張美德 艾倫強(qiáng) 盧超 何銀生 劉海華
摘要:以白術(shù)為材料,研究了在200、300 μmol/L CdCl2脅迫下加入4 μmol/L Na2SeO3對(duì)白術(shù)幼苗生長(zhǎng)和部分生理特性的影響。結(jié)果表明,在200 μmol/L CdCl2處理中,當(dāng)加入硒元素后,白術(shù)葉片的鎘含量顯著下降,SOD、APX和POD活性顯著增強(qiáng),過(guò)氧化氫和丙二醛含量顯著下降,白術(shù)植株鮮質(zhì)量顯著上升,表明硒能有效緩解鎘引起的逆境脅迫。而在300 μmol/L CdCl2處理中,當(dāng)加入硒元素后,白術(shù)葉片的鎘含量幾乎不變,盡管SOD和APX活性顯著增強(qiáng),但過(guò)氧化氫和丙二醛含量繼續(xù)上升,白術(shù)植株鮮質(zhì)量進(jìn)一步下降,表明此時(shí)的硒加劇了鎘引起的逆境脅迫。上述結(jié)果說(shuō)明硒主要通過(guò)減少白術(shù)葉片對(duì)鎘的吸收來(lái)緩解鎘脅迫,而抗氧化酶系統(tǒng)在硒緩解鎘脅迫中發(fā)揮的作用尚有待深入研究。
關(guān)鍵詞:白術(shù);鎘;硒;逆境脅迫;生理特性
中圖分類(lèi)號(hào): S567.23+3.01 文獻(xiàn)標(biāo)志碼: A 文章編號(hào):1002-1302(2015)10-0306-03
鎘是常見(jiàn)的重金屬污染物,可通過(guò)農(nóng)藥化肥、污水排放或灌溉等多種方式對(duì)土壤造成污染。土壤中的鎘通過(guò)作物的吸收富集對(duì)作物產(chǎn)生不良的影響,嚴(yán)重時(shí)會(huì)導(dǎo)致作物生長(zhǎng)受抑、枯萎甚至死亡[1]。硒是植物生長(zhǎng)發(fā)育的有益元素[2],對(duì)鎘有拮抗作用,相關(guān)研究表明添加硒元素能減少植物對(duì)鎘的吸收[3-4],并且增強(qiáng)植物抗氧化能力[5-6],從而在一定程度上能緩解鎘對(duì)植物的毒害。白術(shù)(Atractylodes macrocephala Koidz.)是菊科多年生植物,以根莖入藥,能健脾益氣、燥濕利水、止汗、安胎,用于脾虛食少、腹脹泄瀉、痰飲眩悸、水腫、自汗、胎動(dòng)不安[7]。湖北省咸豐縣是白術(shù)的重要產(chǎn)地之一,然而咸豐縣白術(shù)產(chǎn)區(qū)的土壤重金屬調(diào)查結(jié)果表明,部分土地存在鎘污染問(wèn)題[8],而土壤鎘超標(biāo)會(huì)影響白術(shù)的生長(zhǎng)以及藥材的品質(zhì)。本研究以白術(shù)幼苗為材料,研究硒對(duì)鎘脅迫下白術(shù)幼苗生理特性的影響,旨在探討硒緩解鎘對(duì)白術(shù)傷害的生理生化機(jī)制,以期為中藥材種植的重金屬污染防治提供理論依據(jù),從而實(shí)現(xiàn)中藥材的優(yōu)質(zhì)、安全種植。
1 材料與方法
1.1 試驗(yàn)材料與處理
選取當(dāng)年成熟的白術(shù)種子,在25 ℃下暗培養(yǎng)7 d催芽,挑選整齊一致的白術(shù)幼苗進(jìn)行下列不同條件的水培:在1/2 Hoaglands營(yíng)養(yǎng)液中分別加入4 μmol/L Na2SeO3 (Se處理組)、200 μmol/L CdCl2(Cd1處理組)、300 μmol/L CdCl2(Cd2處理組)、4 μmol/L Na2SeO3 + 200 μmol/L CdCl2(Se + Cd1處理組)、4 μmol/L Na2SeO3 + 300 μmol/L CdCl2(Se + Cd2處理組),并設(shè)空白對(duì)照(0處理組)。溫室培養(yǎng)條件如下:光源為白色熒光燈(6 000 lx,16 h白天/8 h晚上),溫度為25 ℃。水培14 d后分別檢測(cè)地上和地下部位的生物量,并取葉片進(jìn)行下列生理指標(biāo)測(cè)量。
1.2 測(cè)定項(xiàng)目及方法
