溫度和鹽度對華貴櫛孔扇貝免疫相關酶的聯合效應

栗志民，錢佳慧，勞翠英，劉志剛

(廣東海洋大學 水產學院，廣東 湛江 524088)

溫度和鹽度對華貴櫛孔扇貝免疫相關酶的聯合效應

栗志民，錢佳慧，勞翠英，劉志剛*

(廣東海洋大學 水產學院，廣東 湛江 524088)

為研究溫度和鹽度對華貴櫛孔扇貝免疫相關酶活力的聯合效應，采用中心復合設計(CCD)和響應曲面分析法(RSM)進行試驗，在實驗室條件下研究了溫度(19～31 ℃)，鹽度(22～38)對華貴櫛孔扇貝酸性磷酸酶(ACP)、堿性磷酸酶(AKP)、谷胱甘肽還原酶(GR) 三種免疫相關酶活性的聯合效應，旨在考察溫度與鹽度對ACP，AKP和GR活性的影響及華貴櫛孔扇貝免疫水平較高時的最佳溫度和鹽度組合，為華貴櫛孔扇貝人工養(yǎng)殖所需條件提供理論基礎。結果表明：溫度的一次效應和二次效應對ACP，AKP和GR活力影響顯著(P<0.05)；鹽度的一次效應和二次效應對ACP，AKP和GR的活力影響顯著(P<0.05)；溫度和鹽度的交互作用對ACP，AKP和GR活力的影響顯著(P<0.05)。采用響應曲面法，建立了溫度和鹽度對華貴櫛孔扇貝ACP，AKP和GR活性影響的模型方程，該模型方程決定系數分別為0.986 6，0.981 3和0.957 6(P<0.01)，預測系數分別為0.934 5，0.888 0和0.738 4，表明該模型可以用于預測華貴櫛孔扇貝ACP，AKP和GR活力變化。通過模型優(yōu)化和驗證實驗，得到在溫度24.30 ℃、鹽度30.55時，ACP和AKP活力達到最小值，分別為170.43，181.74 U/mg，而GR活力最大為0.34 U/mg，滿意度達0.95。

華貴櫛孔扇貝；響應曲面；堿性磷酸酶(AKP)；酸性磷酸酶(ACP)；谷胱甘肽還原酶(GR)

溫度和鹽度作為水產養(yǎng)殖中兩個重要的環(huán)境因子，通常對水生動物的生長、存活以及生理、免疫造成直接或間接的影響。近年來，海區(qū)溫度、鹽度等環(huán)境因子不斷改變，導致貝類病害頻繁發(fā)生，造成海水貝類大面積死亡，給養(yǎng)殖區(qū)帶來嚴重的經濟損失[1-3]。因此，越來越多的學者開始關注溫度和鹽度對貝類免疫的影響。已有研究表明，溫度和鹽度的變化對菲律賓蛤仔(Ruditapesphilippinarum)[4]、雞簾蛤(Chameleagallina)[5]、中國血蛤(HiatulaChinese)[6]等貝類血淋巴中各免疫指標造成顯著影響。

華貴櫛孔扇貝(Chlamysnobilis)廣泛分布于我國南海、日本、印度尼西亞等地區(qū)，是一種暖水性經濟貝類[7]。因其肉質鮮美，生長速度較快，現已經成為我國重要的海產經濟貝類[8]。目前，國內學者先后研究了不同殼色和性腺成熟期華貴櫛孔扇貝類胡蘿卜素的含量[9-10]；克隆了冷休克蛋白基因[11]；分析了在重金屬脅迫下華貴櫛孔扇貝類金屬硫蛋白的周轉[12]；考察了環(huán)境因子對華貴櫛孔扇貝呼吸、排泄生理、生長和存活[13-14]的影響；并研究了殼色與閉殼肌顏色遺傳規(guī)律[15]等內容。但環(huán)境因子對華貴櫛孔扇貝免疫相關酶活力的影響研究較少，因此本文以華貴櫛孔扇貝為材料，采用響應曲面法研究了溫度和鹽度的變化以及兩者間的聯合效應對華貴櫛孔扇貝血淋巴中酸性磷酸酶(ACP)、堿性磷酸酶(AKP)和谷胱甘肽還原酶(GR)活力的影響，探索華貴櫛孔扇貝生存環(huán)境適宜、用于免疫調節(jié)的能量較少、生長能力比較旺盛的溫度和鹽度組合，為華貴櫛孔扇貝的人工養(yǎng)殖條件的選擇提供免疫學方面的理論依據。

1 材料與方法

1.1 材 料

試驗所用華貴櫛孔扇貝取自海南三亞養(yǎng)殖場，隨機抽取一定數量的健康、活力較好的扇貝，平均殼長為(62.33±4.48) mm，平均殼高為(67.74±3.80) mm。去除貝殼表面附著物，暫養(yǎng)于廣東海洋大學水產學院無脊椎動物養(yǎng)殖實驗室。暫養(yǎng)7 d后用于試驗，暫養(yǎng)期間溫度為23.60～24.30 ℃，鹽度為26.20～27.10，投喂亞心型扁藻(Platymonassubcordiformis)，投餌密度(1～2)×104cell/mL。靜水條件下連續(xù)充氣，每2 d100%換水1次。

