• 
    

    
    

      99热精品在线国产_美女午夜性视频免费_国产精品国产高清国产av_av欧美777_自拍偷自拍亚洲精品老妇_亚洲熟女精品中文字幕_www日本黄色视频网_国产精品野战在线观看

      ?

      微小核糖核酸在缺血性卒中研究中的進展

      2015-01-21 14:01:50李海龍畢曉瑩
      中國卒中雜志 2015年11期
      關(guān)鍵詞:腦組織生物學缺血性

      李海龍,畢曉瑩

      微小核糖核酸(micro ribonucleic acids,miRNAs)作為一種小分子(約22個核苷酸)非編碼核糖核酸(ribonucleic acid,RNA),主要在轉(zhuǎn)錄后調(diào)節(jié)相應基因的表達,盡管這種調(diào)節(jié)機制還未被完全闡明,但目前初步認為它主要通過與目標信使RNA(messager RNA,mRNA)3’端未翻譯的區(qū)域完全互補或部分互補地緊密配對結(jié)合,進而使目標mRNA退化或者抑制其下一步的翻譯[1]。有研究通過閉塞大鼠右側(cè)大腦中動脈模擬短暫腦缺血,發(fā)現(xiàn)腦組織和血液均有特異性miRNAs的高表達[2]。另有研究發(fā)現(xiàn),在同樣的模型中,短暫閉塞大腦中動脈及永久閉塞大腦中動脈的大鼠血漿中miR-124濃度在干預后8 h開始升高,24 h達高峰,與假手術(shù)組相比升高近150倍,意味著組織損傷特異性的miRNAs可被用來作為缺血性卒中的敏感生物學標記物[3]。而利用miRNAs這種調(diào)節(jié)基因表達的特性,通過某種傳遞系統(tǒng)減少引起病理損害和異?;虮磉_的miRNAs,提高發(fā)揮有益功能的miRNAs水平,可用于包括缺血性卒中等缺血性疾病的治療[4]。本文對缺血性卒中的病因、診斷、治療、預后等方面中近些年來有關(guān)miRNAs的研究進展做一綜述,為miRNAs接下來在臨床上的實踐應用研究提供依據(jù)。

      1 miRNAs在缺血性卒中高危因素中的作用

      缺血性卒中的發(fā)生與多種致病因素有關(guān),最常見的原因是頭部或頸部的動脈血管進行性狹窄,這種血管狹窄常由動脈粥樣硬化造成[5]。高脂肪飲食所導致的低密度脂蛋白、膽固醇、甘油三酯水平升高是動脈粥樣硬化具有顯著意義的危險因素。當腦動脈血管過于狹窄,血細胞便可聚集并形成動脈粥樣硬化斑塊。這些斑塊可以在其形成的部位直接阻斷動脈血管或者脫落后在下游較小的腦動脈處阻塞血管。

      組織特異性是miRNAs表達的一個重要特征[6]。有研究對大鼠頸內(nèi)動脈進行miRNAs微陣列芯片分析,在180個miRNAs陣列中,正常的大鼠頸內(nèi)動脈中發(fā)現(xiàn)了140個,其中有49個miRNAs高度表達[7]。血管內(nèi)切應力損傷血管內(nèi)皮細胞進而引起脂質(zhì)沉積是動脈粥樣硬化形成的重要機制。眾多研究已證實,血管內(nèi)切應力決定動脈粥樣硬化易發(fā)生于血管分叉及彎曲處[8]。有研究報道,血管內(nèi)切應力可誘發(fā)內(nèi)皮細胞產(chǎn)生miR-21,在內(nèi)皮細胞中,高表達的miR-21可抑制凋亡基因磷酸酶基因,增強蘇氨酸激酶及一氧化氮合成酶的磷酸化,增加一氧化氮(nitric oxide,NO)的產(chǎn)生,從而防止內(nèi)皮細胞的凋亡[9]。miRNAs還參與阻止白細胞的黏附聚集,血管細胞黏附分子(vascular cell adhesion molecule-1,VCAM-1)是由被炎癥因子激活的血管內(nèi)皮細胞表達的細胞間黏附分子,可通過與白細胞基本表達的α4β1-整合素蛋白相結(jié)合黏附于血管內(nèi)皮細胞,研究發(fā)現(xiàn),miR-126表達的減少可引起VCAM-1的表達增高,且靜息狀態(tài)的血管內(nèi)皮細胞正常表達miR-126[10],提示miR-126的表達可抑制VCAM-1,進而阻止白細胞黏附于血管內(nèi)皮細胞,并可能具有抗炎作用。

