• 
    

    
    

      99热精品在线国产_美女午夜性视频免费_国产精品国产高清国产av_av欧美777_自拍偷自拍亚洲精品老妇_亚洲熟女精品中文字幕_www日本黄色视频网_国产精品野战在线观看

      ?

      基于吐溫—姜黃素復(fù)合物的熒光探針檢測脂肪酶活性

      2015-07-09 10:21湯燕張衛(wèi)左煥楨劉佳江凌田丹碧
      分析化學(xué) 2015年5期

      湯燕+張衛(wèi)+左煥楨+劉佳+江凌+田丹碧

      摘 要 本實驗以姜黃素作為信號探針,吐溫作為脂肪酶的底物和包裹姜黃素的載體,建立了一種檢測脂肪酶活性的熒光法。實驗發(fā)現(xiàn),采用0.3 mmol/L 吐溫40, 25 μmol/L 姜黃素,并且脂肪酶水解吐溫40的時間為35 min時,姜黃素的熒光強(qiáng)度變化值與脂肪酶濃度在0.002~0.05 mg/mL和0.05~0.25 mg/mL范圍內(nèi)呈現(xiàn)線性關(guān)系,檢出限為0.6 mg/L (S/N=3)。此探針在高通量檢測脂肪酶活性以及與脂肪酶相關(guān)疾病檢測領(lǐng)域中有較好的應(yīng)用前景。

      關(guān)鍵詞 姜黃素; 吐溫40; 脂肪酶; 熒光探針

      1 引 言

      許多疾病都與生物體內(nèi)特定酶的活性密切相關(guān),因此在生理條件下準(zhǔn)確檢測酶活性十分關(guān)鍵【1】,其中,脂肪酶(Lipase E.C. 3.1.1.3)是作用于羧酸酯鍵的一類水解酶,與急性胰腺炎、肥胖癥、動脈粥樣化等疾病密切相關(guān)【2】。脂肪酶的催化機(jī)理與其它的水解酶并不相同,其催化水解反應(yīng)發(fā)生在油-水界面上【3~5】,并且,它的底物為水不溶性酯類化合物,在測定酶活性過程中,通常需要乳化,乳化劑的加入會顯著影響酶活性檢測的真實性【6,7】,所以建立一種可靠、簡單、靈敏的檢測脂肪酶活性的方法尤為重要。

      姜黃素是一種天然疏水性抗癌藥物,其自身具有紫外和熒光性質(zhì)【8,9】,可作為熒光信號探針;同時,吐溫是一種兩親性的、生物相容性良好的非離子表面活性劑【10,11】,它既作為脂肪酶的底物,又作為包封姜黃素的載體。因此,本研究利用姜黃素作為信號探針,吐溫作為脂肪酶的底物和姜黃素的載體,構(gòu)建了吐溫-姜黃素復(fù)合物這一傳感平臺,用于脂肪酶活性的檢測。與傳統(tǒng)的滴定法、平板法和濁度法等相比,本方法無需乳化底物、操作簡單、成本低廉,靈敏度得到明顯提高。

      2 實驗部分

      2.1 儀器與試劑

      SpectraMax M3微孔板檢測系統(tǒng)(美國分子儀器公司),HH-S1恒溫水浴鍋(金壇市醫(yī)療儀器廠),電子天平 (德國賽多利斯公司)。吐溫20、40、60、80,姜黃素 (Curcumin),無水甲醇等均為分析純 (國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司)。豬胰腺脂肪酶 (PPL)和人血清購于北京索萊寶科技有限公司。除姜黃素是用無水甲醇配制以外,其余所有樣品均在10 mmol/L磷酸鈉緩沖液(PBS, pH 7.4)中制備得到。

      2.2 脂肪酶的熒光檢測

      分別移取1 mL 0.3 mmol/L 吐溫40和10 μL 2.5 mmol/L姜黃素溶液于2 mL離心管中,混勻,加入10 μL不同濃度的PPL在 37 ℃下反應(yīng)35 min后,在微孔板檢測系統(tǒng)上測量體系加入PPL前后的熒光強(qiáng)度(圖1)。最終,以F0 -F (ΔF505)為縱坐標(biāo),PPL濃度為橫坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,F(xiàn)0和F分別表示加入PPL前后的熒光強(qiáng)度。

