許玉潔， 單洪偉， 馬 甡

(中國海洋大學海水養(yǎng)殖教育部重點實驗室，山東 青島 26003)

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芽孢桿菌和溶藻弧菌對凡納濱對蝦消化酶、免疫酶活力及抗病力的影響*

許玉潔， 單洪偉， 馬 甡**

(中國海洋大學海水養(yǎng)殖教育部重點實驗室，山東 青島 26003)

選取初始體重(3.58±0.32)g的凡納濱對蝦，在飼料中分別添加溶藻弧菌(Vibrioalginolyticus)活菌、溶藻弧菌破碎菌、芽孢桿菌(Bacillussp.)活菌和芽孢桿菌破碎菌和使其菌含量為108CFU/g，通過49d的養(yǎng)殖實驗研究飼料中添加芽孢桿菌和溶藻弧菌對凡納濱對蝦的消化酶、免疫相關酶和抗病力的影響。結果顯示：(1)4個處理組對蝦的腸道蛋白酶水平均顯著提高。25d時各處理組淀粉酶水平均顯著高于對照組，49d時弧菌破碎組和桿菌破碎組對蝦的淀粉酶水平高于對照組(P<0.05)，其中桿菌破碎組對蝦腸道的消化酶水平最高，桿菌組對蝦腸道消化酶水平低于其他處理組。(2)49d時弧菌組對蝦的超氧化物歧化酶(SOD)水平上升(P<0.05)；弧菌破碎組對蝦的SOD、酚氧化酶(PO)和抗菌酶水平上升(P<0.05)；桿菌組對蝦PO水平上升，抗菌酶水平下降(P<0.05)；桿菌破碎組對蝦SOD和PO水平均上升，抗菌酶水平下降(P<0.05)。(3)WSSV攻毒的半致死時間為桿菌破碎組>弧菌破碎組>弧菌組>桿菌組>對照組。研究表明，飼料中添加芽孢桿菌和溶藻弧菌及其破碎菌體均能在一定程度上提高對蝦的消化酶活力和抗病力。其中添加弧菌破碎菌體能更好的提高對蝦的免疫酶水平，添加桿菌破碎菌體能促進對蝦消化和抗病力。

凡納濱對蝦； 芽孢桿菌； 溶藻弧菌； 消化酶； 免疫

凡納濱對蝦(Litopenaeusvannamei)原產于中、南太平洋海岸水域秘魯北部至墨西哥桑諾拉[1]。由于適應力強、生長周期短、營養(yǎng)要求低、抗病力強、適鹽范圍廣等特點，使得凡納濱對蝦養(yǎng)殖在我國得到了迅速的發(fā)展[2]。然而在對蝦養(yǎng)殖中，對蝦白斑綜合征(White spot syndrome，WSS)因其高傳播性、高致病性、高死亡率給對蝦養(yǎng)殖業(yè)造成了巨大損失。目前尚無有效的疫苗能夠防治白斑綜合征，主要采用以防為主的策略，通過建立健康的養(yǎng)殖環(huán)境和提高對蝦的免疫力來達到防治的目的。

益生菌具有改善水質、提高動物產量和免疫力的作用，應用在生產中能夠改善養(yǎng)殖水質，減少漁藥、抗生素的使用，促進健康養(yǎng)殖業(yè)的發(fā)展[3]。芽孢桿菌(Bacillussp.)由于其耐高溫及干燥環(huán)境、便于儲藏和運輸?shù)奶匦猿蔀橹匾娘暳衔⑸锾砑觿┖臀⑸鷳B(tài)制劑[4-5]。研究表明，芽孢桿菌能夠降解水體中氨氮、亞硝氮等有害物質；定植于宿主腸道后，能夠分泌酶類和代謝產物、建立優(yōu)勢菌群，促進宿主生長，提高宿主的免疫力[6-7]。實驗表明在飼料中添加堅強芽孢桿菌能夠提高對蝦的免疫酶水平和抗病力[8]。

