單長卷 張飛揚(yáng)
摘要:采用10%聚乙二醇6000(PEG6000)模擬干旱脅迫,研究外源水楊酸(SA)對干旱脅迫下玉米品種新單29幼苗根系抗氧化特性的影響。結(jié)果表明,干旱脅迫能顯著提高根系細(xì)胞質(zhì)膜透性、丙二醛(MDA)含量,顯著降低抗氧化酶超氧化物歧化酶(SOD)、過氧化氫酶(CAT)、過氧化物酶(POD)、抗壞血酸過氧化物酶(APX)、谷胱甘肽還原酶(GR)的活性以及抗氧化物質(zhì)還原型抗壞血酸(AsA)含量,對抗氧化酶脫氫抗壞血酸還原酶(DHAR)活性和抗氧化物質(zhì)還原型谷胱甘肽(GSH)含量影響不顯著。與單獨(dú)干旱脅迫處理相比,10 μmol/L SA均能使干旱下根系抗氧化酶SOD、CAT、POD、APX、DHAR的活性和抗氧化物質(zhì)GSH含量顯著提高,分別提高11.1%、10.9%、278.2%、61.5%、175%、304%,使其膜透性和MDA含量分別降低37.5%、44.1%,但對抗氧化酶GR活性和抗氧化物質(zhì)AsA含量影響不顯著。由此可見,外源施加水楊酸可顯著增強(qiáng)新單29幼苗根系的抗氧化特性,從而增強(qiáng)其對干旱的適應(yīng)性。
關(guān)鍵詞:玉米;根系;抗氧化特性;水楊酸;干旱脅迫
中圖分類號: S513.01;Q945.78文獻(xiàn)標(biāo)志碼: A文章編號:1002-1302(2015)02-0102-02
收稿日期:2014-04-23
基金項(xiàng)目:河南省教育廳科學(xué)技術(shù)研究重點(diǎn)項(xiàng)目(編號:13A180302)。
作者簡介:單長卷(1978—),男,山東巨野人,博士,副教授,主要從事植物逆境生理方面的研究。E-mail:shchjuan1978@aliyun.com。在響應(yīng)干旱的過程中,植物可以通過增強(qiáng)抗氧化系統(tǒng)的活性,而使自身免遭過量活性氧的傷害[1]。大量研究表明,干旱是影響玉米生長發(fā)育和產(chǎn)量的重要因素[2]。而根系是玉米感知和響應(yīng)土壤干旱的原初部位,其抗氧化能力則直接影響其抗旱性,因此,從抗氧化方面研究玉米根系的抗旱機(jī)制及其外源物質(zhì)的調(diào)控對提高玉米的抗旱性具有重要意義。水楊酸(SA)是一種重要的植物生長調(diào)節(jié)物質(zhì),在增強(qiáng)植物抗旱性上具有重要作用[3]。到目前為止,國內(nèi)外關(guān)于干旱下水楊酸對玉米抗氧化特性影響方面的研究已有一定基礎(chǔ)[4-6],但主要集中在葉片的研究上,對根系的研究明顯不足,尚不能揭示水楊酸對干旱下玉米根系抗氧化代謝的調(diào)控機(jī)制。由河南省新鄉(xiāng)市農(nóng)業(yè)科學(xué)院培育的高產(chǎn)玉米品種新單29抗旱性較差,因此如何在生產(chǎn)栽培中利用水楊酸增強(qiáng)其根系抗旱性對新單29玉米生產(chǎn)中的水分管理具有重要意義,但到目前為止,關(guān)于水楊酸對新單29根系抗氧化特性調(diào)控方面的研究尚未見報道。本研究采用10%聚乙二醇6000(PEG6000)模擬干旱環(huán)境,研究水楊酸對新單29幼苗根系超氧化物歧化酶(SOD)、過氧化物酶(POD)、過氧化氫酶(CAT)、抗壞血酸過氧化物酶(APX)、谷胱甘肽還原酶(GR)、脫氫抗壞血酸還原酶(DHAR)活性,抗氧化物質(zhì)還原型抗壞血酸(AsA)、還原型谷胱甘肽(GSH)、丙二醛(MDA)含量以及膜透性的影響,以期從抗氧化方面揭示水楊酸提高其抗旱性的生理機(jī)制,進(jìn)而為水楊酸在新單29生產(chǎn)栽培中的應(yīng)用提供理論基礎(chǔ)。
1材料與方法
1.1供試材料及幼苗培養(yǎng)
