劉小賢 汪衛(wèi) 王圳 鄭紅霞 馬紀(jì)林 于健寧 張?chǎng)?/p>
●論 著
轉(zhuǎn)化生長因子-β1對(duì)大鼠腹膜間皮細(xì)胞炎癥因子及細(xì)胞外基質(zhì)表達(dá)的影響
劉小賢 汪衛(wèi) 王圳 鄭紅霞 馬紀(jì)林 于健寧 張?chǎng)?/p>
目的 研究轉(zhuǎn)化生長因子-β1(TGF-β1)對(duì)大鼠腹膜間皮細(xì)胞炎癥因子表達(dá)和細(xì)胞外基質(zhì)(ECM)積聚的影響。方法體外培養(yǎng)SD大鼠原代腹膜間皮細(xì)胞,靜止24h后,采用RT-PCR檢測(cè)TGF-β1(10ng/ml)刺激后0、3、6、12、24、48h單核細(xì)胞趨化蛋白-1(MCP-1)、白介素-6(IL-6)、Ⅰ型膠原(CollagenⅠ)、纖溶酶原激活物抑制物-1(PAI-1)mRNA的表達(dá)情況;Western blot檢測(cè)TGF-β1(10ng/ml)刺激后0、4、12、24、48h CollagenⅠ和PAI-1表達(dá)情況;ELISA法檢測(cè)MCP-1和IL-6表達(dá)情況。結(jié)果TGF-β1處理6h后MCP-1、IL-6和PAI-1mRNA即開始逐漸升高,與0h組的差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(均P<0.05),24h后顯著升高(均P<0.01);TGF-β1處理12h后CollagenⅠmRNA表達(dá)開始明顯升高,與0h比較差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),24h后有顯著升高(P<0.01);TGF-β1處理4h后IL-6表達(dá)水平升高(P<0.05),24h后顯著升高(P<0.01);處理12h后MCP-1和PAI-1表達(dá)水平較0h明顯升高(P<0.05),處理24h后CollagenⅠ表達(dá)水平顯著升高(P<0.05);TGF-β1顯著增加MCP-1、IL-6、CollagenⅠ、PAI-1及其mRNA的表達(dá)上調(diào)。結(jié)論TGF-β1可能通過誘導(dǎo)大鼠腹膜間皮細(xì)胞炎癥因子上調(diào)表達(dá)和ECM積聚導(dǎo)致腹膜纖維化。
腹膜間皮細(xì)胞 炎癥因子 細(xì)胞外基質(zhì) 轉(zhuǎn)化生長因子-β1
長期腹膜透析患者常由于腹膜纖維化導(dǎo)致超濾功能喪失而退出透析治療。腹膜纖維化是一個(gè)復(fù)雜的過程,涉及炎性細(xì)胞的浸潤、細(xì)胞外基質(zhì)(ECM)的積聚及腹膜間皮細(xì)胞的轉(zhuǎn)分化等。轉(zhuǎn)化生長因子-β1(TGF-β1)是公認(rèn)的促纖維化因子,但其具體機(jī)制目前并未完全清楚。筆者之前研究已經(jīng)證實(shí),TGF-β1可以誘導(dǎo)腹膜間皮細(xì)胞的轉(zhuǎn)分化[1];因此,筆者進(jìn)一步觀察TGF-β1對(duì)大鼠腹膜間皮細(xì)胞炎性因子、ECM積聚的影響,現(xiàn)報(bào)道如下。
1.1 材料 清潔級(jí)雄性SD大鼠(體重150~180g,由浙江中醫(yī)藥大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心提供),TGF-β1(美國R&D Systems公司),羊抗Ⅰ型膠原(CollagenⅠ)抗體(美國CST公司),兔抗大鼠纖溶酶原激活物抑制物-1(PAI-1)抗體(美國Santa Cruz公司),小鼠抗β-actin抗體(美國CST公司),DPI(美國CST公司),胎牛血清、DMEM/F12(美國Gibco公司),羊抗兔IgG抗體(美國CST公司),RNA提純?cè)噭┖校绹鳬nvitrogen公司),大鼠單核細(xì)胞趨化蛋白-1(MCP-1)、IL-6ELISA檢測(cè)試劑盒(美國Biosource公司),其余試劑為國產(chǎn)分析純。