      高脂血癥已被證實是腦血流低灌注和缺血性卒中的重要危險因素。最近的有關(guān)miRNAs在調(diào)節(jié)膽固醇平衡方面的研究顯示,在人類和大鼠的細胞中,miR-33可抑制三磷酸腺苷結(jié)合盒轉(zhuǎn)運子(adenosinetriphosphate-binding cassette transporter,ABCA1)的表達從而減緩膽固醇流向載脂蛋白,因此,在巨噬細胞中,miR-33的高表達和拮抗作用可明顯改變膽固醇的流向,這在過量的膽固醇逆途徑運輸回肝臟的過程中起關(guān)鍵作用[11]。在粥樣斑塊的脂質(zhì)核心形成過程中,miRNAs調(diào)節(jié)粥樣斑塊相關(guān)的巨噬細胞攝取低密度脂蛋白(low density lipoprotein,LDL)從而轉(zhuǎn)化為泡沫細胞。研究發(fā)現(xiàn),在被氧化型LDL刺激后的巨噬細胞中,miR-125a-5p可介導其對脂質(zhì)的攝取并減少一些炎癥因子的分泌釋放(諸如白細胞介素-2、白細胞介素-6、腫瘤壞死因子-α、轉(zhuǎn)化生長因子-β)[12],因此,miR-125a-5p的上述作用可能在防止動脈粥樣硬化進展中發(fā)揮重要保護作用。

      高血壓病是缺血性卒中的一項顯著危險因素,miRNAs直接參與血管緊張素Ⅱ型1受體基因多態(tài)性增強血管緊張素1受體活性的機制并與血壓升高相關(guān)聯(lián)[13]。有關(guān)研究發(fā)現(xiàn),當對人類的主要血管平滑肌細胞使用抑制轉(zhuǎn)錄的miR-155抑制劑進行轉(zhuǎn)染,內(nèi)源性的人血管緊張素Ⅱ型1受體的表達和血管緊張素Ⅱ介導的細胞外調(diào)節(jié)激酶(extracellular regulated proteinkinases,ERK)活性均顯著升高[14]。相關(guān)的動物實驗研究顯示,成年高血壓大鼠與正常大鼠相比,主動脈中的miR-155表達減少,且與血壓的水平呈負相關(guān),同時還發(fā)現(xiàn),主動脈中miR-208的表達程度與血壓和年齡均呈負相關(guān)[15],這表明miR-155很可能參與了高血壓病的發(fā)展及其病理過程。

      2 miRNAs作為缺血性卒中診斷性生物學標記物的研究

      目前,卒中的診斷和分型主要依賴于臨床醫(yī)師的物理檢查并輔以多種影像學檢查技術(shù)作為補充,與急性冠狀動脈綜合征中可檢測肌鈣蛋白、肌紅蛋白、肌酸激酶同工酶作為診斷性生物學標記物不同,由于缺乏快速性、精確性和敏感性的生物學標記物的檢測機制,暫無應用于臨床的卒中相關(guān)血漿生物學標記物。來源于各種組織和器官的血漿miRNAs具有很好的穩(wěn)定性并且可耐受核酸酶的消化和其他惡劣環(huán)境,比如煮沸、過高或過低的PH值、長期的存放以及冰凍-融化循環(huán)[16]。威斯康星大學的Dharap等[17]對大鼠短暫大腦中動脈阻斷恢復再灌注后在不同的時間點測定miRNAs以了解其功能作用,在恢復灌注后3 h到3 d的5個時間點中,與假手術(shù)組相比,所估測的238種miRNAs中有8種表達增多,12種表達減少,且發(fā)生變化的miRNAs與多種介導炎癥、神經(jīng)保護、受體功能和離子平衡的mRNA相關(guān),而加利福尼亞大學的Da-Zhi Liu等[18]對缺血性卒中、腦出血和紅海藻鹽癲癇的大鼠模型造模24 h后測定腦組織和全血中的miRNAs顯示,至少在一種實驗模型中,有5種miRNAs在腦組織和全血中同時上調(diào),4種miRNAs同時下調(diào),更為顯著的發(fā)現(xiàn)是miR-298是所有模型造模后唯一在腦組織和血液中均有上調(diào)的miRNAs,這與之前的研究中發(fā)現(xiàn)短暫大腦中動脈阻斷后腦組織和血液中miR-298同時上調(diào)的結(jié)果一致[2]。這表明血漿miRNAs可能成為用來診斷卒中的一種具有較高敏感性和特異性的血漿生物學標記物。

