吳 榮，孫宇楠，張振勇，曾越燦，曹 碩

吡格列酮在大鼠放射性肺纖維化中保護(hù)作用的研究

吳 榮*，孫宇楠，張振勇，曾越燦，曹 碩

目的 探討吡格列酮在放射性肺纖維化中的保護(hù)作用，以及對(duì)AT1R(血管緊張素Ⅱ 1型受體表達(dá)的影響。方法 SD大鼠60只，共分為5組。空白組：不接受任何干預(yù)；照射+安慰劑組：接受12 Gy照射+安慰劑干預(yù)；單獨(dú)給藥組：接受吡格列酮10 mg/(kg·d)干預(yù)；照射+吡格列酮a組：接受12 Gy照射+吡格列酮10 mg/(kg·d)干預(yù)；照射+吡格列酮b組：接受12 Gy照射+吡格列酮20 mg/(kg·d)干預(yù)。采用HE及Masson染色觀察大鼠肺組織纖維化情況；采用免疫組化觀察AT1R在肺組織中的分布情況；采用蛋白免疫印跡雜交及RT-PCR檢測(cè)AT1R蛋白及mRNA的表達(dá)情況。結(jié)果 HE及Masson染色顯示，受照射大鼠肺組織細(xì)胞出現(xiàn)變性、壞死，肺組織出現(xiàn)明顯纖維化；大鼠給予吡格列酮干預(yù)后，受照射大鼠的肺組織損傷減輕，肺組織纖維化減輕；免疫組化提示，照射后大鼠肺組織及上皮細(xì)胞中AT1R表達(dá)較空白組及單獨(dú)給藥組明顯，照射+吡格列酮組的AT1R表達(dá)較照射+安慰劑組少；Western blot及RT-PCR提示，接受吡格列酮干預(yù)的受照射大鼠，AT1R蛋白及mRNA表達(dá)水平被明顯抑制。結(jié)論 吡格列酮在放射性肺纖維化中具有保護(hù)作用，其可能通過(guò)下調(diào)AT1的表達(dá)來(lái)實(shí)現(xiàn)對(duì)放射性肺損傷的保護(hù)作用。

放射性肺纖維化；吡格列酮；血管緊張素Ⅱ 1型受體；過(guò)氧化物酶體增殖物激活受體γ

0 引言

放射治療是胸部惡性腫瘤的主要治療方式之一，放射性肺損傷是胸部腫瘤放療的常見(jiàn)不良反應(yīng)。放射性肺纖維化是放射性損傷的晚期并發(fā)癥，可導(dǎo)致呼吸困難，影響患者的生活質(zhì)量，甚至導(dǎo)致呼吸衰竭，目前尚無(wú)特異性的肺纖維化治療手段[1]。過(guò)氧化物酶體增殖物激活受體(PPARs)是核激素受體超家族的配體活化的核轉(zhuǎn)錄因子，越來(lái)越多的證據(jù)表明自然和合成的PPARγ激動(dòng)劑在體外都具有強(qiáng)大的抗纖維化作用，吡格列酮為合成的PPARγ激動(dòng)劑[2]。本課題組前期的研究提示，血管緊張素Ⅱ(Angiotensin Ⅱ)是放射性肺纖維化形成的重要因素[3]。Angiotensin Ⅱ的這種作用主要通過(guò)血管緊張素Ⅱ 1型受體(Angiotensin type Ⅱ 1 receptor，AT1R)實(shí)現(xiàn)[4]。本課題組研究提示[5]，PPARγ作為一種保護(hù)性蛋白，在未用體外激動(dòng)劑的情況下，PPARγ生理性升高不足以抑制致纖維化蛋白的活性。目前尚無(wú)大鼠放射性肺纖維化模型中PPARγ對(duì)AT1R影響的研究。

放射性肺纖維化目前尚缺乏有效的治療方法，在前期研究證實(shí)血管緊張素Ⅱ在放射性肺纖維化中起重要作用的基礎(chǔ)上，本文擬研究吡格列酮在放射性肺纖維化中的保護(hù)作用，以及對(duì)AT1受體表達(dá)的影響。

