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      顱腦損傷動(dòng)物模型制備及腦組織中神經(jīng)生長(zhǎng)因子、腦源性神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子變化的實(shí)驗(yàn)研究

      2015-04-02 03:23:14郭新榮王瑞輝
      創(chuàng)傷外科雜志 2015年3期
      關(guān)鍵詞:光鏡神經(jīng)細(xì)胞免疫組化

      郭新榮,王瑞輝,李 娜,吳 濤

      顱腦損傷(traumatic brain injury,TBI)已成為危害公民的健康問(wèn)題、威脅人類生命和生存質(zhì)量的主要原因之一,已引起越來(lái)越多醫(yī)學(xué)研究者的重視。TBI動(dòng)物模型的制備對(duì)顱腦損傷的研究具有重要意義,隨著對(duì)TBI受傷機(jī)制不斷深入的研究,對(duì)TBI的模型復(fù)制要求也越來(lái)越高,需要尋找可控制性、重復(fù)性、穩(wěn)定性更好的模型制備方法。本研究利用電子顱腦損傷儀(eCCI)制備TBI大鼠動(dòng)物模型并對(duì)其進(jìn)行評(píng)價(jià),報(bào)告如下。

      材料與方法

      1 動(dòng)物及分組

      本實(shí)驗(yàn)所需動(dòng)物由西安交通大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心提供(動(dòng)物批號(hào):20121023)。雌性SD大鼠65只,體重220~240g,適應(yīng)性飼養(yǎng)3d后,隨機(jī)分為5組:空白組(A組,10只)、模型1組(B組,15只)、模型2組(C組,15只)、模型3組(D組,15只)和假手術(shù)組(E組,10只)。考慮到造模動(dòng)物死亡率較高,因此B、C、D組各15只。

      2 實(shí)驗(yàn)儀器及物品

      戊巴比妥鈉、硫酸慶大霉素、紅霉素軟膏、多聚甲醛、生理鹽水;微型磨鉆;手術(shù)器械若干;大鼠腦立體定位儀(ST-3ND,成都儀器廠);全自動(dòng)脫水機(jī)(ZT-12J,湖北省孝感市亞光醫(yī)用電子技術(shù)有限公司);包埋機(jī)(JB-L6,武漢俊杰電子有限公司);切片機(jī)(JJQ-P2016J,湖北省孝感市亞光醫(yī)用電子技術(shù)有限公司);水浴鍋;毫針、棉簽、乙醇、一次性手套等耗材。

      3 模型打擊設(shè)備

      電子顱腦損傷儀(eCCI)是由美國(guó)弗吉尼亞聯(lián)邦大學(xué)設(shè)計(jì)研制的專門針對(duì)TBI模型研究的打擊設(shè)備。其主要組件有:堅(jiān)固的鋁框、動(dòng)物平臺(tái)、控制器和撞擊頭,可以和各種型號(hào)的立體定位儀搭配使用;由控制器控制撞擊的速度,撞擊頭的組件部分含有感應(yīng)器,可以決定速率、撞擊深度及撞擊位置。

      4 造模具體方法

      術(shù)前禁食8h。實(shí)驗(yàn)時(shí)腹腔內(nèi)注射2%的戊巴比妥鈉(75mg/kg)進(jìn)行麻醉,俯臥位固定于腦立體定向儀上。消毒皮膚,正中切開(kāi),剝離骨膜,暴露右頂骨,用微型磨鉆在冠狀縫后3mm、中線左旁2.5mm處[1]鉆一直徑為2mm的骨窗,保持硬膜完整。將大鼠移置到eCCI操作臺(tái)上,調(diào)試好機(jī)器參數(shù)(B組:打擊速度3m/s、深度3mm;C組:打擊速度4m/s、深度3mm;D組:打擊速度5m/s、深度3mm),對(duì)模型組動(dòng)物全部進(jìn)行打擊,撞擊桿撞擊硬膜,使腦組織產(chǎn)生瞬間形變。打擊后向切口內(nèi)滴注4萬(wàn)U硫酸慶大霉素4~5滴,骨蠟封閉骨窗。縫合頭皮,外涂抹紅霉素軟膏。B、C、D組動(dòng)物均完成造模后,放回籠中,單獨(dú)喂養(yǎng)。E組動(dòng)物只開(kāi)顱,不進(jìn)行打擊。

