周 珩,郭世榮,邵慧娟,陳新斌,魏 斌,胡 榮,姜冬晨,鄭智航,孫 錦
(南京農(nóng)業(yè)大學(xué)園藝學(xué)院,農(nóng)業(yè)部南方蔬菜遺傳改良重點(diǎn)開放實(shí)驗(yàn)室, 南京 210095)
等滲NaCl和Ca(NO3)2脅迫對黃瓜幼苗生長和生理特性的影響
周 珩,郭世榮,邵慧娟,陳新斌,魏 斌,胡 榮,姜冬晨,鄭智航,孫 錦*
(南京農(nóng)業(yè)大學(xué)園藝學(xué)院,農(nóng)業(yè)部南方蔬菜遺傳改良重點(diǎn)開放實(shí)驗(yàn)室, 南京 210095)
黃瓜;Ca(NO3)2;NaCl;生長;生理特性
鑒于Ca(NO3)2對植物生長發(fā)育的特殊作用,植物對其脅迫的應(yīng)答機(jī)制與NaCl脅迫必然有所不同,而國內(nèi)外關(guān)于植物鹽脅迫生理的研究大多都集中于NaCl脅迫,不能準(zhǔn)確反映設(shè)施土壤次生鹽漬化對作物的傷害機(jī)理。因此,開展作物對不同鹽類脅迫響應(yīng)差異的研究,對闡明設(shè)施土壤鹽漬化對作物的傷害機(jī)理及尋求有效的克服途徑和方法具有重要意義。前人也開展了等滲NaCl和Ca(NO3)2脅迫對黃瓜[8]、南瓜[9]、番茄[10]等作物生長和生理特性的影響,認(rèn)為等滲的NaCl脅迫對作物的傷害大于等滲Ca(NO3)2脅迫,然而這些研究均未能解釋造成這種差異的生理機(jī)制。
黃瓜(CucumissativusL.)是一種世界性的重要蔬菜作物,也是我國設(shè)施栽培中面積較大、種植范圍較廣的主要蔬菜作物之一,但其根系具有脆弱、好氣、分布較淺的特點(diǎn),對鹽漬環(huán)境適應(yīng)性較差,設(shè)施土壤鹽分積累容易引發(fā)黃瓜植株的生理性病害,嚴(yán)重影響產(chǎn)量和品質(zhì)。為此,本試驗(yàn)以鹽敏感型的黃瓜品種‘津春2號’為材料,從生長、光合特性、活性氧代謝、陽離子吸收等方面,研究等滲NaCl和Ca(NO3)2脅迫對黃瓜幼苗生長和生理特性的影響,探討黃瓜幼苗對不同鹽類脅迫的生理響應(yīng)差異,為尋求有效克服設(shè)施土壤鹽漬化的途徑和方法提供理論依據(jù)。
1.1 試驗(yàn)材料
試驗(yàn)選用鹽敏感型的黃瓜品種‘津春2號’[8]為試材,種子由天津黃瓜研究所提供;選用的營養(yǎng)液配方為日本山崎黃瓜專用配方(表1)。
表1 日本山崎黃瓜專用配方
1.2 材料培養(yǎng)與處理
試驗(yàn)于2011年9月—2012年12月在南京農(nóng)業(yè)大學(xué)牌樓試驗(yàn)基地的現(xiàn)代化玻璃溫室中進(jìn)行。黃瓜種子經(jīng)浸種催芽后,播種于石英砂中育苗。待幼苗2葉1心時(shí)定植于盛有1個(gè)劑量日本山崎黃瓜專用配方的營養(yǎng)液栽培箱(18 cm× 48 cm× 24 cm;20 L)內(nèi),幼苗預(yù)培養(yǎng)3 d后一次性加鹽處理,使?fàn)I養(yǎng)液中NaCl和Ca(NO3)2的終濃度分別達(dá)到75 mmol/L和50 mmol/L(根據(jù)預(yù)備試驗(yàn),該濃度下兩種鹽處理的黃瓜幼苗生物量差異最大,數(shù)據(jù)略),用FM- 8P全自動冰點(diǎn)滲透壓計(jì)測得加鹽后營養(yǎng)液的初始滲透勢均為-46.3 MPa。試驗(yàn)設(shè)3個(gè)處理,分別為:對照(CK,正常營養(yǎng)液栽培),75 mmol/L NaCl處理(NaCl),50 mmol/L Ca(NO3)2處理(Ca(NO3)2),每處理重復(fù)3次,隨機(jī)區(qū)組排列,每個(gè)區(qū)組內(nèi)各處理均3箱,每箱定植黃瓜幼苗12株。試驗(yàn)期間,溫室內(nèi)溫度保持在13—28 ℃,相對濕度(RH)60%—75%,光合有效輻射(PAR)為400—800 μmol·m-2·s-1。鹽脅迫處理5 d后,每重復(fù)取樣9株幼苗(每箱取樣3株)進(jìn)行生長指標(biāo)和生理指標(biāo)測定;光合氣體交換參數(shù)和葉綠素?zé)晒鈪?shù)測定時(shí),每重復(fù)取樣3株(每箱取樣1株)進(jìn)行測定,取其平均值。葉片生理指標(biāo)和光合、熒光參數(shù)測定時(shí)的取樣部位為幼苗生長點(diǎn)之下第2和(或)第3片真葉。