供試品種為新單29,由河南省新鄉(xiāng)市農(nóng)業(yè)科學(xué)院提供。挑選大小均勻、籽粒飽滿的玉米種子100粒,用蒸餾水將種子洗凈后晾干,用0.1% HgCl2浸泡20 min進(jìn)行常規(guī)消毒,并用蒸餾水沖洗,再用蒸餾水浸泡24 h,然后轉(zhuǎn)移至培養(yǎng)皿中,加入適量蒸餾水在培養(yǎng)箱中進(jìn)行發(fā)芽與幼苗培養(yǎng),培養(yǎng)箱溫度設(shè)為25 ℃。待幼苗長至2葉1心時轉(zhuǎn)入1/4 Hoagland營養(yǎng)液中進(jìn)行培養(yǎng),1 d換1次營養(yǎng)液。待幼苗長至3葉1心時,挑選生長情況基本一致的幼苗進(jìn)行試驗(yàn)。
1.2試驗(yàn)方法
1.2.1處理方法與取材試驗(yàn)共設(shè)3種處理:處理1為對照,采用100 mL的1/4 Hoagland營養(yǎng)液進(jìn)行處理;處理2為干旱脅迫,采用100 mL的1/4 Hoagland營養(yǎng)液配制成的10%PEG進(jìn)行處理;處理3為10 μmol/L SA+干旱脅迫,先用10 μmol/L SA預(yù)處理1 d,然后再轉(zhuǎn)入10%PEG 進(jìn)行處理,10 μmol/L SA溶液用1/4 Hoagland營養(yǎng)液配制而成。分別將根系置于不同溶液中進(jìn)行處理,每個處理6株幼苗,重復(fù)3次,在處理后2 d取樣并測定玉米幼苗根系的各項(xiàng)生理指標(biāo),各項(xiàng)指標(biāo)均測定3次。
1.2.2測定項(xiàng)目與方法細(xì)胞質(zhì)膜透性用細(xì)胞膜相對透性表示,細(xì)胞膜相對透性=L1/L2×100%,式中:L1表示殺死前外滲液的電導(dǎo)值,L2表示殺死后外滲液的電導(dǎo)值[7]207-208;MDA含量的測定參照李合生的方法[8];SOD活性的測定參照李合生的方法[8];POD、CAT活性的測定均參照張志良等的方法[7]267-268,POD活性以1 min內(nèi)D470 nm變化0.001為1個酶活性單位,CAT活性以1 min內(nèi)D240 nm變化0.001為1個酶活性單位;APX活性的測定參照沈文飚等的方法,以1 min內(nèi)D290 nm變化0.001為1個酶活性單位[9];GR 活性的測定按照Grace等的方法,以1 min內(nèi)D340 nm變化0.001為1個酶活性單位[10];DHAR活性的測定參照Miyake等的方法,以1 min內(nèi)D265 nm變化0.01為1個酶活性單位[11];AsA含量的測定參照Kampfenkel等的方法[12];GSH含量的測定參照Griffith 的方法[13];蛋白質(zhì)含量的測定采用考馬斯亮藍(lán)法。
1.3數(shù)據(jù)處理
采用SAS軟件處理,在0.05水平上進(jìn)行差異顯著分析。
2結(jié)果與分析
2.1水楊酸對干旱下玉米幼苗根系SOD、CAT、POD活性的影響
2.2水楊酸對干旱下玉米幼苗根系A(chǔ)sA-GSH循環(huán)代謝酶活性的影響
由表2可知,與對照相比,干旱脅迫下玉米幼苗根系A(chǔ)sA-GSH循環(huán)代謝酶APX、GR活性顯著減弱59.6%、172%;但干旱脅迫對DHAR活性影響不顯著。與單獨(dú)干旱脅迫相比,10 μmol/L SA+干旱脅迫處理使根系A(chǔ)PX、DHAR活性顯著增強(qiáng)61.5%、153.8%;但對GR活性影響不顯著。這說明SA對干旱下新單29幼苗根系A(chǔ)sA-GSH循環(huán)代謝酶APX和DHAR活性影響顯著,能通過提高根系A(chǔ)PX、DHAR的活性而增強(qiáng)玉米幼苗的抗旱性。
2.3水楊酸對干旱下玉米幼苗根系抗氧化物質(zhì)AsA、GSH含量的影響
