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      影響口蹄疫貼壁種毒質(zhì)量因素的探討與分析

      2015-09-10 10:07:31李培林等
      湖北畜牧獸醫(yī) 2015年7期
      關(guān)鍵詞:傳代貼壁口蹄疫

      李培林等

      摘 要:口蹄疫滅活疫苗目前仍然是控制口蹄疫的主要手段,隨著懸浮工藝和純化工藝的改進(jìn),使口蹄疫滅活疫苗的質(zhì)量有很大的提高。探討了細(xì)胞狀態(tài)、接毒量和毒液保存條件對(duì)種毒質(zhì)量的影響。結(jié)果表明,細(xì)胞狀態(tài)影響收毒時(shí)間的變化,同時(shí)一定程度上也影響LD50的變化;接毒含量增高,收獲時(shí)間縮短,而低劑量、正常劑量接毒傳代試驗(yàn)均能獲得合格的種毒支系,適宜的改變接毒量有助于提高種毒質(zhì)量;不論是4 ℃冷藏保存還是-20 ℃冷凍保存,隨著保存時(shí)間的延長(zhǎng),毒價(jià)均有不同程度的損失,而且4 ℃保存的毒液下降率明顯低于-20 ℃保存方式。

      關(guān)鍵詞:BHK-21細(xì)胞;口蹄疫滅活疫苗;種毒制備;質(zhì)量控制

      中圖分類號(hào):S852.659.6 文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼:A 文章編號(hào):1007-273X(2015)07-0007-03

      口蹄疫是由口蹄疫病毒(FMDV)引起偶蹄動(dòng)物的一種急性、熱性、高度接觸性傳染病,嚴(yán)重危害畜牧業(yè)的發(fā)展[1,2]。OIE將該病列為A類家畜傳染病之首,而我國農(nóng)業(yè)部也把該病列為第一類防控疫病。對(duì)于口蹄疫的防控,目前仍以滅活疫苗為主。此項(xiàng)措施在我國重大疫情中發(fā)揮巨大防治作用。

      對(duì)于口蹄疫疫苗生產(chǎn)企業(yè),質(zhì)量的提高,產(chǎn)品創(chuàng)新以及員工素質(zhì)提高是企業(yè)發(fā)展的動(dòng)力。因此,疫苗質(zhì)量的提高離不開工藝革新以及基礎(chǔ)方面的優(yōu)化研究。工藝革新是疫苗制備企業(yè)的硬件系統(tǒng),由企業(yè)的綜合實(shí)力決定。而基礎(chǔ)研究主要包括:種細(xì)胞的馴化與篩選、種毒的優(yōu)化制備及抗原純化等相關(guān)研究[3,4]。從種毒制備人員的自身素質(zhì)講,篩選制備出良好的種毒,不僅給疫苗前端解決了問題,而且也給后端工藝帶來可喜的成果。因?yàn)榉N毒質(zhì)量好壞、抗原含量高低,直接影響口蹄疫抗原中的有效成分,而且關(guān)系到疫苗的免疫效果。在生產(chǎn)中獲得一支理想的種毒支系,不僅給生產(chǎn)人員帶來方便,而且也給企業(yè)帶來很大的經(jīng)濟(jì)收益。因此,制苗毒株的選擇及質(zhì)量的提高是疫苗生產(chǎn)的首要問題[6]。

      篩選優(yōu)質(zhì)的種毒需要有正確的操作方法更需要掌握影響種毒質(zhì)量的一些因素。目前,影響貼壁種毒因素主要有細(xì)胞貼壁狀態(tài)、維持液的酸堿度、接毒量、最佳收獲時(shí)間、檢驗(yàn)周期、種毒保存時(shí)間以及種毒傳代路線及無菌觀念等。因此,本次試驗(yàn)主要探討影響種毒質(zhì)量的一些因素,并進(jìn)行分析與總結(jié),從而通過過程控制,調(diào)整傳代條件、保存方法,篩選出毒價(jià)穩(wěn)定、146S高的基礎(chǔ)種毒,從而保障種毒質(zhì)量,提高企業(yè)競(jìng)爭(zhēng)力。