1 材料與方法

1.1 動(dòng)物分組及干預(yù)(動(dòng)物模型建立) SPF級(jí)Sprague Dawley(SD)大鼠60只，雌雄各半，月齡3個(gè)月，體重178～245 g，購(gòu)自中國(guó)醫(yī)科大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心。將75只大鼠應(yīng)用隨機(jī)數(shù)字表法隨機(jī)分為5組，每組12只?？瞻捉M：不接受任何干預(yù)；照射+安慰劑組：接受12 Gy照射+安慰劑干預(yù)；單獨(dú)給藥組：接受吡格列酮10 mg/(kg·d)干預(yù)；照射+吡格列酮a組：接受12 Gy照射+吡格列酮10 mg/(kg·d)干預(yù)；照射+吡格列酮b組：接受12 Gy照射+吡格列酮20 mg/(kg·d)干預(yù)。大鼠按照100 g/0.3 mL的量給予水合氯醛腹腔注射麻醉，麻醉后右側(cè)胸腔彩超定位，放置于直線(xiàn)加速器下照射。使用6 MV高能X射線(xiàn)，采用前后對(duì)穿照射的方法，源皮距100 cm，右側(cè)胸腔(單側(cè)肺)彩超掃描確定照射野大小，照射劑量300 cGy/min。照射完后6 h之內(nèi)，除空白組外，對(duì)所有鼠行第1次灌胃處理，照射+安慰劑組灌入2 mL蒸餾水，單獨(dú)給藥組及照射+吡格列酮組分別灌入相應(yīng)量的吡格列酮。此后每天灌胃1次，每7天測(cè)量1次體重，根據(jù)體重調(diào)整灌藥量，行灌胃處理30 d，分籠飼養(yǎng)至3個(gè)月。

照射后3個(gè)月標(biāo)本取材，用水合氯醛過(guò)量麻醉法處死大鼠，取其右側(cè)肺組織，用生理鹽水洗凈血液后，用剪刀將其橫斷，一半迅速放于4%中性甲醛固定液中固定，48 h后轉(zhuǎn)入70%乙醇中保存；另一半放入-80 ℃深凍冰箱中保存。

1.2 檢測(cè)指標(biāo)

1.2.1 肺組織HE、Masson染色觀察肺損傷及纖維化情況 免疫組織化學(xué)觀察AT1表達(dá)。HE染色過(guò)程：將保存于70%乙醇中的肺組織取出，小心取下約5 mm×5 mm×5 mm大小的肺橫斷面組織放入包埋盒中，經(jīng)過(guò)脫水、透明、浸蠟、包埋后制成組織蠟塊，在切片機(jī)上連續(xù)切成厚度約4 μm的組織切片，撈片，放入60 ℃烤箱中烘干備用。將片子放入100%二甲苯中脫蠟10 min×2，用無(wú)水乙醇洗去二甲苯4 min，后用95%、80%、70%乙醇各洗1 min，PBS和蒸餾水各沖洗1 min。HE特殊染色：0.2%醋酸水溶液洗10 s，5%磷鎢酸10 min，0.2%醋酸水溶液浸洗2次，2%苯胺藍(lán)液染色5 min，0.2%醋酸水溶液洗2次，梯度乙醇脫水二甲苯透明，中性樹(shù)膠封片。在光學(xué)顯微鏡下觀察肺組織損傷情況。Masson染色過(guò)程：常規(guī)石蠟切片脫蠟后，行Masson染色，光鏡下觀察肺組織細(xì)胞呈紅色或黃色，膠原纖維呈藍(lán)綠色，拍片，掃描，采用圖像分析儀測(cè)定肺組織膠原含量。免疫組化過(guò)程：SP法免疫組化染色，染色步驟按說(shuō)明書(shū)進(jìn)行，抗體的工作濃度為1∶100。用磷酸鹽緩沖液代替一抗作陰性對(duì)照，用預(yù)試驗(yàn)中已知的陽(yáng)性片作陽(yáng)性對(duì)照。