1.2 原代大鼠腹膜間皮細(xì)胞的培養(yǎng)、分組及觀察指標(biāo)
1.2.1 分離與培養(yǎng) 取大鼠,予肌肉注射10%水合氯醛 0.5~0.8ml。麻醉后向大鼠腹腔內(nèi)注射 20~30ml 0.25%胰蛋白酶和0.02%乙二胺四乙酸(EDTA)消化液。1h后斷頸處死大鼠,75%乙醇全身浸泡消毒10min。將大鼠仰面放置于超凈工作臺(tái)上,沿腹白線依次剪開腹壁皮膚及肌肉,吸出腹腔內(nèi)的消化液,移入15ml離心管中。1 500r/min離心15min,棄上清液,加入含10% FBS的DMEM/F12培養(yǎng)液,輕輕用吸管吹打使之成為細(xì)胞混懸液,分裝于25cm2的細(xì)胞培養(yǎng)瓶中。再加入培養(yǎng)基使之總體積達(dá)到4~5ml,放入37℃5%CO2的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。每3d更換1次完全培養(yǎng)基。常規(guī)傳代,取第2代細(xì)胞進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。
1.2.2 實(shí)驗(yàn)分組及觀察指標(biāo) 靜止24h后,將細(xì)胞隨機(jī)分成對(duì)照組(即0h組)和TGF-β1(10ng/ml)刺激組,采用半定量RT-PCR法觀察記錄TGF-β1處理0、3、6、12、24、48h后大鼠腹膜間皮細(xì)胞MCP-1、IL-6、PAI-1和CollagenⅠmRNA表達(dá)情況,分別采用ELISA和Western blot法觀察記錄TGF-β1處理0、4、12、24、48h后MCP-1、IL-6、CollagenⅠ和PAI-1表達(dá)情況。
1.3 半定量RT-PCR提取細(xì)胞總RNA 按照Trizol Reagent說明書進(jìn)行操作。Biophotometry核酸測(cè)定儀(美國Eppenddorf公司)測(cè)定總RNA濃度,貯存于-80℃冰箱。按照RevertAidTM First Strand cDNA反轉(zhuǎn)錄試劑盒(美國MBI公司)說明書進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄。取約5μg的RNA樣本,以多聚寡核苷酸[Oligo(dT)18]為引物,在RevertAidTM M-MuLV反轉(zhuǎn)錄酶作用下合成cDNA。條件為70℃變性5min,37℃退火5min,42℃延伸60min,70℃孵育10min。合成的cDNA保存于-20℃冰箱備用。采用MBI公司PCR反應(yīng)試劑盒進(jìn)行PCR擴(kuò)增。反應(yīng)條件為94℃預(yù)變性5min,94℃變性30s,53℃退火30s,72℃延伸45s,72℃孵育10min(退火溫度及循環(huán)周期依據(jù)引物和PCR產(chǎn)物而定)。引物設(shè)計(jì)按文獻(xiàn)[2]或自行設(shè)計(jì),所有引物由上海生工合成,合成序列見表1。PCR產(chǎn)物經(jīng)1.2%瓊脂糖凝膠電泳,用Fluor ChemTM8900凝膠成像系統(tǒng)(美國Alpha Innotech公司)進(jìn)行信號(hào)吸光度分析。結(jié)果由電泳圖的灰度值與內(nèi)參灰度值的比值表示。
表1 PCR引物序列
