熱帶水果上食源性致病菌研究進展

馬晨++李建國

摘 要 芒果、木瓜、椰子、菠蘿、香蕉和鱷梨等曾發(fā)生多起食源性疾病爆發(fā)事件。諾瓦克病毒（Norovirus）和沙門氏菌（Salmonella）是高發(fā)性食源性致病微生物。綜述與熱帶水果相關的食源性致病微生物、致病菌在熱帶水果上的行為以及致病菌侵染植物的過程，提出未來研究方向。

關鍵詞 熱帶水果 ；食源性致病菌 ；存活/生長 ；侵染過程

分類號 S432

Foodborne Pathogens of Tropical Fruits

MA Chen LI JIanguo

（Analysis and Testing Center / Hainan Provincial Key Laboratory of Quality and Safety for

Tropical Fruits and Vegetables， Ministry of Agriculture Laboratory of Quality & Safety Risk

Assessment for Tropical Products， CATAS， Haikou， Hainan 571101， China）

Abstract Outbreaks of foodborne disease associated with tropical fruits have occurred， mainly associated with mango， payaya， coconut， pineapple， banana and avocado. Norovirus and Salmonella are the leading viral and bacterial pathogens， respectively. The frequency of foodborne pathogens contamination for tropical fruits is probably high because of growth and production environment and innate characteristics of fruit. This review is to discuss the foodborne pathogens associated tropical fruit consumption， pathogen behavior on tropical fruits， internalization of foodborne pathogen into plant and future research needs.

Keywords tropical fruits ； foodborne pathogens ； survival and growth ； internalization

近年來，歐美國家不斷爆發(fā)新鮮果蔬上食源性致病菌中毒事件[1-4]，引起了國內外廣泛關注。沙門氏菌等可附著在果蔬表面，并可進入組織內部存活和繁殖[5-6]。所以，新鮮果蔬的微生物質量安全問題已成為國際食品安全焦點。熱帶水果中曾發(fā)生過多起食源性致病菌爆發(fā)事件[7]。在中國，香蕉、芒果、菠蘿、火龍果等是深受人們喜愛的熱帶水果。海南、福建、廣東、廣西和臺灣等地是我國熱帶水果主要產地。泰國、馬來西亞等是主要進口國。這些地區(qū)大多缺乏標準的食品安全生產和采后管理 標準，疾病爆發(fā)預警體系和致病菌檢測能力欠缺，可能導致大量食源性疾病爆發(fā)事件未被報道[7]。另外，這些地區(qū)水熱充沛，動物糞便和植物交叉污染嚴重，食源性致病菌的污染風險可能較高。

熱帶水果本身性質，如生長環(huán)境、pH、表面特性、抑菌成分和損傷敏感性等是影響致病菌存活和生長的重要因素[8]。表1列出了常見熱帶水果的基本性質。其中，pH是決定致病菌在水果上生長的關鍵因素。pH≤4.0為高酸性水果，pH≥4.0為低酸性水果[8]。如表1所示，熱帶水果具有不同程度的抑菌活性。水果的不可食外皮是防止細菌污染的強力屏障，但分切時易與刀具發(fā)生交叉污染[9]。致病菌在水果損傷部位或切割面上生長良好[10]。因而，易損傷或擠壓的水果，也易受致病菌感染。

綜上所述，熱帶水果的種植和加工環(huán)境以及水果自身特性決定了其受食源性微生物感染的幾率較高。隨著全球熱帶水果消費量的劇增，熱帶水果微生物質量安全問題應引起廣泛重視。本文主要從食源性致病菌種類、存活和生長規(guī)律及侵染途徑等方面總結熱帶水果上食源性致病菌的研究進展，為保障熱帶水果微生物質量安全提供參考。

1 與熱帶水果相關的食源性致病菌

表2列出了與熱帶水果有關的食源性致病菌中毒事件。其中，沙門氏菌和諾瓦克病毒是最常見的食源性微生物。受污染的熱帶水果主要包括鱷梨、香蕉、芒果、木瓜、菠蘿和椰子等。水果制品感染率較高。以下主要介紹細菌性食源性致病菌特征。

1.1 致病性大腸桿菌

腸出血性大腸桿菌和產志賀毒素大腸桿菌，尤其是Escherichia coli O157：H7是果蔬安全關注的焦點。該菌生長pH為4.4～9.0，生長溫度7～46℃[8]?？梢鹉c出血、溶血性尿毒綜合征及神經紊亂等征狀。E. coli O157：H7感染的果蔬包括綠葉蔬菜、蘋果汁、苜蓿芽和哈密瓜等[15]。熱帶水果中該菌的污染事件不多。1994年，美國爆發(fā)了由菠蘿引起的腸出血性E. coli O11：H43感染事件（表2）。