      1 材料與方法

      1.1 材料

      1.1.1 儀器與設(shè)備 CO2培養(yǎng)箱(Thermo 8000WJ);生物安全柜(HFsafe-1200型);倒置顯微鏡清(OLMPUS);4 ℃平溫冰箱;-20 ℃臥式冷凍冰柜;溫室、生物細(xì)胞轉(zhuǎn)瓶機(jī)、細(xì)胞觀察臺(tái);超低溫冰箱(Thermo ULT1386-3-V41)、移液器、恒溫震蕩培養(yǎng)箱等儀器。

      1.1.2 BHK-21細(xì)胞 由金宇保靈生物藥品有限公司提供,分種傳代一般按1∶3~1∶4進(jìn)行操作,加入營養(yǎng)液,置37 ℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。營養(yǎng)液配制按本公司的配液SOP進(jìn)行操作。

      1.1.3 O型口蹄疫基礎(chǔ)種毒 由金宇保靈生物藥品有限公司質(zhì)量檢驗(yàn)部提供FMDV基礎(chǔ)種毒。

      1.2 方法

      1.2.1 BHK-21細(xì)胞貼壁狀態(tài)對(duì)種毒的影響 按常規(guī)細(xì)胞傳代的方法,將細(xì)胞復(fù)蘇傳代后,將同批培養(yǎng)24、48、53、72、96 h細(xì)胞,每瓶細(xì)胞換液,加入病毒維持液100 mL,同時(shí)每個(gè)培養(yǎng)時(shí)間設(shè)兩個(gè)重復(fù),分別按5%~8%的接毒量接毒,接毒完成后置CO2培養(yǎng)箱37 ℃培養(yǎng)6~8 h觀察,病變達(dá)到90%時(shí)收獲病毒冷凍保存后混勻測(cè)病毒含量(取平均值)。

      1.2.2 改變接種比例對(duì)篩選種毒的影響 選同批48 、72 h培養(yǎng)階段的BHK-21細(xì)胞,細(xì)胞換液,加病毒維持液100 mL,一組以7%~8%的接毒量接毒,另一組以1%接毒量接毒,置CO2培養(yǎng)箱37 ℃培養(yǎng)6~8 h觀察,病變達(dá)到90%時(shí)收獲病毒冷凍保存后混勻測(cè)病毒含量,連續(xù)傳代3次。

      1.2.3 不同保存方式對(duì)種毒質(zhì)量的影響 通過測(cè)毒結(jié)果篩選出毒價(jià)高和毒價(jià)低的種毒,然后分別將上述兩種種毒,進(jìn)行4 ℃和-20 ℃冷凍保存,保存期限為210 d,經(jīng)過測(cè)毒結(jié)果分析計(jì)算不同時(shí)間毒價(jià)的損失率,毒價(jià)損失率=原樣毒價(jià)-不同時(shí)間段的毒價(jià)/原樣毒價(jià),記錄結(jié)果。

      1.2.4 LD50測(cè)定 用pH為7.6~7.8的細(xì)胞維持液將待測(cè)各批次種毒樣品進(jìn)行10倍系列稀釋,取10-7、10-8、10-9 3個(gè)稀釋度,每個(gè)稀釋度頸背部皮下接種2~3日齡乳鼠4只,設(shè)對(duì)照2只,每只注射0.2 mL,接種后觀察7 d,根據(jù)發(fā)病死亡乳鼠數(shù)按Reed-Muench法計(jì)算LD50。

      2 結(jié)果與分析

      2.1 BHK-21細(xì)胞貼壁狀態(tài)對(duì)種毒因素的影響

      由表1、圖1可知,隨著BHK-21細(xì)胞培養(yǎng)時(shí)間的延長(zhǎng),即細(xì)胞從24 h到96 h 的過程中,細(xì)胞表現(xiàn)基本形成單層、致密單層、脫落等現(xiàn)象的發(fā)生。因此,選擇不同培養(yǎng)時(shí)間段的細(xì)胞,對(duì)篩選種毒支系有一定的影響,從上述數(shù)據(jù)分析可知,細(xì)胞培養(yǎng)時(shí)間與收毒時(shí)間存在一定的相關(guān)性,從LD50毒價(jià)(LD50的值為10N LD50/0.2 mL中N的值,下同)分析可知,毒價(jià)上升的階段對(duì)應(yīng)的是細(xì)胞48~72 h培養(yǎng)階段。