1.4 Western blot檢測(cè) 參考文獻(xiàn)[3],取各組細(xì)胞,棄上清液,PBS洗3遍,加入細(xì)胞裂解液,收取蛋白質(zhì),4℃12 000r/min離心15min,BCA法測(cè)定濃度。取30μg的蛋白標(biāo)本,10%聚丙烯酰胺(SDS-PAGE)凝膠上電泳,電壓90V 30min,140V 60min。室溫100V轉(zhuǎn)膜90min。5%脫脂奶粉封閉1h,TBST洗3次,加入一抗(羊抗大鼠CollagenⅠ抗體、兔抗大鼠PAI-1抗體),4℃過夜。TBST洗3次,10min/次,HRP標(biāo)記的二抗(小鼠抗羊IgG抗體、羊抗兔IgG抗體)室溫孵育1h,TBST洗3次,顯色并曝光成像。掃描圖像并用圖像分析軟件進(jìn)行信號(hào)吸光度分析。
1.5 ELISA檢測(cè) 將試劑盒室溫下放置20min以上,按說明書方法對(duì)標(biāo)準(zhǔn)品進(jìn)行倍比稀釋。取出相應(yīng)標(biāo)本的上清液,離心,15min內(nèi)加完全部的樣品。配制不同濃度的標(biāo)準(zhǔn)品,10倍稀釋鏈酶抗生物素蛋白,5倍稀釋洗板液,每孔加50μl孵育稀釋液,留1個(gè)孔作為顯色劑空白,將各濃度標(biāo)準(zhǔn)品依次加入相應(yīng)各孔。另1個(gè)孔標(biāo)準(zhǔn)品稀釋液100μl作為零對(duì)照孔,其他孔加標(biāo)準(zhǔn)品稀釋液50μl繼之加樣品50μl(需復(fù)孔),輕輕敲打反應(yīng)板邊緣混勻,除顯色劑空白,每孔加50μl生物素結(jié)合的MCP-1或IL-6抗體,輕輕敲打反應(yīng)板邊緣混勻,覆蓋反應(yīng)板膜,室溫下孵育90min,甩去板內(nèi)液體,除顯色劑空白,每孔加鏈酶抗生物素蛋白100μl,室溫下孵育30min,甩去板內(nèi)液體,,每孔加顯色劑100μl,室溫下孵育30min,每孔加100μl終止液,用酶標(biāo)儀在450nm測(cè)定OD值,做標(biāo)準(zhǔn)曲線,計(jì)算MCP-1、IL-6水平。
1.6 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理 應(yīng)用SPSS11.0統(tǒng)計(jì)軟件,計(jì)量資料以表示,組間比較采用方差分析。
2.1 TGF-β1處理后各時(shí)點(diǎn)大鼠腹膜間皮細(xì)胞MCP-1、IL-6、PAI-1和CollagenⅠmRNA表達(dá)情況的比較見圖1。
圖1 TGF-β1誘導(dǎo)腹膜間皮細(xì)胞MCP-1、IL-6、Collagen I及PAI-1mRNA表達(dá)的情況(M:Marker;與0h比較,*P<0.05,**P<0.01)
由圖1可見,TGF-β1處理6、12、24、48h后MCP-1、IL-6和PAI-1mRNA均較0h明顯升高(P<0.05或0.01),處理12、24、48h后CollagenⅠmRNA表達(dá)也較0h明顯升高(P<0.05或0.01)。
2.2 TGF-β1處理后各時(shí)點(diǎn)MCP-1、IL-6、CollagenⅠ和PAI-1表達(dá)情況的比較 見圖2、表3。
表3 TGF-β1處理后各時(shí)點(diǎn)MCP-1、IL-6水平的比較(pg/ml)
由圖2、表3可見,TGF-β1處理4、12h后IL-6水平較0h升高(P<0.05),24、48h后顯著升高(P<0.01);處理12、24、48h后MCP-1和PAI-1水平較0h明顯升高(P<0.05或0.01),處理24、48h后CollagenⅠ表達(dá)水平較0h明顯升高(P<0.05或0.01)。
