蔣鵬,洪璇,2,趙春貴,楊素萍
(1.華僑大學(xué) 化工學(xué)院,福建 廈門361021;2.廈門醫(yī)學(xué)高等專科學(xué)校 藥學(xué)系,福建 廈門361008)
集約化水產(chǎn)養(yǎng)殖的迅速發(fā)展,水體殘餌、藥物、代謝和排泄物以及其他有機(jī)物的滯留和沉積,造成了NH3-N,NO-2-N,H2S和藥物殘留等有害污染物的形成,嚴(yán)重制約了水產(chǎn)養(yǎng)殖業(yè)的健康發(fā)展[1-2].如何盡快去除水體中NH3-N和NO-2-N等有毒有害物質(zhì)一直備受關(guān)注[3].不產(chǎn)氧光合細(xì)菌(anoxygenic phototrophic bacteria,APB)在水產(chǎn)養(yǎng)殖和水體氮素污染控制等方面已有廣泛的研究和應(yīng)用[4].菌種(株)不同,對(duì)無機(jī)三態(tài)氮的代謝能力以及對(duì)環(huán)境的適應(yīng)能力也不同,如RhodobactersphaeroidesP4[5]和Rhodopseudomonassp.wps[6]能在氨氮存在時(shí)去除水體中的硝氮和亞硝氮,RhodopseudomonaspalustrisPS1[7]則不能去除亞硝氮.某些菌株如RhodobactercapsulatusE1F1[8]能以硝酸鹽為唯一氮源生長(zhǎng),但能以亞硝酸鹽為唯一氮源生長(zhǎng)并高效去除亞硝氮的APB菌株鮮有報(bào)道,僅本課題組報(bào)道了一株海洋著色菌MarichromatiumgracileYL28[9-10].關(guān)于光、氧、pH值和溫度等環(huán)境因素以及不同碳源對(duì)APB菌株,如Rhodobactersphaeroide2-8[11]和Rhodopseudomonassp.wps[12]去除無機(jī)三態(tài)氮的影響已有較多報(bào)道,表明環(huán)境因素和營(yíng)養(yǎng)基質(zhì)對(duì)微生態(tài)制劑的功效有明顯影響,但還未見APB靜息細(xì)胞對(duì)無機(jī)三態(tài)氮的去除和轉(zhuǎn)化能力的系統(tǒng)報(bào)道.靜息細(xì)胞代謝主要是指限制性非生長(zhǎng)條件下細(xì)胞內(nèi)酶的代謝,靜息細(xì)胞法已在生物和醫(yī)學(xué)方面有廣泛應(yīng)用[13].在水體環(huán)境中,APB制劑的菌體可能處于水體底部黑暗厭氧環(huán)境中,即使溫度和pH值適宜,菌體也生長(zhǎng)緩慢,似靜息細(xì)胞,在此環(huán)境中APB是否具有無機(jī)三態(tài)氮轉(zhuǎn)化能力,目前還不清楚.YL28菌株能以亞硝氮為唯一氮源生長(zhǎng),具有良好去除無機(jī)三態(tài)氮和環(huán)境適應(yīng)能力[9-10].因此,本文研究了YL28菌株靜息細(xì)胞厭氧去除和轉(zhuǎn)化無機(jī)三態(tài)氮的能力.
海洋著色菌MarichromatiumgracileYL28菌株,16SrRNA基因GenBank登錄號(hào)為JF719917,由本實(shí)驗(yàn)室分離鑒定并保存.氯化銨、亞硝酸鈉和硝酸鉀為國(guó)產(chǎn)優(yōu)級(jí)純?cè)噭?;氯化汞、氫氧化鉀、酒石酸鉀鈉、鹽酸萘乙二胺、磷酸氫二鉀等為國(guó)產(chǎn)分析純?cè)噭?
UV-3200PCS型紫外可見分光光度計(jì)(上海美普達(dá)MAPADA公司);TGL-20M型臺(tái)式高速冷凍離心機(jī)(上海盧湘儀公司).
