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      紅霉素對生物膜內(nèi)銅綠假單胞菌藥敏的影響*

      2014-12-16 08:29:06西電集團(tuán)醫(yī)院西安710077孫安志溫紅俠王曉輝
      陜西醫(yī)學(xué)雜志 2014年8期
      關(guān)鍵詞:頭孢他啶環(huán)丙沙星紅霉素

      西電集團(tuán)醫(yī)院(西安710077) 孫安志 溫紅俠 王曉輝

      銅綠假單胞菌(Pseudomonas aeruginosa,P.a(chǎn))是有引起有基礎(chǔ)病變患者社區(qū)獲得性感染和醫(yī)院獲得性感染的重要條件致病菌。由于P.a(chǎn)易形成生物被膜(Biofilm,BF),因此該感染具有一定的難治性,且易轉(zhuǎn)化為慢性感染,并對危重患者造成了一定的生命威脅。已有多項資料研究證明14、15元環(huán)大環(huán)內(nèi)酯類抗生素如紅霉素、阿奇霉素等可以抑制和破壞P.a(chǎn) BF的作用,阿奇霉素與其他有抗銅綠假單胞菌活性抗生素有協(xié)同作用。但亦有報道由于阿奇霉素的廣泛使用,導(dǎo)致多重耐藥菌株的產(chǎn)生[1]。但對紅霉素(Erythromycin,EM)長期作用后BF內(nèi)P.a(chǎn)的藥物敏感性實(shí)驗(yàn)尚未見報道,因此本研究對EM在抑制BF形成的同時,是否影響B(tài)F內(nèi)P.a(chǎn)藥物敏感性進(jìn)行探討。

      材料和方法

      1 實(shí)驗(yàn)材料

      1.1 將聚氯乙烯氣管導(dǎo)管(上海景年醫(yī)療器械有限公司)制成1cm×1cm,經(jīng)環(huán)氧乙烷滅菌備用。

      1.2 菌株:PAO1由丹麥哥本哈根大學(xué)臨床微生物科提供。質(zhì)控菌株為P.a(chǎn) ATCC 27853,由廣西醫(yī)科大學(xué)一附院臨床實(shí)驗(yàn)中心細(xì)菌室提供。

      1.3 主要試劑:EM 標(biāo)準(zhǔn)粉劑(批號:130307-200215)均購自中國藥品生物制品檢驗(yàn)所。LB培養(yǎng)基和戊二醛(Sigma公司)。

      2 研究方法

      2.1 采用試管二倍稀釋法測定EM對實(shí)驗(yàn)菌的最 低 抑 菌 濃 度 (Minimal inhibitory concentration,MIC):平行測定質(zhì)控菌株ATCC 27853的 MIC作質(zhì)量控制。

      2.2 P.a(chǎn)BF模型的建立:采用文獻(xiàn)[2]方法并改良。將培養(yǎng)過夜的PA01,調(diào)至0.5麥?zhǔn)蠁挝唬儆蒙睇}水1∶200稀釋,每試管加入5ml,每管置入滅菌BF載體1片,37℃培養(yǎng)24h后換液,以后每48h用50%LB換液。

      2.3 抑制P.a(chǎn)生物膜形成實(shí)驗(yàn):分為空白對照組、EM組。開始建模時,加入藥物EM(1/8MIC)。于建模第7d采用連續(xù)稀釋法[2]法行活菌計數(shù),并于第3d、第7d行生物膜半定量測定,每組2個標(biāo)本,每次測定均重復(fù)測定3次取平均值,另取分別1個標(biāo)本行SEM觀察,以上實(shí)驗(yàn)均獨(dú)立重復(fù)3次。

      2.4 BF細(xì)菌藥敏實(shí)驗(yàn):分別于建模3d和7d,生理鹽水沖洗去掉載體表面浮游菌,載體置于2ml生理鹽水,漩渦震蕩,取生物膜細(xì)菌,然后參照[3]采用Kirby-Bauer(K-B)紙片擴(kuò)散法行阿米卡星、美羅培南、哌拉西林、哌拉西林三唑坦、慶大霉素、舒普深、頭孢吡肟、左氧氟沙星、環(huán)丙沙星、頭孢他啶和氨曲南11種抗生素藥敏實(shí)驗(yàn)。