1.2 試驗設計

采用中心復合法和響應曲面法研究溫度和鹽度對華貴櫛孔扇貝3種免疫相關酶活性的聯合效應。根據預試驗的結果得出華貴櫛孔扇貝適宜生存的溫、鹽度范圍，本試驗中溫度范圍為19～31 ℃，鹽度范圍為22～38。溫度和鹽度在上述范圍內各取3個水平，各因子水平的編碼值分別為-1.414,-1,0,1,1.414。整個試驗共計13個溫度和鹽度交叉組合(表1)，中心點重復5次，星號臂α=±1.414。試驗重復3次。為消除系統(tǒng)誤差，所有因子組合均隨機安排。

表1 實驗設計及結果

1.3 試驗方法

1.3.1 華貴櫛孔扇貝血淋巴的采集

將暫養(yǎng)7 d后的華貴櫛孔扇貝按照表1組合，放入13個水桶中，每桶放入20只健康貝。按照表1組合將各桶扇貝的水溫和鹽度調節(jié)至相應的溫度和鹽度組合，實驗溫度控制按照栗志民等[16]的方法進行，每天上調幅度或下調幅度為2 ℃；實驗鹽度用經曝氣的淡水和海水晶進行調節(jié)，每天上調或下調幅度為2。溫度測定采用水銀溫度計測定，鹽度則采用鹽度計測定。

調節(jié)至相應溫度和鹽度組合后繼續(xù)培養(yǎng)7 d，隨機抽取5只華貴櫛孔扇貝，用滅菌后的1 mL注射器在閉殼肌處抽取血淋巴，置于含有750 μL抗凝劑的1.5 mL離心管中，4 ℃下靜置1 h后，以4 500 r/min離心30 min，取上清液，即為血淋巴樣品，用于酶活力測定。

1.3.2 酶活的測定

酶活力測定采用南京建成生物工程研究所的試劑盒。酸性磷酸酶活力單位定義為:100 mL血清在37 ℃與基質作用30 min產生1 mg酚為1個活力單位。堿性磷酸酶活力單位定義為:100 mL血清在37 ℃與基質作用15 min產生1 mg酚為1活力單位。谷胱甘肽還原酶活力單位的定義為:在25 ℃，pH=7.5條件下，在1 min內可以還原1 μmol氧化型谷胱甘肽時所用的酶量為1個活力單位。

1.4 數據處理

以溫度和鹽度兩因子為自變量，以ACP，AKP，GR活力為因變量，建立酶活力和溫度、鹽度之間的回歸方程模型為：

(1)

式中，Y為響應變量(ACP，AKP,GR活力);t為溫度一次效應;S為鹽度一次效應;t2為溫度二次效應;S2為鹽度二次效應;b0為常數項;b1、b2為溫度和鹽度的一次效應系數;b3為溫度和鹽度的交互作用;b4、b5為溫度和鹽度的二次效應系數;ε為殘差，并假定其服從均值為0的正態(tài)分布。

采用SPSS軟件對實驗數據進行統(tǒng)計分析，由此建立影響因子與酶活力的回歸方程，并給出相應的擬合度。對所建立的回歸方程進行分析，可得到最優(yōu)的溫度和鹽度組合，其結果可通過響應曲面來清晰展示。采用顯著性標準為P<0.05。

2 結果與分析

2.1 溫度和鹽度對華貴櫛孔扇貝ACP活力影響的方差分析

表2為溫度和鹽度對華貴櫛孔扇貝ACP活力影響的方差分析表，由表可知，所建立的回歸方程模型極顯著(P<0.01)，表明所建立的模型有效。失擬項F=2.00，P>0.05表明擬合的方程有效。回歸方程的決定系數為98.66%、校正系數為97.70%、預測決定系數為93.45%，表明所擬合的方程擬合度極高，模型選擇恰當。

表2 溫度和鹽度對華貴櫛孔扇貝ACP活力影響的方差分析

注：決定系數R2=98.66%;校正系數Adj.R2=97.70%;預測決定系數Pred.R2=93.45%；空白處無數據

由表3可知，回歸模型95%置信區(qū)間內預測的最低值為178.48，最高值為192.06。系數估計是根據方差分析表中的編碼值得到的值，回歸方程中系數是非編碼值。表中影響因子溫度的一次效應和二次效應對ACP活力的影響極顯著(P<0.01)；鹽度的一次效應對酶活力的影響顯著(P<0.05)，而二次效應的影響極顯著(P<0.01)；溫度和鹽度的互作效應對ACP活力的影響顯著(P<0.05)。

對試驗數據進行二次多元回歸擬合，根據實際得到的ACP活力對溫度、鹽度的二次多項回歸方程為：

YACP=185.27+24.64t-6.77S+8.30t×S+35.89t2+35.68S2

(2)