1.2.1 菌體的培養(yǎng)與靜息細(xì)胞的制備 采用改良的Pfennig紫色硫細(xì)菌無機(jī)選擇性培養(yǎng)基[14],添加24.3mmol·L-1無水乙酸鈉,0.75mmol·L-1Na2S2O3取代1.5mmol·L-1Na2S·9H2O,調(diào)節(jié)pH值為7.0.接種量為5%(體積濃度),接種后用無菌培養(yǎng)基充滿培養(yǎng)瓶,于28℃,3 000lx光照厭氧培養(yǎng)5d.無菌操作,高速離心,收集菌體,用pH值為7.0,質(zhì)量濃度為3%的NaCl溶液洗滌菌體3次,并制備成光密度D(660)約為1.3的菌種懸液,在28℃靜置孵育48h即為靜息細(xì)胞懸液,使用時(shí)準(zhǔn)確測(cè)量.
1.2.2 實(shí)驗(yàn)體系的設(shè)置 精確稱量,配制無機(jī)氮(氯化銨、亞硝酸鈉和硝酸鉀)儲(chǔ)備液,調(diào)整pH值為7.0,用二次水定容,過濾除菌,其氮素質(zhì)量濃度均為30.00g·L-1.
在靜息細(xì)胞懸液中添加無機(jī)氮儲(chǔ)備液,配制成含有不同無機(jī)氮(氯化銨、亞硝酸鈉、硝酸鉀和無機(jī)三態(tài)氮共存)的菌懸液體系,用質(zhì)量濃度為3%的NaCl溶液補(bǔ)滿培養(yǎng)瓶,旋緊瓶蓋,將培養(yǎng)瓶置于28℃培養(yǎng)箱中厭氧培養(yǎng).菌懸液體積為310mL,溶液起始pH值為7.0,每個(gè)處理設(shè)置3個(gè)重復(fù),定時(shí)取樣1 mL,用于無機(jī)三態(tài)氮質(zhì)量濃度和生物量的測(cè)定.
1.2.3 生物量和無機(jī)三態(tài)氮的測(cè)定 采用比濁法測(cè)定生物量,以D(660)表示菌體的生物量,用光程為1cm的石英比色杯,于紫外可見分光光度計(jì)上測(cè)定波長(zhǎng)為660nm處光密度D(660).
采用鈉氏試劑光度法測(cè)定NH3-N的質(zhì)量;采用N-(1-萘基)-乙二胺光度法測(cè)定NO-2-N的質(zhì)量;采用紫外分光光度法[15]NO-3-N測(cè)定.無機(jī)氮去除率(R)計(jì)算式為
上式中:c0和ct分別表示無機(jī)三態(tài)氮的初始濃度和測(cè)定時(shí)刻的濃度.
無機(jī)三態(tài)氮的質(zhì)量均以氮素的質(zhì)量濃度計(jì)算,重復(fù)測(cè)定3次.
YL28菌株靜息細(xì)胞對(duì)氨氮去除及其轉(zhuǎn)化過程,如圖1所示.圖1中,NH3-N的起始濃度為3.12 mmol·L-1(空心圖示□和○),6.18mmol·L-1(實(shí)心圖示■和▲).由圖1可知:隨處理時(shí)間的延長(zhǎng),體系中菌體生物量降低,氨氮去除率升高;1~2d內(nèi)檢測(cè)到了少量亞硝氮和硝氮的生成,隨后又被完全去除.低氨氮濃度(3.12mmol·L-1)體系處理5.1d,菌體生物量降低了約17.90%,氨氮去除量和去除率分別為0.28mmol·L-1和9.86%;高濃度氨氮(6.18mmol·L-1)時(shí),體系中菌體生物量未明顯降低,氨氮去除量未見明顯變化,但氨氮去除率明顯降低.