      有研究得出結(jié)論,在年輕卒中患者中,miRNAs的表達明顯受卒中的影響,其表達在卒中病變動脈的大小、卒中類型以及不同的預后結(jié)局均不同[19]。一項意在尋找腦梗死中腦組織特異性的miRNAs作為可能生物學標記物的研究發(fā)現(xiàn),在大腦和小腦中分別檢測到了389和395種miRNAs,其中有13種miRNAs的表達具有腦組織特異性,對該miRNAs陣列中信號最強的三種miRNAs進一步分析后顯示,miR-124幾乎在僅在腦組織中表達,在大腦中動脈閉塞(middle cerebral artery occasion,MCAO)大鼠模型中,血漿miR-124濃度在造模后6 h明顯升高,并且在48 h仍有升高,而作為對照的假手術(shù)大鼠中miR-124濃度一直在初測值的下限,線性回歸分析顯示大鼠腦梗死面積與血漿miR-124濃度無關(guān)聯(lián),因此,miR-124有可是腦梗死的一種生物學標記物[20]。另一項以miR-210作為急性缺血性卒中生物學標記物的研究顯示,與正常健康對照人群相比,急性缺血性卒中患者血液中的miR-210明顯減少,特別是在卒中發(fā)生后的7 d和14 d,而且,在卒中患者中,預后較好人群的miRNA-210水平高于預后較差的人群。在該研究隨后的動物學實驗中,miR-210在血液和腦組織中的水平呈正相關(guān)。以上研究提示,血液miR-210可能是急性缺血卒中診斷和預后判斷的一種全新的敏感性生物學標記物[21]。此外,血液循環(huán)中miR-145也被發(fā)現(xiàn)在缺血性卒中的患者中較對照人群有顯著的升高,同樣也值得作為生物學標記物去更深入地研究[22]。如能發(fā)現(xiàn)一種或多種血漿生物學標記物,通過在緊急狀態(tài)下檢測這種標記物便可對卒中進行診斷、分型甚至預測再發(fā),這將具有極其重要的價值。

      3 miRNAs在缺血性卒中治療中的研究進展

      缺血預適應(ischemic pre-conditioning,IPC)是以不足以引起大腦缺血損傷所介導的細胞途徑,這種途徑可減少隨后缺血性損傷對腦組織的損害[23]。缺血性卒中發(fā)生時有miRNAs表達的變化,一些miRNAs可能具有一定神經(jīng)保護作用,而對IPC的分析研究可直接揭示miRNAs在神經(jīng)保護中的作用,進而為尋找缺血性卒中患者新的治療方法提供可能。在一項以IPC與缺血性卒中發(fā)生后miRNAs變化作對照的研究中發(fā)現(xiàn),miR-200和miR-182兩大miRNAs家族在腦缺血預適應后3 h選擇性地上調(diào),體外試驗顯示,將8種在體實驗中選擇性上調(diào)的miRNAs轉(zhuǎn)染進小鼠腦神經(jīng)瘤細胞中后,該細胞的生存能力較對照組增強,提示這些miRNAs具有神經(jīng)保護作用,其中具有最大神經(jīng)保護效應的miR-200b、miR-200c和miR-429通過下調(diào)脯氨酰羥化酶-2(prolyl hydroxylase 2)水平發(fā)揮作用[24]。另一項關(guān)于小鼠短暫缺血預適應模型中miRNAs變化及作用靶點的研究顯示,缺血預適應組的miRNAs表達與假手術(shù)組、缺血性卒中組及耐受組有差異,預適應所調(diào)節(jié)的miRNAs主要作用于甲基CpG結(jié)合蛋白2(methyl-CpGbinding protein 2,MeCP2)mRNA,而缺血預適應通過減少miR-132表達的同時增加甲基CpG結(jié)合蛋白2蛋白,但卻對MeCP2 mRNA水平無影響,敲除MeCP2的小鼠對缺血極為敏感,提示miRNA和MeCP2可成為缺血預適應介導的缺血耐受的效應物[25]。此外,國內(nèi)首都醫(yī)科大學的一項研究對miRNAs在缺氧預適應(hypoxic pre-conditioning,HPC)及MCAO小鼠造模后6 h的表達進行分析后發(fā)現(xiàn),有19種miRNAs通過一系列重要的調(diào)節(jié)途徑(檸檬酸循環(huán)、糖酵解途徑、氧化磷酸化途徑等)對蛋白激酶C(protein kinase C,PKC)βII、PKCγ和新型PKCε相互作用蛋白進行調(diào)節(jié),而這幾種PKC亞型已被證實參與HPC介導的神經(jīng)保護作用,其中下調(diào)miR-615-3p水平可通過調(diào)節(jié)一種被稱作14-3-3γ的蛋白在HPC介導的神經(jīng)保護中發(fā)揮重要作用[26]。這些研究有助于更好地理解缺血缺氧預適應所介導的耐受機制,尋找新的臨床治療靶點,為缺血性卒中的治療及預防提供新的策略。