1.2 沙門氏菌屬

沙門氏菌（Salmonella）列居微生物性食物中毒事件首位。該菌生長pH為3.8～9.5，生長溫度5.2～46.2℃[8]。典型癥狀為腹瀉和嚴重腹部絞痛。沙門氏菌爆發(fā)事件中，涉及的熱帶水果有芒果、木瓜、菠蘿和椰子等。芒果引起的沙門氏菌感染事件有5起，木瓜和椰子各3起，涉及的沙門氏菌血清型多樣（表2）。新加坡曾爆發(fā)水果沙門氏菌感染事件，并引起造船工人感染[16]；抽檢的水果樣品中白蘭瓜、木瓜、菠蘿和西瓜均檢出沙門氏菌。另外，新鮮椰子是沙門氏菌生長的良好基質[17]。Kovacs[18]第一次從干椰子中分離出沙門氏菌。南威爾士、英國和新加坡都曾爆發(fā)食用椰子制品而導致的較大范圍沙門氏菌感染（表2）。endprint

1.3 葡萄球菌屬

葡萄球菌是存在于人類皮膚中的常見細菌，只有產毒素種類（金黃色葡萄球菌Staphylococcus aureus）是食源性致病菌。由于發(fā)病后病期短和類感冒癥狀，該菌的漏報率高達38倍[7]。香蕉及其制品中曾爆發(fā)金黃色葡萄球菌感染事件（表2）。

1.4 單增李斯特菌

目前沒有熱帶水果中單增李斯特菌（Listeria Monocytogenes）感染事件的報道。該菌生長pH為4.4～9.4，生長溫度-0.4～45℃[8]。對孕婦危害極大，可引起死胎或流產。常存在于植物表面、植物產品和加工環(huán)境中[8]。該菌可在冰箱儲藏溫度下生長。冷藏儲存的新鮮或鮮切熱帶水果應該關注該菌的污染風險。

1.5 志賀氏菌

志賀氏菌只能感染人類。嚴格管理工人的個人衛(wèi)生和車間消毒可避免食物中志賀氏菌感染。志賀氏菌爆發(fā)事件中，涉及的熱帶水果有鱷梨和椰子（表2）。1991年，泰國一所學校發(fā)生了食用椰奶甜品引起的志賀氏菌感染事件，導致200多人生病[19]。另外，鱷梨醬中也發(fā)生過兩起該菌感染事件，均由加工人員的個人衛(wèi)生造成。

1.6 其他食源性致病菌

彎曲腸桿菌感染通常與消費家禽有關。熟食店中禽肉和果蔬的交叉感染可引起果蔬污染[7]。此菌生長pH為4.4～9.0，生長溫度32～45℃[8]。1999和2002年，菠蘿和鱷梨沙拉醬中發(fā)生過兩例Campylobacter jejuni爆發(fā)事件（表2）。

諾瓦克病毒是最常見的食源性致病微生物。其感染癥狀為惡心、腹瀉、腹痛等。鱷梨、新鮮香蕉和菠蘿及其制品上都曾爆發(fā)該病毒感染事件（表2）。

另外，部分芽孢桿菌（Bacillus cereus、Clostridium botulinum和 Clostridium perfringens）也是潛在的食源性致病菌。目前沒有發(fā)現(xiàn)熱帶水果上芽孢桿菌感染事件。但是，熱帶水果儲存環(huán)境常為部分或完全厭氧，有利于產芽孢菌生長和存活。

2 食源性致病菌在熱帶水果上存活和生長規(guī)律

致病菌可在土壤、灌溉水、果蔬葉際或根際和鮮切果蔬上存活和生長[6]。關注較多的食源性致病菌是Salmonella、Escherichia coli O157：H7和Listeria monocytogenes，環(huán)境耐受性為E. coli O157：H7

