吳學壯張鐵濤于 淼劉 志郭俊剛高秀華?楊福合邢秀梅(.中國農業(yè)科學院飼料研究所,北京0008;.中國農業(yè)科學院特產研究所,吉林省特種經濟動物分子生物學省部共建重點實驗室,長春30)
育成期水貂不同銅源相對生物學利用率和血清生化指標的研究
吳學壯1,2張鐵濤2于 淼2劉 志1郭俊剛1高秀華1?楊福合2邢秀梅2
(1.中國農業(yè)科學院飼料研究所,北京100081;2.中國農業(yè)科學院特產研究所,吉林省特種經濟動物分子生物學省部共建重點實驗室,長春130112)
摘 要:本試驗旨在研究飼糧不同銅源及水平對育成期水貂血清銅、鋅和鐵含量及血清氮代謝、脂類和抗氧化指標影響,以及水貂對不同銅源的相對生物學利用率。選擇60日齡健康、體重接近的水貂240只,隨機分成10組,每組24個重復,每個重復1只貂。試驗采用3×3+1試驗設計,對照組飼喂基礎飼糧,試驗組分別在基礎飼糧中添加3種銅源(硫酸銅、堿式氯化銅、蛋氨酸銅)和3個銅添加水平(10、25、40 mg/kg),預試期7 d,正試期45 d。結果表明:水貂血清銅含量隨飼糧銅添加水平增加呈極顯著線性增加(P=0.000 4)。水貂血清總膽固醇(P=0.001 5)、甘油三酯(P=0.002 1)和高密度脂蛋白膽固醇(P=0.010 1)含量隨飼糧銅添加水平增加呈顯著或極顯著線性降低,然而水貂血清低密度脂蛋白膽固醇含量卻未受飼糧銅添加水平的影響(P=0.579 0)。水貂血清銅藍蛋白和銅鋅超氧化物歧化酶活性均隨飼糧銅添加水平增加呈極顯著線性升高(P=0.000 1)。以血清銅藍蛋白活性為指標,以硫酸銅為參比標準物(100%),堿式氯化銅和蛋氨酸銅的相對生物學利用率分別為109.93%和131.06%。以血清銅鋅超氧化物歧化酶活性為指標,以硫酸銅為參比標準物(100%),堿式氯化銅和蛋氨酸銅的相對生物學利用率分別為111.01%和118.10%。由此可見,飼糧添加40 mg/kg的銅(基礎飼糧銅含量8.05 mg/kg)能提高育成期水貂血清抗氧化酶的活性;育成期水貂3組銅源的相對生物學利用率為:蛋氨酸螯合銅>堿式氯化銅>硫酸銅。
關鍵詞:水貂;硫酸銅;堿式氯化銅;蛋氨酸銅;相對生物學利用率;血清生化指標
銅作為動物的必需微量元素之一,在動物生長發(fā)育、營養(yǎng)物質的代謝繁殖、免疫、凝血等許多方面發(fā)揮著重要作用。飼糧中銅缺乏或過量都會對動物產生不良影響。銅作為金屬酶組成部分參與體內代謝,這些酶包括超氧化物歧化酶、銅藍蛋白(CRE)、酪氨酸酶和細胞色素氧化酶等。Aulerich等[1]研究表明,水貂飼糧中添加25 mg/kg銅(硫酸銅)具有促生長作用。吳學壯等[2]研究表明,飼糧銅添加水平為32 mg/kg時(總銅含量達到39 mg/kg),可促進育成期水貂的生長,提高營養(yǎng)物質消化率。水貂對不同銅源相對生物學利用率的研究目前未見報道。斜率比法是評定微量元素生物利用率最常用的方法[3],它簡單易行,適用于各種元素生物學利用率的測定,且采用多元線性回歸法比簡單線性回歸法更精確[4-5],但所測定的結果是相對生物學利用率。Hansen等[6]采用斜率比法,以血清銅濃度、肝臟銅濃度和CRE活性為判定指標,以硫酸銅為參比標準物的研究表明,甘氨酸螯合銅的相對生物學利用率分別為144%(血清銅)、150%(肝臟銅)和157%(CRE)。國內外專家認為,氨基酸鰲合銅比無機銅(硫酸銅、氧化銅)有更高的消化吸收率和獨特的生理作用[7];也有一些學者報道有機銅與無機銅飼喂動物沒有顯著差異[8-9]。此外,飼糧中銅的添加水平越高,糞便中銅的排泄量也越大,自然環(huán)境受到污染也越嚴重。所以選用高效銅源替代傳統的硫酸銅,對于生態(tài)環(huán)境的改善具有良好的促進作用。迄今為止,國內外關于畜禽適宜銅源的研究主要集中在豬、雞等動物,而對水貂適宜銅源的研究報道較少。因此,本試驗擬研究飼糧中硫酸銅、蛋氨酸銅和堿式氯化銅3種銅源及其不同水平對水貂血清銅、鋅和鐵含量及血清氮代謝、脂類和抗氧化指標的影響,旨在比較不同銅源的相對生物學利用率,為不同銅源在水貂飼糧中的應用提供理論依據和參考。