1.2.2 蛋白免疫印跡雜交(Western blotting)法檢測(cè)AT1表達(dá) 提取大鼠肺組織蛋白并測(cè)定蛋白濃度，SDS-PAGE凝膠電泳，轉(zhuǎn)膜，5%脫脂牛奶封閉2 h。一抗(小鼠抗AT1單克隆抗體)(1∶3 000)孵育PVDF，4 ℃過(guò)夜；1×TBST洗5 min×5次；將二抗(HRP標(biāo)記山羊抗鼠IgG抗體)(1∶2 000)室溫孵育2 h；1×TBST洗5 min×5次；ECL顯影；以GAPDH作為內(nèi)參照物，相同實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。

1.2.3 RT-PCR(實(shí)時(shí)熒光定量逆轉(zhuǎn)錄聚合酶鏈反應(yīng))法檢測(cè)AT1 mRNA表達(dá)水平 AT1上游引物：5′-CACCTATGTAAGATCGCTT-3′，下游引物：5′-GATGATGATGCAGGTGACT-3′，擴(kuò)增片段長(zhǎng)度：162 bp；GADPH上游引物：5′-TGACATCAAGAAGGTGGTGA-3′，下游引物：5′-TCATACCAGGAAATGAGCTT-3′，擴(kuò)增片段長(zhǎng)度：177 bp。實(shí)驗(yàn)步驟按說(shuō)明書(shū)進(jìn)行。

2 結(jié)果

2.1 動(dòng)物模型建立情況 36只大鼠接受了直線(xiàn)加速器對(duì)右側(cè)肺的對(duì)穿照射，照射時(shí)用鉛塊(或多葉光柵)擋住除暴露右肺外的其他器官。在飼養(yǎng)過(guò)程中，照射+吡格列酮a組有1只大鼠在照射后死亡，照射+吡格列酮b組有1只大鼠在照射后死亡，照射+安慰劑組沒(méi)有大鼠死亡。所有經(jīng)過(guò)照射的大鼠都出現(xiàn)體重下降明顯等癥狀?？瞻捉M沒(méi)有大鼠死亡。共有58只大鼠完成實(shí)驗(yàn)：空白組12只，照射+安慰劑組12只，單獨(dú)給藥組12只，照射+吡格列酮a組11只，照射+吡格列酮b組11只。

2.2 常規(guī)HE及Masson染色結(jié)果 在×400鏡下觀察(圖1 HE染色部分)，接受照射的大鼠肺組織出現(xiàn)較為明顯的肺組織損傷，肺泡及支氣管上皮細(xì)胞排列紊亂，部分細(xì)胞出現(xiàn)變性及壞死，細(xì)胞核排列不規(guī)則，其中照射+安慰劑組(圖1c)損傷較其他照射組重，接受吡格列酮干預(yù)的大鼠肺組織損傷程度較不接受吡格列酮干預(yù)的大鼠輕。Masson染色結(jié)果提示，照射后大鼠肺組織纖維化明顯(藍(lán)色，見(jiàn)圖1 Masson染色部分)，照射+安慰劑組纖維化較其他組明顯(P<0.05)。接受吡格列酮干預(yù)可降低照射所引起的纖維化程度，吡格列酮干預(yù)高劑量組此效果更明顯(見(jiàn)圖1、表1，P<0.05)。

圖1 HE、Masson染色結(jié)果

注：a.空白組，b.單獨(dú)給藥組，c.照射+安慰劑組，d.照射+氯沙坦a組，e.照射+氯沙坦b組。肺組織HE染色提示，肺組織損傷，肺泡及支氣管上皮細(xì)胞排列紊亂，部分細(xì)胞出現(xiàn)變性及壞死，細(xì)胞核排列不規(guī)則，其中照射+安慰劑組損傷較其他照射組重，接受吡格列酮干預(yù)的大鼠肺組織損傷程度較不接受吡格列酮干預(yù)的大鼠輕(×400)。Masson染色結(jié)果提示，照射后大鼠肺組織纖維化明顯(藍(lán)色)，照射+安慰劑組纖維化較其他組明顯；接受吡格列酮干預(yù)可降低照射所引起的肺纖維化程度(×400)

