張小燕,張 娟,史晉叔,萬(wàn) 倩,房麗君,李 劍
(南昌大學(xué)1.第二附屬醫(yī)院 血液重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室;2.研究生院 醫(yī)學(xué)部 血液科,江西 南昌330006)
慢性粒細(xì)胞白血病(chronic myeloid leukaemia,CML)是起源于造血干細(xì)胞的惡性疾病。酪氨酸激酶抑制劑(tyrosine kinase inhibitors,TKIs)治療CML取得了顯著療效。然而,約15%~25%的CML 慢性期患者對(duì)TKIs 耐藥,在加速期和急變期,耐藥比例更高[1]。
白血病干細(xì)胞(leukaemia stem cells,LSCs)是CML 耐藥和復(fù)發(fā)的主要根源。LSCs 具有自身獨(dú)特的生物學(xué)性質(zhì),如膜表面特異性抗原,特異的自我更新信號(hào)通路等[2-4]。如何針對(duì)其生物學(xué)特性研制出靶向LSCs的藥物,已經(jīng)成為近年來(lái)的熱點(diǎn)。本文主要綜述靶向干擾CML-LSCs 信號(hào)通路的研究進(jìn)展。
WNT/β-catenin通路在CML-LSCs的“干性”維持中具有重要作用[5]。通過(guò)微陣列分析CML 小鼠BCR-ABL+LSCs 和正常造血干細(xì)胞(hematopietic stem cells,HSCs)的基因表達(dá)圖譜發(fā)現(xiàn),BCR-ABL+LSCs β-catenin表達(dá)上調(diào),是正常HSCs的2.5倍;實(shí)時(shí)定量PCR 也證實(shí)LSCs的β-catenin表達(dá)明顯上調(diào)。用共表達(dá)Cre 和BCR-ABL的反轉(zhuǎn)錄病毒轉(zhuǎn)染野生型和β-catenin條件敲除小鼠,從β-catenin條件敲除小鼠分離得到的LSCs 不能在二次移植受鼠形成CML。在CML 急變中,也存在β-catenin的異常激活[6]。
然而,β-catenin 在正常HSCs的存活中不是必須的,因此β-catenin 可能成為清除CML-LSCs的靶點(diǎn)。但是,目前沒(méi)有直接拮抗β-catenin的藥物,只有一些小分子WNT通路抑制劑,如AV65、吲哚美辛等[7],可以減少β-catenin表達(dá)并誘導(dǎo)CML細(xì)胞凋亡。
CML-LSCs 存在GSK-3β的Y216磷酸化激活,且磷酸化的GSK-3β 可從胞質(zhì)向胞核穿梭[8]。GSK-3βpY216特異性抑制劑SB216763 與伊馬替尼(IM)聯(lián)合使用,可以誘導(dǎo)CML-LSCs 凋亡,但對(duì)BCR-ABL-細(xì)胞無(wú)作用。另一種GSK-3β ATP 競(jìng)爭(zhēng)性抑制劑TDZD-8 也能誘導(dǎo)CML-LSCs 細(xì)胞凋亡卻不影響HSCs。
LSCs 中還存在絲氨酸/蘇氨酸激酶(MNK)-真核翻譯起始因子4E(eIF4E)軸的過(guò)度表達(dá)[9]。eIF4E 絲氨酸的磷酸化和過(guò)度表達(dá)可以促進(jìn)β-catenin的合成,引起LSCs 自我更新異常。但是,在正常HSCs 中,eIF4E的磷酸化與β-catenin的激活之間沒(méi)有明顯聯(lián)系,缺失MNK1/2的白血病小鼠可以恢復(fù)正常的造血。使用一種MNK的小分子抑制劑CGP57380,在體內(nèi)和體外可以抑制eIF4E的磷酸化和β-catenin的激活,破壞LSCs 在NOD/SCID 小鼠體內(nèi)連續(xù)植入能力。
JAK/STAT通路的持續(xù)激活已成為不同類(lèi)型白血病的共同特征[10]。