由表3可知,與對照相比,干旱脅迫使玉米幼苗根系A(chǔ)sA含量顯著降低46.1%,但對GSH含量影響不顯著。與單獨(dú)干旱脅迫相比,10 μmol/L SA+干旱脅迫處理使根系GSH含量顯著增加30.4%,但對AsA含量影響不顯著。這說明SA能通過提高根系GSH含量而增強(qiáng)玉米幼苗的抗旱性。
2.4水楊酸對干旱下玉米幼苗根系膜透性和MDA含量的影響
由表4可知,與對照相比,干旱脅迫下玉米幼苗根系膜透性和MDA含量顯著增加196.0%、353.8%。與單獨(dú)干旱脅迫相比 10 μmol/L SA+干旱脅迫處理使根系膜透性和MDA含量顯著降低37.5%、44.1%。這說明SA能顯著降低干旱對玉米根系造成的氧化傷害。
3結(jié)論與討論
細(xì)胞質(zhì)膜透性和膜脂過氧化產(chǎn)物MDA含量是衡量植物抗逆性的2個重要指標(biāo)。有研究表明,干旱脅迫可以顯著提高玉米根系的膜透性和MDA含量[5]。本研究結(jié)果表明,干旱脅迫也可以顯著提高新單29根系的膜透性和MDA含量,而使其遭受氧化脅迫,這與前人的研究結(jié)果[5]一致。水楊酸作為一種重要的植物生長調(diào)節(jié)物質(zhì),可以緩解干旱對玉米葉片所造成的氧化傷害[5]。本研究結(jié)果還表明,水楊酸可以顯著降低新單29幼苗根系膜透性和MDA含量,這與前人的研究結(jié)果[5]一致。
植物為了抵御干旱脅迫所造成的傷害,往往會啟動自身的抗氧化防護(hù)系統(tǒng),該系統(tǒng)包括抗氧化酶系統(tǒng)和非酶系統(tǒng),前者主要包括SOD、CAT、POD、APX、GR、DHAR等抗氧化酶,后者主要包括AsA、GSH等抗氧化物質(zhì)。前人的研究結(jié)果表明,玉米葉片可以通過增強(qiáng)抗氧化酶SOD、CAT、POD活性來增強(qiáng)其清除活性氧的能力[6,14];但到目前為止,前人對干旱下玉米根系抗氧化酶響應(yīng)方面的研究尚未涉及。因此,本試驗(yàn)進(jìn)行了相關(guān)研究,結(jié)果表明,干旱脅迫使新單29幼苗根系SOD、POD、CAT活性均顯著減弱,這與前人對葉片的研究結(jié)果[6,14]不一致。此外,本研究結(jié)果還表明,干旱脅迫使新單29幼苗根系A(chǔ)sA-GSH循環(huán)代謝酶APX、GR活性及抗氧化物質(zhì)AsA含量顯著降低。這說明新單29抗旱性差與干旱下根系抗氧化酶活性和抗氧化物質(zhì)AsA含量降低有關(guān)。
大量研究結(jié)果表明,水楊酸可以通過增強(qiáng)抗氧化系統(tǒng)酶的活性來顯著增強(qiáng)植物的抗旱性[3]。有研究表明,水楊酸可以顯著增強(qiáng)玉米葉片的SOD、POD、CAT、APX活性來提高其抗旱性[4,14]。本研究結(jié)果表明,水楊酸也可以通過增強(qiáng)新單29根系的SOD、POD、CAT、APX活性,這與前人對葉片的研究結(jié)果[4,14]一致。此外,本研究結(jié)果還表明,水楊酸可以增強(qiáng)新單29根系的DHAR活性和抗氧化物質(zhì)GSH含量。這說明水楊酸可以通過提高新單29根系抗氧化系統(tǒng)的活性來增強(qiáng)其抗旱能力。
綜上所述,水楊酸可以通過調(diào)控新單29根系的抗氧化特性,從而增強(qiáng)其抗旱能力;因此 水楊酸作為一種外源調(diào)節(jié)物質(zhì),可以通過根施的方法(即灌溉的方法應(yīng)用在新單29的生產(chǎn)栽培管理中)來提高其抗旱性和節(jié)水性。
參考文獻(xiàn):
[1]Apel K,Hirt H. Reactive oxygen species:metabolism,oxidative stress,and signal transduction[J]. Annual Review of Plant Biology,2004,55:373-399.