1.3 測定方法
1.3.1 生長指標(biāo)
用去離子水將黃瓜幼苗沖洗干凈并吸干水分,從根莖結(jié)合處剪斷,分為地上部和地下部,稱得鮮重(g/株);在烘箱中105 ℃下殺青15 min后,然后在75 ℃的恒溫下烘干至恒重,稱得干重(g/株)。
1.3.2 葉綠素(Chl)含量
按沈偉其[11]的方法分別測定A645、A663處的吸光值,并計(jì)算葉綠素a(Chl a)、葉綠素b(Chl b)和總?cè)~綠素(Chl(a+b))含量。
1.3.3 活性氧(ROS)和丙二醛(MDA)含量測定
1.3.4 抗氧化酶活性
超氧化物歧化酶(SOD)活性測定參照氮藍(lán)四唑(NBT)光還原法[15],過氧化物酶(POD)活性測定參照 Kochba等[16]的方法,過氧化氫酶(CAT)活性測定參照 Dhindsa 等[15]的方法。
1.3.5 陽離子含量
將新鮮樣品洗凈后用吸水紙吸干水分,分別剪取根系、莖和不帶葉柄的葉片,在105 ℃下殺青15 min后在70—80 ℃下烘干至恒重,磨碎后過30目篩,取50 mg樣加20 mL蒸餾水搖勻,在100 ℃沸水浴中煮1.5—3 h,冷卻后定容至100 mL。黃瓜幼苗各器官中K+、Na+、Mg2+和Ca2+的含量分別在OD 766.49、589.59、285.21、317.93 nm下利用原子吸收分光光度計(jì)(日立Z- 2000)測定。
1.3.6 光合氣體交換參數(shù)
采用便攜式光合測定系統(tǒng)(Li- 6400,美國LI-COR公司)于晴天9:00—11:00 進(jìn)行光合參數(shù)測定。測定時(shí)葉室溫度控制在(25 ± 1) ℃,光強(qiáng)控制在800 μmol · m-2· s-1,參比室CO2濃度為(380 ± 10) μmol/L,相對濕度(RH)為60%—70%。選取葉位一致、完全展開的功能葉測量其凈光合速率(Pn,μmol CO2· m-2· s-1)、氣孔導(dǎo)度(Gs,mol · m-2· s-1)、胞間CO2濃度(Ci,μmol CO2/mol),并計(jì)算氣孔限制值[17](Ls,%):Ls=1-Ci/Ca,式中Ca為空氣中CO2濃度(μmol/mol)。
1.3.7 葉綠素?zé)晒鈪?shù)
1.4 數(shù)據(jù)處理
數(shù)據(jù)分析采用MS Excel 2003軟件制作圖表,SAS9.0軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)單因素方差分析,數(shù)據(jù)顯著性差異運(yùn)用Duncan′ s新復(fù)極差法進(jìn)行多重比較(P﹤0.05)。
2.1 等滲NaCl和Ca(NO3)2脅迫對黃瓜幼苗生長的影響
如表2所示,NaCl和Ca(NO3)2處理顯著抑制了黃瓜幼苗生長,總鮮重和總干重均顯著低于對照,其中NaCl處理對黃瓜幼苗生長的抑制作用大于Ca(NO3)2處理。NaCl脅迫下,黃瓜幼苗根系和地上部的鮮重、干重均顯著低于對照;Ca(NO3)2脅迫下,黃瓜幼苗地上部生長顯著受到抑制,而對根系生長的影響不明顯??梢?,Ca(NO3)2脅迫主要抑制黃瓜幼苗地上部生長,而NaCl脅迫可使黃瓜幼苗根系和地上部的生長均受到抑制。
表2 等滲NaCl和Ca(NO3)2脅迫對黃瓜幼苗生長的影響
CK表示正常營養(yǎng)液栽培;NaCl表示NaCl脅迫處理;Ca(NO3)2表示Ca(NO3)2脅迫處理;同列中不同字母表示差異達(dá)5%水平(P<0.05)
2.2 等滲NaCl和Ca(NO3)2脅迫對黃瓜幼苗葉片葉綠素含量的影響