弧菌(Vibrio)是海水養(yǎng)殖環(huán)境中的常見菌種，其中包括很多致病菌如哈維氏弧菌(Vibrioharveyi)、鰻弧菌(Vibrioanguillarum)、副溶血弧菌(Vibrioparahaemolyticus)等。溶藻弧菌(Vibrioalginohyticus)被認為是一種條件致病菌，大量存在于海水中，在一定環(huán)境、宿主和環(huán)境菌群的共同作用下能夠對宿主產生致病性[9]。然而已有部分溶藻弧菌作為益生菌應用與水產養(yǎng)殖中。有研究表明，溶藻弧菌能夠提高養(yǎng)殖動物的成活率和體重[10-11]。也有實驗證明溶藻弧菌能夠吸收水體中的氨氮、亞硝氮，具有改善水質的作用[12]。然而關于溶藻弧菌對對蝦生長、免疫方面的影響尚不甚清楚，需進一步研究。

活細菌進入腸道后能夠在腸道定植，通過調節(jié)腸道的菌群平衡，分泌胞外產物等途徑提高動物的免疫水平[13]。有研究表明，細菌脂多糖和細菌肽聚糖對介導非特異性免疫起到重要作用[14-15]。采用新城疫病毒感染干乳酪桿菌(Lactobacilluscasei)和嗜酸乳桿菌(Lactobacillusacidophilus)及其破碎菌體處理的雞胚腸細胞后發(fā)現(xiàn)，活菌處理過的細胞干擾素IFN-γ水平較對照組顯著降低，破碎菌處理組的IFN-γ水平顯著高于對照組[16]。說明細菌活菌和破碎菌產生免疫調控的機制可能有所不同，菌體碎片或細胞內的某些物質可能會對動物產生免疫促進的作用。本實驗采用篩選自舟山的芽孢桿菌和溶藻弧菌，通過飼料添加活菌和破碎菌體，比較2株細菌及其破碎菌體對凡納濱對蝦生長、消化酶活力、免疫相關酶活力和抗病力的影響。目的是比較2株細菌和不同添加方法對于免疫促進的效果，定位免疫活性物質的所在位置，為其在對蝦養(yǎng)殖生產中的應用提供參考。

1 材料和方法

1.1 實驗菌株

溶藻弧菌VZ5株和芽孢桿菌BZ5株均篩選自舟山對蝦養(yǎng)殖池塘中，現(xiàn)保存于中國海洋大學水產學院。

1.2 實驗飼料

對照組飼料采用正大公司生產的對蝦配合飼料，粗蛋白含量為42%，脂肪含量為7%。溶藻弧菌VZ5株和芽孢桿菌BZ5株活化后接種于LB液體培養(yǎng)基中，30℃培養(yǎng)24h。培養(yǎng)液于3000r/min離心10min收集濃縮菌液。菌液分別置于超聲波破碎儀中破碎20min(39%，3s，3s)制成破碎菌液。將活菌液和破碎菌液添加于對蝦配合飼料中，制成含菌量108CFU/g的飼料，室溫晾干后4℃保存?zhèn)溆谩?/p>

1.3 對蝦

凡納濱對蝦來自青島市寶榮水產科技發(fā)展有限公司，體質量為(3.58±0.32)g，體色正常，健康活潑。實驗前先暫養(yǎng)7d，每日換水1次，投餌3次。

1.4 養(yǎng)殖實驗

實驗設5個處理組，弧菌組：投喂添加溶藻弧菌VZ5株活菌的配合飼料；弧菌破碎組：投喂添加破碎溶藻弧菌的配合飼料；桿菌組：投喂添加芽孢桿菌BZ5株活菌的配合飼料；桿菌破碎組：投喂添加破碎芽孢桿菌的配合飼料；對照組：只投喂配合飼料。每組各設6個平行，每個平行20尾對蝦。實驗期間，每日投餌3次，每日吸污、換水，實驗持續(xù)49d。