2.1 芒果

新鮮芒果、芒果汁和鮮切芒果是常見的消費形式。其食源性致病菌爆發(fā)率最高。研究發(fā)現(xiàn)，采后熱冷處理是導致芒果感染沙門氏菌的主要原因[20]。據報道，芒果肉中，6和-10℃時E. coli O157：H7可存活13 d[21]。芒果汁中，25℃時耐酸性和非耐酸性E. coli O157：H7可存活6 d，3 d后數(shù)量迅速減少[22]；7℃存活8 d；10℃時Salmonella Heidelberg可存活18天，20和37℃時存活9 d[23]。鮮切芒果中，23℃時E. coli O157：H7和Salmonella可以生長；12℃時只有Salmonella 可以生長；4℃時E. coli O157：H7和Salmonella可存活28 d；-20℃存活至少180 d[24]。Penteado等[25]發(fā)現(xiàn)，25℃時S. enteritidis和L. monocytogenes生長延滯期分別為19 和7.2 h，增代時間分別為0.66和1.44 h；10℃，只有L. monocytogenes生長；4℃兩種菌可存活8 d；-20℃，S. enteritidis可存活5個月；L. monocytogenes可存活8個月。另外，當?shù)毒咧袛y帶大于104 CFU/mL的S. enteritidis或者大于105 CFU/ml的L. monocytogenes時，切分芒果時存在交叉污染[25]。

2.2 木瓜

新鮮木瓜、木瓜汁、鮮切木瓜、木瓜甜品等是常見的消費形式。研究發(fā)現(xiàn)，印度加爾各答街邊攤販銷售的鮮切木瓜菌落總數(shù)較高，可檢出大腸菌群和腸道致病菌。30份樣品中，E. coli檢出率48%，S. aureus檢出率17%，Salmonella檢出率3%，Vibrio cholerae檢出率3%[26]。在鮮切木瓜中，4℃時E. coli O157：H7和Salmonella可存活28 d；-20℃時至少存活180 d；23和12℃時E. coli O157：H7 和 Salmonella可以生長[24]。室溫培養(yǎng)6 h，在鮮切木瓜塊和檸檬表面處理的木瓜塊上，Salmonella Typhi數(shù)量分別增長1.4和0.8 log CFU/mL；Shigella sonnei、S. flexneri和S. dysenteriae約增長2.0 log CFU/mL[27-28]。木瓜汁中，4、20和37℃時E. coli O157：H7均可以生長；25℃培養(yǎng)72 h，數(shù)量達到8.5 log CFU/mL；37℃，培養(yǎng)16 h，該菌數(shù)量達到最大值9.0 log CFU/mL；4℃時該菌生長緩慢[29-30]；37℃，Salmonella快速生長到9.0 log CFU/mL；4℃，24 h，該菌數(shù)量約增長1.0 CFU/mL，然后數(shù)量減少[30]。木瓜肉中，10℃儲存7 d、20℃儲存2 d、30℃儲存1 d后，S. enteritidis數(shù)量分別增長1.8、6.0和7.0 log CFU/g；增代時間分別為16.61、1.74 和0.66 h；10℃時增殖速率降低，但不抑制其生長[31]。Campylobacter jejuni在木瓜中不生長，以穩(wěn)定數(shù)量存活并可能引起食源性疾病[28]。

2.3 椰子

消費形式主要有新鮮椰子（椰子水）、生吃椰肉或者作為添加成分。椰子外殼堅硬，食用時必須用刀剖開，所以在加工過程中受細菌感染的概率較大。研究發(fā)現(xiàn)，從印度新德里和帕蒂亞啦抽取150份椰子片，產腸毒素S.aureus檢出率為58%，Shigella dysenteraie（1-5型）和S. flexneri（type 2a）檢出率為15%[32]。含新鮮椰子甜品的S. aureus檢出率明顯高于不含新鮮椰子的甜品[33]。鮮切椰肉中，L. monocytogenes可在以下多種條件下生長：儲藏溫度2、4、8、12℃，儲藏環(huán)境（非氣調或氣調環(huán)境：65% N2，30% CO2和5% O2），接種劑量2.0 log CFU/g或5.7 log CFU/g[34]。新鮮椰子水中，L. monocytogenes 可以存活和生長：4℃或10℃時生長遲緩，可儲存數(shù)天；35℃時生長延滯期明顯縮短，菌數(shù)明顯增加[35]。

2.4 菠蘿

菠蘿消費形式包括鮮切、榨汁或作為食品添加成分。研究發(fā)現(xiàn)，致病菌只能在菠蘿或菠蘿汁中存活，不能生長。在菠蘿汁中，4、20～25℃儲存3 d，E. coli O157：H7不生長，該菌數(shù)量約降低0.1～0.5 log CFU/mL[29]；4℃，24 h，檢測不到Salmonella；37℃，前24 h，Salmonella數(shù)量約增長2.0 log CFU/mL，后數(shù)量下降[30]；10℃時Salmonella Heidelberg存活18 d，20℃存活12 d，37℃存活9 d[23]。冷凍菠蘿汁（-23℃）中各種致病菌可長時間存活：E. coli O157：H7和Salmonella可存活至少180 d；前6 h，Salmonella和E. coli O157：H7數(shù)量急速下降，然后Salmonella穩(wěn)定在較低數(shù)量[36]。冷凍菠蘿果肉中，6或-10℃時E. coli O157：H7可存活13 d[21]。