TGF-β1是目前公認(rèn)的最強(qiáng)致纖維化因子,可以導(dǎo)致肝、肺、心臟及腎臟等諸多器官發(fā)生纖維化[4-7],主要通過下列幾方面參與纖維化的病理過程:(1)促進(jìn)上皮、間皮細(xì)胞向肌成纖維母細(xì)胞轉(zhuǎn)分化(EMT),TGF-β1可誘導(dǎo)腹膜間皮細(xì)胞表型改變,向肌成纖維細(xì)胞轉(zhuǎn)化,肌成纖維細(xì)胞絕對(duì)數(shù)量的增加是細(xì)胞外基質(zhì)過度積聚的重要原因;(2)上調(diào)細(xì)胞外基質(zhì)的合成,TGF-β1可上調(diào)CollagenⅠ、CollagenⅣ型膠原、纖連蛋白和層連蛋白的表達(dá)[8];(3)抑制降解基質(zhì)蛋白酶的活性,TGF-β1能抑制基質(zhì)金屬蛋白酶、凝血酶原激活物和膠原酶等的活性[9];(4)活化上述蛋白酶的抑制劑,如基質(zhì)蛋白酶抑制劑(TIMPs)和PAI-1[9];(5)作用于臟器固有細(xì)胞和浸潤細(xì)胞,產(chǎn)生多種活性細(xì)胞因子包括MCP-1、IL-6、IGF、PDGF等。TGF-β1還是重要的免疫調(diào)節(jié)因子,在T細(xì)胞和其他非淋巴細(xì)胞中起抗炎因子的作用。
細(xì)胞浸潤在腹膜纖維化的發(fā)生、發(fā)展中起了重要作用。MCP-1是一種對(duì)單核/巨噬細(xì)胞有強(qiáng)烈趨化作用的細(xì)胞因子,可在多種細(xì)胞中產(chǎn)生,其中包括單核細(xì)胞、內(nèi)皮細(xì)胞、平滑肌細(xì)胞、上皮細(xì)胞、纖維母細(xì)胞、星形膠質(zhì)細(xì)胞、腎組織細(xì)胞和某些腫瘤細(xì)胞,參與炎癥和組織纖維化的形成[2,10]。IL-6是一種可由多種細(xì)胞包括單核-巨噬細(xì)胞、T細(xì)胞、系膜細(xì)胞、內(nèi)皮細(xì)胞、上皮細(xì)胞分泌的具有多種功能的細(xì)胞因子,其功能包括調(diào)節(jié)免疫及炎癥反應(yīng)、調(diào)節(jié)急性期蛋白的產(chǎn)生、參與骨代謝及造血。IL-6在炎癥的發(fā)生、發(fā)展中也起著重要作用。研究顯示TGF-β1在多種細(xì)胞包括腎小管上皮細(xì)胞、人單核細(xì)胞、角質(zhì)形成細(xì)胞、人肺成纖維細(xì)胞等細(xì)胞中均可上調(diào)IL-6的表達(dá)[11-14]。
本研究結(jié)果顯示,TGF-β1可上調(diào)大鼠腹膜間皮細(xì)胞MCP-1、IL-6及其mRNA的表達(dá),提示TGF-β1是重要的促炎癥細(xì)胞因子,但TGF-β1促進(jìn)MCP-1及IL-6表達(dá)的信號(hào)通路并不十分明確。Cheng等[14]報(bào)道TGF-β1通過激活ERK、p38和ROS,刺激系膜細(xì)胞表達(dá)MCP-1,但沒發(fā)現(xiàn)NF-κB的激活。還有研究認(rèn)為TGF-β1可能通過MAPK通路,激動(dòng)蛋白-1(AP-1)和JunD同源二聚體使人的肺成纖維細(xì)胞生成IL-6增多[15]。纖維化除了炎癥細(xì)胞和因子的參與,另外一個(gè)特點(diǎn)即是過量的ECM如膠原Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ、Ⅳ型、纖維連接蛋白和層連蛋白,在腹膜間皮細(xì)胞積聚及成纖維細(xì)胞增生。細(xì)胞外基質(zhì)蛋白的沉積依賴于ECM合成與分解代謝的平衡。