1.5 攻毒實驗

攻毒采用從患病死蝦中粗提的白斑綜合征病毒(White spot syndrome virus，WSSV)，從對蝦第4、5腹節(jié)注射(50μL/尾)。每隔6h觀察對蝦的死亡情況，統(tǒng)計累計死亡率(Cumulative mortality rate，CMR)，計算免疫保護率(Relative Percent Survival, RPS)，計算公式如下：

CMR=已死亡對蝦數(shù)/對蝦總數(shù)×100%；

1.6 樣品采集

分別于實驗的第25天和第49天，每組隨機取4只蝦，解剖取出腸道、肝胰臟，-80℃保存?zhèn)溆?。使用一次性無菌注射器從對蝦腹部血竇中抽取血淋巴，在4℃下冷藏12h，5000r/min冷凍離心10min，取出上層血清，-80℃保存?zhèn)溆谩?/p>

1.7 指標測定

1.7.1 生長指標 相對增重率(Weight gain rate, WGR)和特定生長率(Specific growth rate, SGR)分別按照下列公式計算：

WGR =[(Wt-W0) / W0] ×100%;

SGR=[(lnWt- lnW0) /T] ×100%。

其中：W0，Wt分別表示實驗開始與結束時對蝦濕體質量；T為2次測定期間的間隔天數(shù)。

1.7.2 消化酶測定

淀粉酶 采用試劑盒(購自南京建成生物研究所)測定。淀粉酶單位定義為組織中每毫克在37℃與底物作用30min，水解1mg淀粉定義為1個活力單位。酶活性以酶的比活力表示。

蛋白酶 采用南京建成胰蛋白酶測定試劑盒測定。每單位定義為：pH=8.0，37℃條件下，每毫克蛋白中含有的胰蛋白酶每分鐘使吸光值變化0.003即為1個酶活力單位。

酶液蛋白濃度 采用考馬斯亮藍蛋白測定試劑盒(購自南京建成生物研究所)測定。

1.7.3 免疫指標測定 各免疫指標采用如下方法進行測定。

(1)血清過氧化物酶(POD)活力的測定采用改進的史成銀等[17]的方法。在96孔酶標板中依次加入血清20μL和180μL的顯色緩沖液(7.3g檸檬酸，11.86g二水磷酸氫二鈉用無菌水稀釋至1L)。首先用酶標儀于490nm波長下測定吸光值A1，然后再加入20μL顯色液(44μL 30%過氧化氫，4mg鄰苯二胺，10mL顯色緩沖液)，置于酶標儀中搖勻后，避光顯色15min，于490nm處測定吸光值A2。血清中POD活力用A2-A1計算。

(2)血清超氧化物歧化酶(SOD)活力測定采用南京建成生物工程研究所的SOD試劑盒。每毫升血清SOD的抑制率達50%時為1個SOD活力單位(U)。

(3)血清酚氧化酶(PO)活力測定采用改進的Ashida等[18]的方法。以L-多巴為底物，在96孔酶標板中進行。在96酶標板中的小孔內依次加入0.01mol/L L-多巴10μL、0.1mol/L磷酸鉀緩沖液(pH=6.4)200μL和10μL的血清，再將酶標板放入酶標儀中震蕩4次，于490nm波長每2min測一次吸光值。每毫升樣品每分鐘OD值增加0.001為1個酶活力單位(U)。

(4)抗菌酶活力采用改進的Hultmark等[19]的方法進行。將大腸桿菌用pH=6.4的1mol/L磷酸鉀鹽緩沖液配成OD570=0.4的菌懸液，取3mL菌懸液放入干凈試管中(冰水浴條件下)，再向試管中加血清50μL，震蕩混勻，用分光光度計于570nm波長下測其吸光值A3，再將試管置于37℃水浴鍋中恒溫放置30min，冰水浴中終止反應， 570nm下測定此時的吸光值A4?？咕盍Φ挠嬎愎綖閇(A3-A4)/A4]1/2。

1.8 數(shù)據(jù)處理

使用SPSS19.0軟件對實驗數(shù)據(jù)進行單因素方差分析，當差異顯著(P<0.05)時，用Duncan檢測法進行多重比較。

2 結果

2.1 生長

養(yǎng)殖實驗結束后，弧菌組的增重率、特定生長率最低，桿菌破碎組最高，但差異均不顯著，各組的成活率差異不顯著(見表1)。

表1 凡納濱對蝦的生長和成活率Table 1 The growth weight and survival rate of Litopenaeus vannamei(mean±S.E.)

