楊 陽,李榮卓,毛祿剛,劉 霞*
不同粒徑納米金標(biāo)記二抗增強(qiáng)表面等離子共振檢測(cè)E. coli O157∶H7
楊 陽,李榮卓,毛祿剛,劉 霞*
(湖南農(nóng)業(yè)大學(xué)食品科學(xué)技術(shù)學(xué)院,食品科學(xué)與生物技術(shù)湖南省重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,湖南 長(zhǎng)沙 410128)
基于雙通道表面等離子共振(surface plasmon resonance,SPR)傳感器,結(jié)合不同粒徑的金納米粒子(Au nanoparticle,AuNPs)標(biāo)記多克隆抗體(polyclonal antibody,PAb)作為第二抗體,采用氨基偶聯(lián)的方法將PAb固定在傳感器表面作為第一抗體,采用三明治夾心法進(jìn)行了檢測(cè)大腸桿菌O157∶H7(E. coli O157∶H7)的研究??疾? 種粒徑的AuNPs作為標(biāo)記物,增強(qiáng)SPR響應(yīng)信號(hào)檢測(cè)E. coli O157∶H7的能力。結(jié)果表明,增強(qiáng)效果最佳的AuNPs粒徑為17.79 nm,其可檢測(cè)到的E. coli O157∶H7的最低濃度為10 CFU/mL。
金納米粒子;E. coli O157∶H7;表面等離子共振傳感器;標(biāo)記;不同粒徑
隨著食品產(chǎn)業(yè)飛速的發(fā)展,食品安全問題越來越得到消費(fèi)者的關(guān)注。據(jù)統(tǒng)計(jì),在各種食物中毒事件中,以細(xì)菌引起的食物中毒最多。其中大腸桿菌O15 7∶H7(E. coli O157∶H7)是最常見的細(xì)菌致病菌[1-2]。目前,檢測(cè)E. coli O157∶H7常用的方法有聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(poly merase chain reaction,PCR)[3]、酶聯(lián)免疫(enzyme-linked immune sorbent assay,ELISA)法[4]、生物傳感器法[5]等。其中,免疫生物傳感器由于其特異性強(qiáng)、快速簡(jiǎn)便的優(yōu)點(diǎn),已廣泛應(yīng)用于E. coli O157∶H7的檢測(cè)。特別是表面等離子共振(surface plasmon resonance,SPR)傳感器[6]具有無需標(biāo)記,能實(shí)時(shí)監(jiān)測(cè)反應(yīng)動(dòng)態(tài)過程,操作簡(jiǎn)單、靈敏度高,已被廣泛應(yīng)用于各個(gè)研究領(lǐng)域[7-9]。國內(nèi)外已有關(guān)于SPR生物傳感器檢測(cè)E. coli O157∶H7的報(bào)道,Si Chengyan等[10]將抗體固定在傳感器表面,基于SPR直接法檢測(cè)E. coli O157∶H7,檢測(cè)限為105CFU/mL。應(yīng)用納米材料可大幅度提高SPR傳感器的檢測(cè)靈敏度[11],尤其是金納米粒子(Au nanoparticles,AuNPs),由于具有微弱的帶電配體的結(jié)合層,具有特殊的穩(wěn)定性,可以與生物分子發(fā)生非共價(jià)鍵的靜電吸附[12],且生物分子活性基本不發(fā)生改變,標(biāo)記用量少等優(yōu)點(diǎn)而被廣泛應(yīng)用于生物檢測(cè)。AuNPs標(biāo)記抗原或抗體的三明治法檢測(cè)E. coli O157∶H7已有報(bào)道,劉霞等[13]應(yīng)用AuNPs標(biāo)記抗體的方法檢測(cè)了補(bǔ)體C4,與直接法檢測(cè)相比,靈敏度提高了20 倍。Eum等[14]基于AuNPs的增強(qiáng)響應(yīng)信號(hào)作用,應(yīng)用三明治夾心法,將AuNPs-抗體作為二抗,原抗體為一抗檢測(cè)E. coli O157∶H7,結(jié)果表明在標(biāo)記AuNPs的前提下響應(yīng)信號(hào)比沒有標(biāo)記的高3.8 倍。