表1 實(shí)驗(yàn)后大鼠肺組織纖維化評(píng)分情況

注：*與照射+吡格列酮a或b組比較，P<0.05；#與照射+安慰劑組比較，P<0.05

2.3 免疫組化情況 AT1R免疫組化提示，照射后大鼠肺組織中肺泡及支氣管上皮細(xì)胞中AT1R表達(dá)較空白組及單獨(dú)藥物組明顯。照射+吡格列酮a組與照射+吡格列酮b組的AT1R表達(dá)較照射+安慰劑組少，提示吡格列酮在放射性肺損傷中具有保護(hù)作用。見(jiàn)圖2。

圖2 AT1R免疫組化結(jié)果

注：a.空白組，b.單獨(dú)給藥組，c.照射+安慰劑組，d.照射+吡格列酮a組，e.照射+吡格列酮b組。肺組織AT1R免疫組化提示，照射后大鼠肺組織及內(nèi)皮細(xì)胞中AT1R表達(dá)較空白組及單獨(dú)藥物組明顯。照射+吡格列酮a組與照射+吡格列酮b組的AT1R表達(dá)較照射+安慰劑組少(×200)

2.4 Western blot結(jié)果 AT1R蛋白表達(dá)情況,照射+安慰劑組的AT1R蛋白表達(dá)較其他組明顯；照射+吡格列酮a組的AT1R蛋白表達(dá)較照射+吡格列酮b組明顯(P<0.05)，較空白組及單獨(dú)給藥組也明顯。大鼠肺組織接受放射線(xiàn)照射后，AT1R蛋白表達(dá)升高，吡格列酮干預(yù)可降低照射所引起的AT1R蛋白表達(dá)升高，吡格列酮干預(yù)高劑量組此效果更明顯(見(jiàn)圖3、圖4，P<0.05)。

圖3 AT1R蛋白表達(dá)情況

注：a.空白組，b.單獨(dú)給藥組，c.照射+安慰劑組，d.照射+吡格列酮a組，e.照射+吡格列酮b組。照射+安慰劑組的AT1R蛋白表達(dá)較其他組差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)；照射+吡格列酮a組的AT1R蛋白表達(dá)較照射+吡格列酮b組差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)，較空白組及單獨(dú)給藥組差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義

圖4 AT1R蛋白相對(duì)表達(dá)量

注：a.空白組，b.單獨(dú)給藥組，c.照射+安慰劑組，d.照射+吡格列酮a組，e.照射+吡格列酮b組

2.5 RT-PCR結(jié)果 照射+安慰劑組的AT1 mRNA表達(dá)較其他組明顯；照射+吡格列酮a組的AT1 mRNA表達(dá)水平較照射+吡格列酮b組明顯，較空白組及單獨(dú)給藥組均明顯，提示大鼠肺組織接受放射線(xiàn)照射后，AT1 mRNA表達(dá)水平升高，吡格列酮干預(yù)可降低照射所引起的AT1 mRNA表達(dá)升高，吡格列酮干預(yù)高劑量組此效果更明顯(見(jiàn)圖5，P<0.05)，這一結(jié)論與Western blot結(jié)果一致。

圖5 RT-PCR檢測(cè)AT1 mRNA相對(duì)表達(dá)水平

注：a.空白組，b.單獨(dú)給藥組，c.照射+安慰劑組，d.照射+吡格列酮a組，e.照射+吡格列酮b組

3 討論

放射治療已被廣泛用于治療胸部惡性腫瘤，而放射性肺損傷，特別是放射性肺纖維化是影響患者生活質(zhì)量甚至威脅生命的常見(jiàn)并發(fā)癥[6]。成纖維細(xì)胞的分化和激活是肺纖維化中的一個(gè)關(guān)鍵致病過(guò)程[2-7]。放射性肺損傷的現(xiàn)有治療主要為控制炎癥，長(zhǎng)期使用糖皮質(zhì)激素，期望通過(guò)對(duì)肺炎的控制來(lái)延緩肺纖維化的進(jìn)程。然而這種治療無(wú)明確的益處，激素長(zhǎng)期應(yīng)用后的不良反應(yīng)是重要挑戰(zhàn)[1]。