AHI-1 原癌基因在CD34+細(xì)胞過(guò)度表達(dá),其編碼的接頭蛋白AHI-1,參與BCR-ABL1 和JAK2 之間的相互作用,形成AHI-1/ BCR-ABL/ JAK-2 復(fù)合物[11],促進(jìn)CML-LSCs增殖并誘導(dǎo)白血病。而用RNAi 抑制AHI-1的過(guò)表達(dá)則可以減弱它們?cè)隗w外的自主生長(zhǎng)。AHI-1 這種調(diào)節(jié)生長(zhǎng)的作用與BCRABL 持續(xù)的磷酸化和JAK2/STAT5的活化有關(guān)。Ruxolitinib是一種選擇性JAK1/JAK2 激酶抑制劑,可通過(guò)阻斷JAK/STAT 信號(hào)傳導(dǎo)而發(fā)揮作用。針對(duì)攜帶殘留病灶的CML患者,Ruxolitinib 與TKIs 聯(lián)合使用的Ⅰ期臨床實(shí)驗(yàn)正在進(jìn)行。
轉(zhuǎn)錄因子STAT5是JAK2 主要的下游分子,抑制STAT5是否能夠有效地作用CML-LSCs 還存在爭(zhēng)議[12-13]。
PI3K/AKT通路的許多下游分子參與了BCRABL1 誘導(dǎo)的白血病。然而,這條通路對(duì)CML-LSCs的調(diào)節(jié)作用還知之甚少。轉(zhuǎn)錄因子FOXO3a是AKT的重要的下游效應(yīng)分子,沒(méi)有磷酸化的FOXO3a 可誘導(dǎo)多種促進(jìn)細(xì)胞周期阻滯和細(xì)胞凋亡基因的轉(zhuǎn)錄。研究發(fā)現(xiàn),在白血病起始細(xì)胞(leukaemia-initiating cells,LICs)中,AKT 磷酸化水平較低,F(xiàn)OXO3a定位細(xì)胞系,保持激活狀態(tài),而在CML 非LICs 細(xì)胞中,BCR-ABL 激活PI3K/AKT通路,引起FOXO3a逸出細(xì)胞系,滯留在胞漿中,抑制其轉(zhuǎn)錄活性,這種矛盾可能有助于解釋CML-LSCs與非CML-LSCs 對(duì)TKIs 敏感性的差異。TGF-β是LICs 中AKT 活性和FOXO3a 核定位的重要調(diào)節(jié)劑,可以解除AKT 對(duì)FOXO3a的抑制。因此TGF-β/FOXO 信號(hào)對(duì)LICs的維持具有重要的作用[14]。聯(lián)合運(yùn)用TGF-β 抑制劑Ly364947 和IM 可明顯降低LICs的克隆形成能力。
在CML-LSCs 自我更新的信號(hào)通路中,亮氨酸拉鏈轉(zhuǎn)錄阻遏蛋白BCL6是FOXO3a的下游分子。用一種與BCL6 輔阻遏物結(jié)合的擬肽類(lèi)抑制劑RIBPI,靶向BCL6,可以抑制BCR-ABL1 誘導(dǎo)的小鼠白血病,并能在體外清除CD34+CD38-CML 祖細(xì)胞。
Hedgehog(HH)通路在CML-LSCs的存活和增殖中也具有重要作用[15]。在CML 慢性期和急變期的LSCs 中,SMO、GLI1 和PTCH1 基因表達(dá)顯著增加。條件缺失SMO,可以抑制BCR-ABL+野生型和突變型CML-LSCs的生長(zhǎng),減少LSCs的數(shù)量,并且明顯減緩BCR-ABL1 誘導(dǎo)的CML的進(jìn)程。而激活SMO 則可促進(jìn)LSCs增殖,增加LSCs的數(shù)量,加快CML 疾病的進(jìn)展。在小鼠模型中,SMO 缺失可以減弱BCR-ABL1 誘導(dǎo)的CML 樣白血病和降低疾病的二次移植效率。SMO 抑制劑環(huán)靶明在體外可以抑制CML-LSCs的克隆形成。當(dāng)用環(huán)靶明治療白血病小鼠時(shí),CML-LSCs的數(shù)量明顯減少,并且顯著延長(zhǎng)小鼠的生存期,減少二次移植發(fā)病率。環(huán)靶明的這種療效在CML 形成的早期階段使用時(shí)最明顯。