2.5 香蕉

香蕉常帶皮完整銷售，所以鮮切香蕉中致病菌的研究很少。Behrsing發(fā)現(xiàn)，18℃，接種到香蕉皮上的Listeria innocua， Salmonella和E. Coli可存活13 d[37]。-23℃，接種到香蕉果泥中的E. coli O157：H7、L. monocytogenes和 Salmonella可存活12周，低接種量的E. coli O157：H7仍可存活[36]。4℃，7 d內，接種到香蕉乳酪中的L. monocytogenes數(shù)量從4.0 log CFU/mL降低到3.5 logCFU/mL[38]。

2.6 番石榴

番石榴消費形式主要為鮮食、鮮切或榨汁。番石榴中曾分離出Staphylococcus aureus[7]。在番石榴果肉中，6℃或-10℃，E. coli O157：H7（接種量2 log CFU/mL）可存活13 d[21]。Tang等報道，Salmonella Typhi可在番石榴表面形成生物膜，接觸時間越長其附著量越大[39]。在番石榴汁中，10℃時Salmonella Heidelberg可存活18 d，20℃存活12 d，37℃存活9 d[23]。

2.7 火龍果

火龍果pH在4.7～5.1，含糖量高，是致病菌生長的良好基質。Pui（2010）[40]報道，鮮切火龍果中沙門氏菌檢出率較高：Salmonella spp.75%，S. Typhi 40% 和S. Typhimurium 25%。Sim等發(fā)現(xiàn)[41]，28℃，8 h后，在低接種劑量下（2.5 log CFU/g） Salmonella大量增殖，數(shù)量約增長2.4～3.0 log CFU/g；高接種劑量（5.5 log CFU/g）下，數(shù)量約增長0.4～0.7 log CFU/g；12℃儲存96 h后，在低接種劑量下，耐酸性和非耐酸性沙門氏菌數(shù)量均增長0.7～0.9 log CFU/g；4℃，Salmonella沒有明顯生長。環(huán)境耐受型沙門氏菌與非耐受菌株在鮮切火龍果上的存活和生長規(guī)律沒有明顯差異。

2.8 百香果

百香果常被作為果汁飲用。其外皮光滑并有蠟質層，不利于致病菌躲藏或附著。據報道，-20℃，S. enteritidis在冷凍百香果飲料中可存活90 d。常溫下，初始接種劑量4.0～5.0 log CFU/mL時，百香果飲料對E. coli，Salmonella和Shigella有致死作用[42]。耐酸性和非耐酸性E. coli O157：H7在冷凍百香果果肉中數(shù)量穩(wěn)定下降，12～21天后無法檢出該菌。Behrsing等[37]在百香果外皮上接種L. innocua，Salmonella和 E. coli（約5.0～6.0 log CFU/ml），10℃儲存6 d，可直接檢測到L. Innocua，通過富集培養(yǎng)其他兩種菌可以復活。

2.9 鱷梨

鱷梨常作為果醬或鮮果使用。鱷梨果醬中曾發(fā)生多起致病菌感染事件（表2），致病菌在鱷梨上存活規(guī)律的研究也較多。墨西哥街頭攤販和飯店銷售的鱷梨醬中各種致病菌檢出率為S.aureus 4.3%～10.3%，E. coli 54.3%～69%，Salmonella 0%～3.4%，L. monocytogenes 15.2%～17.2%[43]。S. aureus，E. coli，Salmonella和 L. monocytogenes均可在鱷梨皮和鱷梨汁中生長[29，30，43]。但是在中國，鱷梨的消費量較低。所以，相關研究不在此贅述，具體參考文獻[7]。

3 食源性致病菌“侵染”熱帶水果過程

致病菌廣泛存在于自然界，受污染的灌溉水、肥料、土壤、動物糞便、種子和昆蟲等都是潛在污染源[44]。研究已證實，致病菌不僅附著在水果表面，還可通過多種方式進入水果組織內部并增殖[1，6]。關于致病菌侵染熱帶水果過程的研究非常少。據報道，Salmonella可以通過清洗水進入芒果或芒果果肉中，并在其中存活[20，45]。endprint