如表3所示,等滲NaCl和Ca(NO3)2脅迫下,黃瓜幼苗葉片Chl a、Chl b、Chl(a+b)含量和Chl a/ Chl b均顯著下降,但Ca(NO3)2脅迫下黃瓜幼苗葉片Chl a/ Chl b顯著高于NaCl脅迫。
表3 等滲NaCl和Ca(NO3)2脅迫對黃瓜幼苗葉片葉綠素含量的影響
Chl a:Chlorophyll a;Chl b:Chlorophyll b;Chl (a+b):Total chlorophyll;Chl a/Chl b:Ratio of chlorophyll a and chlorophyll b
2.3 等滲NaCl和Ca(NO3)2脅迫對黃瓜幼苗光合氣體交換參數(shù)的影響
如圖1所示,等滲NaCl和Ca(NO3)2脅迫下,黃瓜幼苗葉片Pn、Gs、Ci均顯著低于對照,而Ls顯著高于對照,但NaCl脅迫引起的升高或降低幅度均大于Ca(NO3)2脅迫。按照Farquhar等[19]的判斷標(biāo)準(zhǔn),NaCl與Ca(NO3)2脅迫引起黃瓜幼苗葉片光合速率降低主要是由氣孔因素引起。
圖1 等滲Ca(NO3)2和NaCl脅迫對黃瓜幼苗葉片光合氣體交換參數(shù)的影響Fig.1 Effects of iso-osmotic Ca(NO3)2 and NaCl on photosynthetic gas exchange parameters of cucumber seedling leavesCK:正常營養(yǎng)液栽培Control;NaCl:NaCl脅迫處理NaCl stress;Ca(NO3)2:Ca(NO3)2脅迫處理Ca(NO3)2 stress;不同小寫字母表示差異顯著(P﹤0.05)
2.4 等滲NaCl和Ca(NO3)2脅迫對黃瓜幼苗葉片葉綠素?zé)晒鈪?shù)的影響
圖2 等滲Ca(NO3)2和NaCl脅迫對黃瓜幼苗葉片葉綠素?zé)晒鈪?shù)的影響Fig.2 Effects of iso-osmotic Ca(NO3)2 and NaCl on fluorescence parameters of cucumber seedling leaves
2.5 等滲NaCl和Ca(NO3)2脅迫對黃瓜幼苗葉片吸收光能分配的影響
利用葉綠素?zé)晒鈪?shù)將植物葉片吸收的光能分為3部分,D、Ex和P。通過測算植物葉片的P、D、Ex的份額,可以了解植物的光能分配情況[18]。圖3表明,NaCl脅迫下,黃瓜幼苗葉片的P顯著降低,而Ex顯著升高16.89%,對D無明顯影響;Ca(NO3)2脅迫對P和D無明顯影響,但使Ex顯著升高6.95%。
圖3 等滲Ca(NO3)2和NaCl脅迫對黃瓜幼苗葉片PSⅡ光化學(xué)反應(yīng)能量部分(P)、天線耗散能量部分(D)和PSⅡ反應(yīng)中心過剩光能(Ex)分配的影響Fig.3 Effects of iso-osmotic Ca(NO3)2 and NaCl on allocation of photochemistry energy (P)、dissipation energy (D) by antenna and excessive energy in PSⅡ (Ex) of cucumber seedling leaves
2.7 等滲NaCl和Ca(NO3)2脅迫對黃瓜幼苗葉片SOD、POD、CAT活性的影響
圖5所示,NaCl脅迫下,黃瓜幼苗葉片SOD 活性顯著低于對照,而POD 和CAT 活性則高于對照;Ca(NO3)2脅迫下,黃瓜幼苗葉片SOD、POD 和CAT 活性均顯著高于對照和NaCl脅迫處理。
圖5 等滲NaCl和Ca(NO3)2脅迫對黃瓜幼苗葉片SOD、POD、CAT活性的影響Fig.5 Effects of iso-osmotic Ca(NO3)2 and NaCl stress on SOD, POD and CAT activities in leaves of cucumber seedlings
2.8 等滲NaCl和Ca(NO3)2脅迫對黃瓜幼苗體內(nèi)陽離子含量和離子吸收比率的影響