式中,Y為ACP活力;t為溫度一次效應;S為鹽度一次效應;t2為溫度二次效應;S2為鹽度二次效應;t×S為溫度和鹽度互作效應。

表3 溫度和鹽度對ACP活性影響回歸系數的顯著性檢驗

注：空白處無數據

2.2 溫度和鹽度對華貴櫛孔扇貝AKP活力影響的方差分析

利用SPSS統(tǒng)計軟件對表1的數據進行多元回歸擬合，得到AKP活力對溫度和鹽度的二次多項回歸方程為：

YAKP=174.59+26.95t-10.64S+13.26t×S+37.79t2+52.68S2

(3)

式中,Y為AKP活力；其他各參數含義同式(2)。

對該方程進行方程分析和回歸系數顯著性檢驗，由表4可知，溫度和鹽度對華貴櫛孔扇貝AKP活力影響所建立的回歸模型極顯著(P<0.01)。失擬項F=5.30，顯著性檢驗結果不顯著(P>0.05)，表明擬合方程有效?；貧w方程的決定系數為98.13%、校正決定系數為96.80%、預測決定系數為88.80%，說明所建立的方程與實際數據擬合良好，因此可用該回歸方程進行下一步的優(yōu)化分析。

表4 溫度和鹽度對華貴櫛孔扇貝AKP活力影響的方差分析

注：決定系數R2=98.13%;校正系數Adj.R2=96.80%;預測決定系數Pred.R2=88.80%；空白處無數據

由表5可知，回歸模型95%置信區(qū)間內預測最低值為164.50，最高值為184.68，表明建立的模型可靠性較高。系數估計是根據方差分析表中的編碼值得到的值，回歸方程中的系數是非編碼值。表中影響因子溫度和鹽度的一次效應、二次效應以及互作效應對華貴櫛孔扇貝AKP活力影響均顯著(P<0.05)。

表5 溫度和鹽度對AKP活性影響回歸系數的顯著性檢驗

注：空白處無數據

2.3 溫度和鹽度對華貴櫛孔扇貝GR活力影響的方差分析

表6為溫度和鹽度對華貴櫛孔扇貝GR活力影響的方差分析表，由表可知，所建立的方程模型顯著性檢驗P<0.05，表明模型擬合度極高。失擬項F=6.57，P>0.05，表明擬合方程有效，回歸方程的決定系數為95.76%，校正系數為92.74%，預測決定系數為73.84%，這表明所擬合的二次方程合適。根據所得的試驗數據進行擬合，得到的二次方程為：

YGR=0.35+0.02t+0.015S+0.063t×S-0.067t2-0.059S2

(4)

式中，Y為GR活力；其他各參數含義同式(2)。

表6 溫度和鹽度對華貴櫛孔扇貝GR活力影響的方差分析

注：決定系數R2=95.76%;校正系數Adj.R2=92.74%;預測決定系數Pred.R2=73.84%；空白處無數據

由表7可知，回歸模型系數的顯著性檢驗結果可知，溫度和鹽度的一次效應和二次效應對華貴櫛孔扇貝GR活力的影響顯著(P<0.05)；溫度和鹽度的交互作用對酶活力的影響顯著(P<0.05)。且試驗因子與響應變量間都不存在簡單的線性關系。

表7 溫度和鹽度對GR活性影響回歸系數的顯著性檢驗

注：空白處無數據

2.4 溫度和鹽度對華貴櫛孔扇貝ACP活力影響的響應曲面分析

為了直觀考察溫度和鹽度兩因子及其交互作用對3種免疫相關酶活力的影響，實驗建立了溫度和鹽度對響應值影響的二次方程，并得到一組響應曲面及其等高線，從而確定影響因子最佳水平范圍。曲面的形狀可反映出影響因素的顯著水平，曲面較陡說明影響顯著，曲面平緩則說明影響不顯著；等高線的形狀可反映出交互作用的強弱趨勢，橢圓表示兩因素交互作用顯著，而圓形則與之相反[17]。

由圖1可知，溫度和鹽度對ACP活力影響的響應曲面圖較陡，說明兩因子對ACP活力影響顯著。當溫度一定時，隨著鹽度的變化，ACP活力呈現先下降后上升的峰值變化；當鹽度一定時，隨著溫度的升高，ACP活力先下降后上升。溫度為23.47 ℃、鹽度為30.77時，ACP活力最低為180.37 U/mg，其可靠性為0.98。由圖2可知，溫度和鹽度對ACP活力影響的等高線圖近似橢圓形，因此兩因子交互作用對華貴櫛孔扇貝ACP活力的影響顯著(P<0.05)。溫度趨于24.15 ℃、鹽度趨于30時，ACP活力逐漸降低。

圖1 溫度和鹽度對華貴櫛孔扇貝ACP活力影響的響應曲面圖Fig.1 Response surface of temperature and salinity on the activity of ACP of Chlamys nobilis