1.1 試驗設計
試驗采用3×3+1試驗設計,設1個對照組(飼喂基礎飼糧,不添加銅),3種銅源(硫酸銅、堿式氯化銅、蛋氨酸銅)和3個銅水平(10、25、40 mg/kg)。在農業(yè)部長白山野生生物資源重點野外科學觀測試驗站的毛皮動物生產基地隨機選擇240只健康、體重相近的(60±3)日齡水貂,隨機分成10個組,每組24個重復(公母各占1/2),每個重復1只水貂,試驗處理與動物分組見表1。
表1 試驗處理與動物分組Table 1 Experimental treatments and animal grouping
試驗水貂均單籠(40 cm×40 cm×60 cm)飼養(yǎng),每日07:30與15:30各飼喂1次,自由采食,自由飲水,常規(guī)免疫。預試期7 d,正試期45 d。水貂目前沒有統一的飼養(yǎng)標準,參照國內近幾年水貂營養(yǎng)需要量的研究[2,10-12],配制育成期水貂基礎飼糧,其組成及營養(yǎng)水平見表2。
1.2 測定指標及方法
飼養(yǎng)試驗結束后,每組分別選取8只水貂,斷指采血并消毒。每只采血6 mL,置于促凝固管中,靜置待血清析出后3 500 r/min、4℃離心10 min,將分離出的血清分裝在1.5 mL的Eppendorf管中,置于-80℃中保存,備用。
1.2.1 血清銅、鋅和鐵含量
用移液器取2 mL血清于100 mL錐形瓶中,加10 mL優(yōu)級純硝酸,蓋上表面皿放置12 h,置于可調電爐上低溫消煮至近干,將溶液無損失地轉移到10 mL容量瓶中,使用VARIAN SpectrAA?240原子吸收分光光度計進行銅、鋅和鐵含量的測定。
1.2.2 血清氮代謝指標
血清尿素氮(UN)、總蛋白(TP)和白蛋白(ALB)含量及天門冬酸氨基轉移酶(AST)、丙氨酸氨基轉移酶(ALT)、堿性磷酸酶(ALP)活性測定用試劑盒均購自中生北控有限公司,按照試劑盒說明書操作使用VITALIB?E全自動生化分析儀測定。
1.2.3 血清脂類指標及血清抗氧化指標
甘油三酯(triglyceride,TG)測定試劑盒(GPO?PAP法)檢測血清TG含量;總膽固醇(total choles?terol,TC)檢測試劑盒(COD?PAP法)檢測血清TC含量;選擇性清除法測定血清高密度脂蛋白膽固醇(high density lipoprotein cholesterol,HDL?C)、低密度脂蛋白膽固醇(low density lipoprotein choles?terol,LDL?C)含量。試劑盒均購自中生北控生物科技股份有限公司。
血清銅鋅超氧化物歧化酶(Cu?Zn SOD)活性采用抽提法測定,血清CRE活性采比色法測定,以上血清指標均采用南京建成生物工程研究所試劑盒,通過分光光度計測定。別進行單因素方差分析(one?way ANOVA)進行差異顯著性檢驗,組間差異采用Duncan氏法多重比較進行檢驗;銅添加水平的處理效應同時也進行一次線性和二次回歸分析;銅源、銅添加水平以及銅源和銅添加水平的互作效應采用雙因素方差分析進行差異顯著性檢驗。其中P<0.05為差異顯著,P<0.01為差異極顯著。參照Littell等[5],采用多元線性回歸斜率比法計算銅源相對于硫酸銅的相對生物學利用率。分別以血清CRE和Cu?Zn SOD活性為指標,建立的回歸方程為:Y=d+aX1+bX2+cX3,Y為血清CRE活性(U/L)或Cu?Zn SOD活性(U/mL),X1、X2和X3分別為硫酸銅、堿式氯化銅、蛋氨酸銅的添加水平(以銅元素計算,mg/kg),以硫酸銅為參比標準物(100%),堿式氯化銅和蛋氨酸銅的相對生物學利用率分別為b/a×100%和c/a×100%。