2.2 消化酶

如圖1、2所示，25d時，對照組和桿菌組肝胰臟中蛋白酶活力顯著高于其他各組，桿菌破碎組最低(P<0.05)。各處理組腸道中蛋白酶活力顯著高于對照組(P<0.05)，桿菌破碎組腸道蛋白酶活力最高，桿菌組顯著低于其他處理組(P<0.05)。49d時，弧菌組、桿菌組和桿菌破碎組肝胰臟蛋白酶活力顯著高于對照組(P<0.05)，桿菌組肝胰臟蛋白酶活力最高。各處理組的腸道蛋白酶活力均有所提高并顯著高于對照組(P<0.05)。桿菌破碎組肝胰臟蛋白酶活力最高，腸道蛋白酶活力顯著低于其他處理組(P<0.05)。

圖1 各組肝胰臟胰蛋白酶活力變化

圖2 各組腸道胰蛋白酶活力變化

如圖3、4所示，25d時，對照組肝胰臟中淀粉酶活力顯著高于各處理組(P<0.05)，弧菌破碎組和桿菌組最低。對照組腸道中淀粉酶活力最低，桿菌破碎組最高(P<0.05)。49d時，對照組和桿菌破碎組肝胰臟中淀粉酶活力降低，腸道中淀粉酶活力升高。桿菌組肝胰臟中淀粉酶活力上升，腸道中淀粉酶活力下降?；【M肝胰臟和腸道中淀粉酶活力均下降，弧菌破碎組肝胰臟和腸道中淀粉酶活力均升高。對照組肝胰臟淀粉酶活力最高，弧菌組和桿菌破碎組最低(P<0.05)。桿菌破碎組腸道淀粉酶活力最高，弧菌組和桿菌組最低(P<0.05)。

2.3 免疫相關酶測定結果

2.3.1 過氧化物酶活力 25d時，弧菌組POD活力高于對照組，桿菌組和桿菌破碎組POD活力低于對照組，但差異不顯著(P>0.05)。49d時，弧菌組、桿菌組和桿菌破碎組POD活力均高于對照組，但差異不顯著(P>0.05)。

圖3 各組肝胰臟淀粉酶活力變化Fig.3 The change trend of hepatopancreas amylase of different treatments

圖4 各組腸道淀粉酶活力變化Fig.4 The change trend of intestinal amylase of different treatments

2.3.2 超氧化物歧化酶活力 25d時，弧菌組、弧菌破碎組和桿菌破碎組SOD水平顯著高于對照組(P<0.05)，其中桿菌破碎組SOD水平最高。49d時，弧菌組、弧菌破碎組和桿菌破碎組SOD水平顯著高于對照組(P<0.05)。

2.3.3 酚氧化酶活力 25d時，弧菌破碎組PO水平顯著高于對照組，桿菌破碎組PO水平顯著低于對照組(P<0.05)。49d時，弧菌破碎組和桿菌組PO水平顯著高于對照組(P<0.05)，桿菌破碎組PO水平顯著高于弧菌組(P<0.05)，但與對照組無顯著差異。

2.3.4 抗菌酶活力 25d時，弧菌組抗菌酶顯著低于對照組(P<0.05)。49d時，弧菌組和弧菌破碎組抗菌酶水平高于對照組，其中弧菌破碎組與對照組之間差異顯著(P<0.05)。桿菌組和桿菌破碎組的抗菌酶水平顯著低于對照組(P<0.05)。

表2 凡納濱對蝦非特異性免疫指標 (mean±S.E.)Table 2 Nonspecific immune index of Litopenaeus vannamei

注：同一行中不同上標為差異顯著(P<0.05)。Note：Data in the same row with different superscript letters are significantly different(P<0.05).