圖1 YL28菌株靜息細(xì)胞對(duì)氨氮的去除和硝氮、亞硝氮的生成過程Fig.1 Removal of ammonium and the production of nitrate and nitrite by YL28resting cells
結(jié)果表明:YL28菌株靜息細(xì)胞對(duì)氨氮去除能力很弱,能將氨氮轉(zhuǎn)化為少量的亞硝氮和硝氮,在體系中的菌體有一定程度的自溶,使生物量降低.已有研究表明,YL28菌株在生長(zhǎng)過程中均具有良好的去除氨氮的能力[10],而本實(shí)驗(yàn)中靜息細(xì)胞去除氨氮的能力很低.由此可知,YL28菌株主要通過銨同化作用去除氨氮,由于靜息細(xì)胞體系中缺乏營(yíng)養(yǎng)物質(zhì),菌體不能通過銨同化作用生長(zhǎng),表現(xiàn)出對(duì)氨氮的去除能力較微弱.
YL28菌株靜息細(xì)胞對(duì)亞硝氮的去除及轉(zhuǎn)化過程,如圖2所示.圖2中,NO-2-N的起始濃度為5.12 mmol·L-1(□和○),10.08mmol·L-1(■和▲).由圖2可知:隨著處理時(shí)間的延長(zhǎng),亞硝氮去除率逐漸升高,然后被完全去除(圖2(a));在1~3d內(nèi)能檢測(cè)到硝氮的生成,隨后又消失,在整個(gè)過程中未檢測(cè)到氨氮的生成(圖2(b)).與低濃度亞硝氮體系相比,高濃度亞硝氮體系中亞硝氮的去除速率降低,生成的硝氮摩爾濃度較高.結(jié)果表明:菌株的靜息細(xì)胞對(duì)亞硝氮有良好的去除作用,能將亞硝氮轉(zhuǎn)化為硝氮;與氨氮體系相比,由于亞硝氮具有毒性,能加快菌體自溶,致使體系中生物量明顯降低.
Shapleigh[16]報(bào)道了許多APB菌株具有反硝化作用,并闡明了反硝化作用的相關(guān)酶系;Schott等[17]報(bào)道了Thiocapsasp.KS1和Rhodopseudomonassp.LQ17能夠在厭氧條件下通過亞硝酸鹽氧化還原酶將亞硝氮轉(zhuǎn)化為硝氮.由此可知,YL28菌株具有亞硝酸鹽氧化還原酶和反硝化作用的相關(guān)酶系.因而,其靜息細(xì)胞能利用這些酶系將亞硝氮轉(zhuǎn)化為硝氮,也能夠通過反硝化作用去除體系中亞硝氮和硝氮.
圖2 YL28菌株靜息細(xì)胞對(duì)亞硝氮的去除和氨氮、硝氮的生成過程Fig.2 Removal of nitrite and the production of ammonium and nitrate by YL28resting cells
圖3 YL28菌株靜息細(xì)胞對(duì)硝氮的去除和氨氮、亞硝氮的生成過程Fig.3 Removal of nitrate and the production of ammonium and nitrite by YL28resting cells
YL28菌株靜息細(xì)胞對(duì)硝氮的去除及其轉(zhuǎn)化過程,如圖3所示.圖3中,NO-3-N的起始濃度為4.25 mmol·L-1(□和○),8.18mmol·L-1(■和●).由圖3可知:隨著處理時(shí)間的延長(zhǎng),硝氮去除率升高,生物量逐漸降低(圖3(a));在1~2d內(nèi)水體中產(chǎn)生的亞硝氮達(dá)到最大(圖3(b)),隨后又被完全去除,整個(gè)過程中未檢測(cè)到氨氮的存在.與低濃度相比,高濃度硝氮體系中硝氮的最大去除率降低,暫時(shí)性生成的亞硝氮升高,菌體生物量有所降低.結(jié)果表明:YL28菌株靜息細(xì)胞具有良好去除硝氮的能力,能通過反硝化作用將硝氮轉(zhuǎn)化為亞硝氮.