[2]齊偉,張吉旺,王空軍,等. 干旱脅迫對不同耐旱性玉米雜交種產(chǎn)量和根系生理特性的影響[J]. 應(yīng)用生態(tài)學(xué)報,2010,21(1):48-52.
[3]Korkmaz A,Uzunlu M,Demirkiran A R. Treatment with acetyl salicylic acid protects muskmelon seedlings against drought stress [J]. Acta Physiol Plant,2007,29(6):503-508.
[4]束良佐,李爽. 水楊酸浸種對水分脅迫下玉米幼苗某些生理過程的影響[J]. 南京農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報,2002,25(3):9-11.
[5]楊劍平,潘金豹,王文平,等. 水楊酸對水分脅迫下玉米根系膜脂過氧化的影響[J]. 北京農(nóng)學(xué)院學(xué)報,2002,17(1):8-12.
[6]Bai L P,Sui F G,Ge T D,et al. Effect of soil drought stress on leaf water status,membrane permeability and enzymatic antioxidant system of maize[J]. Pedosphere,2006,16(3):326-332.
[7]張志良,瞿偉菁,李小方. 植物生理學(xué)實(shí)驗(yàn)指導(dǎo)[M]. 北京:高等教育出版社,2009:207-208,267-268.
[8]李合生. 植物生理生化實(shí)驗(yàn)原理和技術(shù)[M]. 北京:高等教育出版社,2000:267-268.
[9]沈文飚,徐朗萊,葉茂炳,等. 抗壞血酸過氧化物酶活性測定的探討[J]. 植物生理學(xué)通訊,1996,32(3):203-205.
[10]Grace S C,Logan B A. Acclimation of foliar antioxidant systems to growth irradiance in three broad-leaved evergreen species[J]. Plant Physiology,1996,112(4):1631-1640.
[11]Miyake C,Asada K. Thylakoid-bound ascorbate peroxidase in spinach chloroplasts and photoreduction of its primary oxidation product monodehydroascorbate radicals in thylakoids[J]. Plant Cell and Physiology,1992,33:541-553.
[12]Kampfenkel K,van Montagu M,Inzé D. Extraction and determination of ascorbate and dehydroascorbate from plant tissue[J]. Analytical Biochemistry,1995,225(1):165-167.
[13]Griffith O W. Determination of glutathione and glutathione disulfide using glutathione reductase and 2-vinylpyridine[J]. Analytical Biochemistry,1980,106:207-212.
[14]張仁和,鄭友軍,馬國勝,等. 干旱脅迫對玉米苗期葉片光合作用和保護(hù)酶的影響[J]. 生態(tài)學(xué)報,2011,31(5):1303-1311.周文波,代其林,郭翠,等. 過表達(dá)IrrE基因提高油菜的抗鹽脅迫能力[J]. 江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué),2015,43(2):104-107.