2.4 攻毒結果

由圖5所示，各組半數(shù)致死時間LT50:對照組68h, 弧菌組72h,弧菌破碎組78h,桿菌組70h, 桿菌破碎組90h。各處理組半致死時間分別比對照組延長了5.9%，14.7%，2.9%和32.4%。在96h時，對照組死亡率達到96.67%，弧菌組為86.67%，弧菌破碎組為80%，桿菌組為96.67%，桿菌破碎組為56.67%。

圖6顯示，桿菌破碎組的免疫保護率最高。48h后，弧菌破碎組的免疫保護率一直高于弧菌組和桿菌組。

圖5 凡納濱對蝦注射WSSV后的累計死亡率Fig.5 The cummulative moratality rate of Litopenaeus. vannamei after challenged with WSSV

圖6 各實驗組免疫保護率Fig. 6 The relative percent survival of experiment treatments

3 討論

3.1 溶藻弧菌和芽孢桿菌對凡納濱對蝦生長存活的影響

本實驗中，各組對蝦的生長差異并不顯著，與李桂英等[20]的研究結果不同，這可能是由于實驗時間較短造成的?；【M在實驗過程中曾有2個平行出現(xiàn)了大量死亡的現(xiàn)象，其余4個平行的成活率與其他4個處理組并沒有顯著差異；而弧菌破碎組在養(yǎng)殖過程中并未出現(xiàn)大量死亡的現(xiàn)象，提示使用破碎弧菌更加安全。大部分溶藻弧菌被認為是一種條件致病菌，在環(huán)境條件變化或動物免疫力下降時可能會產生致病性[9]。此株溶藻弧菌處理的凡納濱對蝦有2組在養(yǎng)殖過程中出現(xiàn)大量死亡的原因尚不能確定，因此此株溶藻弧菌仍需要一定的安全性試驗確認其安全性才能進一步投入使用。

3.2 溶藻弧菌和芽孢桿菌對凡納濱對蝦消化酶的影響

馮雪等在草魚和銀鯽的腸道菌群中發(fā)現(xiàn)了產蛋白質酶和淀粉酶的弧菌和芽孢桿菌[21]。De Schrijver等發(fā)現(xiàn)在飼料中添加解蛋白弧菌(Vibrioproteolyticus)能夠提高大菱鲆的蛋白消化效率[22]。實驗證明，在飼料中添加芽孢桿菌或外源微生物酶能夠促進提高的腸道消化酶活性[23-24]。本實驗4個菌添加處理組的腸道蛋白酶活力都顯著高于對照組(P<0.05)，養(yǎng)殖過程中各組腸道蛋白酶活力均有所上升，支持上述結論。桿菌組腸道蛋白酶活力顯著低于桿菌破碎組并且顯著低于弧菌組，說明芽孢桿菌和溶藻弧菌的胞外酶可能存在較大的差異，芽孢桿菌的胞內產物能更好的提高腸道蛋白酶活力。4個菌處理組的肝胰臟淀粉酶活力均顯著低于對照組，弧菌組和桿菌組的肝胰臟蛋白酶活力在49d時顯著高于其他各組，其他各組無顯著差異。劉波用地衣芽孢桿菌投喂異育銀鯽發(fā)現(xiàn)，地衣芽孢桿菌能夠提高腸道消化酶活力，對肝胰臟蛋白酶活力無影響，顯著降低肝胰臟淀粉酶活力[25]，本實驗結果與之一致。這可能是由于細菌隨飼料進入腸道，無法直接作用到肝胰臟，同時腸道和肝胰臟的消化酶活力可能存在著一定相互作用關系，導致肝胰臟的淀粉酶活力下降。