無機(jī)三態(tài)氮共存體系中,YL28菌株的靜息細(xì)胞對(duì)無機(jī)氮的去除和轉(zhuǎn)化特性,如圖4所示.圖4中,NH3-N,NO-2-N,NO-3-N的初始濃度分別為3.12,5.12,4.25mmol·L-1.從圖4可知:菌株的靜息細(xì)胞在處理過程中,隨著處理時(shí)間的延長(zhǎng),在處理1d時(shí),水體中亞硝氮的摩爾濃度先升高;隨后迅速降低,水體中氨氮和硝氮的去除率緩慢升高至趨于穩(wěn)定,最終水體中亞硝氮完全去除,硝氮的去除率為94.25%,氨氮的去除率為10.89%.
結(jié)果表明:YL28菌株的靜息細(xì)胞對(duì)亞硝氮和硝氮具有良好的去除作用,而對(duì)氨氮的去除能力較為微弱.水體中亞硝氮摩爾濃度暫時(shí)性升高,主要是由于反硝化的作用將硝氮轉(zhuǎn)化為亞硝氮.
圖4 YL28菌株靜息細(xì)胞對(duì)無機(jī)氮的去除過程Fig.4 Removal of inorganic nitrogen by YL28resting cells
研究YL28菌株靜息細(xì)胞對(duì)無機(jī)三態(tài)氮的去除和轉(zhuǎn)化特性,與菌株在生長(zhǎng)過程中對(duì)無機(jī)三態(tài)氮的去除結(jié)果[10]相比,菌株對(duì)亞硝氮和硝氮的去除速率明顯下降,菌株對(duì)氨氮的去除量也遠(yuǎn)遠(yuǎn)偏低.通過分析認(rèn)為,在YL28菌株的靜息細(xì)胞中,硝化作用并非是轉(zhuǎn)化無機(jī)三態(tài)氮的主導(dǎo)途徑,該菌株僅在厭氧光照條件下,以氨氮作為唯一氮源的生長(zhǎng)過程中,才能表現(xiàn)出較強(qiáng)的硝化作用.YL28菌株靜息細(xì)胞對(duì)亞硝氮和硝氮的良好去除和轉(zhuǎn)化作用,體現(xiàn)了該菌株本身具有良好的反硝化和亞硝酸鹽厭氧氧化作用.但是,由于微生物靜息細(xì)胞對(duì)無機(jī)三態(tài)氮的去除轉(zhuǎn)化研究較為少見,尚不能比較菌株的靜息細(xì)胞對(duì)無機(jī)三態(tài)氮的轉(zhuǎn)化途徑是否相一致.雖然菌株的靜息細(xì)胞對(duì)氨氮去除和轉(zhuǎn)化作用較微弱,但是研究過程中,還是發(fā)現(xiàn)氨氮能被轉(zhuǎn)化為少量的硝氮和亞硝氮,這為YL28菌株中存在的氮轉(zhuǎn)化途徑也提供了一定實(shí)驗(yàn)依據(jù).
YL28菌株的靜息細(xì)胞對(duì)亞硝氮和硝氮具有良好的去除能力,對(duì)氨氮的去除能力很微弱,能通過反硝化作用將硝氮轉(zhuǎn)化為亞硝氮而去除,也能將亞硝酸鹽厭氧氧化為硝氮,幾乎不能通過銨同化作用去除氨氮.實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明:在適宜的溫度和pH值條件下,該菌株在黑暗厭氧等生存環(huán)境中,雖然生長(zhǎng)緩慢,但仍具有良好去除環(huán)境中亞硝氮和硝氮的能力.本研究為針對(duì)性地開發(fā)適應(yīng)特定環(huán)境的APB制劑及其應(yīng)用提供參考.