      有關(guān)miRNAs在缺血性卒中潛在治療效應的一系列研究發(fā)現(xiàn),在動物實驗及體外實驗中,通過上調(diào)或抑制一些miRNAs的表達進而調(diào)節(jié)mRNA翻譯表達相應的蛋白質(zhì),可起到神經(jīng)保護及抑制神經(jīng)細胞凋亡的作用。有研究發(fā)現(xiàn),在體外試驗中,暴露于缺血缺氧環(huán)境后,神經(jīng)元細胞和星形膠質(zhì)細胞miRNAs的表達種類及隨時間變化各不相同,因此,miRNAs的這種在腦組織缺血后時間性和空間性的表達模式值得更進一步的研究,并有助于促使新的治療干預措施被發(fā)現(xiàn)[27]。新加坡國立大學的Sepramaniam等[28]對MCAO大鼠模型中斷1 h供血模擬缺血性卒中,隨即給予側(cè)腦室注射miR-320a抑制劑及miR-320a前體,并對水分子通道蛋白-1(aquaporin 1,AQP-1)和AQP-4的表達以及腦組織梗死區(qū)大小進行測定,研究結(jié)果發(fā)現(xiàn),miR-320a可直接作用于AQP-1和AQP-4的mRNA并可影響缺血條件下AQP-1和AQP-4表達,其中miR-320a前體起抑制作用,而miR-320a抑制劑表現(xiàn)為激活作用,且可明顯減少缺血性卒中后的梗死區(qū)面積,提示miR-320a可作為缺血性卒中的潛在治療靶點。其另一項有關(guān)miRNAs調(diào)節(jié)水通道蛋白的研究發(fā)現(xiàn),miR-130a、miR-152、miR-668、miR-939和miR-1280在缺血性卒中星形膠質(zhì)細胞中高度表達且可調(diào)節(jié)AQP-4M1亞型啟動子活性,而miR-130a被認為是AQP-4M1亞型的翻譯表達抑制劑,在體實驗的結(jié)果顯示,miR-130a抑制劑可上調(diào)AQP-4M1亞型mRNA轉(zhuǎn)錄活性及其蛋白產(chǎn)物,并縮小腦梗死區(qū)面積促進梗死的恢復[29]。有關(guān)miRNAs神經(jīng)保護作用的研究還發(fā)現(xiàn),在體實驗和體外實驗中,miR-223可調(diào)節(jié)羥甲基惡唑丙酸受體亞型GluR2和天門冬氨酸受體(N Methyl D aspartate receptor,NMDAR)亞型NR2B的表達,進而參與調(diào)節(jié)NMDA介導的海馬神經(jīng)元中的鈣離子內(nèi)流和興奮性毒性作用,miR-223不足可引起高水平表達的GluR2和NR2B,促進NMDA介導的鈣離子內(nèi)流,增加海馬神經(jīng)元的微小興奮性突觸后電位的產(chǎn)生[30],這表明miR-233的這種神經(jīng)保護特點可能成為缺血性卒中的新的治療方法。與miR-233的這種保護作用不同的是,miR-181參與加重缺血性卒中的腦損傷,在小鼠MCAO模型再灌注早期,mi-181水平升高的損傷區(qū)域常注定會壞死,而mi-181減少的區(qū)域有被挽救的可能,該研究證實,miR-181可能通過抑制一種具有細胞保護作用的分子伴侶——葡萄糖調(diào)節(jié)蛋白78(glucose regulated protein,GRP78)的表達加重神經(jīng)損傷,減少或阻止miR-181的表達可能具有保護腦功能的作用[31]。