本實(shí)驗(yàn)分別將不同粒徑的AuNPs標(biāo)記E. coli O157∶H7 PAb作為第二抗體,以固定在SPR傳感器芯片表面的PAb作為第一抗體,應(yīng)用三明治夾心法[15]對(duì)E. coli O157∶H7進(jìn)行檢測(cè),比較了3 種不同粒徑的AuNPs增強(qiáng)SPR響應(yīng)信號(hào)的能力,篩選出最佳尺寸的AuNPs,并應(yīng)用篩選出的AuNPs進(jìn)行實(shí)際樣品的加標(biāo)回收率實(shí)驗(yàn)。此方法簡(jiǎn)單快速,為SPR傳感器在實(shí)際樣品中的檢驗(yàn)提供技術(shù)參考。
1.1 試劑與儀器
無水乙醇、營養(yǎng)肉湯(nutrient broth,NB)、檸檬酸三鈉、四氯金酸(HAuCl4·H2O)、牛血清白蛋白(bovine serum albumin,BSA) 國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;3-巰基丙酸(3-mercapto propionic acid,MPA)、N-羥基琥珀酰亞胺(N-hydroxysuccinimide,NHS)、乙基二甲基胺丙基碳化二亞胺(1-ethyl-3-(3-dimethylami-nopropyl) carbodiimide hydrochloride,EDC)美國Sigma-Aldrichg公司;E. coli O157∶H7由湖南省食品藥品檢驗(yàn)研究院提供(出血性大腸埃希氏菌二代菌株,編號(hào)為CICC21530,中國工業(yè)菌種保藏中心);羊抗O157∶H7 PAb 美國International Lab公司;實(shí)驗(yàn)所用試劑均為分析純。
HJ-1型恒溫磁力攪拌器 江蘇醫(yī)療儀器廠;雙通道2000 SPR傳感器和芯片 美國Biosensing Instrument公司;UV-2450型紫外-可見分光光度計(jì) 日本島津公司;JSM-6380LV型透射電子顯微鏡 日本電子株式會(huì)社;磷酸鹽緩沖液(150 mmol/L NaCl+20 mmol/L Na2HPO4·12H2O,pH 7.4);實(shí)驗(yàn)用水為去離子水;實(shí)驗(yàn)所用玻璃器皿、磷酸鹽緩沖液、去離子水及槍頭均經(jīng)高壓滅菌。
1.2 方法
1.2.1 AuNPs合成及表征
采用檸檬酸三鈉還原法制備AuNPs[16],具體步驟如下:分別取0.5 mL質(zhì)量分?jǐn)?shù)為1%氯金酸溶液于三角瓶中,加入49.5 mL去離子水,在磁力攪拌器200 r/min攪拌并加熱至沸騰,沸騰后分別快速加入新配制的1、1.5、2 mL質(zhì)量分?jǐn)?shù)為1%的檸檬酸三鈉溶液,繼續(xù)加熱攪拌10 min。溶液顏色由灰色變成黑色,最后變成透亮的紅色后停止加熱,再攪拌10 min。室溫冷卻后分裝到離心管中并分別采用透射電子顯微鏡(transmission electron microscopy,TEM)和紫外-可見分光光度計(jì)(ultravioletvisible spectrophotometer,UV-Vis)進(jìn)行表征。
1.2.2 AuNPs-PAb復(fù)合物的制備及表征
應(yīng)用目測(cè)法測(cè)定PAb最適標(biāo)記量,將PAb逐級(jí)稀釋后,各取等體積分別加入到一系列裝有1 mL AuNPs的離心管中,離心5 min后,在上述各管內(nèi)再分別加入0.1 mL質(zhì)量分?jǐn)?shù)為10%的NaCl溶液調(diào)節(jié)pH值至7.4,混勻靜置2 h以上觀察結(jié)果。若加入PAb不足以穩(wěn)定AuNPs的離心管,即呈現(xiàn)由紅變藍(lán)的聚沉現(xiàn)象,而加入PAb達(dá)到或超過最低穩(wěn)定量的離心管則AuNPs的紅顏色不變。其中含PAb最低的離心管即含穩(wěn)定1 mL AuNPs的必需蛋白量[17]。根據(jù)用已標(biāo)記的AuNPs的總量計(jì)算出所需要的待標(biāo)記PAb的總量(實(shí)際實(shí)驗(yàn)中增加20%的量),然后在電磁攪拌器的攪拌下,將PAb溶液逐滴加入AuNPs溶液中(pH 7.4),1 mg的PAb大約5 min加完;在磁性攪拌器的攪拌下,加入pH 7.4的BSA作為封閉劑,并使其最終質(zhì)量分?jǐn)?shù)為1%。得到的混合液用2 000 r/min離心20 min,去除沉淀,即除去部分大顆粒的AuNPs。所得上清液用10 000 r/min離心60 min后小心除去上清液,即除去未結(jié)合的PAb。所得沉淀(AuNPs-PAb復(fù)合物)用磷酸鹽稀釋并用TEM進(jìn)行表征。