圖2 溫度和鹽度對華貴櫛孔扇貝ACP活力影響的等高線圖Fig.2 Contour plot of effects of temperature and salinity on the activity of ACP of Chlamys nobilis

2.5 溫度和鹽度對華貴櫛孔扇貝AKP活力影響的響應曲面分析

由圖3可知，溫度和鹽度對AKP活性影響的響應曲面圖形較陡，說明溫度和鹽度兩個因子對AKP活力影響顯著。當溫度一定時，AKP活力隨著鹽度的升高呈現先下降、后上升的趨勢；當鹽度一定時，AKP活力隨著溫度的變化呈現出先下降、后上升的趨勢。溫度為23.38 ℃,鹽度為30.84時，AKP活力最低為168.63 U/mg，其可靠性為 0.99。由圖4可知，等高線圖近似橢圓形，因此溫度和鹽度的交互作用顯著(P<0.05)，且當溫度趨于25 ℃、鹽度趨于30時，AKP活力最低。

圖3 溫度和鹽度對華貴櫛孔扇貝AKP活力影響的響應曲面圖Fig.3 Response surface of effects of temperature and salinity on the activity of AKP of Chlamys nobilis

圖4 溫度和鹽度對華貴櫛孔扇貝AKP活力影響的等高線圖Fig.4 Contour plot of effects of temperature and salinity on the activity of AKP of Chlamys nobilis

2.6 溫度和鹽度對華貴櫛孔扇貝GR活力影響的響應曲面分析

從圖5可知，溫度和鹽度對ACP活力影響的響應曲面較陡，說明溫度和鹽度分別對ACP活力影響顯著。當溫度一定時，隨著鹽度升高，GR的活性先升高后下降；當鹽度一定時，隨著溫度的升高，GR的活性呈現先升高后下降的峰值變化。溫度和鹽度分別為26.17 ℃，31.56時，GR的活性最高0.35 U/mg，其可靠性為0.96。由圖6可知，溫度和鹽度對華貴櫛孔扇貝GR活力影響等高線圖為橢圓形，因此溫度和鹽度的交互作用對華貴櫛孔扇貝GR活力影響顯著(P<0.05)，溫度趨于24.15 ℃、鹽度趨于30時，GR的活性逐漸升高。

圖5 溫度和鹽度對華貴櫛孔扇貝GR活力影響的響應曲面圖Fig.5 Response surface of effects of temperature and salinity on the activity of GR of Chlamys nobilis

圖6 溫度和鹽度對華貴櫛孔扇貝GR活力影響的等高線圖Fig.6 Contour plot of effects of temperature and salinity on the activity of GR of Chlamys nobilis

2.7 優(yōu) 化

以3種免疫相關酶的活力為因變量，通過中心組合設計試驗考察了溫度和鹽度兩個因子對ACP，AKP，GR活力的影響，并對結果進行優(yōu)化，結果表明溫度為24.30 ℃、鹽度為30.55時，ACP和AKP活力最低，分別為170.44，181.74 U/mg；而GR活力達到最大值0.34 U/mg，滿意度為0.95。為了進一步驗證響應曲面優(yōu)化條件的可靠性，按所得最優(yōu)條件重新設計一組實驗作為驗證試驗，所得的ACP，AKP和GR活力分別為168.79，180.99和0.32 U/mg，與理論預測值基本相符，說明模型優(yōu)化條件合理有效。

3 討 論

3.1 溫度對華貴櫛孔扇貝ACP，AKP和GR活性的影響

隨著季節(jié)的變化，水溫常常會發(fā)生改變。與其他水生動物一樣，雙殼貝類對水溫的改變比較敏感，因此貝類的免疫也易隨之發(fā)生變化[18]。本試驗結果顯示，溫度的一次效應和二次效應對ACP，AKP和GR活力影響顯著(P<0.05)，表明3種酶的活性均易受溫度的影響。ACP和AKP活力隨著溫度的升高呈現出先下降、后上升的變化趨勢。與ACP和AKP活力變化相反，GR活力隨溫度升高呈現出先升高、后下降的峰值變化。ACP和AKP改變的原因可能是低溫或高溫威脅到貝類的正常生存，且高溫會導致大量病原體出現，從而華貴櫛孔扇貝需通過增強自身的免疫來抵御不良環(huán)境，保證機體正常的生理活動，因此在溫度和鹽度改變一段時間后ACP和AKP的值有所升高[19]。GR活性變化的原因是高溫使得華貴櫛孔扇貝呼吸作用增強，產生大量的氧自由基將谷胱甘肽氧化，因此GR的活性增強以維持機體內的氧自由基平衡[20]。李曉英等[21]對青蛤(Cyclinasinensis)的研究中發(fā)現，溫度驟升引起青蛤肝胰臟中ACP活性顯著升高; Chen等[22]報道了在一定溫度范圍內，隨著溫度的升高，櫛孔扇貝(ChlamysFarreri)中ACP活性呈現上升的變化趨勢；Liu[23]對海灣扇貝(Argopectensirradias)和櫛孔扇貝兩種扇貝研究發(fā)現，AKP活性受溫度影響顯著(P<0.05)，且當溫度達到31 ℃時，兩種扇貝中AKP活性均達到最大。以上研究與本文研究結論一致，表明ACP和AKP受溫度影響顯著，且溫度高于最適存活溫度的一段范圍內，ACP和AKP活力會顯著增加。溫度對GR活力影響在貝類中研究較少，但在其他水生動物中得到了廣泛研究。尹曉燕等[24]對草魚(Ctenopharyngodonidellus)的研究發(fā)現，溫度對草魚腎細胞中GR活具有顯著影響(P<0.05)，隨著溫度的升高活性增強；Dorts等[25]報道了杜父魚(Cottusgobio)在熱應激的情況下肝臟中GR活力顯著下降。本文研究也得出了類似的結論，即在高溫刺激下，GR活力明顯下降，且顯著低于正常溫度條件下GR的活力。因此控制溫度對于華貴櫛孔扇貝的養(yǎng)殖以及病害的控制具有重要意義。