有研究表明，食源性致病菌侵入植物和動物細胞的機制可能相似[1，6]。致病菌“感染”植物細胞的過程分為以下幾部分（圖1）[46]。

3.1 致病菌附著在植物細胞表面

菌毛（fimbriae）是致病菌的主要附著結構。在苜蓿芽和芹菜附著過程中，證實了致病菌菌毛的重要作用[47]。Curli菌毛和基質主要成分纖維素參與沙門氏菌生物膜形成，并有利于其在苜蓿芽、芹菜、西紅柿小葉上附著和存活[5，46，48-49]。菌株生物膜形成能力越強，其附著能力越強[49]。細菌粘附素MisL和鞭毛結構參與沙門氏菌附著生菜葉的過程[46，49-50]。細菌T3分泌系統(tǒng)和細胞間的群體效應（quorum sensing）在致病菌附著植物的過程中也發(fā)揮重要作用[46]。另外，Salmonella和E. coli O157：H7中參與附著的部分關鍵基因已確定[6，51]。

3.2 致病菌進入植物內部

致病菌常通過植物表面的天然“開放體”（如氣孔和側根等）、物理損傷部位或者通過滲透作用從灌溉水、種子浸泡水和清洗水進入植物內部[1，6]。研究發(fā)現(xiàn)，沙門氏菌可進入各種植物組織內部甚至可進入果實種子內部，并可在活體植株體中移動[47]。室內實驗觀察到S.Typhimurium存在于擬南芥根被皮細胞內部，低劑量沙門氏菌可以進入煙草原生質體[52-53]。但是，食源性致病菌是否可以進入植物細胞內部仍存在爭議[46]。

致病菌主要通過T3分泌系統(tǒng)將效應蛋白注入動物細胞中，調控宿主細胞生理狀態(tài)和免疫系統(tǒng)，以進入細胞內部。缺失T3分泌系統(tǒng)將降低致病菌在擬南芥中的繁殖能力[54]。但是，Iniguez等發(fā)現(xiàn)[55]，缺失T3分泌系統(tǒng)有利于沙門氏菌進入苜蓿芽和小麥種子。所以，T3分泌系統(tǒng)可能參與致病菌進入植物細胞過程，但是具有植物特異性。Schikora 等發(fā)現(xiàn)[53]，含O抗原的沙門氏菌感染擬南芥后，植物產生快速抵抗反應，并激活控制防御基因表達的蛋白酶，植物外觀產生明顯的萎蔫和枯黃癥狀。不含O抗原菌株感染后，植物未表現(xiàn)出明顯癥狀。另外，沙門氏菌還可引起苜蓿屬植物Medicago spp.免疫反應，去除細菌信號分子后植物內沙門氏菌數(shù)量增多[54]。所以，擬南芥和苜蓿屬植物中可能存在識別沙門氏菌細菌因子（如O抗原）的專一性受體，并可激發(fā)植物免疫反應[55-56]。因此，食源性致病菌可能通過T3分泌系統(tǒng)進入植物細胞，但具體機制仍不清楚。

3.3 致病菌在植物內部增殖

在植物內部，致病菌必須消化植物內的營養(yǎng)物質供自身生長和繁殖。在沙門氏菌中發(fā)現(xiàn)了多糖降解酶的編碼基因[55]。所以，在植物非原生質體空間，細菌可能直接降解植物細胞壁中的多糖合成自身物質。致病菌可能借助于其他植物病原菌或真菌的降解作用，間接利其降解產物[55]。研究發(fā)現(xiàn)，在Pseudomonas syringae和Xanthomonas campestris降解作用下，纖維糖和蔗糖含量提高，從而促進沙門氏菌和致病性大腸桿菌在植物內的存活或生長[46]。另外，某些植物病原菌分泌效應蛋白進入植物細胞，活化編碼糖轉運蛋白基因，使植物細胞分泌小分子糖進入質外體，供植物病原菌利用。沙門氏菌和大腸桿菌也可能利用這種方式，但機制仍不清楚[55]。

4 展望

目前，熱帶水果上食源性致病菌的研究還不深入。未來的研究重點應著眼于以下幾方面：（1） 開發(fā)快速而有效的檢測方法，建立有效致病菌溯源系統(tǒng)。果蔬中的致病菌含量通常較低，并可能誘導進入活的非可培養(yǎng)狀態(tài)（viable but non-culture， VBNC）[51]。當應對食源性致病菌污染突發(fā)事件時，高靈敏度、快速的檢測方法和及時溯源技術十分重要。（2）建立致病菌風險評估系統(tǒng)。按照危害因子識別、危害特征描述和風險管理等要求，確定高污染風險的熱帶水果種類和高發(fā)病率致病菌和可能引起致病菌污染的環(huán)節(jié)。采后處理是熱帶水果感染致病菌的主要環(huán)節(jié)。了解水果采后污染幾率以及在采后處理、運輸、儲藏和銷售時的交叉污染率，對于風險防控十分關鍵。（3）致病菌在熱帶水果上的行為。目前致病菌在熱帶水果上存活和生長規(guī)律的研究還較少。致病菌附著方式和內化機制，以及影響致病菌與植物間相互作用的環(huán)境因素還不清楚。開展這方面研究將有助于找出降低水果致病菌附著的有效方法，以及選育抗致病菌污染的植物品系。（4）不斷開發(fā)有效致病菌防控措施。研究表明，傳統(tǒng)的消毒方式，如氯表面清洗，無法達到減少食源性致病菌的目的。水果表面的土著微生物對消毒處理更加敏感，消毒處理后有利于致病菌在低競爭環(huán)境下存活和生長。所以，不斷開發(fā)有效的水果表面消毒手段是防控致病菌污染的關鍵。