      5 模型評(píng)價(jià)方法

      利用光鏡、電子顯微鏡檢測(cè)損傷周圍腦組織,免疫組化法檢測(cè)腦組織中神經(jīng)生長(zhǎng)因子(NGF)、腦源性神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子(BDNF)蛋白含量的變化。

      結(jié) 果

      1 光鏡檢測(cè)

      A組和E組腦組織皮層細(xì)胞分布清晰致密、排列均勻、胞體飽滿,無(wú)壞死區(qū),無(wú)纖維素滲出,胞核呈藍(lán)色、輪廓清楚,神經(jīng)元染色正常。B組:受傷皮質(zhì)可見(jiàn)出血、大量紅細(xì)胞逸出、炎性細(xì)胞浸潤(rùn)。C組:腦組織出血較多,間質(zhì)嚴(yán)重水腫,腦組織壞死、結(jié)構(gòu)疏松、血管周圍間隙增寬。D組:腦組織出血面積較大、細(xì)胞腫脹明顯、神經(jīng)細(xì)胞呈篩狀排列、神經(jīng)元變性,神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞相對(duì)增多,可見(jiàn)嗜神經(jīng)細(xì)胞現(xiàn)象及泡沫細(xì)胞;部分血管擴(kuò)張,出現(xiàn)血管周圍水腫,有較多凋亡細(xì)胞出現(xiàn)(圖1)。

      2 電鏡結(jié)果

      電鏡下A組和E組的大鼠腦組織表現(xiàn)為:神經(jīng)元整體結(jié)構(gòu)完整清晰,線粒體、核糖體、粗面內(nèi)質(zhì)網(wǎng)等細(xì)胞器含量豐富,線粒體大量存在于胞質(zhì)內(nèi)、具有清晰可見(jiàn)的內(nèi)外膜結(jié)構(gòu)、嵴排列整齊,內(nèi)質(zhì)網(wǎng)排列規(guī)律整齊、含量較豐富;而顱腦損傷后,受損神經(jīng)元的整體結(jié)構(gòu)遭到不同程度的破壞,細(xì)胞膜受到損傷,線粒體超微結(jié)構(gòu)被嚴(yán)重破壞(如嵴斷裂、外膜變薄、氣球樣變、出現(xiàn)大量斷裂的膜碎片等),粗面內(nèi)質(zhì)網(wǎng)數(shù)量減少、擴(kuò)張、腫脹、泡狀樣改變、核蛋白體往往脫落于胞漿內(nèi),細(xì)胞收縮變圓變小、失去微絨毛、與鄰近細(xì)胞脫離,胞漿濃縮。模型各組比較,隨打擊強(qiáng)度(速度)增大,腦組織受損越嚴(yán)重、病理變化越明顯(圖2)。

      3 腦組織中NGF、BDNF蛋白表達(dá)

      NGF蛋白免疫組化反應(yīng)陽(yáng)性產(chǎn)物表現(xiàn)為棕黃色顆粒狀或者點(diǎn)狀沉積,主要分布在神經(jīng)細(xì)胞內(nèi),以小顆粒為主、部分呈現(xiàn)為聚集分布。A組和E組大鼠損傷腦組織大腦皮質(zhì)神經(jīng)元胞漿中NGF呈弱陽(yáng)性反應(yīng)。模型各組損傷后腦組織損傷區(qū)大腦皮質(zhì)神經(jīng)元胞漿中NGF呈強(qiáng)陽(yáng)性反應(yīng),表達(dá)明顯增多,且隨損傷打擊速度的增加也依次更多(圖3)。