      2.3 實際樣品測定

      將人血清在10000 r/min下離心10 min,向所獲得的上層清液中分別加入不同濃度的PPL溶液,配制成最終濃度分別為0.025, 0.5和1.0 mg/mL PPL的人血清樣品,按照繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線的方法進(jìn)行檢測。

      3 結(jié)果與討論

      3.1 吐溫-姜黃素復(fù)合物熒光檢測脂肪酶活性

      圖1為吐溫40-姜黃素復(fù)合物的熒光探針檢測脂肪酶活性的原理圖。當(dāng)沒有脂肪酶存在時,吐溫40-姜黃素復(fù)合物仍然保持著膠束結(jié)構(gòu),姜黃素?zé)o法釋放到緩沖溶液中發(fā)生降解,依然具有很高的熒光強(qiáng)度;當(dāng)脂肪酶存在時,它水解切割吐溫40中的羧酸酯鍵,

      破壞了吐溫40-姜黃素復(fù)合物的膠束結(jié)構(gòu),使得姜黃素從中釋放出來,在緩沖溶液中發(fā)生降解,熒光強(qiáng)度大大降低。為了驗證這一傳感機(jī)理,如圖2所示。姜黃素存在于10 mmol/L PBS (pH 7.4)時,發(fā)生降解,幾乎沒有熒光強(qiáng)度,溶液顏色為無色 (圖2a,a離心管);當(dāng)吐溫40存在時,其姜黃素被包裹在內(nèi),無法發(fā)生降解,具有很高的熒光強(qiáng)度,溶液顏色為黃色 (圖2b,b離心管),說明吐溫40保護(hù)姜黃素避免它與緩沖溶液相互作用而發(fā)生降解,從而擁有很高的熒光強(qiáng)度;當(dāng)加入PPL時,會使吐溫40發(fā)生水解,破壞了吐溫40-姜黃素復(fù)合物的膠束結(jié)構(gòu),釋放出姜黃素,其熒光強(qiáng)度大大減弱,溶液顏色為淡黃色 (圖2d,d離心管),表明PPL具有破壞吐溫40的作用,進(jìn)而使得姜黃素游離出來并與緩沖溶液相互作用發(fā)生降解,熒光強(qiáng)度減弱;同時,為了說明是PPL水解吐溫40,使姜黃素釋放到緩沖溶液中發(fā)生降解,對照實驗采用失活的PPL(100 ℃煮沸一段時間)加入到吐溫40-姜黃素復(fù)合物溶液中,其熒光強(qiáng)度與未加酶時幾乎一致,且溶液顏色也是一致的 (圖2c,c離心管)。以上實驗結(jié)果表明,脂肪酶、姜黃素和吐溫40三者之間的相互作用關(guān)系, 即在PPL的作用下,吐溫40-姜黃素復(fù)合物的結(jié)構(gòu)遭到破壞,姜黃素釋放出來與緩沖液相互作用發(fā)生降解,熒光強(qiáng)度減弱。因此,本方法可成功檢測脂肪酶活性。

      為了進(jìn)一步探究該傳感機(jī)理,采用紫外譜圖進(jìn)行研究。在中性水溶液中,姜黃素在430和355 nm處有兩個特征吸收峰,其中355 nm處出現(xiàn)的峰是由于水分子與姜黃素之間相互作用所導(dǎo)致的【8,12】。當(dāng)姜黃素加入到pH 7.4的PBS緩沖溶液中時,反應(yīng)1 min,發(fā)現(xiàn)在425 nm處出現(xiàn)一個低強(qiáng)度的吸收峰,并且在355 nm處有個不明顯的峰(圖3b);35 min后,425 nm處的峰完全消失,355 nm處有一個明顯的吸收峰(圖3a), 圖3 (a)磷酸鈉緩沖溶液與姜黃素反應(yīng)35 min;(b)磷酸鈉緩沖溶液和姜黃素反應(yīng)1 min;(c)吐溫40、姜黃素和PPL反應(yīng)35 min;(c)吐溫40與姜黃素反應(yīng)35 min的紫外譜圖