      2.2 改變接種比例對(duì)篩選種毒的影響

      從表2可知,按7%~8%種毒含量,連續(xù)傳3代,種毒LD50基本在7.5~8.0范圍內(nèi)變化,說明按7%~8%正常含量接毒,可以得到理想的種毒支系。而且可以保證抗原的正常生產(chǎn)。從收毒時(shí)間分析,隨著代次的增加收毒時(shí)間逐漸在縮短,而細(xì)胞顆粒飽滿時(shí)間基本穩(wěn)定在8.5~11.5 h范圍內(nèi)。

      從表3低劑量組數(shù)據(jù)分析可知,以1%種毒含量進(jìn)行接毒傳代,種毒LD50在7.0~8.0范圍內(nèi)變化,而且通過收毒時(shí)的觀察,SY001F10代毒價(jià)不合格,通過后續(xù)連續(xù)傳代,收毒時(shí)間縮短毒價(jià)升高,可以初步證明,用低劑量接毒方法可以盲傳兩到三代,毒價(jià)基本趨于合格。說明這種傳代方法,可以達(dá)到生產(chǎn)的要求,而且這種工藝有一定的可行性。經(jīng)表2與表3對(duì)比分析可知,正常劑量組與低劑量組種毒傳代方式最大的不同,種毒含量高收毒時(shí)間快,種毒含量低收毒時(shí)間慢,即種毒含量的多少與收毒時(shí)間呈一代的正相關(guān)性,測(cè)毒結(jié)果與細(xì)胞病變情況,兩種方式基本一致。

      2.3 貼壁種毒不同保存方式對(duì)種毒質(zhì)量的影響

      從表4、圖2可知,不論是4 ℃保存和還是

      -20 ℃冷凍保存,隨著保存時(shí)間的延長(zhǎng),毒價(jià)均有不同程度的損失,從保存條件分析,4 ℃保存的毒液下降率明顯低于-20 ℃保存方式。從毒價(jià)高低分析可知,在大部分保存時(shí)間內(nèi),在4 ℃保存高毒價(jià)的下降率明顯低于4 ℃保存低毒價(jià)的下降率,而-20 ℃保存方式也有上述規(guī)律,這就說明,保存方式和毒價(jià)高低影響貼壁種毒的質(zhì)量。

      3 討論

      3.1 BHK-21細(xì)胞貼壁狀態(tài)及傳代穩(wěn)定性對(duì)篩選種毒質(zhì)量的影響

      細(xì)胞培養(yǎng)時(shí)間、分種比例、細(xì)胞營養(yǎng)液以及不同種類的血清與添加量,均能影響貼壁細(xì)胞狀態(tài)與形態(tài)。而本次試驗(yàn)在固定分種比例、營養(yǎng)液以及血清因素同時(shí),只考慮細(xì)胞培養(yǎng)時(shí)間對(duì)篩選種毒支系的影響,旨在探討細(xì)胞培養(yǎng)時(shí)間與種毒質(zhì)量的關(guān)聯(lián)性。在實(shí)際工作中,細(xì)胞狀態(tài)是指細(xì)胞的致密程度、融合率及細(xì)胞肉眼觀察情況。細(xì)胞狀態(tài)影響收毒時(shí)間的變化,同時(shí)也一定程度上影響LD50毒價(jià)的變化。一般情況,不同培養(yǎng)階段BHK-21細(xì)胞,細(xì)胞的致密度與薄厚度不一致,在接毒量一致的情況下,細(xì)胞培養(yǎng)時(shí)間會(huì)影響CPE收獲時(shí)間,從而間接的影響毒價(jià)。在實(shí)際工作中,盡量選擇細(xì)胞形態(tài)好,培養(yǎng)時(shí)間在48~72 h細(xì)胞進(jìn)行接毒,同時(shí)在工作中加無菌觀念意識(shí),在一定程度上,利于篩選優(yōu)質(zhì)的種毒。