      BDNF蛋白免疫組化反應(yīng)陽(yáng)性產(chǎn)物表現(xiàn)為棕黃色顆粒狀或者點(diǎn)狀沉積,主要分布在神經(jīng)細(xì)胞內(nèi),以小顆粒為主、部分呈現(xiàn)為聚集分布。A組和E組BDNF免疫組化陽(yáng)性細(xì)胞在大腦皮質(zhì)部均有少量表達(dá)。B、C、D組免疫陽(yáng)性細(xì)胞數(shù)目依次增多,免疫陽(yáng)性物質(zhì)依次增加(圖4)。

      4 統(tǒng)計(jì)處理及分析

      免疫組化圖片采用陜西中醫(yī)學(xué)院分子生物與免疫組化實(shí)驗(yàn)中心Motic Images Advanced 3.0圖像分析系統(tǒng),檢測(cè)NGF、BDNF免疫陽(yáng)性表達(dá)物情況,在400倍光鏡下隨機(jī)選擇5個(gè)相鄰視野,計(jì)算陽(yáng)性表達(dá)細(xì)胞數(shù),取5個(gè)視野的平均值。各組所獲得的數(shù)值用均值±標(biāo)準(zhǔn)差(ˉx±s)來(lái)表示,采用SPSS17.0軟件包進(jìn)行數(shù)據(jù)分析,在正態(tài)檢驗(yàn)和方差齊性檢驗(yàn)后,采用單因素方差(One-Way ANOVA)分析,方差齊,組間兩兩比較采用LSD比較,如方差不齊,用Tamhane’s T2檢驗(yàn)。

      5 光鏡下計(jì)算機(jī)圖像分析結(jié)果見(jiàn)表1。

      圖1 光鏡下各組大鼠腦組織出血量情況(×200)

      圖2 電鏡下大鼠腦組織超微結(jié)構(gòu)(×8000)

      圖3 光鏡下各組腦組織皮層NGF的表達(dá)(×200)

      圖4 光鏡下各組腦組織皮層BDNF的表達(dá)(×200)

      表1 各組SD大鼠腦皮層NGF、BDNF蛋白表達(dá)的比較(n=8,ˉx±s)

      討 論

      生理情況下中樞神經(jīng)系統(tǒng)(CNS)中神經(jīng)元的發(fā)育、活性、神經(jīng)遞質(zhì)和激素的水平調(diào)節(jié)神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子(neurotrophin,NTF)的表達(dá);但TBI發(fā)生后,在缺氧、低糖、缺血等條件下可導(dǎo)致皮質(zhì)和海馬NGF和BDNF表達(dá)升高;很多研究也證明NTF的反應(yīng)是防止神經(jīng)細(xì)胞死亡的自身保護(hù)機(jī)制。NTF能夠促進(jìn)周圍及中樞神經(jīng)元的分化、生長(zhǎng)及存活。已經(jīng)發(fā)現(xiàn)的NTF包括NGF、BDNF和神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子Ⅲ、Ⅳ/Ⅴ、Ⅵ等,本研究選擇NGF、BDNF作為研究TBI模型制備的觀測(cè)指標(biāo)。