      Fig.3 UV-vis spectra of curcumin after reacted with (a) PBS for 35 min, (b) PBS for 1 min, (c) mixture of Tween 40 and PPL for 35 min and (d) Tween 40 for 35 minendprint

      說明隨著反應(yīng)時間的不斷延長,355 nm處的峰越來越明顯,其姜黃素與緩沖溶液相互作用越強(qiáng)。當(dāng)吐溫40存在時,355 nm處的峰完全消失,在425 nm處出現(xiàn)一個高強(qiáng)度的吸收峰 (圖3d);加入PPL后,同樣355 nm處的峰完全消失,但是在425 nm處的吸收峰的強(qiáng)度要低于沒有加酶的(圖3c),表明了吐溫40的存在能夠顯著降低姜黃素與緩沖溶液的相互作用,加入PPL后,會增強(qiáng)姜黃素與緩沖溶液的相互作用,導(dǎo)致姜黃素不斷降解。這些現(xiàn)象再次驗證此傳感策略能很好地用于檢測脂肪酶活性。

      3.2 實驗條件的優(yōu)化

      采用熒光光譜考察了吐溫類型與濃度、姜黃素濃度以及PPL水解吐溫時間對此傳感策略性能的影響。吐溫有多種類型,如吐溫20, 40, 60和80等,都可以作為PPL的底物和包裹姜黃素的載體【10,12~15】,但是PPL對其水解程度不一樣,并且它們包裹姜黃素的能力也不一樣,因此選擇合適的吐溫十分關(guān)鍵,結(jié)果如圖4A所示,當(dāng)選用吐溫40作為PPL底物和包裹姜黃素載體時,熒光信號差值最大。

      吐溫40濃度的選擇對于該傳感器的構(gòu)建尤為重要,低濃度不利于形成膠束,以包裹姜黃素,高濃度不利于PPL對其水解催化(圖4B)。在吐溫40濃度為0.05~0.30 mmol/L時,熒光信號差值不斷增大,當(dāng)濃度超過0.30 mmol/L時,熒光信號差值下降,因此選擇0.30 mmol/L 吐溫40作為最佳實驗條件。

      姜黃素作為該策略的信號傳感元件,信號的強(qiáng)弱與其濃度大小相關(guān)。如圖4C所示,隨著姜黃素濃度的增加,熒光信號差值也相應(yīng)增大,至濃度達(dá)到25 μmol/L時,熒光信號差值趨向穩(wěn)定。因此,姜黃素的濃度選為25 μmol/L。

      在PPL催化水解吐溫40的過程中,反應(yīng)時間是評價傳感策略的重要因素,結(jié)果如圖4D所示。在0~35 min反應(yīng)時間內(nèi),隨著反應(yīng)時間的延長,熒光信號差值不斷增加,35 min后,熒光信號差值趨于穩(wěn)定,表明PPL催化水解吐溫40達(dá)到平衡狀態(tài),因此選擇PPL催化水解吐溫40的時間為35 min。

      3.3 酶活動力學(xué)的測定

      在最佳的實驗條件下,測定了不同濃度的PPL的酶活動力學(xué)曲線。如圖5所示,在相同反應(yīng)時間內(nèi),隨著PPL濃度的增加,熒光信號差值也越來越大。另外,隨著水解反應(yīng)時間的不斷進(jìn)行,相同濃度下的PPL,其熒光信號差值也越來越大。這些結(jié)果表明,當(dāng)PPL的濃度越大或者隨著水解時間的增加,其破壞吐溫40-姜黃素復(fù)合物的能力就越強(qiáng),釋放出來的姜黃素在緩沖溶液中降解的程度就越大,最終熒光強(qiáng)度的變化值也越大。