參考文獻

[1] Schikora A， Garcia A V， Hirt H. Plants as alternative hosts for Salmonella[J]. Trends in Plant Science， 2012， 17（5）： 245-249

[2] Abadias M， Usall J， Anguera M. et al. Microbiological quality of fresh， minimally-processed fruit and vegetables， and sprouts from retail establishments[J]. International Journal of Food Microbiology， 2008， 31（123）： 121-129.

[3] Bülent E. Survival characteristics of Salmonella Typhimurium and Escherichia coli O157：H7 in minimally processed lettuce during storage at different temperatures[J]. Journal fur Verbraucherschutz Lebensmittelsicherheit， 2011， 6（3）： 339-342.endprint

[4] 劉程惠，胡文忠，何熠波，等. 鮮切果蔬病原微生物侵染及其生物控制的研究進展[J]. 食品工業(yè)科技，2012，33（18）：362-366.

[5] Barak J D， Kramer L C， Hao L Y. Colonization of tomato plants by Salmonella enterica is cultivar dependent， and type 1 trichomes are preferred colonization sites[J]. Applied and Environmental Microbiology， 2011， 77（2）： 498-504.

[6] Brandl M T， Cox C E， Teplitski M. Salmonella interactions with plants and their associated microbiota[J]. Phytopathology， 2013， 103（4）： 316-325.

[7] Strawn L K ， Schneider K R， Danyluk MD. Microbial safety of tropical fruits[J]. Critical Reviews in Food Science and Nutrition， 2011， 51（2）：132-145.

[8] Bassett J， McClure P. A risk assessment approach for fresh fruits[J]. Journal of Applied Microbiology， 2008， 104（4）： 925-943.

[9] Beuchat L R. Ecological factors influencing survival and growth of human pathogens on raw fruits and vegetables[J]. Microbes and Infection， 2002， 4（4）： 413-423.

[10] Dingman D W. Growth of Escherichia coli O157：H7 in bruised apple （Malus domestica） tissue as influenced by cultivar， date of harvest， and source[J]. Applied and Environmental Microbiology， 2000， 66（3）： 1 077-1 083.

[11] Mohamed S， Hassan Z， Abd Hamid N. Antimicrobial activity of some tropical fruit wastes （guava， starfruit， banana， papaya， passionfruit， langsat， duku， rambutan and rambai）[J]. Pertanika Journal of Tropical Agricultural Science， 1994， 17（3）： 219-227.

[12] Mandal S M， Dey S， Mandal M， et al. Identification and structural insights of three novel antimicrobial peptides isolated from green coconut water[J]. Peptides， 2009， 30（4）： 633-637.

[13] Engels C， Schieber A， Gānzle MG. Inhibitory spectrum and mode of antimicrobial action of gallotannins from mango kernels （Mangifera indica L.）[J]. Applied and Environmental Microbiology， 2011， 77（7）： 2 215-2 223.

[14] Moneruzzaman K M， Md J S， Mat N， et al. Bioactive constituents， antioxidant and antimicrobial activities of three cultivars of wax apple （Syzygium samarangense L.） fruits[J]. Research Journal of Biotechnology， 2015， 10（1）： 7-16.

[15] Sivapalasingam S， Friedman C R， Cohen L， et al. Fresh produce： a growing cause of outbreaks of foodborne illness in the United States， 1973 through 1997[J]. Journal of Food Protection， 2004， 67（10）： 2 342-2 353.

[16] Ooi P L. A shipyard outbreak of Salmonellosis traced to contaminated fruits and vegetables[J]. Annals of the Academy of Medicine Singapore， 1997， 26（5）： 539-543.endprint

[17] Schaffner C P， Mosbach K， Bibit V C， et al. Coconut and Salmonella infections[J]. Appl Microbiol， 1967， 15（3）： 471-475.