葉片鎘含量采用原子吸收分光光度法檢測(cè)[9],葉片硒含量采用原子熒光光度法檢測(cè)[10],丙二醛含量用硫代巴比妥酸(TBA)法[11]測(cè)定,過(guò)氧化氫含量采用二甲酚橙法[12]測(cè)定,抗壞血酸過(guò)氧化物酶(APX)活性采用ASA法測(cè)定[13],超氧化物歧化酶(SOD)和過(guò)氧化物酶( POD)活性測(cè)定參照文獻(xiàn)[11]的相關(guān)方法。
1.3 數(shù)據(jù)處理
用Excel軟件和SPSS 18.0軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)處理。
2 結(jié)果與分析
2.1 硒對(duì)鎘脅迫下白術(shù)幼苗生長(zhǎng)發(fā)育的影響
從表1可以看出,與對(duì)照相比,鎘脅迫處理(不加硒)嚴(yán)重影響了白術(shù)幼苗的生長(zhǎng),植株鮮質(zhì)量顯著下降。在鎘脅迫條件下加入硒元素后,Cd1處理組和Cd2處理組植株鮮質(zhì)量變化顯著。硒的加入促進(jìn)了Cd1處理組的生長(zhǎng),植株鮮質(zhì)量顯著上升,比添加硒元素前增加24.0%,表明硒有效緩解了鎘產(chǎn)生的逆境脅迫;而Cd2處理組植株鮮質(zhì)量在加入硒后進(jìn)一步下降,表明硒加劇了鎘產(chǎn)生的逆境脅迫。
2.2 硒對(duì)鎘脅迫下白術(shù)幼苗鎘含量積累的影響
白術(shù)葉片鎘含量檢測(cè)結(jié)果(表2)表明,鎘可以被白術(shù)吸收并運(yùn)輸?shù)饺~片部位。此外,硒元素能減少葉片部位對(duì)鎘的吸收,有利于緩解鎘脅迫造成的逆境傷害。在Cd1組處理中添加硒元素顯著減少了白術(shù)葉片對(duì)鎘元素的吸收,降幅達(dá)到26.4%;而在Cd2組處理中添加硒元素只使白術(shù)葉片對(duì)鎘元素的吸收減少了5.6%。值得注意的是,在2個(gè)鎘處理組中加入硒元素后,與Se處理組相比,葉片中的硒含量都顯著上升,且Se+Cd2組處理組葉片部位的硒含量最高。
2.3 硒對(duì)鎘脅迫下白術(shù)幼苗葉片抗氧化系統(tǒng)的影響
2.3.1 葉片SOD、CAT、APX、POD等抗氧化酶活性的變化 SOD是所有植物抗氧化防御機(jī)制中不可或缺的部分, 它能迅速與超氧陰離子反應(yīng)并將其歧化成過(guò)氧化氫,在植物的抗逆中起關(guān)鍵性作用。如圖1所示,與對(duì)照組相比,鎘脅迫(不加硒)顯著抑制了白術(shù)葉片的SOD活性,Cd1處理組和Cd2處理組分別下降為對(duì)照組的75%和60%。在添加硒元素后,Cd1處理組和Cd2處理組的SOD活性均顯著增強(qiáng),分別達(dá)到對(duì)照組的87%和74%。
CAT是植物中清除活性氧的關(guān)鍵酶,它能使將氧化氫分解成水和氧分子,除去逆境脅迫條件下植物體內(nèi)累積的過(guò)氧化氫。與SOD變化相反,鎘脅迫(不加硒)誘導(dǎo)了白術(shù)葉片CAT活性顯著增強(qiáng);然而在添加硒元素后,2種鎘脅迫處理組的CAT活性都下降到對(duì)照水平(圖2)。
APX被認(rèn)為是葉綠體中清除過(guò)氧化氫的關(guān)鍵酶。與對(duì)照組相比,在遭受鎘脅迫(不加硒)后,白術(shù)體內(nèi)的APX酶活性增強(qiáng),Cd1處理組和Cd2處理組均達(dá)到對(duì)照組的2倍,有利于加快體內(nèi)過(guò)氧化氫的清除。在添加硒元素后,Cd1處理組和Cd2處理組的APX活性則進(jìn)一步上升為對(duì)照組的3倍左右(圖3)。endprint
POD也是清除過(guò)氧化氫的關(guān)鍵酶,在植物應(yīng)對(duì)鎘脅迫中起重要的保護(hù)作用。與對(duì)照組相比,鎘脅迫(不加硒)處理抑
制了Cd2處理組的POD酶活性,下降為對(duì)照組的89%,但對(duì)Cd1處理組POD酶活性沒(méi)有影響。在加入硒元素后,Cd1組的POD活性被誘導(dǎo)上升為對(duì)照組的115%,利于加快對(duì)過(guò)氧化氫的清理;而Cd2組的POD活性基本沒(méi)有變化,為對(duì)照的91%(圖4)。