1.2.3 PAb在傳感器表面的固定
室溫條件下,采用滴加的方法,將濃度為10 mmol/L的MPA乙醇溶液滴加在裸露的芯片表面,室溫孵育過夜,次日芯片用乙醇以及二次水反復(fù)沖洗,再用氮?dú)獯蹈?,使MPA在芯片上形成穩(wěn)定的單分子膜,然后將芯片組裝在SPR傳感器上。通入新配制的EDC/NHS(0.4 mol/L∶0.1 mol/L)活化MPA中的羧基,流速為40 μL/min;再通入的質(zhì)量濃度為111.2 μg/mL的PAb(磷酸鹽緩沖液配制)溶液,流速為5 μL/min,將其固定在傳感器芯片表面,最后通入1% BSA封閉芯片表面的非特異性吸附位點(diǎn)。
1.2.4 SPR檢測(cè)
通入一定濃度的E. coli O157∶H7標(biāo)準(zhǔn)菌液,流速為10 μL/min,使其與芯片表面的PAb充分反應(yīng),然后再分別通入3 種粒徑的AuNPs-PAb復(fù)合物進(jìn)行檢測(cè),檢測(cè)過程原理圖如圖1所示。每次反應(yīng)完畢后以20 μL/min的流速通入10 mmol/L的NaOH溶液,將傳感器表面AuNPs-PAb與E. coli O157∶H7的結(jié)合物沖掉至基線穩(wěn)定后,然后通入其他濃度的E. coli O157∶H7,重復(fù)上述步驟,每個(gè)濃度的E. coli O157∶H7至少重復(fù)檢測(cè)3 次。
圖 1 檢測(cè)過程原理圖Fig.1 Principle schematic of E. coli O157∶H7 detection
1.2.5 實(shí)際樣品的制備及加標(biāo)回收率實(shí)驗(yàn)
購買自湖南農(nóng)業(yè)大學(xué)紅旗市場(chǎng)的涼菜,烘箱烘48 h,用滅菌后的研缽研碎,稱取2.5 g加入22.5 mL無菌水混合均勻,過濾后4 ℃冰箱備用。
稀釋樣液加入E. coli O157∶H7標(biāo)準(zhǔn)菌液,加標(biāo)后E. coli O157∶H7的最終濃度為106CFU/mL。調(diào)節(jié)流速為10 μL/min,通入實(shí)際樣品加標(biāo)溶液,進(jìn)行3次重復(fù)檢測(cè),計(jì)算回收率。每次檢測(cè)后采用10 mmo l/L的NaOH溶液使傳感器表面再生。
2.1 AuNPs的表征
應(yīng)用檸檬酸鈉還原法成功制備了3 種不同粒徑的AuNPs,圖2A分別為3 種粒徑AuNPs的TEM圖,AuNPs粒子形狀較統(tǒng)一,分散也較均勻,并且隨著還原劑檸檬酸三鈉量的不同,粒子粒徑逐漸增大,粒子數(shù)量減少。通過使用粒徑分布計(jì)算軟件分析了3 種粒子的粒徑,可知此次實(shí)驗(yàn)制備的AuNPs平均粒徑分別為17.79、28.22 nm和34.05 nm(圖2B)。圖3為AuNPs的UV-Vis光譜,3種粒徑的AuNPs在520 nm左右均出現(xiàn)了其紫外特征吸收峰,而且紫外吸收峰隨著顆粒尺寸的增大而出現(xiàn)了紅移,與文獻(xiàn)[18]報(bào)道相一致。
圖 2 AuNPs TEM圖(A)和粒徑分布圖(B)Fig.2 TEM images (A) and size distribution histograms (B) of AuNPs
圖 3 AuNPs的UV-Vis光譜Fig.3 UV-visible absorption spectra of AuNPs
2.2 AuNPs-PAb的表征
圖 4 AuNPs標(biāo)記前后以及抗體的UV-Vis光譜Fig.4 UV-visible absorption spectra of PAb, AuNPs and AuNPs-PAb