3.2 鹽度對華貴櫛孔扇貝ACP，AKP和GR活性的影響

在貝類養(yǎng)殖過程中，水體鹽度的改變能夠對機體的滲透壓產生影響，從而影響生物體內離子水平、能量代謝以及電解質平衡，最終改變生物體內與免疫相關的酶活性[26]。本研究結果顯示，鹽度的一次效應和二次效應對華貴櫛孔扇貝ACP，AKP和GR活性影響顯著(P<0.05)，這表明3種酶活性易受到鹽度的影響，且存在最大或最小峰值。ACP和AKP活性隨著鹽度的升高呈現出先下降、后上升的峰值變化。與之相反，GR活性隨著鹽度的升高呈現出先升高、后下降的變化趨勢。ACP和AKP活性變化原因可能是由于低鹽和高鹽造成貝類滲透壓嚴重的改變，貝類為了調節(jié)滲透壓的平衡，需要大量的能量，而免疫水平也因此增強，所以ACP和AKP兩種酶的活性會升高[27]。當鹽度適宜時，ACP和AKP活力較低的原因可能是由于環(huán)境條件適宜，貝類免疫所需的能量較少，大部分能量用于貝類的生長，因此與免疫相關的酶活力相對較低[19]。GR呈現出與ACP和AKP變化趨勢相反的原因是鹽度逐漸升高時，貝類的耗氧率呈現先升高、后下降的變化[27]，因此機體內氧自由基的含量也呈現出相同的變化趨勢，為了調節(jié)體內氧自由基的平衡，GR的活性也相應呈現出先升高后下降的變化趨勢。馬洪明等[28]研究發(fā)現鹽度突降能夠增強櫛孔扇貝血淋巴中ACP酶活性；時少坤等[29]研究表明，低鹽和高鹽脅迫下，近江牡蠣(OstrearivularisGould)AKP活性呈現出先降后升的變化。在對其他水生動物的研究中也同樣發(fā)現[30-32]了與本研究類似的結論，即AKP和ACP活性在適宜鹽度條件下，活力較低。目前，研究鹽度對貝類血淋巴中GR活性影響的成果較少，而在其他水生動物中有相關報道。尹飛等[33]認為低鹽度脅迫下銀鯧幼魚(Pampusargenteus)肝臟中GR活性得到增強；Rodrigues等[34]研究發(fā)現鹽度對青蟹(Carcinusmaenas)GR活性影響顯著(P<0.05)，隨鹽度升高GR活性增強，當鹽度為25時，GR活性最高。與本文研究GR活性受鹽度影響的變化趨勢一致，表明低鹽或高鹽都不利于GR發(fā)揮作用。

3.3 溫度和鹽度對華貴櫛孔扇貝ACP，AKP和GR活性的互作效應

以往的研究多集中于單因子對水生動物中ACP，AKP和GR的獨立影響，因而這些研究不能考察溫度和鹽度兩者間的交互作用對3種酶活性的影響。本試驗采用復合設計，對溫度和鹽度的互作效應進行顯著性檢驗，結果表明，溫度和鹽度的交互作用對華貴櫛孔扇貝血淋巴中ACP，AKP和GR活性影響顯著(P<0.05)。原因可能是溫度能夠改變3種酶的空間構象，而鹽度則提供酶激活所需的金屬離子，因此兩者能夠共同促進酶活性的調節(jié)。據報道，馬氏珠母貝(Pinctadamartensi)稚貝中ACP和AKP活力受溫度和鹽度交互作用影響顯著[19]；軍曹魚(Rachycentridae)幼魚肌肉中GR活性受到溫鹽聯合效應的影響顯著[35]。以上報道與本文試驗結果相一致，表明溫度和鹽度對3種酶均存在互作效應。