[18] Kovacs N. Salmonellae in desiccated coconut， egg pulp， fertilizer， meat-meal， and mesenteric glands： Preliminary reports[J]. The Medical Journal of Australia， 1959， 46（17）： 557-559.

[19] Hoge C W， Bodhidatta L， Tungtaem C， et al. Emergence of nalidixic acid resistant Shigella dysenteriae type 1 in Thailand： An outbreak associated with consumption of coconut milk dessert[J]. International Journal of Epidemioloy， 1995， 24（6）： 1 228-1 232.

[20] Penteado A L. Evidence of Salmonella internalization into fresh mangos during simulated postharvest insect disinfestations procedures[J]. Journal of Food Protection， 2004， 67（1）： 181-184.

[21] Leite C C， Guimaraes A G， da Silva M D， et al. Evaluation of the behavior of Escherichia coli O157：H7 in fruit pulp[J]. Higiene Alimentar， 2002， 16： 67-73.

[22] Hsin-Yi C， Chou C. Acid adaptation and temperature effect on the survival of E. coli O157：H7 in acidic fruit juice and lactic fermented milk product[J]. International Journal of Food Microbiology， 2001， 70（1-2）：189-195.

[23] EI-Safey M E. Behavior of Salmonella heideberg in fruit juices[J]. International Journal of Nutrition and Food Sciences， 2013， 2（2）： 38-44.

[24] Strawn L K， Danyluk M D. Fate of Escherichia coli O157：H7 and Salmonella spp. on fresh and frozen cut mangoes and papayas[J]. International Journal of Food Microbiology， 2010， 138 （1-2）： 78-84

[25] Penteado A L， Castro M F P M D， Rezende A C B. Salmonella enterica serovar Enteritidis and Listeria monocytogenes in mango （Mangifera indica Linn） pulp： growth， survival and cross contamination[J]. Journal of the Science of Food and Agriculture， 2014， 94（13）： 2 746-2 751.

[26] Guha A K， Mitra A， Mukhopadhyay R， et al. An evaluation of street-vended sliced papaya （Carica papaya） for bacteria and indicator micro-organisms of public health significance[J]. Food Microbiology， 2002， 19（6）： 663-667.

[27] Escartin E F， Ayala A C， Lozano J S. Survival and growth of Salmonella and Shigella on sliced fresh fruit[J]. Journal of Food Protection， 1989， 52：471-472.

[28] Castillo A， Escartin E F. Survival of Campylobacter jejuni on sliced watermelon and papaya[J]. Journal of Food Protection， 1994， 57（2）：166-168.

[29] Mutaku I， Erku W， Ashenafi M. Growth and survival of Escherichia coli O157：H7 in fresh tropical fruit juices at ambient and cold temperatures[J]. International Journal of Food Sciences and Nutrition， 2005， 56（2）：133-139.endprint

[30] Yigeremu B， Bogale M， Ashenafi M. Fate of Salmonella species and E. coli in fresh-prepared orange， avocado， papaya， and pine apple juices[J]. Ethiopian Journal of Health Science， 2001， 11（2）： 89-95.

[31] Penteado A L， Leitao M F F. Growth of Salmonella enteritidis in melon， watermelon and papaya pulp stored at different times and temperatures[J]. Food Control， 2004， 15（5）： 369-373.

[32] Ghosh M， Wahi S， Kumar M et al. Prevalence of enterotoxigenic Staphylococcus aureus and Shigella spp. in some raw street vended Indian foods[J]. International Journal of Environmental Health Research， 2007， 17（2）：151-156.

[33] Suklampoo L， Satta P， Senaard S. Study on contamination of Staphylococcus aureus in Thai dessert[C]. Proceedings of 41st Kasetsart University Annual Conference， 2003. Agro-Ind.： 85-91.

[34] Sinigaglia M， Bevilacqua A， Campaniello D， et al. Growth of Listeria monocytogenes in fresh-cut coconut as affected by storage conditions and inoculum size[J]. Journal of Food Protection， 2006， 69（4）：820-825.

[35] Walter E H M， Kabuki D Y， Esper L M R， et al. Modelling the growth of Listeria monocytogenes in fresh green coconut （Cocos nucifera L.） water[J]. Food Microbiology， 2009， 26（6）： 653-657.

[36] Oyarzabal O A， Nogueira M C L， Gombas D E. Survival of Escherichia coli O157：H7， Listeria monocytogenes， and Salmonella in juice concentrates[J]. Journal of Food Protection， 2003， 66（9）： 1 595-1 598.