由圖4中曲線c可看出,PAb沒有特征峰,而圖4中曲線b可以明顯看出,3 種粒徑的AuNPs分別在波長(zhǎng)520 nm左右處都出現(xiàn)了特征吸收峰,但PAb被AuNPs標(biāo)記后(圖4中曲線a),AuNPs-PAb復(fù)合物在525 nm左右出現(xiàn)了吸收峰,AuNPs-PAb復(fù)合物的特征吸收峰與AuNPs的特征吸收峰相比,出現(xiàn)了紅移現(xiàn)象,這是因?yàn)锳uNPs-PAb復(fù)合物形成之后,粒子粒徑變大所致,與文獻(xiàn)[18]報(bào)道相一致。另外,也可看出AuNPs-PAb復(fù)合物的吸光度明顯下降,PAb被AuNPs成功標(biāo)記。
2.3 SPR檢測(cè)結(jié)果
圖 5 3種粒徑的AuNPs增強(qiáng)三明治夾心法檢測(cè)E. coli O157∶H7的動(dòng)力學(xué)曲線Fig.5 SPR dynamics curves of AuNPs of three different sizes enhanced sandwich assay for E. coli O157∶H7 detection
PAb在SPR芯片表面自組裝成穩(wěn)定的抗體分子膜后,分別向流通池中通入不同菌液濃度的E. coli O157∶H7,然后通入AuNPs-PAb復(fù)合物進(jìn)行檢測(cè),整個(gè)實(shí)驗(yàn)的SPR動(dòng)力學(xué)曲線如圖5所示(以菌液濃度為108CFU/mL E. coli O157∶H7為例)。從圖5可明顯看出,通入PAb后立刻引起了SPR的響應(yīng)信號(hào),1 200 s基本達(dá)到平衡,SPR響應(yīng)信號(hào)的變化(Δθ)值為82 mDeg,說明PAb已經(jīng)被成功的固定在傳感器表面。當(dāng)傳感器表面被PBS沖洗后,注入BSA也引起了SPR響應(yīng)信號(hào)的變化,說明傳感器芯片表面的空位點(diǎn)已被BSA封閉。此時(shí),注入E. coli O157∶H7引起的SPR響應(yīng)信號(hào)的變化并不是很明顯,當(dāng)E. coli O157∶H7完全與一抗結(jié)合后,再注入AuNPs-PAb的復(fù)合物時(shí),引起了明顯的SPR響應(yīng)信號(hào)的變化(注入AuNPs-PAb前的基線與注入AuNPs-PAb后響應(yīng)信號(hào)經(jīng)過高峰平臺(tái)期后下降并穩(wěn)定的基線的差值),可明顯看出粒徑為17.79 nm的AuNPs標(biāo)記二抗產(chǎn)生的SPR響應(yīng)信號(hào)改變值最大,其次分別為粒徑34.05 nm和28.22 nm的AuNPs,這主要是由于AuNPs的比表面積增大了PAb的承載量,使復(fù)合物的折射率明顯增大及AuNPs的表面等離子體子(surface plasmons,SP)與金膜本身的SP發(fā)生了耦合的原因。待反應(yīng)完成之后通入10 mmol/L NaOH使傳感器表面再生。
圖 6 3種粒徑檢測(cè)不同濃度E. coli O157∶H7的工作曲線Fig.6 Working curves for detecting different concentrations of E. coli O157∶H7 based on different sizes of AuNPs
如圖6所示,隨著E. coli O157∶H7濃度的增加,SPR響應(yīng)的變化值也隨之增加,17.79 nm AuNPs增加SPR響應(yīng)信號(hào)的變化值最為明顯,其次為34.05 nm,最后為28.22 nm,與圖5所示結(jié)果一致。當(dāng)E. coli O157∶H7的濃度為108CFU/mL,粒徑分別為17.79、28.22 nm和34.05 nm的AuNPs標(biāo)記二抗所引起的SPR響應(yīng)信號(hào)的變化值分別為17.415、7.2373 mDeg和9.9403 mDeg,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差分別為8.019%、7.723%和9.306%。這表明,檢測(cè)相同濃度的E. coli O157∶H7,17.79 nm AuNPs增強(qiáng)SPR的效果幾乎是28.22 nm和34.05 nm的AuNPs的2 倍。而且E. coli O157∶H7的濃度越大,17.79 nm AuNPs增強(qiáng)SPR的效果越強(qiáng),而28.22 nm和34.05 nm的增強(qiáng)效果趨于平緩,當(dāng)E. coli O157∶H7的濃度為1015CFU/mL時(shí),兩者產(chǎn)生的SPR信號(hào)基本差不多。