      這一系列體內(nèi)及體外實驗的研究結(jié)果均提示,miRNA在調(diào)節(jié)缺血性卒中發(fā)生后神經(jīng)細胞死亡的一些途徑中具有關(guān)鍵作用,通過控制miRNA的表達水平來對缺血性損傷進行干預可能成為未來卒中治療的一項新的治療方法。

      4 總結(jié)與展望

      目前,通過成熟的動物模型和分子生物學檢測技術(shù),很多miRNAs在缺血性卒中中的作用和功能已被有效地認識和識別[32],同時miRNAs還參與了缺血性卒中的眾多危險因素的發(fā)生與形成,循環(huán)血中miRNAs較好的理化穩(wěn)定性使其有理由成為一種可靠的非侵入性的臨床生物學標志物,其通過抑制mRNA的翻譯來調(diào)節(jié)多種重要蛋白表達的特點為缺血及再灌注的腦損傷治療提供了新的方法對策?,F(xiàn)階段,大多數(shù)有關(guān)miRNAs和卒中的相關(guān)研究還主要集中在動物卒中模型和體外試驗中,有關(guān)miRNAs的診斷和治療作用的臨床實驗研究期望在不久的將來得到有效地開展。

      1 Bartel DP.MicroRNAs:genomics,biogenesis,mechanism,and function[J].Cell,2004,116:281-297.

      2 Jeyaseelan K,Lim KY,Armugam A.MicroRNA expression in the blood and brain of rats subjected to transient focal ischemia by middle cerebral artery occlusion[J].Stroke,2008,39:959-966.

      3 Laterza OF,Lim L,Garrett-Engele PW,et al.Plasma MicroRNAs as sensitive and specific biomarkers of tissue injury[J].Clin Chem,2009,55:1977-1983.

      4 Fasanaro P,Greco S,Ivan M,et al.microRNA:emerging therapeutic targets in acute ischemic diseases[J].Pharmacol Ther,2010,125:92-104.

      5 Siri-Tarino PW,Sun Q,Hu FB,et al.Saturated fat,carbohydrate,and cardiovascular disease[J].Am J Clin Nutr,2010,91:502-509.

      6 Lagos-Quintana M,Rauhut R,Yalcin A,et al.Identification of tissue-specific microRNAs from mouse[J].Curr Biol,2002,12:735-739.

      7 Ji R,Cheng Y,Yue J,et al.MicroRNA expression signature and antisense-mediated depletion reveal an essential role of MicroRNA in vascular neointimal lesion formation[J].Circ Res,2007,100:1579-1588.

      8 Cheng C,De Crom R,Van Haperen R,et al.The role of shear stress in atherosclerosis:action through gene expression and inflammation?[J].Cell Biochem Biophys,2004,41:279-294.

      9 Weber M,Baker MB,Moore JP,et al.MiR-21 is induced in endothelial cells by shear stress and modulates apoptosis and eNOS activity[J].Biochem Biophys Res Commun,2010,393:643-648.

      10 Harris TA,Yamakuchi M,Ferlito M,et al.MicroRNA-126 regulates endothelial expression of vascular cell adhesion molecule 1[J].Proc Natl Acad Sci USA,2008,105:1516-1521.

      11 Rayner KJ,Suarez Y,Davalos A,et al.MiR-33 contributes to the regulation of cholesterol homeostasis[J].Science,2010,328:1570-1573.

      12 Chen T,Huang Z,Wang L,et al.MicroRNA-125a-5p partly regulates the inflammatory response,lipid uptake,and ORP9 expression in oxLDL-stimulated monocyte/macrophages[J].Cardiovasc Res,2009,83:131-139.

      13 Sen CK,Gordillo GM,Khanna S,et al.Micromanaging vascular biology:tiny microRNAs play big band[J].J Vasc Res,2009,46:527-540.

      14 Martin MM,Buckenberger JA,Jiang J,et al.The human angiotensin II type 1 receptor +1166 A/C polymorphism attenuates microRNA-155 binding[J].J Biol Chem,2007,282:24262-24269.

      15 Xu CC,Han WQ,Xiao B,et al.Differential expression of microRNAs in the aorta of spontaneously hypertensive rats[J].Sheng Li Xue Bao,2008,60:553-560.

      16 Chen X,Ba Y,Ma L,et al.Characterization of microRNAs in serum:a novel class of biomarkers for diagnosis of cancer and other diseases[J].Cell Res,2008,18:997-1006.

      17 Dharap A,Bowen K,Place R,et al.Transient focal ischemia induces extensive temporal changes in rat cerebral microRNAome[J].J Cereb Blood Flow Metab,2009,29:675-687.