表2 基礎飼糧組成及營養(yǎng)水平(風干基礎)Table 2 Composition and nutrient levels of the basal diet(air?dry basis) %
1.3 數據處理
試驗數據采用SAS 9.13軟件GLM程序進行統計分析,性別、銅添加水平和銅源的處理效應分
2.1 飼糧銅源及水平對育成期水貂血清銅、鋅和鐵含量的影響
飼糧銅源及水平對育成期水貂血清銅、鋅和鐵含量影響的結果見表3。3種銅源、性別及銅源及水平的交互作用對育成期水貂血清銅、鋅和鐵含量均沒有顯著影響(P>0.05)。40 mg/kg銅水平組水貂血清銅含量極顯著高于對照組(P<0.01),顯著高于10 mg/kg銅水平組(P<0.05)。線性和二次分析結果顯示,育成期水貂血清銅含量隨銅水平增加呈極顯著線性增加(P=0.000 4)。
2.2 飼糧銅源及水平對育成期水貂血清氮代謝指標的影響
飼糧銅源及水平對育成期水貂血清氮代謝指標影響的結果見表4。雄性水貂血清ALT活性極顯著高于雌性水貂(P<0.01),然而雄性水貂血清TP和ALB含量卻顯著或極顯著低于雌性水貂(P<0.05或P<0.01)。線性和二次分析結果顯示,育成期水貂血清UN含量隨飼糧銅水平增加呈顯著線性降低(P=0.034 4)。雙因素方差分析結果顯示,銅源、銅水平及銅源與水平的交互作用對育成期水貂血清生化指標均沒有顯著影響(P>0.05)。
表3 銅源及水平對育成期水貂血清銅、鋅和鐵含量的影響Table 3 Effects of dietary Cu sources and levels on serum Cu,Zn and Fe content of minks in late growing period mg/L
2.3 飼糧銅源及水平對育成期水貂血清脂類和抗氧化指標的影響
飼糧銅源及水平對育成期水貂血清脂類指標和抗氧化指標影響的結果見表5。銅源與水平的交互作用對育成期水貂血清血清脂類和抗氧化指標均沒有顯著影響(P>0.05)。雌性水貂血清CRE活性顯著高于雄性水貂(P<0.05)。對照組水貂血清CRE活性極顯著低于CuS組、CuC組和CuM組(P<0.01)。對照組水貂血清Cu?Zn SOD活性極顯著低于CuM組(P<0.01),并顯著低于CuS組和CuC組(P<0.05)。隨飼糧銅添加水平增加水貂血清TC(P=0.001 5)、TG(P=0.002 1)和LDL?C(P=0.010 1)含量呈顯著或極顯著線性降低,然而血清HDL?C含量卻未受飼糧銅添加水平的影響(P=0.579 0)。育成期水貂血清CRE和Cu?Zn SOD活性均隨飼糧銅添加水平增加呈極顯著線性升高(P=0.000 1)。
表4 銅源及水平對育成期水貂血清氮代謝指標的影響Table 4 Effects of dietary Cu sources and levels on serum nitrogen metabolism indices of minks in late growing period
2.4 育成期水貂對不同銅源的相對生物學利用率
參照Littell等[5]的方法,采用多元線性回歸斜率比法計算銅源相對于硫酸銅的相對生物學利用率。結果顯示,育成期水貂血清CRE和Cu?Zn SOD活性與銅添加水平之間存在極顯著的線性回歸關系(P<0.01)。
以血清CRE活性為指標,建立的回歸方程為:
Y=18.222 9+0.322 3X1+0.354 3X2+0.422 1X3 (R2=0.584 0,P<0.01)。
式中:Y為血清CRE活性(U/L),X1、X2和X3分別為硫酸銅、堿式氯化銅、蛋氨酸銅的添加水平(以銅元素計算)。以血清CRE活性為指標,以硫酸銅為參比標準物(100%),堿式氯化銅和蛋氨酸銅的相對生物學利用率分別為109.93%和131.06%。
以血清Cu?Zn SOD活性為指標,建立的回歸方程為:
Y=30.470 0+0.577 4X1+0.641 0X2+0.681 9X3 (R2=0.278 8,P<0.01)。
式中:Y為血清Cu?Zn SOD活性(U/mL),X1、X2和X3分別為硫酸銅、堿式氯化銅、蛋氨酸銅的添加水平(以銅元素計算)。以血清Cu?Zn SOD活性為指標,以硫酸銅為參比標準物(100%),堿式氯化銅和蛋氨酸銅的相對生物學利用率分別為111.01%和118.10%。
表5 銅源及水平對育成期水貂血清脂類代謝指標和抗氧化酶活性的影響Table 5 Effects of dietary Cu sources and levels on serum lipid metabolism parameters and antioxidant enzyme activities of minks in late growing period
圖1 血清銅藍蛋白活性與飼糧銅添加水平的線性回歸關系Fig.1 Linear regression relationship of serum CRE activity and dietary Cu supplemental level
圖2 血清銅鋅超氧化物歧化酶活性與飼糧銅添加水平的線性回歸關系Fig.2 Linear regression relationship of serum Cu?Zn SOD activity and dietary Cu supplemental level
3.1 飼糧銅源及水平對育成期水貂血清銅、鋅和鐵含量的影響
Klevay等[13]在研究小鼠銅營養(yǎng)狀態(tài)時指出,肝臟銅對飼糧銅添加水平較敏感,是評價小鼠銅營養(yǎng)狀態(tài)的最好指標,但肝臟的取樣卻不方便。血漿銅在飼糧銅添加水平達到某一臨界值時,會發(fā)生可檢測的變化[14]。因此,血清銅含量或銅藍蛋白活性是反映銅營養(yǎng)狀態(tài)的一個相對敏感的指標[15-16]。在正常生理條件下,血清銅含量主要受飼糧銅添加水平的影響[17]。水貂正常生理條件下血清銅含量為0.4~1.5 mg/L[18-19],與本試驗結果基本一致。Wu等[20]研究水貂銅需要量時發(fā)現,水貂肝臟和血清銅含量都隨飼糧銅添加水平增加而增加。崔偉等[21]發(fā)現血清銅含量隨飼糧銅添加水平增加而顯著增加。
3.2 飼糧銅源及水平對育成期水貂血清氮代謝指標的影響
關于飼糧銅添加水平對水貂血清氮代謝指標影響的研究較少。AST和ALT是反映肝功能的2項重要指標,同時,這2種酶活性的高低是反映蛋白質合成和分解代謝的重要指標。蔣清奎[22]研究表明,谷草轉氨酶(GOT)活性呈現出隨飼糧蛋白質水平升高而增大的趨勢。前期研究表明,水貂飼糧中銅添加水平超過200 mg/kg,會導致血清ALT和AST活性升高[20]。本研究中銅最大添加水平為40 mg/kg,結果表明沒有影響血清ALT和AST活性。前期研究和本研究都表明,正常狀態(tài)下水貂血清的ALT和AST活性分別為150~170 U/L和160~200 U/L。然而,人類正常血清ALT和AST活性分別為5~40 U/L和8~40 U/L,這可能與物種或飼糧(食物)組成有關。水貂為肉食動物,飼糧中蛋白質水平較高,蛋白質合成和分解代謝旺盛,導致血清ALT和AST活性較高。銅與TP、ALB之間相關性的研究報道很少,本次試驗也未發(fā)現銅與它們之間有明顯的關系,此結果與前人的報道[23]一致。血清UN是衡量動物體內蛋白質代謝和氨基酸平衡的一個重要指標[24]。血清UN含量過高會導致尿氮的增加,從而降低了機體對氮的利用率,所以血清UN也是衡量氮沉積的重要指標。本研究表明,飼糧銅元素能夠顯著降低育成期水貂的血清UN含量。