圖 7 17.79 nm AuNPs檢測(cè)不同濃度E. coli O157∶H7的線性關(guān)系曲線Fig.7 Linear relationship curve of SPR assay for detection of E. coli O157∶H7 at different concentrations using 17.79 nm AuNPs
一般來說,在一定的粒徑范圍內(nèi),隨著AuNPs粒徑的增加,SPR響應(yīng)信號(hào)也隨之增強(qiáng)。Zeng Shuwen等[19]系統(tǒng)地研究了AuNPs粒徑對(duì)于SPR響應(yīng)信號(hào)的影響規(guī)律,研究表明當(dāng)AuNPs的粒徑小于40 nm時(shí),SPR響應(yīng)信號(hào)隨著粒徑的增大而增加;當(dāng)AuNPs粒徑大于40 nm時(shí),SPR響應(yīng)信號(hào)隨著粒徑的增大反而減小。而本實(shí)驗(yàn)獲得的AuNPs標(biāo)記二抗增強(qiáng)SPR響應(yīng)信號(hào)的最佳粒徑為17.79 nm,其次是34.05 nm,最后為28.22 nm。這或許是以下兩個(gè)原因?qū)е碌木C合效應(yīng),一是由于粒徑較大的AuNPs被PAb包被后,導(dǎo)致AuNPs-PAb復(fù)合物粒徑更大,當(dāng)AuNPs-PAb復(fù)合物與芯片表面的E. coli O157∶H7結(jié)合時(shí),導(dǎo)致空間位阻的效應(yīng)更明顯;二是由于E. coli O157∶H7本身也比較大(0.5~1.5 μm),當(dāng)粒徑較大的AuNPs-PAb復(fù)合物與其結(jié)合后,使得傳感器表面的介質(zhì)膜厚度比較大,導(dǎo)致SPR靈敏度下降[20]。圖7是增強(qiáng)效果最佳粒徑的AuNPs(17.79 nm)檢測(cè)E. coli O157∶H7的線性關(guān)系曲線,其最低可檢測(cè)到的濃度為10 CFU/mL,線性范圍為10~1010CFU/mL,相關(guān)系數(shù)為0.991 4,線性回歸方程為Y=2.037 17X+1.652 22。
2.4 實(shí)際樣品加標(biāo)回收率
應(yīng)用17.79 nm的AuNPs采用同樣的方法進(jìn)行了實(shí)際樣品的加標(biāo)回收率實(shí)驗(yàn)。為了保證檢測(cè)的準(zhǔn)確性,樣品經(jīng)長(zhǎng)時(shí)間的烘干處理,確認(rèn)其無微生物存活后,進(jìn)行加標(biāo)實(shí)驗(yàn)。實(shí)際樣品中的E. coli O157∶H7加標(biāo)量是106CFU/mL,SPR響應(yīng)信號(hào)的變化值是18.284 mDeg,同濃度的E. coli O157∶H7標(biāo)準(zhǔn)品的SPR響應(yīng)信號(hào)的變化值為16.603 mDeg,其加標(biāo)回收率為110.12%,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差為1.37%,說明該方法的準(zhǔn)確度高、重復(fù)性好。
本實(shí)驗(yàn)采用檸檬酸三鈉還原法合成了3 種不同粒徑(17.79、28.22、34.05 nm)的AuNPs,并將不同粒徑的AuNPs標(biāo)記E. coli O157∶H7的PAb制備的AuNPs-PAb復(fù)合物作為二抗,利用氨基偶聯(lián)的方法將PAb固定在傳感器表明作為一抗,采用三明治夾心法,應(yīng)用雙通道SPR傳感器(一個(gè)通道作為參比通道)對(duì)E. coli O157∶H7進(jìn)行了高靈敏的檢測(cè),考察3 種粒徑的增強(qiáng)能力,篩選出增強(qiáng)效應(yīng)最佳的粒徑為17.79 nm。此方法可明顯增強(qiáng)SPR的檢測(cè)靈敏度,且操作時(shí)間短、試劑用量少、靈敏度高。