由表4可以看出,NaCl脅迫下,黃瓜幼苗各器官中的Na+含量顯著升高,K+含量顯著下降,而Ca2+和Mg2+含量在各器官中的變化不一致;Ca(NO3)2脅迫下,黃瓜幼苗各器官中的Na+含量變化不明顯,而使Ca2+含量均顯著升高,K+和Mg2+含量均有所降低。為了更準(zhǔn)確反應(yīng)脅迫條件下離子吸收狀況,分析了脅迫條件對離子吸收比率的影響,結(jié)果表明,NaCl脅迫下,黃瓜幼苗根、莖、葉的K/Na、Mg/Na、Ca/Na比值均顯著降低;Ca(NO3)2脅迫下,黃瓜幼苗根、莖、葉的Ca/Na比值顯著升高(表5),而根、莖、葉的K/Ca、Mg/Ca均顯著降低(表6)。
3.1 等滲NaCl 和Ca(NO3)2脅迫對黃瓜幼苗生長的影響存在差異
鹽脅迫下,由于植株碳同化量減少、滲透調(diào)節(jié)能耗和維持生長能耗增加等原因,一般會使植株生長量和積累量減少[20]。本試驗(yàn)結(jié)果表明,75 mmol/LNaCl 和50 mmol/L Ca(NO3)2處理均顯著抑制了黃瓜幼苗生長(表2),這與童輝等[8]的研究結(jié)果一致。本實(shí)驗(yàn)中,Ca(NO3)2脅迫抑制黃瓜幼苗生長主要是抑制其地上部分的生長,而對根系生物量積累的影響不大(表2)。之前的研究發(fā)現(xiàn),Ca(NO3)2脅迫顯著影響了黃瓜幼苗根系的形態(tài),使其根系伸長受到抑制,但側(cè)根急劇縮短,分枝增多,導(dǎo)致側(cè)根密度顯著增大,根尖數(shù)增多,且根系平均直徑變大[21],這可能是Ca(NO3)2脅迫對黃瓜幼苗根系生物量積累無顯著影響的主要原因。
表6 Ca(NO3)2脅迫對黃瓜幼苗不同器官K/Ca、Mg/Ca比值的影響
3.2 黃瓜幼苗對等滲NaCl 和Ca(NO3)2脅迫響應(yīng)的光合特性差異
3.3 黃瓜幼苗對等滲NaCl 和Ca(NO3)2脅迫響應(yīng)的活性氧代謝差異
正常情況下,植物體內(nèi)存在ROS清除系統(tǒng),使植物在生命活動中產(chǎn)生的ROS處于產(chǎn)生和消除的動態(tài)平衡,從而使植物免受ROS傷害。其中,SOD與CAT、POD以及B2胡蘿卜素等抗氧化劑協(xié)同作用,可防御ROS等自由基對細(xì)胞膜系統(tǒng)的傷害。當(dāng)植物處于鹽脅迫等逆境時(shí),ROS動態(tài)平衡被打破,產(chǎn)生大量ROS,造成植物體產(chǎn)生嚴(yán)重的膜質(zhì)過氧化傷害,并導(dǎo)致光合色素含量降低,影響植株的光合性能[31]。本實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,Ca(NO3)2脅迫下,黃瓜幼苗葉片SOD、POD和CAT活性均顯著升高(圖5),ROS清除能力增強(qiáng),并未對黃瓜幼苗植株造成嚴(yán)重的膜質(zhì)過氧化傷害;而NaCl脅迫下,盡管POD和CAT活性顯著升高,但升高幅度不大,再加上SOD活性顯著降低(圖5),對ROS清除能力有限,導(dǎo)致ROS積累(圖4),引起了膜質(zhì)過氧化產(chǎn)物MDA積累(圖4)和Chl含量降低(表3)。
3.4 黃瓜幼苗對等滲NaCl 和Ca(NO3)2脅迫響應(yīng)的離子吸收特性差異
鹽脅迫對作物造成的危害主要有離子毒害、滲透脅迫和營養(yǎng)失衡[32],這些危害均與作物對鹽分離子的吸收累積有著直接和間接的關(guān)系[33],而維持細(xì)胞內(nèi)離子動態(tài)平衡是植物在鹽脅迫下生存的基礎(chǔ)[34]。本實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,NaCl脅迫下,黃瓜幼苗各器官中的Na+含量顯著升高(表4),根、莖、葉中的K/Na、Mg/Na、Ca/Na比值均顯著降低(表5),離子平衡被打破,Na+與K+、Ca2+等各種營養(yǎng)元素相互競爭而造成植株礦質(zhì)營養(yǎng)脅迫,嚴(yán)重影響黃瓜幼苗植物正常生長。Ca(NO3)2脅迫下,黃瓜幼苗各器官中的Ca2+含量顯著升高,而K+和Mg2+含量均有所降低(表4),致使K/Ca、Mg/Ca比值顯著降低(表5),離子平衡同樣被打破。