2.3.2 葉片過(guò)氧化氫和丙二醛積累情況 過(guò)量的過(guò)氧化氫積累是氧化脅迫的標(biāo)志。當(dāng)白術(shù)幼苗遭受鎘脅迫(不加硒)時(shí),過(guò)氧化氫含量也顯著上升,Cd1處理組和Cd2處理組分別達(dá)到對(duì)照組的160%和270%,表明鎘脅迫給白術(shù)幼苗造成了較為嚴(yán)重的氧化脅迫。在添加硒元素后,Cd1處理組過(guò)氧化氫含量略有下降,為對(duì)照組的138%;而Cd2處理組過(guò)氧化氫含量則繼續(xù)上升,達(dá)到對(duì)照的330%,表明其氧化脅迫程度進(jìn)一步加?。▓D5)。
MDA是植物逆境和衰老過(guò)程中膜質(zhì)過(guò)氧化的終產(chǎn)物,其含量通常用來(lái)衡量膜質(zhì)過(guò)氧化程度。在本試驗(yàn)中,2種不同濃度的鎘處理(不加硒)都導(dǎo)致MDA含量顯著上升,分別為對(duì)照(0處理組)的220%和230%。當(dāng)添加硒元素后,2個(gè)鎘處理組出現(xiàn)不同的變化。其中,Cd1處理組的MDA含量顯著下降,僅為對(duì)照組的160%;而Cd2處理組的MDA含量則繼續(xù)上升,達(dá)到對(duì)照組的280%(圖6)。
3 結(jié)論與討論
鎘是一種重要的非生物脅迫因子,能影響植物的生理特性,包括活性氧(ROS)的產(chǎn)生,從而對(duì)植物造成過(guò)氧化傷害,并影響植物生長(zhǎng)。在本試驗(yàn)中,鎘脅迫導(dǎo)致白術(shù)葉片部位積累了過(guò)量的鎘元素,同時(shí)葉片的氧自由基代謝失去平衡,產(chǎn)生大量的活性氧,導(dǎo)致白術(shù)幼苗遭受較為嚴(yán)重的過(guò)氧化損傷,并使生長(zhǎng)受抑制。
許多研究表明,硒可通過(guò)調(diào)節(jié)植物的抗氧化酶系統(tǒng)[14-15]或減少植物對(duì)鎘的吸收[16-17]來(lái)緩解鎘造成的逆境脅迫。在本研究中,在不同濃度的鎘處理中加入相同濃度的硒產(chǎn)生了不同的結(jié)果。在較低濃度的Cd1處理中加入硒元素后,白術(shù)葉片的鎘含量顯著下降;同時(shí)抗氧化酶系統(tǒng)也有較大變化,雖然CAT活性減弱,但SOD、APX、POD活性顯著增強(qiáng),過(guò)氧化氫和丙二醛含量顯著下降;白術(shù)植株鮮質(zhì)量顯著上升,表明硒有效緩解了鎘引起的逆境脅迫。而在較高濃度的Cd2處理中加入硒元素后,白術(shù)葉片的鎘含量幾乎不變;同時(shí)CAT活性也減弱,盡管SOD和APX活性顯著增強(qiáng),但過(guò)氧化氫和丙二醛含量繼續(xù)上升;白術(shù)植株鮮質(zhì)量進(jìn)一步下降,表明此時(shí)的硒加劇了鎘引起的逆境脅迫。這2種不同的結(jié)果說(shuō)明硒主要通過(guò)減少白術(shù)葉片對(duì)鎘的吸收來(lái)緩解鎘脅迫,而抗氧化酶系統(tǒng)在硒緩解鎘脅迫中發(fā)揮的作用尚有待深入研究。
另外,在2個(gè)不同濃度的鎘處理中加入相同濃度的硒元素后,葉片對(duì)硒元素的吸收變化顯著,Cd2處理的葉片硒含量明顯高于Cd1處理。由于普通植物對(duì)硒很敏感,一般低濃度的硒就能對(duì)普通植物產(chǎn)生毒害[18],因此推理在Cd2處理中該濃度的硒和鎘產(chǎn)生了協(xié)同作用,加劇了Cd2處理的逆境脅迫程度。
綜上所述,在遭受鎘脅迫時(shí),硒主要通過(guò)減少葉片對(duì)鎘元素的吸收來(lái)保護(hù)白術(shù)幼苗;同時(shí),硒對(duì)鎘的拮抗作用取決于適宜的濃度。
參考文獻(xiàn):
[1]Baryla A,Carrier P,F(xiàn)ranck F,et al. Leaf chlorosis in oilseed rape plants (Brassica napus) grown on cadmium-polluted soil:causes and consequences for photosynthesis and growth[J]. Planta,2001,212(5/6):696-709.