弧菌破碎組和桿菌破碎組的腸道淀粉酶活力變化趨勢與對照組相似，弧菌組和桿菌組的淀粉酶活力在49d時下降，顯著低于對照組(P<0.05)。破碎桿菌組的腸道淀粉酶活力始終最高。說明飼料中添加溶藻弧菌和芽孢桿菌活菌以及破碎菌體均能提高對蝦腸道的淀粉酶活性，添加芽孢桿菌和溶藻弧菌活菌在短期內具有一定效果，添加破碎菌體有效時間更長，添加破碎桿菌效果最好。曹煜成在凡納濱對蝦消化酶的體外實驗中發(fā)現(xiàn)，一定量的地衣芽孢桿菌胞外酶能夠提高對蝦腸道淀粉酶活力，當外源酶添加量大于0.02U/mg時，腸道淀粉酶隨著添加量的上升而降低[26]。飼料中添加活菌的處理組在養(yǎng)殖后期腸道淀粉酶活力下降可能是由于持續(xù)投喂添加活菌的飼料導致腸道外源酶過多造成的。

劉成榮發(fā)現(xiàn)在飼料中添加嗜水氣單胞菌的脂多糖和繡球菌菌多糖能夠提高泥鰍的免疫功能和消化功能[27]。很多糖類物質如殼聚糖[28]、低聚木糖[29]、葡聚糖和甘露寡糖[30]等被證明添加到飼料中能夠促進甲殼動物的消化酶活力。本實驗中，破碎菌處理組的腸道消化酶活性均高于活菌處理組，顯示破碎菌體對腸道消化酶的促進作用優(yōu)于活菌的胞外酶，其中破碎菌中的多糖類物質可能具有一定作用功效。芽孢桿菌BZ5株及溶藻弧菌VZ5株菌胞內多糖成分對對蝦消化酶活力的影響值得進一步探討。

3.3 溶藻弧菌和芽孢桿菌對凡納濱對蝦非特異性免疫的影響

酚氧化酶酶原激活系統(tǒng)在對蝦的非特異性免疫中承擔著識別異物、激活細胞免疫和體液免疫的作用[31]。SOD是甲殼動物中重要的抗氧化酶，可以清除體內的活性氧及其自由基，與機體的抗應激性、抗逆性具有較大的相關性[32]。對蝦受到環(huán)境脅迫或病原菌感染時，SOD和PO先上升后下降并達到穩(wěn)定水平，可能高于、低于或等于正常水平，這一過程一般是在48h內完成的[33-35]。本實驗中，弧菌組SOD水平顯著高于對照組而PO水平與對照組無顯著差異，桿菌組則與之相反。說明這2株細菌分別對凡納濱對蝦的SOD和PO具有長期而穩(wěn)定的影響。提示BZ5株和XZ5株對對蝦免疫的影響途徑可能有所不同。

3.4 溶藻弧菌和芽孢桿菌對凡納濱對蝦抗病力的影響

各組對蝦的半致死時間為桿菌破碎組>弧菌破碎組>弧菌組>桿菌組>對照組。李桂英[20]在用堅強芽孢桿菌和美人魚發(fā)光桿菌投喂南美白對蝦的實驗中發(fā)現(xiàn)，投喂益生菌能顯著提高南美白對蝦的非特異性免疫酶活性和抗病力。劉君等[8]在實驗中也發(fā)現(xiàn)投喂芽孢桿菌能顯著提高凡納濱對蝦抵抗WSSV的能力。本實驗發(fā)現(xiàn)溶藻弧菌VZ5株的活菌對于凡納濱對蝦抗病力的提高效果要高于芽孢桿菌BZ5活菌，同時發(fā)現(xiàn)飼料添加破碎菌體能比添加活菌更好地提高對蝦的抗病力。一般認為在飼料中添加細菌是通過以下幾個方面提高養(yǎng)殖動物的抗病力：(1)建立優(yōu)勢菌群，通過細菌間的拮抗作用抑制有害菌的生長，減少發(fā)病率[36-37]。(2)菌體本身或分泌的酶類、氨基酸、糖類等代謝物為養(yǎng)殖動物提供了營養(yǎng)，通過改善養(yǎng)殖動物的體質來減少動物的發(fā)病率[38]。(3)細菌本身能夠刺激養(yǎng)殖動物的免疫系統(tǒng)，或能產生某些免疫調控物質提高對象的免疫水平從而提高養(yǎng)殖動物的抗病力[39]。本實驗中破碎細菌能夠比活菌更好的提高對蝦的抗病力，這提示來自于細菌菌體內部的某些活性成分可能具有促進對蝦抗病力的作用。