3.3 飼糧銅源及水平對育成期水貂血清脂類指標和抗氧化指標的影響
銅是CRE和Cu?Zn SOD的輔助因子[25-26]。大多數動物(除鳥類),銅在血清中主要以CRE的形式存在,并且主要以CRE的形式輸送到肝臟外的其他組織[27-28]。本研究表明,血清CRE和Cu?Zn SOD活性隨飼糧銅添加水平增加而增強,國內外其他研究結果與本研究結果一致[17,29-30]。
徐晨晨等[32]研究表明,隨飼糧中銅添加水平的增加,血清中TC、TG和LDL?C含量有先降低后升高的趨勢,而HDL?C含量呈現先升高后降低的趨勢。本試驗結果表明,隨飼糧中銅添加水平的增加,血清中TC、TG和LDL?C含量都呈現降低的趨勢,而飼糧中銅的添加沒有影響血清HDL?C含量。崔學平等[33]研究表明,飼糧中添加銅顯著降低了血清中TG含量。銅通過調節(jié)動物體內膽固醇的合成和分解,進而影響體內膽固醇的含量。首先,Kim等[34]研究發(fā)現,小鼠飼喂低銅飼糧時,肝臟細胞中3-羥-3-甲基戊二酰-CoA還原酶(HMG?CoA還原酶)活性增加,HMG?CoA還原酶是肝細胞合成膽固醇過程中的限速酶[35],因此,飼喂低銅飼糧時刻導致小鼠血漿膽固醇含量顯著增加。其次,銅影響膽固醇的降解。膽固醇向膽汁酸的轉化是膽固醇降解最重要的機制,膽固醇7α-羥化酶是在肝臟合成并促使膽固醇轉化成膽酸的限速酶[36]。Tang等[37]研究表明,成年大鼠飼喂低銅飼糧時,膽固醇7α-羥化酶基因相對表達量降低80%,膽固醇7α-羥化酶活性降低,因此膽固醇排出障礙,導致高總膽固醇血癥。
3.4 育成期水貂對不同銅源的相對生物學利用率
硫酸銅是飼糧中最常見的、應用最普遍的銅源。諸多試驗表明,動物對無機銅的利用率較低,使用無機銅添加劑不但會造成銅元素的浪費,而且在某種程度上也會造成環(huán)境的銅污染。近年來氨基酸螯合銅等有機銅產品則因其相對生物學利用率高,可能成為未來飼糧銅元素的主要來源。然而,現有相關文獻報道差異較大,一些學者認為氨基酸鰲合銅比無機銅(硫酸銅、氧化銅)有更高的消化吸收率和獨特的生理作用[7];也有一些學者報道有機銅與無機銅飼喂動物沒有顯著差異[8-9]。李清宏等[38]研究發(fā)現,甘氨酸銅對斷奶仔豬的生物學活性與無機硫酸銅無明顯差異。林月霞等[39]研究表明,堿式氯化銅生物學有效性優(yōu)于硫酸銅,并且堿式氯化銅源飼料中維生素E的氧化穩(wěn)定性明顯優(yōu)于硫酸銅源飼料,堿式氯化銅對肉仔雞的生物安全性明顯高于硫酸銅。
水貂對不同銅源相對生物學利用率的研究未見報道,其他動物對不同銅源相對生物學利用率的研究較多。Luo等[4]研究表明,肉雞對堿式氯化銅相對硫酸銅(100%)的生物學利用率為109%。Guo等[40]研究了賴氨酸銅、蛋白質螯合銅A和蛋白質螯合銅B的相對生物學利用率,發(fā)現賴氨酸銅、蛋白質螯合銅A和蛋白質螯合銅B相對硫酸銅(100%)的生物學利用率分別為111%、109%和105%。本研究與前人的試驗研究結果一致,育成期水貂對有機銅中銅的生物學利用率顯著高于硫酸銅。但也有試驗研究表明,動物對有機銅與無機銅的相對生物學利用率沒有顯著差異[41]。
