溫麗君,吳繼華,宋淑軍,王艷茹,劉俊麗,司少艷,崔彥,張建中,周金蓮
機體在失重或模擬失重環(huán)境下可出現(xiàn)心血管脫適應(yīng)癥[1],主要表現(xiàn)為心動過速、血壓下降甚至暈厥。研究表明,失重或模擬失重條件下的心血管脫適應(yīng)與機體血液循環(huán)中腎上腺髓質(zhì)激素的變化有關(guān),但具體機制尚不明確[2]。腎上腺髓質(zhì)激素主要包括多巴胺(dopam ine,DA)、去甲腎上腺素(norep inephrine,NE)和腎上腺素(epinephrine,E),機體處于安靜狀態(tài)時,髓質(zhì)激素分泌量很少,而處于緊急情況時交感神經(jīng)興奮,髓質(zhì)激素分泌可驟然增多,使神經(jīng)興奮,反應(yīng)靈敏,供氧、供血增加,血糖升高,糖和脂肪分解加速,以供給更多的能量,提高機體的應(yīng)激能力。酪氨酸羥化酶(tyrosine hyd roxy lase,TH)是腎上腺髓質(zhì)激素合成過程中的限速酶,其活性對NE和E的合成起關(guān)鍵作用。文獻報道航天員在航天飛行過程中血漿腎上腺髓質(zhì)激素水平波動明顯且不一致,其在模擬失重條件下的變化亦存在爭議[3-5]。我們前期研究發(fā)現(xiàn),m iRNA-375在腎上腺髓質(zhì)中表達,而在皮質(zhì)中不表達。因此,本研究探討模擬失重條件下大鼠血漿腎上腺髓質(zhì)激素、TH及m iRNA-375表達變化特點,探討其m iRNA-375表達對腎上腺髓質(zhì)激素合成與分泌的影響及相關(guān)機制。
1.1 實驗動物與分組 SPF級W istar成年雄性大鼠56只,體重280~350g,購自中國北京華阜康生物科技股份有限公司。飼養(yǎng)條件為人工控制22±2℃,12h晝夜光照,自由進食飲水。適應(yīng)飼養(yǎng)1周后將大鼠隨機分為0h(正常對照組)、6h、12h、1d、3d、5d、7d組(n=8)。采用Morey-Holton尾懸吊法[6]建立模擬失重動物模型,所有操作經(jīng)醫(yī)院動物倫理委員會批準后進行。實驗步驟參照相關(guān)文獻報道[7]。實驗前后測量體重。除6、12h組外,其余各組選擇在9:00am取材。利用眼球摘除法取血標本,摘取腎上腺,剝除脂肪,測重,左側(cè)腎上腺置于1.5m l EP管中–80℃冰箱保存,右側(cè)腎上腺置于pH 7.4多聚甲醛中固定,常規(guī)石蠟包埋。
1.2 大鼠血漿腎上腺髓質(zhì)激素測定 大鼠懸吊結(jié)束后,采用10%水合氯醛行腹腔麻醉,利用眼球摘除法取血,置于含20μl 10% EDTA的滅菌EP管中,室溫靜置30m in,3500r/m in離心10m in,收集上層血漿,–20℃冰箱保存,利用放射免疫分析法測定血漿腎上腺髓質(zhì)激素含量,所有操作按說明書進行。
1.3 免疫組化檢測腎上腺髓質(zhì)TH蛋白表達 腎上腺石蠟包埋切片后,采用SABC法行免疫組化檢測。具體步驟如下:切片脫蠟,高溫抗原修復(fù),滅活內(nèi)源性過氧化物酶,羊血清封閉非特異性抗原,加TH一抗(以PBS為對照),4℃孵育過夜,加二抗GAR-B(生物素標記的山羊抗兔IgG)室溫孵育3h,加SP-HR室溫孵育2h,DAB試劑盒顯色,脫水封固,顯微鏡下觀察并照相。TH陽性為胞質(zhì)著色,DAB染色為棕黃色或棕褐色。
1.4 Western blotting檢測腎上腺髓質(zhì)TH蛋白表達水平 取凍存腎上腺,加入200μl蛋白裂解液,冰上研磨至糊狀,反復(fù)凍融6次,每次2m in,4℃條件下12 000r/m in離心60m in,取上清,按BCA蛋白濃度測定試劑盒說明書測其濃度并分裝,–80℃保存。SDS-PAGE凝膠電泳,采用半干法將蛋白質(zhì)轉(zhuǎn)移至PVDF膜,用脫脂奶粉封閉液封閉2h,稀釋抗體,室溫下與膜孵育2h,TBST快速洗膜6次,稀釋二抗并與膜孵育2h,再次用TBST快速洗滌膜6次,AP試劑盒顯色并照相。