[1]COREY P,KIM J K,DUSTON J,et al.Bioremediation potential ofPalmariapalmataandChondruscrispus(Basin Head):Effect of nitrate and ammonium ratio as nitrogen source on nutrient removal[J].Journal of Applied Phycology,2013,25(5):1349-1358.
[2]HERBECK L S,UNGER D,WU Y,et al.Effluent,nutrient and organic matter export from shrimp and fish ponds causing eutrophication in coastal and back-reef waters of NE Hainan,tropical China[J].Continental Shelf Research,2013,57(S1):92-104.
[3]NEWAJ-FYZUL A,AL-HARBU A,AUSTIN B.Review:Developments in the use of probiotics for disease control in aquaculture[J].Aquaculture,2014,431:1-11.
[4]QI Zi-zhong,ZHANG Xiao-h(huán)ua,BOON N,et al.Probiotics in aquaculture of China-Current state,problems and prospect[J].Aquaculture,2009,290(1/2):15-21.
[5]俞吉安,張承康,陳峰.光合細(xì)菌P4株的反硝化作用[J].上海交通大學(xué)學(xué)報(bào),2000,34(11):1579-1582.
[6]陳慧,張德民,王龍剛,等.一株反硝化光合細(xì)菌的生物學(xué)特性及系統(tǒng)發(fā)育分析[J].微生物學(xué)報(bào),2011,51(2):249-255.
[7]楊鶯鶯,曹煜成,李卓佳,等.PS1沼澤紅假單胞菌對(duì)集約化對(duì)蝦養(yǎng)殖廢水的凈化作用[J].中國(guó)微生態(tài)學(xué)雜志,2009,21(1):4-6.
[8]PINO C,OLMO-MIRA F,CABELLO P,et al.The assimilatory nitrate reduction system of the phototrophic bacteriumRhodobactercapsulatusE1F1[J].Biochemical Society Transactions,2006,34(1):127-129.
[9]趙江艷,傅英楠,趙春貴,等.一株高含玫紅品的紅樹林海洋紫色硫細(xì)菌分離鑒定及特性[J].微生物學(xué)報(bào),2011,51(10):1318-1325.
[10]蔣鵬,趙春貴,賈雅瓊,等.一株以亞硝氮為唯一氮源生長(zhǎng)的海洋紫色硫細(xì)菌對(duì)無機(jī)三態(tài)氮的去除特性[J].微生物學(xué)通報(bào),2014,41(5):824-831.
[11]陳燕紅,楊紫紅,喻國(guó)輝,等.光照,氧氣,pH和鹽度對(duì)沼澤紅假單胞菌2-8菌株生長(zhǎng)和亞硝酸鹽消除的影響[J].南方水產(chǎn)科學(xué),2010,6(4):1-5.
[12]鄭卉,張德民,王一農(nóng),等.紅假單胞菌去除養(yǎng)魚廢水三態(tài)氮及COD的研究[J].生態(tài)科學(xué),2012,31(4):435-440.
[13]楊大嬌,任天寶,王風(fēng)芹,等.靜息細(xì)胞在發(fā)酵工業(yè)中的研究進(jìn)展[J].食品與發(fā)酵工業(yè),2013,39(8):187-191.
[14]TRüPER H,PFENNIG N.The family Chlorobiaceae[M].New York:Springer,1992:3583-3592.
[15]EATON A D,CLESCERI L S,RICE E W,et al.Standard methods for the examination of water and wastewater[M].Washington D C:American Public Health Association,American Water Works Association,Water Pollution Control Federation,1998:547-565.
[16]SHAPLEIGH J P.Dissimilatory and assimilatory nitrate reduction in the purple photosynthetic bacteria[M].Netherlands:Springer,2008:623-642.
[17]SCHOTT J,GRIFFIN B M,SCHINK B.Anaerobic phototrophic nitrite oxidation byThiocapsasp.strain KS1andRhodopseudomonassp.strain LQ17[J].Microbiology,2010,156(8):2428-2437.