目前，有關ACP和AKP的研究已經建立了相應的模型，但對于GR并未建立相應模型。本試驗通過建立可靠的模型，可以實現對響應的連續(xù)預測，這對貝類生理和免疫的研究提供了可靠的因子條件支撐。方差分析結果顯示(表2,4,6)顯示，所建立的溫度和鹽度對華貴櫛孔扇貝ACP，AKP和GR活力影響的模型極顯著(P<0.01)，說明模型建立恰當，可以預測華貴櫛孔扇貝血淋巴中ACP，AKP和GR活力。

通過優(yōu)化得出，在溫度24.30 ℃、鹽度30.55時，ACP和AKP活力最低，而GR活力最大，反應了此時華貴櫛孔扇貝生存環(huán)境適宜，用于免疫調節(jié)的能量較少，生長能力比較旺盛，說明在實際生產中，控制溫度24 ℃、鹽度31，華貴櫛孔扇貝生長良好。

[1] MALHAM S K, COTTER E, O′KEEFFE S, et al. Summer mortality of the Pacific oyster,Crassostreagigas, in the Irish Sea: The influence of temperature and nutrients on health and survival[J].Aquaculture, 2009, 287(1-2):128-138.

[2] COTTER E, MALHAM S K, O′KEEFFE S, et al. Summer mortality of the Pacific oyster,Crassostreagigas, in the Irish Sea: The influence of growth, biochemistry and gametogenesis[J].Aquaculture, 2010,303(1-4):8-21.

[3] LI W J, TAN K F. Enlightenment to solve the mass death ofPectenyessoensisin Japan[J].Fisheries Science, 2009, 28(10):609-612.李文姬，譚克非. 日本解決蝦夷扇貝大規(guī)模死亡的啟示[J].水產科學,2009,28(10):609-612.

[4] MUNARI M, MATOZZO V, MARIN M G. Combined effects of temperature and salinity on functional responses of haemocytes and survival in air of the clamRuditapesphilippinarum[J].Fist and Shellfish Immunology, 2011, 30(4): 1024-1030.

[5] MONARI M, MATOZZO V, FOSCHI J, et al. Effects of high temperatures on functional responses of haemo-cytes in the clamChameleagallina[J].Fist and Shellfish Immunology, 2007, 22(1): 98-114.

[6] WANG S, GAO R C, WEN Y M, et al. Effect of abrupt decline in salinity on nonspecific immune enzme activities ofHiatulachinensis[J].Jiang Su Agriculture Sciences, 2008, 5:213-215.王帥,高如承,溫揚敏,等. 鹽度突變對中國血蛤非特異性免疫酶活性的影響[J].江蘇農業(yè)科學, 2008, 5:213-215.

[7] CAI Y Y, XIE S H. Seashell of Guangdong[M].Shan Tou:Shantou University Press,2006. 蔡英亞, 謝紹河.廣東的海貝[M].汕頭：汕頭大學出版社, 2006.

[8] WANG Q, YUAN T, HE M Q. Rearch progress of culture and genetic breeding of noble scallopChlamysnobilis[J].South China Fisheries Science, 2011,7(5):73-80.王琦,袁濤,何毛賢.華貴櫛孔扇貝養(yǎng)殖及遺傳育種研究進展[J].南方水產科學, 2011, 7(5):73-80.

[9] ZHENG H, LIU H, ZHANG T, et al.Total carotenoid differences in scallop tissues ofChlamysnobilis(Bivalve: Pectinidae) with regard to gender and shell colour[J].Food chemistry, 2010, 122(4): 1164-1167.

[10] ZHENG H, LIU H, LIU W, et al. Changes of total carotenoid and lipid content in scallop tissues ofChlamysnobilisBivalve: Pectinidae) during gonad maturation[J].Aquaculture, 2012, 342: 7-12.

[11] WANG Y J, ZHENG H P, ZHANG B, et al. Cloning and respond of a cold shock domain protein (CnCSDP) gene to cold stress in noble scallopChlamysnobilis(Bivalve: Pectinidae)[J].Molecular Biology Reports, 2014, 41(12): 1-10.

[12] LIU F, WANG W X. Metallothionein-like proteins turnover, Cd and Zn biokinetics in the dietary Cd-exposed scallopChlamysnobilis[J].Aquatic Toxicology, 2011, 105(3): 361-368.

[13] LI Z M, LIU Z G, XIE L, et al. Effect of body weight and temperature on oxygen consumption and ammonia-N excretion rates ofChlamysnobilis[J].Oceanologla et Limnologia Sinica, 2010,41(1):99-105.栗志民,劉志剛,謝麗,等. 體重和溫度對華貴櫛孔扇貝耗氧率和排氨率的影響[J].海洋與湖沼, 2010,41(1):99-105.

[14] LIU Z G, LIU J Y, YANG B. Interactions of temperature and salinity to the survival and growth ofChlamysnobilis[J].Marine Sciences,2011,35(10):75-80.劉志剛,劉建勇,楊博. 溫度與鹽度對華貴櫛孔扇貝幼貝存活與生長的互作效應研究[J].海洋科學, 2011,35(10):75-80.