      2.5 SEM觀察BF形成:滅菌生理鹽水沖洗去掉浮游菌后用2.5%戊二醛固定,pH7.4的PBS漂洗3次,依次用50%、70%、80%、90%、100%酒精脫水,真空條件下鍍金粉,SEM觀察。

      2.6 統(tǒng)計學(xué)方法:采用SPSS13.0,藥物抑制P.a(chǎn)形成BF作用的細(xì)菌數(shù)和各藥物組內(nèi)不同作用時間的細(xì)菌存活數(shù)比較用單因素方差分析;P.a(chǎn)早期或成熟BF經(jīng)藥物作用后BF內(nèi)細(xì)菌存活數(shù)比較用重復(fù)測量數(shù)據(jù)方差分析。

      結(jié) 果

      1 MIC EM 對P.a(chǎn)實(shí)驗(yàn)菌株及質(zhì)控菌株ATCC 27853的 MIC均為128μg/ml。

      2 抑制P.a(chǎn) BF形成實(shí)驗(yàn)

      2.1 建模3d實(shí)驗(yàn)結(jié)果:SEM觀察觀察,空白對照組可見均勻、密布堆積的稀薄生物膜,可見細(xì)菌輪廓及細(xì)菌間黏液樣物質(zhì)。EM組可見散在的早期BF,分布較空白對照組稀疏。EM組載體表面生物膜半定量和空白對照組比較,經(jīng)統(tǒng)計學(xué)分析,差異有顯著性意義(P<0.01)。提示EM組載體表面形成的生物膜少于空白對照組。

      2.2 建模7d后實(shí)驗(yàn)結(jié)果:SEM觀察,空白對照組載體表面可見濃厚黏液樣物質(zhì),菌體輪廓模糊不清,BF呈立體結(jié)構(gòu),而EM組僅見稀少的薄層生物膜。載體表面活菌計數(shù)結(jié)果顯示EM組低于空白對照組(P<0.01)。載體表面生物膜半定量檢測發(fā)現(xiàn),EM組和空白對照組比較,經(jīng)統(tǒng)計學(xué)分析,差異有顯著性(P<0.01),提示EM組載體表面生物膜少于空白對照組。

      3 EM對BF內(nèi)細(xì)菌藥敏影響的實(shí)驗(yàn)結(jié)果 經(jīng)EM作用后,對所檢測的抗生素均敏感,但和空白對照組比較,對于早期BF細(xì)菌,環(huán)丙沙星抑菌圈增大(P<0.05),頭孢他啶和氨曲南抑菌圈亦增大(P<0.01),見表1。對于晚期BF細(xì)菌,頭孢吡肟、環(huán)丙沙星和左氧氟沙星抑菌圈直徑明顯小于空白對照組(P<0.01),而頭孢他啶組明顯增大(P<0.05),見表2。

      表1 紅霉素干預(yù)3d后生物膜細(xì)菌的藥敏實(shí)驗(yàn)結(jié)果(±s)

      表1 紅霉素干預(yù)3d后生物膜細(xì)菌的藥敏實(shí)驗(yàn)結(jié)果(±s)

      注:△與空白對照組比較,P<0.01,*與空白對照組比較,P<0.05

      空白對照組(mm) 紅霉素組(mm)27.0±0.5 27.8±0.4美羅培南 27.1±0.6 27.3±0.7哌拉西林 29.1±0.8 28.9±0.6哌拉西林三唑坦 28.2±0.4 28.2±0.4慶大霉素 25.3±0.5 26.4±0.8舒普深 26.3±1.1 25.6±0.5頭孢吡肟 28.7±0.5 29.2±1.0左氧氟沙星 25.1±0.3 25.7±1.1環(huán)丙沙星 31.9±0.3 33.1±1.1*頭孢他啶 27.4±0.5 28.3±0.5△氨曲南 24.3±0.5 26±0阿米卡星△

      表2 紅霉素干預(yù)7d后生物膜細(xì)菌的藥敏實(shí)驗(yàn)結(jié)果(±s)

      表2 紅霉素干預(yù)7d后生物膜細(xì)菌的藥敏實(shí)驗(yàn)結(jié)果(±s)