[37] Behrsing J， Jaeger J， Horlock F， et al. Survival of Listeria innocua， Salmonella Salford and Escherchia coli on the surface of fruit with inedible skins[J]. Postharvest Biology ans Technology， 2003， 29（3）： 249-256.

[38] Sabreen M S， Korashy E. Incidence and survival of Listeria monocytogenes in yoghurt in Assiut City[J]. Assiut Veterinary Medical Journal， 2001， 45：122-133

[39] Tang P L， Pui C F，Wong W C， et al， Biofilm forming ability and time course study of growth of Salmonella Typii on fresh produce surfaces[J]. Internatinal Food Reseaech Journal， 2012，19（1）：71-76.

[40] Pui C F， Wong W C， Chai L C， et al. Simultaneous detection of Salmonella spp.， Salmonella Typhi and Salmonella Typhimurium in sliced fruits using multiplex PCR[J]. Food Control， 2010， 22（2）： 337-342.

[41] Sim H L， Hong Y K， Yoon W B， et al. Behavior of Salmonella spp. and natural microbiota on fresh-cut dragon fruits at different storage temperatures[J]. International Journal of food microbiology， 2013， 160（3）： 239-244.endprint

[42] Aea R T F， Bushnell O A. Survival times of selected enteropathogenic bacteria in frozen passionfruit nectar base[J]. Applied and Environmental Microbiology， 1962， 10（3）： 277-279.

[43] Arvizu-Medrano S M， Iturriaga M H， Escartin E F. Indicator and pathogenic bacteria in guacamole and their behavior in avocado pulp[J]. Journal of Food Safety， 2001， 21（4）：233-244.

[44] Critzer F J， Doyle M P. Microbial ecology of foodborne pathogens associated with produce[J]. Current Opinion in Biotechnology， 2010， 21（2）： 125-130.

[45] Soto M， Chavez G， Baez M， et al. Internalization of Salmonella typhimurium into mango pulp and prevention of fruit pulp contamination by chlorine and copper ions[J]. International Journal of Environmental Health Research， 2007， 17（6）： 453-459.

[46] Wiedemann A， Virlogeux-Payant I， Chaussé A M， et al. Interactions of Salmonella with animals and plants[J]. Frontiers in Microbiology， 2015， 5： 791.

[47] Gu G， Hu J， Cevallos-Cevallos J M， et al. Internal colonization of Samonella enterica serovar Typhimurium in tomato plants[J]. Plos One， 2011， 6（11）： e27340.

[48] Lapidotand A， Yarson S. Transfer of Samonella enterica servor typhimurium from contaminated irrigation water to parsley is dependent on curli and cellulose， the biofilm matrix components[J]. Journal of Food Protection， 2009， 72（3）： 618-623.

[49] Kroupitski Y， Brandl M T， Pinto R， et al. Identification of Salmonella enterica genes with a role in persistence on lettuce leaves during cold storage by recombinase-based in vitro expression technology[J]. Phytopathology， 2013， 103（4）， 362-372.

[50] Kroupitski Y， Golberg D， Belausov E， et al. Internalization of Salmonella enterica in leaves is induced by light and involves chemotaxis and penetration through open stomata[J]. Applied and Environmental Microbiology， 2009， 75（19）： 6 076-6 086.

[51] Yaron S， Romling U. Biofilm formation by enteric pathogens and its role in plant colonization and persistence[J]. Microbial Biotechnology， 2014， 7（6）： 496-516.

[52] Samelis J， Ikeda J S， Sofos J N， Evaluation of the pH-dependent， stationary-phase acid tolerance in Listeria monocytogenes and Salmonella Typuimurium DT104 induced by culturing in media with 1% glucose： a comparative study with Escherichia coli O157：H7[J]. Journal of Applied Microbiology， 2003， 95（3）： 563-575.

[53] Schikora A， Carreri A， Charpentier E， et al. The dark side of the salad： Samonella typhimurium overcomes the innate immmune response of Arabidopsis thaliana and shows an endopathogenic lifestyle[J]. Plos One， 2008， 3（5）： e2279.

[54] Schikora A， Virlogeux-Payant I， Bueso E， et al. Conservation of Salmonella infection mechanisms in plants and animals[J]. PLoS One， 2011， 6（9）： e24112

[55] Iniguez A L， Dong Y， Carter H D， et al. Regulation of enteric endophytic bacterial colonization by plant defenses[J]. Molecular Plant-microbe Interactions， 2005， 18（2）：169-178.

[56] Deering A J， Mauer L J， Pruitt R E. Internalization of E. coli O157： H7 and Salmonella spp. in plants： a review[J]. Food Research International， 2012， 45（2）： 567-575.endprint