TGF-β1促進(jìn)ECM合成的作用體現(xiàn)于多個(gè)環(huán)節(jié),一方面上調(diào)基質(zhì)成分基因的轉(zhuǎn)錄、翻譯等步驟,如上調(diào)膠原和纖維粘連蛋白的基因表達(dá),加強(qiáng)膠原和纖維粘連蛋白的合成,促進(jìn)胞外基質(zhì)受體的轉(zhuǎn)錄、翻譯和蛋白形成等,促進(jìn)ECM的沉積;另一方面通過減少基質(zhì)降解蛋白酶的合成和分泌,增加降解酶阻制劑的合成和分泌抑制基質(zhì)的降解。調(diào)節(jié)ECM代謝的ECM降解酶類纖溶酶原激活物/纖溶酶原激活物抑制物(PAs/PAIs)的表達(dá)與活性異常在ECM積聚中發(fā)揮重要的作用。PAs/PAIs是調(diào)節(jié)纖溶系統(tǒng)活性的重要物質(zhì),不僅起著維持血液中凝血與纖溶平衡的作用,而且參與維持ECM降解的動(dòng)態(tài)平衡。PAs可由多種細(xì)胞生成和分泌,如T淋巴細(xì)胞、內(nèi)皮細(xì)胞、腎小管上皮細(xì)胞等都可生成和分泌PAs。PAs分為組織型(tPA)和尿激酶型(uPA)兩種。目前認(rèn)為tPA的生理功能主要是作為纖溶的生理性激活劑,維持纖溶內(nèi)環(huán)境的穩(wěn)定,其在ECM降解和重塑過程中所起的作用還需進(jìn)行探討。uPA主要參與ECM降解和重塑,能夠降解層粘連蛋白、纖維連接蛋白、IV膠原等多種糖蛋白。PAIs是PAs的生理性特異抑制物,現(xiàn)已發(fā)現(xiàn)4種不同類型的PAIs(PAI-1、PAI-2、PAI-3、PAI-4),均有抑制PAs的作用,其中PAI-1既是PAI的主要形式,也是PAs最重要的抑制劑,所以目前對(duì)PAIs的表達(dá)調(diào)控的研究也主要集中在PAI-1。近年來研究表明,地塞米松、LPS、IL-1、IL-6、AngⅡ、TNF-α、EGF等對(duì)PAI-1均具有上調(diào)作用,而多肽類激素如促卵細(xì)胞激素(FSH)和黃體生長素(LH)對(duì)PAI-1表達(dá)則有下調(diào)作用[16-20]。許多腎臟疾?。ㄈ缒I小球腎炎、IgA腎病、狼瘡性腎炎等),腎組織局部PAI-1的變化失調(diào),表現(xiàn)為uPA或tPA表達(dá)下調(diào),而PAI-1表達(dá)上調(diào)。本研究顯示,TGF-β1可上調(diào)大鼠腹膜間皮細(xì)胞CollagenⅠ和PAI-1及其mRNA的表達(dá),從而使ECM沉積增加和降解減少,證實(shí)PAs/PAI-1在腹膜纖維化的發(fā)生中也起著重要的作用。
目前已知TGF-β1可上調(diào)多種細(xì)胞PAI-1的表達(dá),但尚不清楚TGF-β1通過怎樣的信號(hào)傳遞途徑調(diào)節(jié)PAI-1的表達(dá)。有研究顯示,TGF-β1可誘導(dǎo)上皮細(xì)胞產(chǎn)生ROS,生成的ROS介導(dǎo)了由TGF-β1誘導(dǎo)的細(xì)胞PAI-1及其mRNA表達(dá)上調(diào)和活性的增強(qiáng),長期給予抗氧化劑?;撬峥捎行б种颇I小球PAI-1及其mRNA表達(dá)的上升[21]。
綜上所述,TGF-β1促進(jìn)組織和器官纖維化的作用是多方面的,除誘導(dǎo)細(xì)胞轉(zhuǎn)分化外,上調(diào)炎癥因子表達(dá),以及促進(jìn)ECM蛋白的合成和減少ECM的降解,使ECM增多和異常沉積也發(fā)揮了作用,其具體機(jī)制尚待進(jìn)一步深入研究。
[1]劉小賢,周紅娟,汪衛(wèi),等.轉(zhuǎn)化生長因子-β1在大鼠腹膜間皮細(xì)胞轉(zhuǎn)分化中的作用及機(jī)制[J].浙江醫(yī)學(xué),2012,34(6):408-411.