盡管Ca2+在植物生長發(fā)育中起著重要的作用,作為第二信使參與植物體內(nèi)的許多生理過程[35],如激活NAD激酶、膜結(jié)合蛋白激酶及Ca2+-ATP酶(Ca2+-ATPase)等許多酶的活性,還可通過調(diào)節(jié)保衛(wèi)細(xì)胞內(nèi)膨壓的變化影響氣孔的開放[36],但是,高鈣脅迫則會造成細(xì)胞骨架和生物膜結(jié)構(gòu)的破壞,并最終導(dǎo)致細(xì)胞內(nèi)物質(zhì)代謝的紊亂等[37]。盡管如此,植物細(xì)胞積累過多的Na+要比積累過多的Ca2+對植物體的傷害作用要大,這是因?yàn)镹a+在細(xì)胞中大量積累,不僅會改變細(xì)胞膜系統(tǒng)的結(jié)構(gòu)和功能,而且會導(dǎo)致光合作用中具有重要作用的酶活性降低。如在NaCl脅迫下,玉米幼苗的蘋果酸脫氫酶(MDH)、磷酸烯醇式丙酮酸羧化酶(PEPC)以及RuBP羧化酶的活性都顯著降低[38]。這就不難解釋在本實(shí)驗(yàn)中,NaCl脅迫下黃瓜幼苗植株碳同化能力降低的原因,而Ca(NO3)2脅迫對碳同化的影響不大。
綜上所述,黃瓜幼苗對等滲NaCl 和Ca(NO3)2脅迫的生理響應(yīng)存在差異。NaCl脅迫下黃瓜幼苗體內(nèi)Na+大量積累,不僅限制了環(huán)境中CO2進(jìn)入葉肉細(xì)胞,而且使碳同化能力降低,加之ROS清除能力有限,不能有效清除PSⅡ反應(yīng)中心過剩能量所導(dǎo)致的ROS,因而產(chǎn)生了嚴(yán)重的膜質(zhì)過氧化,影響了植株生長和光合速率;而Ca(NO3)2脅迫下,黃瓜幼苗碳同化能力沒有受到影響,ROS也能夠被抗氧化系統(tǒng)有效清除,植株沒有產(chǎn)生嚴(yán)重的膜質(zhì)過氧化,因而對生長和光合速率的影響沒有NaCl脅迫大。
[1] Liang Y C, Si J, Nikolic M, Peng Y, Chen W, Jiang Y. Organic manure stimulates biological activity and barley growth in soil subject to secondary salinization. Soil Biology and Biochemistry, 2005, 37(6): 1185- 1195.
[2] Yu H Y, Li T X, Zhou J M. Secondary salinization of greenhouse soil and its effects on soil properties. Soils, 2005, 37(6): 581- 586.
[3] Li D P, Wu Z J, Liang C H, Chen L J. Characteristics and regulation of greenhouse soil environment. Chinese Journal of Ecology, 2004, 23(5): 192- 197.
[4] Sun Y D, Luo W R, Li X Z, Qi A G. Effects of Ca (NO3)2stress on the growth and physiological indexes of cucumber seedlings. Environmental Science and Information Application Technology, 2009, 1: 268- 271.
[5] Jin C Y, Sun J, Guo S R. Effects of exogenous spermidine on growth and active oxygen metabolism in cucumber seedlings under Ca(NO3)2stress. Acta Botanica Boreali-Occidentalia Sinica, 2010, 30(8): 1627- 1633.