[15] LIU Z G, WANG H, Lü W G, et al. Inheritance of shell color and adductor muscle color inChlamysnobilis[J].Oceanologla et Limnologia Sinica,2012,43(2):237-243.劉志剛,王輝,呂文剛,等.華貴櫛孔扇貝(Chlamysnobilis)殼色與閉殼肌顏色遺傳規(guī)律的研究[J].海洋與湖沼,2012,43(2):237-243.

[16] LI Z M, LIU Z G, YANG R, et al. Effect of temperature and salinity on the survival and growth ofMeretrixlyratajuveniles[J].Acta ecologica Sinica,2010,30(13):3406-3413.栗志民,劉志剛,姚茹,等.溫度和鹽度對皺肋文蛤幼貝存活與生長的影響[J].生態(tài)學報, 2010, 30(13):3406-3413.

[17] PENG J, WANG H, QIANG J, et al. Combined effect of temperature and salinity on the fertilization and hatching rate in the GIFI strain of Nile tilapia,Oreochrominiloticus[J].Journal of Fishery Sciences of China,2011,18(4):847-856.彭俊,王輝,強俊,等.溫度和鹽度對吉富品系尼羅羅非魚受精率和孵化率的聯合影響[J].中國水產科學, 2011，18(4):847-856.

[18] EKANAYAKE P M, De Z M, KANG H S, et al. Cloning, characterization and tissue expression of disk abalone (Haliotisdiscusdiscus) catalase[J].Fist and Shellfish Immunology, 2008, 24(3): 267-278.

[19] ZHU X W. Combined effects of temperature, salinity and pH on the physiological features of the juveniles ofPinctadamartensii[D].Zhanjiang: Guangdong Ocean University. 2012:54-57.朱曉聞. 溫度、鹽度、pH對馬氏珠母貝稚貝生理學特征的聯合效應研究[D].湛江:廣東海洋大學. 2012:54-57.

[20] LIU W C, LI M Y, HUANG F Y, et al. Effects of cadmium stress on xanthine oxidase and antioxidant enzyme activities inBoleophthalmuspectinirostrisliver[J].Chinese Journal of Applied Ecology,2006,17(7):1310-1314.劉偉成, 李明云, 黃福勇, 等. 鎘脅迫對大彈涂魚肝臟黃嘌呤氧化酶和抗氧化酶活性的影響[J].應用生態(tài)學報, 2006, 17(7): 1310-1314.

[21] LI X Y, DONG Z G, XUE Y, et al. The impact of sharp increase in water temperature and hypoxia on activities of acid phosphatase and lysozyme in clamCyclinasinensis[J].Fisheries Science,2009,28(6):321-324.李曉英, 董志國, 薛洋, 等. 溫度驟升和窒息條件對青蛤酸性磷酸酶和溶菌酶的影響[J].水產科學, 2009, 28(6): 321-324.

[22] CHEN M, YANG H, DELAPORTE M, et al. Immune condition ofChlamysfarreriin response to acute temperature challenge[J].Aquaculture, 2007, 271(1): 479-487.

[23] LIU S, JIANG X, HU X, et al. Effects of temperature on non-specific immune parameters in two scallop species:Argopectenirradians(Lamarck 1819) andChlamysfarreri(Jones & Preston 1904)[J].Aquaculture Research, 2004, 35(7): 678-682.

[24] YIN X Y. The effects of temperature and nitrite on antioxidative system in kindey cell, erythrocyte, and hepatocyte in vitro of grass carpctenopharyngodonidellus[D].Wuhan:Huazhong Agriculture University,2014,6:1-46.尹曉燕.溫度和亞硝酸鹽對草魚腎細胞、血細胞及肝細胞抗氧化體系的影響[D].武漢:華中農業(yè)大學, 2014,6:1-46.

[25] DORTS J, BAUWIN A, KESTEMONT P, et al. Proteasome and antioxidant responses inCottusgobioduring a combined exposure to heat stress and cadmium[J].Toxico Pharma, 2012,155(2): 318-324.

[26] PILLAI B R, DIWAN A D. Effects of acute salinity stress on oxygen consumption and ammonia excretion rates of the marine shrimpMetapenaeusmonoceros[J].Journal of Crustacean Biology, 2002, 22(1): 45-52.

[27] FAIRCHILD C R, MOSCOW J A, O'BRIEN E E, et al. Multidrug resistance in cells transfected with human genes encoding a variant P-glycoprotein and glutathione S-transferase-pi[J].Molec pharma, 1990, 37(6):801-809.

[28] MA H M, LIU X W, MAI K S,et al.Effects of abrupt salinity decline on anti-disease ability of scallopChlamysfarreri[J].High Technology Letters, 2006,16(7):746-751. 馬洪明, 劉曉偉, 麥康森, 等. 鹽度突降對櫛孔扇貝抗病力指標的影響[J].高技術通訊, 2006, 16(7): 746-751.

[29] SHI S K, WANG R X, WANG J Y, et al. Effects of salinity stress on immune factors ofCrassostreahongkongensis[J].South China Fisheries Science,2013,9(3):26-30.時少坤, 王瑞璇, 王江勇, 等. 鹽度脅迫對近江牡蠣幾種免疫因子的影響[J].南方水產科學, 2013,9(3): 26-30.