1.5 RT-PCR檢測腎上腺髓質(zhì)TH m RNA和m iRNA-375表達 根據(jù)Gen Bank設(shè)計引物序列如下。TH上游引物5'-CCTCCTTGTCTCGGGCTGTA-3',下游引物5'-GGCGAGCACAGTAATCACCTTC-3';GAPDH上游引物5'-GGTTGTCTCCTGCGACTTCA-3',下游引物5'-GGGTGGTCCAGGGTTTCTTA-3';m iRNA-375上游引物5'-AGTGTCGTCAGAAAGAACGAACGGC-3',下游引物5'-CTCAACTGGTGCGTGGAGTC-3';U6上游引物5'-CTCGCTTCGGCAGCACA-3',下游引物5'-AACGCTTCACGAATTTGCGT-3'。m iRNA反轉(zhuǎn)錄引物序列:m iRNA-375-RT:CTCAACTGGTGTCGTG GAGTCGGCAATTCAATTCAGTTGAGAGCGCACT;U6-RT:AACGCTTCACGAATTTGCGT。引物由生工生物工程(上海)有限公司合成。提取組織RNA反轉(zhuǎn)錄為cDNA,RT-PCR反應(yīng)體系為15μl,上、下游引物分別為0.3μl。PCR反應(yīng)條件為95℃ 30s,95℃5s,60℃ 34s,40個循環(huán)。反應(yīng)結(jié)束后記錄Ct值,根據(jù)熔解曲線判斷所提取產(chǎn)物的純度并計算TH和m iRNA-375的相對表達水平。
1.6 統(tǒng)計學(xué)處理 采用SPSS 17.0軟件進行統(tǒng)計分析,所有數(shù)據(jù)采用±s表示,正態(tài)分布及方差齊性檢驗后,多個樣本比較采用單因素方差分析,多個均數(shù)之間兩兩比較采用LSD-t檢驗或SNK-q檢驗,P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
2.1 血漿腎上腺髓質(zhì)激素水平測定 尾懸吊模擬失重條件下,大鼠血漿腎上腺髓質(zhì)激素含量波動明顯,6~12h出現(xiàn)一過性下降,隨后急劇升高,3d形成峰值,之后呈下降趨勢,7d時接近正常對照組水平。E和NE變化趨勢基本一致,但前者反應(yīng)超前。尾懸吊1~5d大鼠E含量及尾懸吊3~5d大鼠的NE含量顯著升高,與正常對照(尾懸吊0h)之間的差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。DA的波動幅度相對較小,僅3d組的含量與正常對照組之間的差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05,圖1)。
圖1 模擬失重情況下各組大鼠血漿腎上腺髓質(zhì)激素含量變化Fig.1 Effect of sim u la ted nu ll g ravity on p lasm a m edu lliad renal ho rm one of rats
2.2 免疫組化染色觀察TH蛋白表達 TH蛋白陽性表達胞質(zhì)呈棕褐色。正常對照組大鼠腎上腺髓質(zhì)胞質(zhì)染色為陽性(圖2A、2B),6h~1d各組大鼠腎上腺髓質(zhì)胞質(zhì)染色加深(圖2C、2D),3d組染色最強(圖2E、2F),7d組染色逐漸恢復(fù)。陰性對照組腎上腺髓質(zhì)和皮質(zhì)的胞核及胞質(zhì)均未見著色(圖2G、2H)。
2.3 大鼠腎上腺髓質(zhì)TH m RNA和蛋白表達RT-PCR檢測結(jié)果顯示,各組大鼠腎上腺組織TH m RNA表達波動明顯,6h時呈現(xiàn)一過性下降,隨后即上升,1d到達峰值,與正常對照組比較差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05),之后呈下降趨勢,5d時形成谷值,與正常對照組比較差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05),7d時又有所升高。Western b lotting檢測結(jié)果顯示,3d時TH蛋白表達水平與對照組比較顯著升高(P<0.05),其余各組蛋白表達水平與對照組比較差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。TH m RNA和蛋白表達趨勢一致,但TH蛋白表達強度相對滯后(圖3)。
圖2 免疫組化染色觀察模擬失重大鼠腎上腺髓質(zhì)內(nèi)TH蛋白表達(DAB)Fig.2 Exp ression of TH p rotein in ad renal m edulla of rats under simulated null gravity (Immunohistochem istry staining,DAB)
2.4 大鼠腎上腺髓質(zhì)m iRNA-375表達 各組大鼠腎上腺髓質(zhì)m iRNA-375表達水平波動明顯,表現(xiàn)為尾懸吊早期(6h)呈一過性顯著升高,與正常對照組比較,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05);隨后快速下降,12h、1d和3d時表達受到明顯抑制,與正常對照組比較差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05);5d時表達量增加,7d時顯著升高(P<0.05,圖4)。