[6] Zhang G W, Liu Z L, Zhou J G, Zhu Y L. Effects of Ca(NO3)2stress on oxidative damage, antioxidant enzymes activities and polyamine contents in roots of grafted and non-grafted tomato plants. Plant Growth Regulation, 2008, 56(1): 7- 19.
[7] Tong Y W, Chen D F. Study on the cause and control of secondary saline soils in greenhouse. Acta Horticulturae Sinica, 1991, 18(2): 159- 162.
[8] Tong H, Sun J, Guo S R, Zhang Z X. Effects of iso-osmotic Ca(NO3)2and NaCl stress on the growth and osmotic substances of cucumber seedlings. Acta Botanica Boreali-Occidentalia Sinica, 2012, 32(2): 306- 311.
[9] Wang L P, Sun J, Guo S R, Tian J, Lu X M, Yang Y J. Growth and reactive oxygen metabolism in different cucumber grafted rootstock seedlings under Ca(NO3)2or NaCl stress. Acta Botanica Boreali-Occidentalia Sinica, 2011, 31(10): 2045- 2051.
[10] Liu Z Y, Zhu Z J, Qian Y R, Yu J Q. Effect of iso-osmotic Ca(NO3)2and NaCl on growth of tomato seedlings. Acta Horticulturae Sinica, 2001, 28(1): 31- 35.
[11] Shen W Q. Extraction of mixed solution for determination of chlorophyll content in rice leaf blade. Plant Physiology Communications, 1988, 24(3): 62- 64.
[12] Wang A G, Luo G H. Quantitative relation between the reaction of hydroxylamine and superoxide anion radicals in plants. Plant Physiology Communications, 1990, 26(6): 55- 57.
[13] Uchida A, Jagendorf A T, Hibino T, Takabe T, Takabe T. Effects of hydrogen peroxide and nitric oxide on both salt and heat stress tolerance in rice. Plant Science, 2002, 163(3): 515- 523.
[14] Heath R L, Packer L. Photoperoxidation in isolated chloroplasts: I. Kinetics and stoichiometry of fatty acid peroxidation. Archives of Biochemistry and Biophysics, 1968, 125(1): 189- 198.
[15] Dhindsa R S, Plumb-Dhindsa P, Thorpe T A. Leaf senescence: correlated with increased levels of membrane permeability and lipid peroxidation, and decreased levels of superoxide dismutase and catalase. Journal of Experimental Botany, 1981, 32(1): 93- 101.
[16] Kochba J, Lavee S, Spiegel-Roy P. Differences in peroxidase activity and isoenzymes in embryogenic and non-embryogenic ‘Shamouti’orange ovular callus lines. Plant and Cell Physiology, 1977, 18(2): 463- 467.
[17] Berry J A, Downton W J S. Environmental regulation of photosynthesis // Govindjee N Y, ed. Photosynthesis, Development, Carbon Metabolism, and Plant Productivity, vol. 2. New York: Academic Press, 1982: 263- 343.
[18] Deming-Adams B, Adams Ⅲ W W, Barker D H, Logan B A, Bowling D R, Verhoeven A S. Using chlorophyll fluorescence to assess the fraction of absorbed light allocated to thermal dissipation of excess excitation. Physiologia Plantarum, 1996, 98(2): 253- 264.
[19] Farquhar G D, Sharkey T D. Stomatal conductance and photosynthesis. Annual Review of Plant Physiology, 1982, 33(1): 317- 345.
[20] Luo Q Y, Yu B J, Liu Y L. Effect of NaCl on the growth, K+, Na+and Cl-distribution in seedlings of 6 soybean cultivars (GlycinemaxL. Merrill). Soybean Science, 2001, 20(3): 177- 182.
[21] Tong H, Sun J, Guo S R, Zhang Z X. Effects of iso-osmotic Ca(NO3)2and NaCl stress on root morphology and activity of cucumber seedlings. Journal of Nanjing Agricultural University, 2012, 35(3): 37- 41.
[22] Kao W Y, Tsai T T, Shih C N. Photosynthetic gas exchange and chlorophyll a fluorescence of three wild soybean species in response to NaCl treatments. Photosynthetica, 2003, 41(3): 415- 419.