[30] JOSEPH A, PHILIP R. Acute salinity stress alters the haemolymph metabolic profile ofPenaeusmonodonand reduces immunocompetence to white spot syndrome virus infection[J].Aquaculture, 2007, 272(1): 87-97.

[31] CHENG W, JUANG F M, CHEN J C. The immune response of Taiwan abaloneHaliotisdiversi-colorsupertextaand its susceptibility toVibrioparahaemolyticusat different salinity levels[J].Fish and Shellfish Immunology, 2004, 16(3): 295-306.

[32] SHEN L Q, CHEN Z Q, CHEN C S, et al. Growth and immunities of the shrimp,Litopenaeusvanameiexposed'to different salinity levels[J].Journal of Jimei University:Natural Science,2008,12(2):108-113.沈麗瓊, 陳政強, 陳昌生,等. 鹽度對凡納濱對蝦生長與免疫功能的影響[J].集美大學學報:自然科學版,2008,12(2): 108-113.

[33] YIN F, SUN P, PENG S M, et al. Effects of low salinity stress on the antioxidant enzyme activities in juvenilePampusargenteusliver and the ATPase activities in its gill and kidne[J].Chinese Journal of Applied Ecology,2011,22(4):1059-1066.尹飛, 孫鵬, 彭士明, 等. 低鹽度脅迫對銀鯧幼魚肝臟抗氧化酶, 鰓和腎臟 ATP 酶活力的影響[J].應用生態(tài)學報,2011,22(4): 1059-1066.

[34] RODRIDUES A P, OLIVEIRA P C, GUILHERMINO L, et al. Effects of salinity stress on neurotransmission, energy metabolism, and anti-oxidant biomarkers ofCarcinusmaenasfrom two estuaries of the NW Iberian Peninsula[J].Marine Biology, 2012, 159(9): 2061-2074.

[35] YANG J, CHEN G, HUANG J S, et al. Effects of temperature and salinity on the growth and activities of antioxidant enzymes of Cobia(Rachycentroncanadum) juveniles[J].Journal of Guangdong Ocean University,2007,27(4):25-29.楊健, 陳剛, 黃建盛, 等. 溫度和鹽度對軍曹魚幼魚生長與抗氧化酶活性的影響[J].廣東海洋大學學報,2007,27(4):25-29.

Received: January 21, 2015

Synergistic Effects of Temperature and Salinity on the Activities of Immune-Related Enzymes ofChlamysnobilis(Reeve)

LI Zhi-min, QIAN Jia-hui, LAO Cui-ying, LIU Zhi-gang

(FisheriesCollege,GuangdongOceanUniversity, Zhanjiang 524025, China)

In order to provide a reference for disease control, culture and spreading ofChlamysnobilis,the synergistic effects of temperature (19～31 ℃) and salinity (22～38) on the activities of immune related enzymes of ACP, AKP and GR were studied using the central composite design (CCD) and response surface methodology (RSM). The results showed that the linear effects of temperature on the activities of ACP, AKP and GR were significant (P<0.05). And quadratic effects of temperature on the activities of three enzymes were also significant (P<0.05), which suggested that the activities of ACP, AKP and GR were easily be impacted by the temperature conditions. While the linear effects of salinity on the activities of ACP, AKP, GR were significant (P<0.05), and the quadratic effects of salinity on the ACP, AKP and GR were also significant (P<0.01). There existed significant synergistic effects between temperature and salinity on the activities of ACP, AKP and GR (P<0.05). Through response surface methodology, a model equation about the relationship of the activities of ACP, AKP and GR to the two factors was established, with theR2as high as 0.986 6, 0.981 3 and 0.957 6 (P<0.05)respectively, and the Pred.R2reached to 0.934 5，0.888 0 and 0.738 4, suggesting that the fitting capability of the model was practicably applied for prediction. Through the optimization of the reliable model, the activities of ACP, AKP reached their minimum(170.43, 181.74 U/mg) and the activity of GR reached the maximum (0.34 U/mg) when the 2-factor combination was 24.30 ℃/30.55, with the desirability value being 0.95.

Chlamysnobilis; response surface method; Alkaline Phosphatase(AKP); Acid Phosphatase(ACP); Glutathione Reductase(GR)

2015-01-21

廣東省教育廳項目——熱帶海產無脊椎動物養(yǎng)殖工程研究中心建設項目(GCZX-A0909)

栗志民(1972-)，男，遼寧興城人，博士，副教授，主要從事經濟無脊椎動物生物學和增養(yǎng)殖方面研究. E-mail:lizhimin811@163.com

*通訊作者：劉志剛(1963-)，男,廣東潮州人,教授，碩士生導師，主要從事經濟無脊椎動物增養(yǎng)殖方面研究.E-mail:lzg919@126.com

(王佳實 編輯)

S917.4

A

1671-6647(2015)02-0227-12