      3.2 不同的接種比例對(duì)篩選種毒的影響

      在細(xì)胞狀態(tài)良好,細(xì)胞培養(yǎng)時(shí)間一定的情況下,貼壁種毒接毒含量增高,收獲變時(shí)間縮短,反之亦然。經(jīng)報(bào)道,接毒量高低直接影響病毒繁殖周期,細(xì)胞病變快慢直接影響細(xì)胞維持液的酸堿度及營養(yǎng)物質(zhì)的消耗快慢,這些因素的變化會(huì)直接影響完整病毒粒子的情況。通過本次試驗(yàn)結(jié)果可知,低劑量、正常劑量接毒傳代試驗(yàn)均能獲得合格的種毒支系。因此,在實(shí)踐中,適宜的改變接毒量有助于提高種毒毒價(jià)。所以,在種毒傳代中多注意上述問題。

      3.3 貼壁病毒液的不同保存條件對(duì)種毒質(zhì)量的因素的影響

      在口蹄疫滅活疫苗制備過程中,不可避免的要將基礎(chǔ)種毒、抗原滅活液、成品苗進(jìn)行保存,選擇適宜的保存條件和儲(chǔ)備方法,對(duì)疫苗質(zhì)量的提高有一定的指導(dǎo)意義。大量資料報(bào)道表明[5],冷鏈系統(tǒng)是口蹄疫苗的主要儲(chǔ)存和運(yùn)輸方式,可見如何有效的保存疫苗終端產(chǎn)品也是疫苗質(zhì)量提高的關(guān)鍵。本次試驗(yàn)證明,不論是4 ℃平穩(wěn)保存和還是-20 ℃冷凍保存,隨著保存時(shí)間的延長(zhǎng),毒價(jià)勻有不同程度的損失,而且4 ℃保存的毒液下降率明顯低于-20 ℃保存方式,本次結(jié)果與一些報(bào)道有所差距。經(jīng)查閱資料分析有如下原因所致,因?yàn)樵诒4婵谔阋呖乖蚨疽簳r(shí),大部分采用的是緩沖體系來保存,在4 ℃或-20 ℃保存條件下,-20 ℃保存條件下更容易使緩沖體系酸堿度發(fā)生變化,從而使毒液中的完整病毒粒子更容易降解,影響口蹄疫病毒質(zhì)量。

      疫苗制備過程是一個(gè)系統(tǒng)過程,此次試驗(yàn)只是從種毒方面進(jìn)行了初步探討,細(xì)胞培養(yǎng)時(shí)間的變化、接毒量的變化以及毒液保存條件的改變對(duì)貼壁種毒質(zhì)量的影響。因此,在實(shí)際工作中細(xì)化深入的研究,對(duì)口蹄疫疫苗質(zhì)量的提高會(huì)有一定的指導(dǎo)意義。

      參考文獻(xiàn):

      [1] COX S J, BARNETT P V. Emergency vaccination of sheep against foot and mouth disease:protection against disease and reduction in contact transmission[J]. Vaccine, 1999, 17: 1855-1868.

      [2] MURRAY P.K. A review of foot and mouth disease international vaccine banks. In Proc. National symposium on foot and mouth disease[J]. Australian Government Publication Service, 1992,10:115-123.

      [3] DETROY R W,STILL P E.Penicillium stoloniferum virus: large-scale concentration and purification by polyethylene Glycol[J]. American Society for Microbiology,1974 ,10:733-735

      [4] PANINA G F, SIMONE F D.Immunological activity of foot-and-mouth disease virus purified by polyethylene glycol precipitation[J]. Verlag Paul Parey, Berlin und Hamburg,1973, 20:773-782 .

      [5] ALLENDE R M. South American standards for Foot-and-mouth disease vaccine quality[J]. Foot-and-mouth Disease: Control Strategies, 2003,10:331-336.

      [6] 王永錄,張永光.口蹄疫A型滅活疫苗毒種和種子批的研究[J]中國獸醫(yī)科學(xué),2006,36(5):371-375.

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