[23] Mehta P, Jajoo A, Mathur S, Bharti S. Chlorophyllafluorescence study revealing effects of high salt stress on photosystemⅡ in wheat leaves. Plant Physiology and Biochemistry, 2010, 48(1): 16- 20.
[24] Munns R, Tester M. Mechanisms of salinity tolerance. Annual Review of Plant Biology, 2008, 59(1): 651- 681.
[25] Shu S, Yuan L Y, Guo S R, Sun J, Liu C J. Effects of exogenous spermidine on photosynthesis, xanthophyll cycle and endogenous polyamines in cucumber seedlings exposed to salinity. African Journal of Biotechnology, 2012, 11(22): 6064- 6074.
[26] Shu S, Guo S R, Sun J, Yuan Y H, Yuan L Y. Research progress on photosynthesis under salt Stress. China Vegetables, 2012, (18): 53- 61.
[27] Lu C M, Zhang Q D, Kuang T Y. The effects of water stress on the chlorophyll a fluorescence induction kinetics in wheat seedlings. Acta Biophysica Sinica, 1993, 9(3): 453- 457.
[28] Genty B, Briantais J M, Baker N R. The relationship between the quantum yield of photosynthetic electron transport and quenching of chlorophyll fluorescence. Biochimica et Biophysica Acta, 1989, 990(1): 87- 92.
[29] Foryer C H, Noetor G. Leaves in the dark see the light. Science, 1999, 284(5414): 599- 601.
[30] Reinbothe S, Reinbothe C. The regulating of enzymes involved in chlorophyll biosynthesis. European Journal of Biochemistry, 1996, 237(2): 323- 343.
[31] Takahashi S, Murata N. How do environmental stresses accelerate photoinhibition? Trends in Plant Science, 2008, 13(4): 178- 182.
[32] Zhu H J, Wang R G, Chen S L, Zhang Y X, Li N Y, Shao J. Genotypic differences betweenPopuluseuphraticaandP.Popularisin antioxidative ability and salt tolerance under NaCl stress. Acta Ecologica Sinica, 2007, 27(10): 4113- 4121.
[33] Ma C L, Liu X H, Wang X P. Study on the growth and characteristics of mineral nutrition and ion absorption of pomelo seedlings under salt stress. Plant Nutrition and Fertilizer Science, 2004, 10(3): 319- 323.
[34] Niu X, Bressan R A, Hasegawa P M, Pardo J M. Ion homeostasis in NaCI stress environments. Plant Physiology, 1995, 109(3): 735- 742.
[35] Dieter P. Calmodulin and calmodulin-mediated progress in plants. Plant, Cell and Environment, 1986, 7: 371- 380.
[36] Willmer C M, Mansfield T A. A critical examination of the use of detached epidermis in studies of stomatal physiology. The New Phytologist, 1969, 68(2): 363- 375.
[37] Bangerth F. Calcium-related physiological disorders of plants. Annual Review of Phytopathology, 1979, 17(1): 97- 122.
[38] Guo S K, Zhao K F. The possible mechanisms of NaCl inhibit photosythesis of maize seedlings. Acta Phytophysiologica Sinica, 2001, 27(6): 461- 466.
參考文獻(xiàn):
[2] 余海英, 李廷軒, 周健民. 設(shè)施土壤次生鹽漬化及其對土壤性質(zhì)的影響. 土壤, 2005, 37(6): 581- 586.
[3] 李東坡, 武志杰, 梁成華, 陳利軍. 設(shè)施土壤生態(tài)環(huán)境特點(diǎn)與調(diào)控. 生態(tài)學(xué)雜志, 2004, 23(5): 192- 197.
[5] 金春燕, 孫錦, 郭世榮. 外源亞精胺對Ca(NO3)2脅迫下黃瓜幼苗生長和活性氧代謝的影響. 西北植物學(xué)報(bào), 2010, 30(8): 1627- 1633.
[7] 童有為, 陳淡飛. 溫室土壤次生鹽漬化的形成和治理途徑研究. 園藝學(xué)報(bào), 1991, 18(2): 159- 162.
[8] 童輝, 孫錦, 郭世榮, 張振興. 等滲Ca(NO3)2和NaCl 脅迫對黃瓜幼苗生長及滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)含量的影響. 西北植物學(xué)報(bào), 2012, 32(2): 306- 311.