      注:△與空白對照組比較,P<0.01,*與空白對照組比較,P<0.05

      空白對照組(mm) 紅霉素組(mm)27.3±0.9 27.6±2.6氨曲南 24.2±0.2 26.3±2.6美羅培南 26.7±0.1 26.2±2.0哌拉西林 28.6±1.9 29.4±1.0哌拉西林三唑坦 28.3±1.6 29.6±1.0慶大霉素 25.9±0.8 27.3±2.4舒普深 26.6±0.9 26.8±1.6頭孢吡肟 28.2±0.7 23.8±0.7△頭孢他啶 27.6±1.1 28.9±0.8*環(huán)丙沙星 31.6±0.9 26.5±1.1△左氧氟沙星 24.6±1.0 18.8±1.2阿米卡星△

      討 論

      BF是細(xì)菌為適應(yīng)自然環(huán)境、有利于生存而特有的生命現(xiàn)象,系指細(xì)菌吸附于惰性物體如生物醫(yī)學(xué)材料或機(jī)體黏膜表面后,分泌多糖基質(zhì)、纖維蛋白、脂蛋白等多糖蛋白復(fù)合物,形成網(wǎng)狀立體結(jié)構(gòu),使細(xì)菌相互粘連并將其自身克隆聚集纏繞其中形成的膜樣物。BF的形成和發(fā)展大致經(jīng)歷了粘附期、種殖期、生長期、成熟期、播散期幾個時期。成熟的P.a(chǎn)生物膜由蘑菇樣或柱樣亞單位組成,每個亞單位又互相交錯成網(wǎng)狀,菌體之間互相粘連附著于網(wǎng)狀結(jié)構(gòu)的表面,外層系碳?xì)浠衔锉荒?。P.a(chǎn)生物被膜這種特殊結(jié)構(gòu),堅實(shí)、穩(wěn)定,作為一保護(hù)屏障,不易被破壞,保護(hù)細(xì)菌避免與抗生素和免疫攻擊物接觸。有報道[4]顯示,由于細(xì)菌生物膜的立體結(jié)構(gòu),形成一定的滲透屏障,延緩了抗生素對BF的滲透。

      目前研究顯示十四(EM、羅紅霉素、克拉酶素)、十五元環(huán)(阿奇霉素)的大環(huán)內(nèi)酯抗生素能抑制藻酸鹽合成的關(guān)鍵酶-GMD的活性,顯著減少藻酸鹽的合成,抑制BF的形成,臨床實(shí)踐也證實(shí)[5]:低劑量紅霉素能改善支氣管擴(kuò)張并銅綠簡單胞菌生物膜感染患者肺功能的急性加重的次數(shù),但可能增加對大環(huán)內(nèi)酯類抗生素的耐藥性。但是對于其他抗生素的敏感性尚無報道。

      本研究顯示,在EM作用3d時,SEM觀察發(fā)現(xiàn)載體表面僅形成散在、稀疏的早期BF,而空白對照組可見均勻、密布堆積的稀薄生物膜,可見細(xì)菌輪廓及細(xì)菌間黏液樣物質(zhì)。BF半定量測定發(fā)現(xiàn),EM組明顯少于空白對照組。EM作用7d后,EM組載體表面僅見稀少的薄層生物膜,而空白對照組載體表面可見濃厚黏液樣物質(zhì),菌體輪廓模糊不清,BF呈立體結(jié)構(gòu)。載體表面活菌計數(shù)結(jié)果顯示EM組低于空白對照組。載體表面生物膜半定量檢測發(fā)現(xiàn),EM組載體表面生物膜少于空白對照組。以上研究結(jié)果顯示,1/8MICEM可以抑制P.a(chǎn)生物膜的形成。

      另有多項研究顯示[6,7],亞抑菌濃度抗生素長期連續(xù)作用于P.a(chǎn)后,可誘發(fā)細(xì)菌耐藥和交叉耐藥產(chǎn)生。但是,目前尚未見到,關(guān)于長期連續(xù)使用亞抑菌濃度的EM對BF內(nèi)P.a(chǎn)抗生素敏感性影響的相關(guān)報道。因此本實(shí)驗(yàn)就1/8MICEM連續(xù)作用3d和7d,在抑制P.a(chǎn)生物膜形成同時,是否會影響頭孢他啶、左氧氟沙星、環(huán)丙沙星和氨曲南等11種抗生素對BF內(nèi)P.a(chǎn)的敏感度進(jìn)行探討。