PPARs是核激素受體超家族的配體活化的核轉(zhuǎn)錄因子，參與脂代謝，細(xì)胞分化、增殖，細(xì)胞凋亡，炎癥等多種重要途徑[2]。PPARs分為3種亞型：PPARα、PPARβ/δ和PPARγ，而PPARγ在肺部疾病中的作用研究最具前景[8-9]。有研究提示，PPARγ在肺及心臟中具有抗纖維化作用[5,10-13]。

Ang Ⅱ是一種潛在的促纖維化介質(zhì)，可誘導(dǎo)人肺成纖維細(xì)胞增殖和膠原蛋白的合成[14]。前期研究證實(shí)，Ang Ⅱ和TGF-β1在放射性肺纖維化中表達(dá)升高[3]。研究表明，Ang Ⅱ促進(jìn)肺成纖維細(xì)胞活化增殖的作用是通過(guò)AT1R實(shí)現(xiàn)的[15]。AT1R信號(hào)的沉默可抑制Ⅰ型膠原蛋白的表達(dá)[16]。

某些血管緊張素受體抑制劑(ARBs)，如替米沙坦，也是PPARs的部分激動(dòng)劑，表明體內(nèi)AT1R的作用部分是通過(guò)PPARγ介導(dǎo)的[17]。血管平滑肌細(xì)胞(VSMC)的體外研究顯示，激活的PPARγ可抑制AT1R基因表達(dá)，反之亦然[18]。Zhao等[19]證明，激活PPARγ可以下調(diào)AT1R表達(dá)，從而減弱AngⅡ誘導(dǎo)的膠原合成導(dǎo)致的纖維化，在受體水平抑制RAS系統(tǒng)的活性。心房纖維細(xì)胞中吡格列酮可抑制AngⅡ誘導(dǎo)的成纖維細(xì)胞表達(dá)和增殖[20-21]。這些研究表明，PPARγ激動(dòng)劑的作用有一部分是通過(guò)AT1R介導(dǎo)的，預(yù)示著在纖維化進(jìn)程中，PPARγ和AT1R必然存在聯(lián)系。

從本實(shí)驗(yàn)中可以看到，照射+安慰劑組大鼠肺組織纖維化較其他組明顯，AT1R表達(dá)也較其他組顯著，應(yīng)用吡格列酮干預(yù)后，放射性肺損傷、肺纖維化減輕，且隨著給藥劑量的增加，這種作用更加明顯(圖1，表1，P<0.05)，而免疫組化提示肺組織AT1R的表達(dá)量明顯減少(圖2，P<0.05)。單獨(dú)給藥組和空白組之間無(wú)差異。Western blot和RT-PCR檢測(cè)提示，吡格列酮干預(yù)后，AT1R 蛋白及mRNA表達(dá)量降低，并且與劑量強(qiáng)度相關(guān)，隨著吡格列酮用量的增加，AT1R 蛋白及mRNA表達(dá)水平下降越明顯，其抗肺纖維化效果越顯著(圖3～圖5，P<0.05)。目前吡格列酮已用于臨床治療糖尿病，且有研究證實(shí)，PPARγ配體有抑制肺癌和放療增敏的作用[22]，預(yù)示著PPARγ激動(dòng)劑應(yīng)用于肺癌患者可能會(huì)獲得多種臨床價(jià)值。

綜上所述，吡格列酮在放射性肺損傷中具有保護(hù)作用，其可能通過(guò)下調(diào)AT1的表達(dá)來(lái)實(shí)現(xiàn)對(duì)放射性肺纖維化的保護(hù)作用。但是具體通過(guò)何種信號(hào)通路及機(jī)制實(shí)現(xiàn)這一調(diào)節(jié)過(guò)程仍需更深入的研究[22-23]。

[1] Ding NH,Li JJ,Sun LQ.Molecular mechanisms and treatment of radiation-induced lung fibrosis[J].Curr Drug Targets,2013,14(11):1347-1356.