運(yùn)用HH 通路抑制劑LDE225 聯(lián)合尼羅替尼治療CML 慢性期SCLtTA/BCR-ABL 轉(zhuǎn)基因小鼠[16],結(jié)果顯示,聯(lián)合用藥組的轉(zhuǎn)基因小鼠體內(nèi)的LSCs 數(shù)量明顯比單獨(dú)用藥組或不用藥組減少,且小鼠生存期明顯延長(zhǎng)。LDE225 聯(lián)合尼羅替尼治療復(fù)發(fā)或難治性CML 已經(jīng)進(jìn)入Ⅰb期臨床試驗(yàn)。另一個(gè)SMO拮抗劑PF-04449913 臨床應(yīng)用的初步結(jié)果顯示,對(duì)晚期CML 和其他髓系腫瘤具有顯著抑制作用。
ALOX5 編碼花生四烯酸5-脂氧合酶(5-LO),該酶是白三烯和脂氧素生成旁路的催化酶,催化產(chǎn)生的白三烯B4 能夠調(diào)節(jié)一些生理和病理過(guò)程。
BCR-ABL 能夠特異性的上調(diào)ALOX5的表達(dá)[17],ALOX5 在BCR-ABL 誘發(fā)CML的過(guò)程中是必須的。當(dāng)受鼠接受ALOX5+/+CML-LSCs 移植時(shí),形成CML 樣白血病死亡,而當(dāng)受鼠接受ALOX5-/-CML LSCs 移植時(shí),不能誘導(dǎo)形成CML 樣白血病,這表明ALOX5 缺失后損傷了LSCs的增殖分化功能。用5-LO的小分子抑制劑Zileuton 治療BCR-ABL1 誘導(dǎo)的CML時(shí),可以阻斷LSCs的分化,聯(lián)合IM 使用比單獨(dú)用藥具有更好的治療效果,能夠更有效的延長(zhǎng)BCR-ABL1 誘導(dǎo)的CML 樣病小鼠的存活。美國(guó)FDA 已經(jīng)批準(zhǔn)對(duì)CML 慢性期患者進(jìn)行IM 聯(lián)合Zileuton 治療的I / II期研究。
但是BCR-ABL是如何激活A(yù)LOX5,ALOX5 通路中還存在哪些信號(hào)分子,該通路與其他的信號(hào)通路之間有什么聯(lián)系等還有待進(jìn)一步的研究。
在CML 中,自噬也可能是白血病細(xì)胞存活和耐藥的機(jī)制之一[18]。
IM 以劑量依賴(lài)的方式誘發(fā)BCR-ABL+CML 白血病細(xì)胞發(fā)生自噬,抑制自噬可以增強(qiáng)IM 誘導(dǎo)的細(xì)胞死亡,并且殺傷CML-LSCs。BCR-ABL 可以通過(guò)PI3K/AKT/ FOXO4 信號(hào)通路上調(diào)ATF5的表達(dá)[19],后者激活mTOR 而負(fù)調(diào)控自噬。使用抑制自噬的藥物氯喹和RNA干擾敲除ATG7 可以增強(qiáng)IM的細(xì)胞毒性作用,幾乎完全清除CML-LSCs。目前,氯喹和IM 聯(lián)合使用治療CML 殘留病灶已進(jìn)入Ⅱ期臨床試驗(yàn)。另一個(gè)自噬抑制劑克拉霉素,也顯示出抑制CML細(xì)胞晚期自噬的作用。
隨著對(duì)LSCs 生物學(xué)特性研究的深入,許多靶向LSCs 異常信號(hào)途徑的藥物不斷涌現(xiàn)。然而,目前大部分的研究數(shù)據(jù)來(lái)源于NOD/SCID 小鼠,其在人群中的安全性和有效性還需要進(jìn)行大量的臨床試驗(yàn)驗(yàn)證。相信隨著研究的不斷深入,針對(duì)CML 耐藥和復(fù)發(fā)有效的新藥將會(huì)很快出現(xiàn)。
[1]Parker WT,Ho M,Scott HS,et al.Poor response to secondline kinase inhibitors in chronic myeloid leukemia patients with multiple low-level mutations,irrespective of their resistance profile[J].Blood,2012,119:2234-2238.