      3.4 標(biāo)準(zhǔn)曲線的建立

      在最優(yōu)化條件下,對不同濃度的PPL進(jìn)行了定量檢測。如圖6A所示,隨著PPL濃度的不斷增加,反應(yīng)體系的熒光強(qiáng)度逐漸降低。以熒光強(qiáng)度的變化值為縱坐標(biāo),PPL的濃度為橫坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,結(jié)果如圖6 B所示,PPL濃度在0.002~0.05 mg/mL和0.05~0.25 mg/mL范圍內(nèi)呈線性關(guān)系,線性方程分別為ΔF505=7.900+5647CPPL(R2=0.9966),ΔF505=188.8+2217CPPL(R2=0.9892),檢出限低至0.6 mg/L(S/N=3)。本方法與傳統(tǒng)檢測脂肪酶活性相比,靈敏度大大提高,并且在高通量檢測脂肪酶活性以及與脂肪酶相關(guān)疾病檢測領(lǐng)域中有很大的應(yīng)用前景。

      3.5 人血清中PPL的標(biāo)準(zhǔn)加入回收率

      按照所建立的熒光檢測方法,通過標(biāo)準(zhǔn)加入法對人血清中的PPL進(jìn)行回收率計算。檢測結(jié)果如表1所示。結(jié)果表明,此傳感方法可以適用于實際樣品的檢測。

      References

      1 Hutter E, Maysinger D. Trends Pharmacol. Sci., 2013, 34(9): 497-507

      2 Gupta R, Gupta N, Rathi P. Appl. Microbiol. Biotechno., 2004, 64(6): 763-781

      3 Gupta R, Rathi P, Gupta N, Bradoo S. Biotechnol. Appl. Biochem., 2003, 37(1): 63-71

      4 Gomes N, Goncalves C, Garcia-Roman M, Teixeira J A, Belo I. Anal. Methods, 2011, 3(4): 1008-1013

      5 Hasan F, Shah A A, Hameed A. Biotechnol. Adv., 2009, 27(6): 782-798

      6 Beisson F, Tiss A, Rivière C, Verger R. Eur. J. Lipid Sci. Technol., 2000, 102(2): 133-153

      7 Gilham D, Lehner R. Methods, 2005, 36(2): 139-147

      8 Sahu A, Bora U, Kasoju N, Goswami P. Acta Biomater., 2008, 4(6): 1752-1761

      9 Ke D, Wang X, Yang Q, Niu Y, Chai S, Chen Z, An X, Shen W. Langmuir, 2011, 27(23): 14112-14117

      10 Kerwin B A. J. Pharmacol. Sci., 2008, 97(8): 2924-2935

      11 Plou F, Ferrer M, Nuero O, Calvo M, Alcalde M, Reyes F, Ballesteros A. Biotechnol. Tech., 1998, 12(3): 183-186

      12 Mandal S, Banerjee C, Ghosh S, Kuchlyan J, Sarkar N. J. Phys.Chem. B., 2013, 117(23): 6957-6968

      13 Sakai Y, Hayatsu M, Hayano K. Soil Sci. Plant Nutr., 2002, 48(5): 729-734

      14 Carson L A, Favero M S, Bond W W, Petersen N J. Appl.Microbiol., 1973, 25(3): 476-483

      15 Baradi A F, Bourne G H. Nature, 1951, 168(4284): 977-979endprint

      佛山市| 浮山县| 永和县| 鲁甸县| 谢通门县| 八宿县| 永济市| 五峰| 二连浩特市| 云林县| 南江县| 郴州市| 定州市| 武穴市| 河西区| 红安县| 景宁| 洛川县| 文水县| 济宁市| 大港区| 射阳县| 华安县| 阳曲县| 蒙山县| 遂宁市| 织金县| 堆龙德庆县| 老河口市| 嘉善县| 塘沽区| 康乐县| 蕲春县| 辛集市| 荆州市| 合川市| 新野县| 山东省| 若尔盖县| 屏东县| 海宁市|