[2] Kulkarni AA,Woeller CF,Thatcher TH,et al.Emerging PPARγ-independent role of PPARγ ligands in lung diseases[J].PPAR Res,2012:705352.

[3] 曹碩,吳榮.血管緊張素Ⅱ醛固酮在放射性肺損傷中的表達(dá)[J].中國(guó)腫瘤臨床,2013,40(5):253-256.

[4] Chen FP,Gong LK,Zhang L,et al.Early lung injury contributes to lung fibrosis via AT1 receptor in rats[J].Acta Pharmacol Sin,2007,28(2):227-237.

[5] Gao S,Wu R,Zeng Y.Up-regulation of peroxisome proliferator-activated receptor gamma in radiation-induced heart injury in rats[J].Radiat Environ Biophys,2012,51(1):53-59.

[6] Xu L,Xiong S,Guo R,et al.Transforming growth factor β3 attenuates the development of radiation-induced pulmonary fibrosis in mice by decreasing fibrocyte recruitment and regulating IFN-γ/IL-4 balance[J].Immunol Lett,2014,162(1 Pt A):27-33.

[7] Burgess HA,Daugherty LE,Thatcher TH,et al.PPARgamma agonists inhibit TGF-beta induced pulmonary myofibroblast differentiation and collagen production:implications for therapy of lung fibrosis[J].Am J Physiol Lung Cell Mol Physio,2005,288(6):L1146-L1153.

[8] Standiford TJ,Keshamouni VC,Reddy RC.Peroxisome proliferator-activated receptor-γ as a regulator of lung inflammation and repair[J].Proc Am Thorac Soc,2005,2(3):226-231.

[9] Simon DM,Arikan MC,Srisuma S,et al.Epithelial cell PPAR γ is an endogenousregulatorofnormallung maturation and maintenance[J].Proc Am Thorac Soc,2006,3(6):510-511.

[10]Belvisi MG,Mitchell JA.Targeting PPAR receptors in the airway for the treatment of inflammatory lung disease[J].Br J Pharmacol,2009,158(4):994-1003.

[11]Ciudin A,Hernandez C,Simó R.Update on cardiovascular safety ofPPAR γ agonists and relevance to medicinal chemistry and clinical pharmacology[J].Curr Top Med Chem,2012,12:585-604.

[12]Deng YL,Xiong XZ,Cheng NS.Organ fibrosis inhibited by blocking transforming growth factor-β signaling via peroxisome proliferator-activated receptor γ agonists[J].Hepatobiliary Pancreat Dis Int,2012,11(5):467-478.

[13]Aoki Y,Maeno T,Aoyagi K,et al.Pioglitazone,a peroxisome proliferator-activated receptor gamma ligand,suppresses bleomycin-induced acute lung injury and fibrosis[J].Respiration,2009,77(3):311-319.

[14]Lang YD,Hung CL,Wu TY,et al.The renin-angiotensin system mediates hyperoxia-induced collagen production in human lung fibroblasts[J].Free Radic Biol Med,2010,49(1):88-95.

[15]Parra ER,Ruppert AD,Capelozzi VL.Angiotensin Ⅱ type 1 and 2 receptors and lymphatic vessels modulate lung remodeling and fibrosis in systemic sclerosis and idiopathic pulmonary fibrosis[J].Clinics(Sao Paulo),2014,69(1):47-54.

[16]Lang YD,Hung CL,Wu TY,et al.The renin-angiotensin system mediates hyperoxia-induced collagen production in human lung fibroblasts[J].Free Radic Biol Med,2010,49(1):88-95.

[17]Molteni A,Moulder JE,Cohen EF,et al.Control of radiation-induced pneumopathy and lung fibrosis by angiotensin-converting enzyme inhibitors and an angiotensin Ⅱ type 1 receptor blocker[J].Int J Radiat Biol,2000,76(4):523-532.