[2]Wada T,Furuichi K,Sakai N,et al.Up-regulation of monocyte chemoattractant protein-1 in tubulointerstitial lesions of human diabetic nephropathy[J].Kidney Int,2000,58(4):1492-1499.
[3]Zhang H,Liu Y,Liu X X,et al.Epithelial-mesenchymal transition of rat peritoneal mesothelial cells via Rhoa/Rock pathway[J].In Vitro Cellular&Developmental Biology-Animal,2011,47(2):165-172.
[4]Sakai K,Jawaid S,Sasaki T,et al.Transforming Growth Factor-β-Independent Role of Connective Tissue Growth Factor in the Development of Liver Fibrosis[J].Am J Pathol,2014,184(10): 2611-2617.
[5]Kang H R,Cho S J,Lee C G,et al.Transforming growth factor (TGF)-beta1 stimulates pulmonary fibrosis and inflammation via a Bax-dependent,bid-activated pathway that involves matrix metalloproteinase-12[J].J Biol Chem,2007,282(10):7723-7732.
[6]Chung C C,Hsu R C,Kao Y H,et al.Androgen attenuates cardiac fibroblasts activations through modulations of transforming growth factor-β and angiotensin II signaling[J].Int J Cardiol, 2014,176(2):386-393.
[7]Nolan K A,Brennan E P,Scholz C C,et al.Paricalcitol protects against TGF-β1 induced fibrotic responses in hypoxia and stabilisesHIF-αinrenalepithelia[J].Exp CellRes,2014,7(34):27-48.
[8]Sharma K,Ziyadeh F N.Biochemical events and cytokine interactions linking glucose metabolism to the development od diabetic nephropathy[J].Semin Nephrol,1997,17(2):80-92.
[9]Ziyadeh R N,Sharma K.Role of transforming growth factor-beta in diabetic glomerulosclerosis and renal hypertrophy[J].Kidney Int,1995,51(Suppl):S34-S36.
[10]Okada H,Moriwaki K,Kalluri R,et al.Inhibition of monocyte chemoattractant protein-1 expression in tubular epithelium attenuates tubulointerstitial alteration in rat Goodpasture syndrome[J].Kidney Int,2000,57(3):927-936.
[11]Wang S N,LaPage J,Hirschberg R.Role of glomerular ultrafiltration of growth factors in progressive interstitial fibrosis in diabetic nephropathy[J].Kidney Int,2000,57(3):1002-1014.
[12]Qi W,Chen X,Polhill T S,et al.TGF-β1 induces IL-8 and MCP-1 through a connective tissue growth factor-independent pathway[J].Am J Physiol Renal Physiol,2006,290(3):F703-F709.
[13]Junn E,Lee K N,Ju H R,et al.Requirement of Hydrogen Peroxide Generation in TGF-β1 Signal Transduction in Human Lung Fibroblast Cells:Involvement of Hydrogen Peroxide and Ca2+in TGF-β1-Induced IL-6 Expression[J].The Journal of Immunology,2000,165(4):2190-2197.