[1] AHN K C, KLEIN E, TARR I P. Isolation of patients acutely infected with Escherichia coli O157:H7: low-tech, highly effective prevention of hemolytic uremic syndrome[J]. Clinical Infectious Diseases, 2008, 46(8): 1197-1199.
[2] PHILLIPS C A. The epidemiology, detection and control of Escherichia coli O157[J]. Journal of the Science of Food and Agriculture, 1999, 79(11): 1367-1381.
[3] 巢強(qiáng)國, 楊學(xué)明, 葛宇, 等. PCR法檢測(cè)食品中大腸桿菌O157:H7[J].食品科學(xué), 2010, 31(8): 212-215.
[4] SUNWOO H H, WANG W W, SIM J S. Detection of Escherichia coli O157:H7 using chicken immunoglobulin Y[J]. Immunology Letters, 2006, 106(2): 191-193.
[5] XU Lijian, DU Jingjing, DENG Yan, et al. Electrochemical detection of E. coli O157:H7 using porous pseudo-carbon paste electrode modified with carboxylic multi-walled carbon nanotubes, glutaraldehyde and 3-aminopropyltriethoxysilane[J]. Journal of Biomedical Nanotechnology, 2012, 8(6): 1006-1011.
[6] FERNáNDEZ F, SáNCHEZ-BAEZA F, MARCO M P. Nanogold probe enhanced surface plasmon resonance immunosensor for improved detection of antibiotic residues[J]. Biosensors and Bioelectronics, 2012, 34(1): 151-158.
[7] LANG T, HIRSCH T, FENZL C, et al. Surface plasmon resonance sensor for dissolved and gaseous carbon dioxide[J]. Analytical Chemistry, 2012, 84(21): 9085-9088.
[8] LIU Ying, CHENG Quan. Detection of membrane-binding proteins by surface plasmon resonance with an all-aqueous amplification scheme[J]. Analytical Chemistry, 2012, 84(7): 3179-3186.
[9] NAGATSUKA T, UZAWA H, SATO K. Localized surface plasmon resonance detection of biological toxins using cell surface oligosaccharides on glyco chips[J]. ACS Applied Materials and Interfaces, 2013, 5(10): 4173-4180.
[10] SI Chengyan, YE Zunzhong, WANG Yixian, et al. Rapid detection of Escherichia coli O157:H7 using surface plasmon resonance (SPR) biosensor[J]. Spectroscopy and Spectral Analysis, 2011, 31(10): 2598-2601.