[2]劉大會(huì),周文兵,朱端衛(wèi),等. 硒在植物中生理功能的研究進(jìn)展[J]. 山地農(nóng)業(yè)生物學(xué)報(bào),2005,24(3):253-259.
[3]He P P,Lv X Z,Wang G Y. Effects of Se and Zn supplementation on the antagonism against Pb and Cd in vegetables[J]. Environment International,2004,30(2):167-172.
[4]Pedrero Z,Madrid Y,Hartikainen H,et al. Protective effect of selenium in broccoli (Brassica oleracea) plants subjected to cadmium exposure[J]. J Agric Food Chem,2008,54:2412-2417.
[5]Djanaguiraman M,Devi D D,Shanker A K,et al. Selenium - an antioxidative protectant in soybean during senescence[J]. Plant Soil,2005,272:77-86.
[6]Kong L A,Wang M,Bi D L. Selenium modulates the activities of antioxidant enzymes,osmotic homeostasis and promotes the growth of sorrel seedlings under salt stress[J]. Plant Growth Regulation,2005,45(2):155-163.
[7]Li C Q,He L C,Dong H Y,et al. Screening for the anti-inflammatory activity of fractions and compounds from Atractylodes macrocephala Koidz[J]. Journal of Ethnopharmacology,2007,114(2):212-217.endprint
[8]張 馳,張 巍,陳建英,等. 恩施州GAP地道藥材品種安全性評(píng)價(jià)[J]. 時(shí)珍國(guó)醫(yī)國(guó)藥,2005,16(4):309-311.
[9]謝 瑩,曹艷妮.原子吸收分光光度法測(cè)定玉米葉片中重金屬[J]. 吉林化工學(xué)院學(xué)報(bào),2009,26(2):35-39.
[10]田 磊,李曉燕,張海英,等. 酸式消解-原子熒光光譜法測(cè)定3種水果硒含量[J]. 中國(guó)果樹(shù),2010,01(1):41-44.
[11]高俊鳳.植物生理學(xué)實(shí)驗(yàn)技術(shù)[M]. 西安:世界圖書(shū)出版公司,2000:192-199.
[12]李忠光,宋玉泉,龔 明.二甲酚橙法用于測(cè)定植物組織中的過(guò)氧化氫[J]. 云南師范大學(xué)學(xué)報(bào):自然科學(xué)版,2007,27(3):50-54.
[13]李合生.植物生理生化實(shí)驗(yàn)原理和技術(shù)[M]. 北京:高等教育出版社,2000:258-260.
[14]Hasanuzzaman M,Hossain M A,F(xiàn)ujita M. Exogenous Selenium pretreatment protects rapeseed seedlings from cadmium-induced oxidative stress by upregulating antioxidant defense and methylglyoxal detoxification systems[J]. Biological Trace Element Research,2012,149(2):248-261.
[15]Djanaguiraman M,Devi D D,Shanker A K,et al. Selenium - an antioxidative protectant in soybean during senescence[J]. Plant Soil,2005,272:77-86.
[16]Filek M,Keskinen R,Hartikainen H,et al. The protective role of selenium in rape seedlings subjected to cadmium stress[J]. Journal of Plant Physiology,2008,165(8):833-844.
[17]Pedrero Z,Madrid Y,Hartikainen H,et al. Protective effect of selenium in broccoli (Brassica oleracea) plants subjected to cadmium exposure[J]. J Agric Food Chem,2008,54:2412-2417.
[18]Terry N,Zayed A M,de Souza M P,et al. Selenium in higher plants[J]. Annu Rev Plant Physiol Plant Mol Biol,2000,51:401-432.楊海濤,張 彪,楊素勤,等. 鎘脅迫對(duì)苗期曼陀羅生長(zhǎng)及鎘富集的影響[J]. 江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué),2015,43(10):309-311.endprint