[2]劉莉,涂懷軍,彭婷,等.骨髓血管微環(huán)境對(duì)造血干細(xì)胞“干性”的維持作用[J].基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)與臨床,2013,33:1646-1649.
[3]Hamilton A,Helgason GV,Schemionek M,et al.Chronic myeloid leukemia stem cells are not dependent on BCR-Abl kinase activity for their survival[J].Blood,2012,119:1501-1510
[4]崔興,徐瑞榮,張文靜,等.造血干細(xì)胞自我更新的信號(hào)傳導(dǎo)通路研究進(jìn)展[J].基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)與臨床,2010,30:1230-1233.
[5]Morotti A,Panuzzo C,F(xiàn)ava C,et al.Kinase-inhibitor-insensitive cancer stem cells in chronic myeloid leukemia[J].Expert Opin Biol TH,2013,14:287-299.
[6]McCubrey JA,Steelman LS,Bertrand F E,et al.Multifaceted roles of GSK-3 and Wnt/beta-catenin in hematopoiesis and leukemogenesis:opportunities for therapeutic intervention[J].Leukemia,2014,28:15-33.
[7]Heidel FH,Bullinger L,F(xiàn)eng Z,et al.Genetic and pharmacologic inhibition of beta-catenin targets imatinib-resistant leukemia stem cells in CML[J].Cell Stem Cell,2012,10:412-424.
[8]Reddiconto G,Toto C,Palama I,et al.Targeting of GSK3beta promotes imatinib-mediated apoptosis in quiescent CD34+chronic myeloid leukemia progenitors,preserving normal stem cells[J].Blood,2012,119:2335-2345.
[9]Lima S,Sawa TY,Zhang M,et al.Targeting of the MNKeIF4E axis in blast crisis chronic myeloid leukemia inhibits leukemia stem cell function[J].PNAS,2013,2298-2307.
[10]Warsch W,Walz C,Sexl V.JAK of all trades:JAK2-STAT5 as novel therapeutic targets in BCR-ABL1+chronic myeloid leukemia[J].Blood,2013,122:2167-2175.
[11]Chen M,Gallipoli P,Degeer D,et al.Targeting primitive chronic myeloid leukemia cells by effective inhibition of a new AHI-1-BCR-ABL-JAK2 complex[J].J Natl Cancer Inst,2013,105:405-423.
[12]Walz C,Ahmed W,Lazarides K,et al.Essential role for Stat5a/b in myeloproliferative neoplasms induced by BCRABL1 and Jak2V617F in mice[J].Blood,2012,119:3550-3560.
[13]Casetti L,Martin-Lanneree S,Najjar I,et al.Differential contributions of STAT5A and STAT5B to stress protection and tyrosine kinase inhibitor resistance of chronic myeloid leukemia stem/progenitor cells[J].Cancer Res,2013,73:2052-2058.
[14]王敏,王立茹.TGF-β 信號(hào)通路與造血系統(tǒng)腫瘤[J].基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)與臨床,2014,34:426-429.
[15]Takahiro I.Stem cell maintenance and disease progression in chronic myeloid leukemia[J].Int J Hematol,2013,98:641-647.
[16]Pimental A,Velez M,Barahona LJ,et al.New prospects for drug development:the hedgehog pathway revealed.Focus on hematologic malignancies[J].Future Oncol,2013,9:681-697.
[17]Seke Eteta PF,Vecchiob L,Nwabo Kamdje AH,et al.Signaling pathways in chronic mye-loid leukemia and leukemic stem cell maintenance:Key role of stromal microenvironment[J].Cell Signal,2012,24:1883-1888.
[18]Kyeong SC.Autophagy and cancer[J].Exp Mol Med,2012,44:109-120.
[19]Schafranek L,Leclercq TM,White DL,et al.Clarithromycin enhances dasatinib-induced cell death in chronic myeloid leukemia cells,by inhibition of late stage autophagy[J].Leuk Lymphoma,2013,54:198-201.