      NGF是最早發(fā)現(xiàn)的典型的神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子,研究最為廣泛、深入。NGF在神經(jīng)細(xì)胞的發(fā)育、軸突的生長(zhǎng)及遞質(zhì)的合成和細(xì)胞的凋亡等多個(gè)環(huán)節(jié)中發(fā)揮著重要的調(diào)控作用,NGF能夠促進(jìn)外周及中樞神經(jīng)元的分化、生長(zhǎng)和存活,在維持大腦正常的生理功能中發(fā)揮著極其重要的調(diào)節(jié)作用[2]。腦損傷后,早期反應(yīng)基因激活,炎性因子表達(dá)上調(diào),從而誘導(dǎo)NGF的表達(dá)。Lee等[3]的實(shí)驗(yàn)表明NGF與許多中樞和周圍神經(jīng)系統(tǒng)病變密切相關(guān),在學(xué)習(xí)、記憶、神經(jīng)細(xì)胞損傷后的恢復(fù)中起重要的調(diào)節(jié)作用。Dekosky等[4]研究發(fā)現(xiàn)創(chuàng)傷性腦損傷中NGF蛋白在大腦皮質(zhì)明顯增加,其mRNA于傷后1d增加5倍,認(rèn)為NGF在神經(jīng)損害后神經(jīng)再生和修復(fù)中起保護(hù)作用。近年研究證實(shí)[5],NGF能選擇性地作用于中樞神經(jīng)系統(tǒng),能保護(hù)軸突受損的膽堿能神經(jīng)元免于死亡,還能誘導(dǎo)神經(jīng)纖維定向生長(zhǎng),控制神經(jīng)細(xì)胞存活的數(shù)量和分化,維持成熟神經(jīng)元的存活,參與受損神經(jīng)元的修復(fù)。病理情況下,NGF還能保護(hù)神經(jīng)元避免損傷,促進(jìn)受損細(xì)胞的存活。BDNF是Heldt等[6]于1982年從豬腦中純化提取獲得的,結(jié)構(gòu)上與神經(jīng)生長(zhǎng)因子相關(guān),是一種小分子二聚體蛋白質(zhì),多分布在大腦和海馬,在腦內(nèi)對(duì)中樞神經(jīng)系統(tǒng)的多種類型神經(jīng)元的生長(zhǎng)、發(fā)育、分化和再生都具有顯著作用并終身維持其功能。BDNF是一種腦保護(hù)因子,對(duì)神經(jīng)元起重要保護(hù)作用,有利于腦損傷的修復(fù)。

      本研究為了評(píng)價(jià)利用eCCI制備的TBI模型效果,進(jìn)行了組織形態(tài)學(xué)檢測(cè)顯示造模效果,并進(jìn)一步使用免疫組化法檢測(cè)腦組織中NGF、BDNF蛋白表達(dá)變化,結(jié)果顯示空白組和假手術(shù)組大鼠損傷腦組織大腦皮質(zhì)神經(jīng)元胞漿中NGF、BDNF均呈弱陽(yáng)性反應(yīng),模型各組損傷后腦組織損傷區(qū)大腦皮質(zhì)NGF、BDNF呈強(qiáng)陽(yáng)性反應(yīng),表達(dá)明顯增多,且隨損傷打擊速度的增加也依次增強(qiáng),組間比較有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,表明利用eCCI制備TBI大鼠動(dòng)物模型,大鼠腦皮質(zhì)NGF、BDNF蛋白的含量確有變化且變化和打擊的速度有密切的關(guān)系。本造模方法具有控制性好、損傷程度能區(qū)分、重復(fù)性好的優(yōu)點(diǎn),同時(shí)操作簡(jiǎn)便,是一種較好的TBI動(dòng)物模型制備方法,可以廣泛應(yīng)用于TBI的實(shí)驗(yàn)研究。

      [1]諸葛啟釧 主譯.大鼠腦立體定位圖譜[M].3版.北京:人民衛(wèi)生出版社,2005:23.

      [2]Mobley WC,Rutkowski JL,Tennekoon GI,et al.Choline acetyl-transferase activity in striatum of neonatal rats increased by nerve growth factor[J].Science,1985,229(4710):284.

      [3]Lee TH,Kato H,Chen ST,et al.Expression of nerve growth factor and trk A after transient focal cerebral ischemia in rats[J].Stroke,1998,29(9):1687-1697.

      [4]Dekosky ST,Goss JR,Miller PD,et al.Upregulation of nerve growth fractor following cortical trauma[J].Exp Neurol,1994,130(2):173-177.

      [5]Carpentier PA,Palmer TD.Immune influence on adult neural stem cell regulation and function[J].Neuron,2009,64(1):79-92.

      [6]Heldt SA,Stanek L,Chhatwal JP,et al.Hippocampusspecific deletion of BDNF in adult mice impairs spatial memory and extinction of aversive memories[J].Mol Psychiatry,2007,12(7):656-670.

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