20): 12617-12621.
[10]陳偉, 沈鶴柏, 陳艷,等.新型熒光物質(zhì)——量子點(diǎn)在生命科學(xué)領(lǐng)域的應(yīng)用研究進(jìn)展[J]. 化學(xué)通報, 2007(6):403-408.山 東 農(nóng) 業(yè) 科 學(xué)2014,46(5):122~126Shandong Agricultural Sciences山 東 農(nóng) 業(yè) 科 學(xué)第46卷第5期范珺,等:endprint