航天員飛行及模擬失重環(huán)境中腎上腺髓質(zhì)功能的變化情況,已受到學(xué)術(shù)界的關(guān)注。相關(guān)研究證實,航天員在航天飛行過程中血漿及尿腎上腺髓質(zhì)激素的檢測結(jié)果波動明顯且不一致,不僅不同飛行任務(wù)中航天員體內(nèi)腎上腺髓質(zhì)激素的量升降不一,同一飛行乘組中航天員之間的變化也不盡相同[5,8]。在人體模擬失重實驗中,研究結(jié)果則較為一致,表現(xiàn)為血漿或尿中腎上腺髓質(zhì)激素量下降[9-10]。
圖3 各組大鼠腎上腺髓質(zhì)TH m RNA(A)和蛋白(B)表達變化Fig. 3 Effect of sim u lated nu ll g ravity on m RNA (A) and p ro tein (B) exp ression of TH in ad renal m edu lla in rats(1)P<0.05 com pared with 0h (control group); (2)P<0.05 com pared with 6h group; (3)P<0.05 com pared with 12h group; (4)P<0.05 com pared with 1d g roup; (5)P<0.05 com pared with 3d g roup
圖4 大鼠腎上腺髓質(zhì)m iRNA-375水平變化Fig.4 Changes of m iRNA-375 exp ression in adrenal medulla of rats(1)P<0.05 com pared with 0h (con tro l group); (2)P<0.05 com pared with 6h group; (3)P<0.05 com pared with 12h group; (4)P<0.05 com pared with 1d group; (5)P<0.05 com pared with 3d group;(5)P<0.05 com pared with 5d g roup
模擬失重條件下大鼠體內(nèi)腎上腺髓質(zhì)激素變化的研究結(jié)果存在爭議。范全春等[11]研究發(fā)現(xiàn),大鼠尾懸吊21d后血清中NE含量明顯增加,Macho等[12]也有同樣結(jié)論,這與陳杰等[13]報道長期尾懸吊大鼠血漿中NE含量明顯下降矛盾,可能與實驗設(shè)計、環(huán)境、時相、檢測方法等的不同有關(guān)。我們的研究結(jié)果顯示,大鼠血漿中NE、E水平在尾懸吊早期呈現(xiàn)一過性下降,隨后急劇升高,3d時達高峰,之后下降,至7d時接近正常對照組水平。這種明顯的波動,首先可能與大鼠姿勢改變、體液重新分配、頭部及上肢血液瞬間增加、刺激心肺壓力感受器進而導(dǎo)致交感神經(jīng)活性暫時受到抑制有關(guān);伴隨持續(xù)的失重應(yīng)激狀態(tài),機體交感神經(jīng)活性的一過性抑制解除后,腎上腺髓質(zhì)細胞活性和腎上腺髓質(zhì)激素的合成及分泌迅速增加;一旦機體從整體到各系統(tǒng)尤其心血管系統(tǒng)對失重環(huán)境逐漸適應(yīng)后,神經(jīng)內(nèi)分泌系統(tǒng)包括腎上腺髓質(zhì)激素的合成和分泌變化則趨向穩(wěn)定,這種變化符合機體的正常應(yīng)激反應(yīng)過程。
Le lkes等[14]研究發(fā)現(xiàn),SD大鼠搭載太空飛船STS-54飛行6h后,其髓質(zhì)中腎上腺髓質(zhì)激素下降的同時伴隨TH表達水平的降低,但多巴胺β-羥化酶(dopam ine β hyd roxylase,DBH)及苯乙醇胺N-甲基轉(zhuǎn)移酶(phenylethanolam ine N-m ethyltransferase,PNM T)水平無明顯改變。本實驗結(jié)果表明,大鼠血漿TH m RNA及蛋白在實驗過程中波動明顯,二者之間及與NE和E的變化趨勢基本一致,進一步說明模擬失重早期血漿腎上腺髓質(zhì)激素的一過性下降和隨后的明顯升高以及后期的變化趨緩均受到TH的嚴密調(diào)控。