[18]Tiyerili V,Becher UM,Aksoy A,et al.AT1-receptor-deficiency induced atheroprotection in diabetic mice is partially mediated via PPAR γ[J].Cardiovasc Diabetol,2013,12:30.

[19]Zhao SM,Li HW,Guo CY,et al.Cardiac fibrosis in diabetic rats:regulation and mechanism of activation of the PPARgamma signal pathway[J].Chin J Physiol,2010,53(4):262-267.

[20]Gu J,Liu X,Wang QX,et al.Beneficial effects of pioglitazone on atrial structural and electrical remodeling in vitro cellular models[J].J Mol Cell Cardiol,2013,65:1-8.

[21]Takeda K,Ichiki T,Tokunou T,et al.Peroxisome proliferator-activated receptor gamma activators downregulate angiotensin Ⅱ type 1 receptor in vascular smooth muscle cells[J].Circulation,2000,102(15):1834-1839.

[22]Han EJ,Im CN,Park SH,et al.Combined treatment with peroxisome proliferator-activated receptor(PPAR)gamma ligands and gamma radiation induces apoptosis by PPARγ-independent up-regulation of reactive oxygen species-induced deoxyribonucleic acid damage signals in non-small cell lung cancer cells[J].Int J Radiat Oncol Biol Phys,2013,85(5):e239-e248.

[23]Burgess HA,Daugherty LE,Thatcher TH,et al.PPARgamma agonists inhibit TGF-beta induced pulmonary myofibroblast differentiation and collagen production:implications for therapy of lung fibrosis[J].Am J Physiol Lung Cell Mol Physio,2005,288(6):L1146-L1153.

Protective effects of pioglitazone on radiation induced lung fibrosis

WU Rong*,SUN Yu-nan,ZHANG Zhen-yong,ZENG Yue-can,CAO Shuo

(Department of Medical Oncology,Shengjing Hospital of China Medical University,Shenyang 110022,China)

Objective To investigate the protective effects of pioglitazone on radiation induced lung fibrosis,and the effects on the expression of AT1 receptor.Methods Sixty SD rats were divided into 5 groups.The blank group:without any intervention.The irradiation plus placebo group:receiving 12 Gy irradiation plus placebo intervention.The single drug group:receiving only 10 mg/(kg·d) pioglitazone intervention.The irradiation plus pioglitazone a group:receiving 12 Gy irradiation plus 10 mg/(kg·d)pioglitazone intervention.The irradiation plus pioglitazone b group:receiving 12 Gy irradiation plus 20 mg/(kg·d)pioglitazone intervention.HE and Masson staining were used to observe the lung tissue injury.The distributions of AT1R in lung tissue were observed by immunohistochemistry.The expression of AT1R protein and mRNA were detected by Western blot and RT-PCR.Results HE and Masson staining indicated that the lung tissue of irradiation rats showed degeneration and necrosis,the lung tissue appeared obvious fibrosis.When the rats were treated with pioglitazone after irradiation,the lung injury and fibrosis decreased.The immunohistochemical staining showed that after irradiation,the expressions of AT1R of lung tissue was more obvious than those of blank group and the single drug group.The expressions of AT1R of irradiation plus pioglitazone group was less obvious than that of irradiation plus placebo group.The Western blot and RT-PCR indicated that after the pioglitazone intervention,the expressions of AT1 protein and mRNA of irradiation rats were significantly inhibited.Conclusion Pioglitazone has protective effects on radiation induced lung fibrosis,possibly through the down-regulation of the expression of AT1R.

Radiation induced lung fibrosis;Pioglitazone;Angiotensin Ⅱ type 1 receptor;PPARγ

2014-10-09

中國(guó)醫(yī)科大學(xué)附屬盛京醫(yī)院腫瘤科，沈陽(yáng) 110022

國(guó)家自然科學(xué)基金資助項(xiàng)目(81201803)

10.14053/j.cnki.ppcr.201501004

*通信作者