[14]Cheng J,Diaz Encarnacion M M,Warner G M,et al.TGF-beta1 stimulates monocyte chemoattractant protein-1 expression in mesangialcells through a phosphodiesterase isoenzyme 4-dependent process[J].Am J Physiol Cell Physiol,2005,289 (4):C959-C970.
[15]Voloshenyuk T G,Landesman E S,Khoutorova E,et al.Induction of cardiac fibroblast lysyl oxidase by TGF-β1 requires PI3K/Akt,Smad3,and MAPK signaling[J].Cytokine,2011,55 (1):90-97.
[16]Dong J,Fujii S,Imagawa S,et al.IL-1 and IL-6 induce hepatocyte plasminogen activator inhibitor-1 expression through independent signaling pathways converging on C/EBP delta[J].Am J Physiol Cell Physiol,2007,292(1):C209-C215.
[17]Nakamura S,Nakamura I,Ma L,et al.Plasminogen activator inhibitor-1 expression is regulated by the angiotensin type 1 receptor in vivo[J].Kidney Int,2000,58(1):251-259.
[18]Gerritsma J S,van Kooten C,Gerritsen A F,et al.Transforming growth factor-β1 regulates chemokine and complement production by human proximal tubular epithelial cells[J].Kidney Int,1998,53(3):609-616.
[19]Anteby E Y,Greenfield C,Natanson-Yaron S,et al.Vascular endothelial growth factor,epidermal growth factor and fibroblast growth factor-4 and-10 stimulate trophoblast plasminogen activator system and metalloproteinase-9[J].Mol Hum Reprod,2004,10(4):229-235.
[20]Liu Y X,Peng X R,Liu K,et al.Hormonal regulation of expression of tissue type plasminogen activator and plasminogen activator inhibitor type 1 in cultured rat granulosa cells[J].Sci China B,1994,37(3):271-279.
[21]Zhang G Y,Wu L C,Dai T,et al.NADPH oxidase-2 is a key regulator of human dermal fibroblasts:a potential therapeutic strategy for the treatment of skin fibrosis[J].Exp Dermatol,2014, 23(9):639-644.
ObjectiveTo investigate the effect of TGF-β1 on expression of inflammatory factors and accumulation of extracellular matrix in rat peritoneal mesothelial cells(RPMCs).MethodsAfter growth arrest and synchronization for 24 h,primarily cultured RPMCs were treated with TGF-β1(10ng/ml)for 0,4,12,24 and 48h.The mRNA and protein expression levels of MCP-1, IL-6,CollagenⅠand PAI-1 were measured by RT-PCR and ELISA/Western blotting,respectively.ResultsCompared to 0h group, the expression of MCP-1,IL-6 and PAI-1 mRNA after 6h stimulation and the expression of CollagenⅠmRNA after 12h stimulation was up-regulated (P<0.05).TGF-β1 also significantly up-regulated the expression of MCP-1,IL-6 and PAI-1 proteins after 4h and 12h stimulation,and up-regulated expression of CollagenⅠprotein after 24h stimulation(P<0.05).TGF-β1 up-regulated mRNA and protein expression levels of MCP-1,IL-6,CollagenⅠand PAI-1 in a time-dependent manner in RPMCs.ConclusionTGF-β1 induced inflammatory factors upregulation and accumulation of extracellular matrix in RPMCs,which may be associated with peritoneal fibrosis.
Peritoneal mesothelial cells Inflammatory factors Extracellular matrix TGF-β1
2014-08-20)
(本文編輯:嚴(yán)瑋雯)
浙江省自然科學(xué)基金項(xiàng)目(Y2101241)
310003 杭州,浙江省中西醫(yī)結(jié)合醫(yī)院腎內(nèi)科
張?chǎng)珽-mail:zhangwenta@hotmail.com