m iRNA-375最初發(fā)現(xiàn)于胰腺β細胞[15],隨后研究表明其在神經(jīng)系統(tǒng)、消化系統(tǒng)、呼吸系統(tǒng)、生殖系統(tǒng)、循環(huán)系統(tǒng)等組織中均有表達,并通過不同的靶基因抑制下游網(wǎng)狀細胞信號轉(zhuǎn)導(dǎo)通路而發(fā)揮作用,尤其與腫瘤發(fā)生發(fā)展關(guān)系密切[16]。在機體多系統(tǒng)組織的增殖和分化過程中也有重要作用,包括影響脂肪細胞分化、神經(jīng)突分化、軟骨祖細胞遷移、肺泡上皮細胞轉(zhuǎn)化等[17-20]。早先有研究發(fā)現(xiàn),m iRNA-375的下游靶基因包括14-4-3、SP1、ERK1/2等,而行使信號網(wǎng)絡(luò)樞紐的14-3-3信號蛋白可與TH蛋白相互作用并增強其活性,促進腎上腺髓質(zhì)激素的合成[21-22],但m iRNA-375在腎上腺的表達及作用目前尚未見文獻報道。
失重應(yīng)激狀態(tài)及適應(yīng)過程中腎上腺髓質(zhì)激素的合成、分泌和TH調(diào)節(jié)有待深入探討。隨著對m iRNA廣泛作用的認識,結(jié)合我們前期實驗研究中偶然發(fā)現(xiàn)m iRNA-375在腎上腺髓質(zhì)中存在的特殊表達情況,本實驗檢測模擬失重條件下大鼠腎上腺髓質(zhì)中m iRNA-375的表達變化,結(jié)果發(fā)現(xiàn)實驗大鼠腎上腺髓質(zhì)m iRNA-375表達水平波動明顯,表現(xiàn)為尾懸吊早期(6h)呈一過性顯著升高,隨后受到迅速而明顯抑制,在較低水平波動,至實驗第5d時表達量增加,7d時顯著升高,其變化趨勢與TH表達水平呈現(xiàn)明顯負相關(guān)。結(jié)合文獻和本實驗結(jié)果,我們推測腎上腺髓質(zhì)中m iRNA-375在基因水平上通過14-3-3信號蛋白調(diào)節(jié)(抑制)TH蛋白的轉(zhuǎn)錄和表達,進而影響腎上腺髓質(zhì)中腎上腺髓質(zhì)激素的合成和分泌,其作用機制有待進一步深入研究。
[1] Li ZP, Guo B, Li XO, et al. Changes in Cox-2 exp ression in gastric antrum m uscle layer, serum som atostatin and vasoactive intestinal pep tide levels in sim ulated weightlessness in rats[J].Med J Chin PLA, 2014, 39(5): 383-387. [李正鵬, 郭彪, 李曉鷗, 等. 模擬失重大鼠胃竇肌層Cox-2表達和血清SS及VIP水平的變化[J]. 解放軍醫(yī)學(xué)雜志, 2014, 39(5): 383-387.]
[2] Wang YC, Wu J, Sun QX, et al. Advances in research about effects of weightlessness or sim ulated weightlessness on cardiovascular system[J]. Acad J Chin PLA Med Sch, 2013, 34(1): 17-19. [王永春, 伍靜, 孫慶喜, 等. 失重或模擬失重對機體心血管系統(tǒng)影響的研究進展[J]. 解放軍醫(yī)學(xué)院學(xué)報, 2013, 34(1): 17-19.]
[3] Blaber E, Mar?al H, Burns BP. Bioastronautics: the influence of m icrogravity on astronaut health[J]. Astrobiology, 2010, 10(5):463-473.
[4] No rsk P. Blood p ressu re regu lation IV: adap tive responses to w eightlessness[J]. Eur J App l Physiol, 2014, 114(3): 481-497.
[5] Macho L, Koska J, Ksinantova L, et al. The response of endocrine system to stress loads during space flight in hum an sub ject[J].Ad v Space Res, 2003, 31(6): 1605-1610.
[6] Morey-Holten ER, Globus RK. The hind lim b un loading rodent m odel: technical aspects[J]. J App l Physio l, 2002, 92(4): 1367-1377.