[9] 王麗萍, 孫錦, 郭世榮, 田婧, 陸曉民, 陽燕娟. 等滲Ca(NO3)2和NaCl 脅迫對黃瓜砧用南瓜幼苗生長和活性氧代謝的影響. 西北植物學(xué)報(bào), 2011, 31(10): 2045- 2051.
[10] 劉志媛, 朱祝軍, 錢亞榕, 喻景權(quán). 等滲Ca(NO3)2和NaCl對番茄幼苗生長的影響. 園藝學(xué)報(bào), 2001, 28(1): 31- 35.
[11] 沈偉其. 測定水稻葉片葉綠素含量的混合液提取法. 植物生理學(xué)通訊, 1988, 24(3): 62- 64.
[12] 王愛國, 羅廣華. 植物的超氧物自由基與羥胺反應(yīng)的定量關(guān)系. 植物生理學(xué)通訊, 1990, 26(6): 55- 57.
[20] 羅慶云, 於丙軍, 劉友良. 大豆苗期耐鹽性鑒定指標(biāo)的檢驗(yàn). 大豆科學(xué), 2001, 20(3): 177- 182.
[21] 童輝, 孫錦, 郭世榮, 張振興. 等滲Ca(NO3)2和NaCl 脅迫對黃瓜幼苗根系形態(tài)及活力的影響. 南京農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào), 2012, 35(3): 37- 41.
[26] 束勝, 郭世榮, 孫錦, 袁穎輝, 袁凌云. 鹽脅迫下植物光合作用的研究進(jìn)展. 中國蔬菜, 2012, (18): 53- 61.
[27] 盧從明, 張其德, 匡廷云. 水分脅迫對小麥葉綠素a熒光誘導(dǎo)動力學(xué)的影響. 生物物理學(xué)報(bào), 1993, 9(3): 453- 457.
[32] 朱會娟, 王瑞剛, 陳少良, 張?jiān)葡? 李妮亞, 邵杰. NaCl脅迫下胡楊(Populuseuphratica)和群眾楊(P.Popularis)抗氧化能力及耐鹽性. 生態(tài)學(xué)報(bào), 2007, 27(10): 4113- 4121.
[33] 馬翠蘭, 劉星輝, 王湘平. 鹽脅迫下柚實(shí)生苗生長、礦質(zhì)營養(yǎng)及離子吸收特性研究. 植物營養(yǎng)與肥料學(xué)報(bào), 2004, 10(3): 319- 323.
[38] 郭書奎, 趙可夫. NaCl脅迫抑制玉米幼苗光合作用的可能機(jī)理. 植物生理學(xué)報(bào), 2001, 27(6): 461- 466.
Effects of iso-osmotic Ca(NO3)2and NaCl stress on growth and physiological characteristics of cucumber seedlings
ZHOU Heng, GUO Shirong, SHAO Huijuan, CHEN Xinbin, WEI Bin, HU Rong, JIANG Dongchen, ZHENG Zhihang, SUN Jin*
CollegeofHorticulture,NanjingAgriculturalUniversity/KeyLaboratoryofSouthernVegetableCropGeneticImprovement,MinistryofAgriculture,Nanjing,Jiangsu210095,China
cucumber(CucumissativusL.); salt stress; Ca(NO3)2; NaCl; growth; physiological characteristics
高等學(xué)校博士學(xué)科點(diǎn)專項(xiàng)科研基金(20100097120002);國家重點(diǎn)基礎(chǔ)研究發(fā)展計(jì)劃項(xiàng)目(2009CB119000);現(xiàn)代農(nóng)業(yè)產(chǎn)業(yè)技術(shù)體系建設(shè)專項(xiàng)資金資助(CARS- 25-C- 03)
2013- 03- 20;
2013- 09- 18
10.5846/stxb201303200467
*通訊作者Corresponding author.E-mail: jinsun@njau.edu.cn
周珩,郭世榮,邵慧娟,陳新斌,魏斌,胡榮,姜冬晨,鄭智航,孫錦.等滲NaCl和Ca(NO3)2脅迫對黃瓜幼苗生長和生理特性的影響.生態(tài)學(xué)報(bào),2014,34(7):1880- 1890.
Zhou H, Guo S R, Shao H J, Chen X B, Wei B, Hu R, Jiang D C, Zheng Z H, Sun J.Effects of iso-osmotic Ca(NO3)2and NaCl stress on growth and physiological characteristics of cucumber seedlings.Acta Ecologica Sinica,2014,34(7):1880- 1890.