      結(jié)果發(fā)現(xiàn),根據(jù)參考文獻(xiàn)[3],不論是早期還是晚期BF,空白對照組P.a(chǎn)對所檢測的抗生素均敏感。單獨(dú)應(yīng)用敏感抗生素并不能完全清除BF內(nèi)P.a(chǎn),但是和能破壞BF的EM聯(lián)合使用后,卻產(chǎn)生良好的協(xié)同殺菌作用,該結(jié)果提示,BF對抗生素的滲透限制在細(xì)菌耐藥方面有著重要的作用。

      EM作用3d后,和空白對照組比較,對于早期BF細(xì)菌,環(huán)丙沙星抑菌圈直徑增大,頭孢他啶和氨曲南抑菌圈直徑亦增大,其他抗生素抑菌圈直徑大小無差異。但隨著EM連續(xù)作用時間延長至7d時,盡管頭孢吡肟、環(huán)丙沙星和左氧氟沙星依然對P.a(chǎn)敏感,但是所形成的抑菌圈直徑卻明顯小于空白對照組。同時觀察不同藥物作用時間點(diǎn)的結(jié)果發(fā)現(xiàn),其中環(huán)丙沙星抑菌圈直徑由EM作用3d時的33.1±1.1mm,降低至作用7d時的26.5±1.1mm,左氧氟沙星抑菌圈直徑由EM作用3d時的25.7±1.1mm,降低至作用7d時的18.8±1.2mm,頭孢吡肟抑菌圈直徑由EM作用3d時的29.2±1.0mm,降低至作用7d時的23.8±0.7mm。提示隨著1/8MICEM作用時間的延長,環(huán)丙沙星、左氧氟沙星和頭孢吡肟對P.a(chǎn)的敏感性呈下降趨勢,并且以左氧氟沙星顯著,甚至臨近敏感標(biāo)準(zhǔn)(18mm)。但是頭孢他啶抑菌圈直徑較空白對照組明顯增大,觀察EM作用不同時間點(diǎn)抑菌圈的大小發(fā)現(xiàn),頭孢他啶抑菌圈直徑由EM作用3d時的28.3±0.5mm,增大至作用7d時的28.9±0.8mm,盡管兩組間差異無統(tǒng)計學(xué)意義,但仍有一定的增大趨勢。

      經(jīng)分析以上結(jié)果顯示,亞抑菌濃度EM可以抑制早期和晚期P.a(chǎn)生物膜形成的同時,隨著藥物作用時間的延長,EM使頭孢他啶對P.a(chǎn)的抑菌圈有增大趨勢,但卻使環(huán)丙沙星、左氧氟沙星和頭孢吡肟對P.a(chǎn)的敏感性呈下降趨勢,并且以左氧氟沙星顯著,甚至臨近敏感標(biāo)準(zhǔn)(18mm)。

      [1] Lutz L,Pereira DC,Paiva RM,et al.Macrolides decrease the minimal inhibitory concentration of anti-pseudomonal agents againstPseudomonas aeruginosa from cystic fibrosis patients in biofilm[J].BMC Microbiol,2012 ,8(12):196.

      [2] Dong YH,Wang LH,Xu JL,et al.Quenching quorumsensing dependent bacterial infection by an N-acyl homoserine lactonase[J].Nature,2001,411:813-817.

      [3] Brooun A,Uu SH,Lewis K.A dose-response study of antibiotic in Pseudomonas aeruginoda biofilms[J].Antimicrob A.Gents Chemother,2000,44:640-646.

      [4] Wlters MC,Roe F,Bugnicout A,et al.Contributions of antibiotic penetration,oxygen limitation,and low metabolic activity to toleran ce of Pseudomonas aeruginosa biofilms to ciprofloxacin and tobramycin[J].Antimicrob A-gents Chemother,2003,47:317-323.

      [5] Serisier DJ,Martin ML,Mc Guckin MA ,et al.Effect of long-term,low-dose erythromycin on pulmonary exacerbations among patients with non-cystic fibrosis bronchiectasis:the BLESS randomized controlled trial[J].JAMA,2013,309(12):1260-1267.

      [6] 楊敬芳,郭 進(jìn).環(huán)丙沙星次抑菌濃度誘導(dǎo)銅綠假單胞菌耐藥的實(shí)驗(yàn)研究[J].中國藥師,2002,5(1):11-13.

      [7] 陳 瑞,唐英春,朱家馨,等.亞抑菌濃度亞胺培南體外誘導(dǎo)銅綠假單胞菌耐藥[J].中華醫(yī)院感染學(xué)雜志,2005,15(2):131-133.

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