4 結論

飼料中添加芽孢桿菌和溶藻弧菌及其破碎菌體均能在一定程度上提高對蝦的消化、免疫相關酶水平和抗病力。其中添加弧菌破碎菌體能更好的提高對蝦的非特異性免疫水平，添加桿菌破碎菌體能更好的提高對蝦消化水平和抗病力，破碎弧菌相較于弧菌活菌有更好的安全性。在養(yǎng)殖生產中添加破碎菌體能夠達到較好的效果，并在生態(tài)環(huán)境保護和養(yǎng)殖安全方面有實際應用價值。

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責任編輯 朱寶象

Effects of Bacillus sp. and Vibrio alginolyticus on the Activities of Digestive and Immune Enzymes Disease Resistance of Litopenaeus vannamei

XU Yu-Jie，SHAN Hong-Wei，MA Shen

(The Key Laboratory of Mariculture， Ministry of Education, Ocean University of China, Qingdao 266003, China )

A 49-day feeding experiment was conducted to evaluate the effects of different bacteria on the activities of peroxidase (POD), superoxide dismutase (SOD) and phenoloxidase (PO) and the resistance of shrimp (Litopenaeusvannamei) with an initial body weight of 3.58±0.32g. Shrimps were fed five diets including the basic pellet, livingBacillus(the basic pellet supplemented withBacillussp. BZ5), livingVibrio(the basic pellet supplemented withVibrioalginolyticusVZ5), deadBacillus(the basic pellet supplemented with brokenBacillussp.), and deadVibrio(the basic pellet supplemented with brokenVibrioalginolyticus). The bacterial dosage supplemented in diets was 108CFU/g diet. Diets with bacterial supplementation improved the activity of protease and amylase in intestine in 25 days (P<0.05). After 49 days, the amylase activity in intestine of shrimps feeding livingand deadVibriosupplemented diets is significantly higher than that of control. The activities of Intestine digestive enzymes of shrimps feeding deadBacillussupplemented diets were higher than those of shrimps feeding livingBacillussupplemented diets. After 49 days, SOD of shrimps feeding livingVibriosupplemented diets was significantly improved, and SOD, PO and bacterial resistance of shrimps feeding deadVibriosupplemented diets were significantly improved. Phenol oxidase of shrimps feeding livingBacillussupplemented diets was significantly higher than that of control while the activity of immune enzymes dropped significantly. The activities of SOD and PO of shrimps feeding deadBacilluswere significantly improved while those of immune enzymes dropped significantly. When challenged by WSSV, the half lethal time of shrimps feeding with deadBacillussupplemented diets was longer than those feeding with deadVibriosupplemented diets, livingVibriosupplemented diets and livingBacillussupplemented diets in an descending order. The results suggested that the diet supplemented with livingVibrioandBacillusimproved the activities of Intestinal digestive enzymes, immunity of shrimp and the disease resistance of shrimps. DeadVibriowas better than others in improving the immunity of shrips while deadBacilluswasbetter in inproving the activity of digestive enzymes and disease resistance.

Litopenaeusvannamei;Bacillus;Vibrioalginolyticus; digestive enzyme; immunity

農業(yè)部公益性行業(yè)科研專項經費項目(201103034)資助

2014-01-26；

2014-04-10

許玉潔(1988-)，女，碩士生。E-mail: xyjouc@163.com

** 通訊作者： E-mail: mashen@ouc.edu.cn

S917.4

A

1672-5174(2015)05-046-08

10.16441/j.cnki.hdxb.20140031