[7] Wang CY, Wu JH, Song SJ, et al. Exp ression of hypoxia inducing factor-1α in rats' ovary under tail-suspension weightlessness[J].Med J Chin PLA, 2012, 37(9): 868-871. [王春雨, 吳繼華, 宋淑軍, 等. 尾懸吊模擬失重大鼠卵巢組織中缺氧誘導(dǎo)因子-1α表達變化[J]. 解放軍醫(yī)學(xué)雜志, 2012, 37(9): 868-871.]
[8] Leach CS, Ram baut PC. Endocrine responses in long-duration m anned space fligh t[J]. Acta Astronautica, 1975, 2(1-2): 115-127.
[9] Sam el A, Wegm ann HM, Velvoda M. Response of the circadian system to 6 deg rees head-dow n tilt bed rest[J]. Aviat Space Environ Med, 1993, 64(1): 50-54.
[10] Zhang GM, Liu KJ. The effect of head low bed (HDT-6) on the secrete rhythm icity of hum an urine catecho lam ine[J]. Space Med Med Eng, 1989, 2(2): 129-132. [張光明, 劉克嘉. 頭低位臥床(HDT-6b)對人尿兒茶酚胺分泌晝夜節(jié)律的影響[J]. 航天醫(yī)學(xué)與醫(yī)學(xué)工程, 1989, 2(2): 129-132.]
[11] Fan QC, Li YZ, Gao JY, et al. The regulation of space yangxin pill to sim u late cardiovascular system of sim ulated weightlessness rats[J]. Manned Space Fligh t, 2013, 19(1): 64-70. [范全春, 李勇枝, 高建義, 等. 太空養(yǎng)心丸對模擬失重大鼠心血管系統(tǒng)的調(diào)節(jié)作用[J]. 載人航空, 2013, 19(1): 64-70.]
[12] Macho L, Kvetnansky R, Vigas M, et al. Effect of space flights on p lasm a horm one levels in m an and in experim ental anim al[J].Acta Astronau tica, 1991, 23:117-121.
[13] Chen J, Zhang LF, Ma J. A p re lim inary study on p lasm a catecholam ine responses in rats after 3-m onth tail-suspension[J].Chin J Aerosp Med, 1994, 5(1): 31-33. [陳杰, 張立藩, 馬進. 長期尾部懸吊大鼠血漿兒茶酚胺反應(yīng)性的初步研究[J]. 中華航空醫(yī)學(xué)雜志, 1994, 5(1): 31-33.]
[14] Lelkes PI, Ram os EM, Chick DM, et al. M icrogravity decreases tyrosine hyd roxylase exp ression in rat ad renal[J]. FASEB J,1994, 8(14): 1177-1182.
[15] Poy MN, Eliasson L, Kru tzfeld t J, et al. A pancreatic isletspecific m icroRNA regulates insulin secretion[J]. Nature, 2004,432(11): 226-230.
[16] Yan JW, Lin JS, He XX. The Em erging ro le of m iR-375 in cancer[J]. In t J Cancer, 2014, 135(5): 1011-1108.
[17] Ling HY, Wen GB, Feng SD, et al. M icroRNA-375 p rom otes 3T3-L1 adipocyte differentiation through m odulation of extracellular signal-regu lated kinase signalling[J]. Clin Exp Pharm aco l Physio l, 2011, 38(4): 239-246.
[18] Abdelm ohsen K, Hutchison ER, Lee EK, et al. m iR-375 inhibits differentiation of neurites by lowering HuD levels[J]. Mo l Cell Bio l, 2010, 30(17): 4197-4210.
[19] Song J, Kim D, Chun CH, et al. M icroRNA-375, a new regulator of cadherin-7, supp resses the m ig ration of chond rogen ic p rogen ito rs[J]. Ce ll Signa l, 2013, 25(3): 698-706.
[20] Wang Y, Huang CQ, Reddy Chintagari N, et al. m iR-375 regulates rat alveo lar ep ithelial cell trans-differentiation by inhibiting Wn t/β-catenin pathw ay[J]. Nucleic Acids Res, 2013, 41(6):3833-3844.
[21] Roth D, Burgoyne RD. Stim ulation of catecholam ine secretion from ad renal ch rom affin cells by 14-3-3 p ro teins is due to reorganisation of the cortical actin netw ork[J]. FEBS Lett, 1995,374(1): 77-81.
[22] Skjevik AA, M ilen i M, Baum ann A, et al. The N-term ina l sequence of tyrosine hydroxylase is a con form ationally versatile m otif that binds 14-3-3 p roteinsand m em branes[J]. J Mol Biol,2014, 426(1): 150-168.