      18 Liu DZ,Tian Y,Ander BP,et al.Brain and blood microRNA expression profiling of ischemic stroke,intracerebral hemorrhage,and kainate seizures[J].J Cereb Blood Flow Metab,2010,30:92-101.

      19 Tan KS,Armugam A,Sepramaniam S,et al.Expression profile of MicroRNAs in young stroke patients[J].PLoS One,2009,4:e7689.

      20 Weng H,Shen C,Hirokawa G,et al.Plasma miR-124 as a biomarker for cerebral infarction[J].Biomed Res,2011,32:135-141.

      21 Zeng L,Liu J,Wang Y,et al.MicroRNA-210 as a novel blood biomarker in acute cerebral ischemia[J].Front Biosci (Elite Ed),2011,3:1265-1272.

      22 Gan CS,Wang CW,Tan KS.Circulatory microRNA-145 expression is increased in cerebral ischemia[J].Genet Mol Res,2012,11:147-152.

      23 Dirnagl U,Simon RP,Hallenbeck JM.Ischemic tolerance and endogenous neuroprotection[J].Trends Neurosci,2003,26:248-254.

      24 Lee ST,Chu K,Jung KH,et al.MicroRNAs induced during ischemic preconditioning[J].Stroke,2010,41:1646-1651.

      25 Lusardi TA,Farr CD,Faulkner CL,et al.Ischemic preconditioning regulates expression of microRNAs and a predicted target,MeCP2,in mouse cortex[J].J Cereb Blood Flow Metab,2010,30:744-756.

      26 Liu C,Peng Z,Zhang N,et al.Identification of differentially expressed microRNAs and their PKC-isoform specific gene network prediction during hypoxic pre-conditioning and focal cerebral ischemia of mice[J].J Neurochem,2012,120:830-841.

      27 Ziu M,Fletcher L,Rana S,et al.Temporal differences in microRNA expression patterns in astrocytes and neurons after ischemic injury[J].PLoS One,2011,6:e14724.

      28 Sepramaniam S,Armugam A,Lim KY,et al.MicroRNA 320a functions as a novel endogenous modulator of aquaporins 1 and 4 as well as a potential therapeutic target in cerebral ischemia[J].J Biol Chem,2010,285:29223-29230.

      29 Sepramaniam S,Ying LK,Armugam A,et al.MicroRNA-130a represses transcriptional activity of aquaporin 4 M1 promoter[J].J Biol Chem,2012,287:12006-12015.

      30 Harraz MM,Eacker SM,Wang X,et al.MicroRNA-223 is neuroprotective by targeting glutamate receptors[J].Proc Natl Acad Sci USA,2012,109:18962-18967.

      31. Ouyang YB,Lu Y,Yue S,et al.miR-181 regulates GRP78 and influences outcome from cerebral ischemia in vitro and in vivo[J].Neurobiol Dis,2012,45:555-563.

      32 Wang Y,Yang GY.MicroRNAs in Cerebral Ischemia[J].Stroke Res Treat,2013,2013:276540.

      猜你喜歡
      腦組織生物學缺血性
      谷稗的生物學特性和栽培技術(shù)
      缺血性二尖瓣反流的研究進展
      初中生物學糾錯本的建立與使用
      初中生物學糾錯本的建立與使用
      針灸在缺血性視神經(jīng)病變應用
      小腦組織壓片快速制作在組織學實驗教學中的應用
      芒果苷對自發(fā)性高血壓大鼠腦組織炎癥損傷的保護作用
      中成藥(2017年6期)2017-06-13 07:30:35
      缺血性腦卒中恢復期的中蒙醫(yī)康復治療
      DNA雙加氧酶TET2在老年癡呆動物模型腦組織中的表達及其對氧化應激中神經(jīng)元的保護作用
      PEDF抗腫瘤的生物學作用
      眉山市| 宁蒗| 芦溪县| 新营市| 桃园市| 泸州市| 石景山区| 铜鼓县| 江孜县| 庄浪县| 明光市| 建德市| 耿马| 游戏| 台山市| 厦门市| 工布江达县| 神池县| 桑日县| 枝江市| 海丰县| 呼图壁县| 凌云县| 普兰县| 安阳县| 长顺县| 银川市| 鸡西市| 彭泽县| 沾益县| 镇坪县| 顺义区| 宣城市| 大厂| 甘洛县| 库伦旗| 中山市| 阿克| 福建省| 田林县| 明水县|