[11] TAYLOR A D, LADD J, YU Qiuming, et al. Quantitative and simultaneous detection of four food borne bacterial pathogens with a multi-channel SPR sensor[J]. Biosensors and Bioelectronics, 2006, 22(5): 752-758.
[12] LEUNG P T, POLLARD K D, MALAN G P, et al. Modelling of particleenhanced sensitivity of the surface-plasmon-resonance biosensor[J]. Sensors and Actuators B: Chemical, 1994, 22(3): 175-180.
[13] LIU Xia, SUN Ying, SONG Daqian, et al. Sensitivity-enhancement of wavelength-modulation surface plasmon resonance biosensor for human complement factor 4[J]. Analytical Biochemistry, 2004, 333(1): 99-104.
[14] EUM N S, YEOM S H, KWON D H, et al. Enhancement of sensitivity using gold nanorods-antibody conjugator for detection of E. coli O157: H7[J]. Sensors and Actuators B: Chemical, 2010, 143(7): 784-788.
[15] SAFENKOVA I V, ZHERDEV A V, DZANTIEV B B. Correlation between the composition of multivalent antibody conjugates with colloidal gold nanoparticles and their affinity[J]. Journal of Immunological Methods, 2010, 357(1/2): 17-25.
[16] FRENS G. Controlled nucleation for the regulation of the particle size in monodisperse gold suspensions[J]. Nature, 1973, 241: 20-22.
[17] 王凱. 使用SPR生物傳感器快速檢測(cè)微生物的實(shí)驗(yàn)研究[D]. 長(zhǎng)春:吉林大學(xué), 2003.
[18] 孫秀蘭, 張銀志, 邵景東, 等. 黃曲霉毒素B1抗體和納米金顆粒的相互作用機(jī)理[J]. 高等學(xué)?;瘜W(xué)學(xué)報(bào), 2007, 28(8): 1449-1453.
[19] ZENG Shuwen, YU Xia, LAW W C, et al. Size dependence of AuNP-enhanced surface plasmon resonance based on differential phase measurement[J]. Sensors and Actuators B: Chemical, 2013, 176(1): 1128-1133.
[20] 趙曉君. 表面等離子體子共振化學(xué)和生物傳感器的研究[D]. 長(zhǎng)春:吉林大學(xué), 1999.
Detection of E. coli O157:H7 Based on Au Nanoparticles of Different Sizes Labeled Second Antibody Enhanced Surface Plasmon Resonance
YANG Yang, LI Rongzhuo, MAO Lugang, LIU Xia*
(Hunan Province Key Laboratory of Food Science and Biotechnology, College of Fo od Science and Technology, Hunan Agricultural University, Changsha 410128, China)
Escherichia coli O157:H7 (E. coli O157:H7) was detected by a sandwich method with Au nanoparticles (AuNPs) of different sizes labeled E. col i O157:H7 polyclonal antibody (PAb) as the second antibody and PAb immobilized on the sensor surface as the first anti body using a dual-channel surface plasmon resonance (SPR) sensor. The abil ities of second antibodies labeled with AuNPs of three different sizes to enhance SPR signal were compared. As a result, the optimal AuNPs size was found to be 17.79 nm and the minimum detectable concentration of E. coli O157:H7 was 10 CFU/mL.
AuNPs; E. coli O157:H7; surface plasmon resonance (SPR); labeling; different particle sizes
S951.42
A
1002-6630(2015)08-0201-05
10.7506/spkx1002-6630-201508037
2014-07-18
國家自然科學(xué)基金青年科學(xué)基金項(xiàng)目(31201375);公益性行業(yè)(農(nóng)業(yè))科研專項(xiàng)(201303084)
楊陽(1990—),女,碩士研究生,研究方向?yàn)槭称钒踩c控制。E-mail:769968476@qq.com
*通信作者:劉霞(1976—),女,副教授,博士,研究方向?yàn)槭称贩治觥⑹称窢I養(yǎng)與安全。E-mail:liuxiaspr@aliyun.com