肝臟銅含量對飼糧銅添加水平較敏感,是評價銅源相對生物學利用率的最好指標,但肝臟的取樣卻不方便。Hansen等[6]采用斜率比法,以CRE活性為判定指標,以硫酸銅為參比標準物的研究表明,甘氨酸螯合銅的相對生物學利用率為157%(CRE)。本研究血清CRE活性是反映育成期水貂銅營養(yǎng)狀況的敏感指標,其與飼糧銅供應量呈正線性相關關系。采用血清CRE活性為判定指標,評價不同銅源的相對生物學利用率是一種較為可靠的方法。此外,有機銅源的相對生物學利用率還與絡合強度有關,因此,在進一步研究中要著重考慮有機銅源的質量。
①在基礎飼糧銅含量為8.05 mg/kg時,飼糧添加40 mg/kg的銅能提高育成期水貂血清CRE 和Cu?Zn SOD的活性。
②育成期水貂3組銅源的相對生物學利用率為:蛋氨酸螯合銅>堿式氯化銅>硫酸銅。以血清CRE活性為指標,以硫酸銅為參比標準物(100%),堿式氯化銅和蛋氨酸銅的相對生物學利用率分別為109.93%和131.06%。以血清Cu?Zn SOD活性為指標,以硫酸銅為參比標準物(100%),堿式氯化銅和蛋氨酸銅的相對生物學利用率分別為111.01%和118.10%。
參考文獻:
[1] AULERICH R J,RINGER R K.Can copper sulphate in mink feed give advantages?[J].Vara Palsdjur,1977,48(3):103-105.
[2] 吳學壯,張鐵濤,崔虎,等.飼糧添加銅水平對育成期水貂生長性能、營養(yǎng)物質消化率及氮代謝的影響[J].動物營養(yǎng)學報,2012,24(6):1078-1084.
[3] 王群,劉艷芬.飼料礦物質微量元素生物學效價評定的研究[J].飼料工業(yè),2006,27(12):42-46.
[4] LUO X G,JI F,LIN Y X,et al.Effects of dietary sup?plementation with copper sulfate or tribasic copper chloride on broiler performance,relative copper bio?availability,and oxidation stability of vitamin E in feed [J].Poultry Science,2005,84(6):888-893.
[5] LITTELL R C,HENRY P,LEWIS A J,et al.Estima?tion of relative bioavailability of nutrients using SAS procedures[J].Journal of Animal Science,1997,75 (10):2672-2683.
[6] HANSEN S L,SCHLEGEL P,LEGLEITER L R,et al.Bioavailability of copper from copper glycinate in steers fed high dietary sulfur and molybdenum[J].Journal of Animal Science,2008,86(1):173-179.
[7] GHEISARI A A,SANEI A,SAMIE A,et al.Effect of diets supplemented with different levels of manga?nese,zinc,and copper from their organic or inorganic sources on egg production and quality characteristics in laying hens[J].Biological Trace Element Re?search,2011,142(3):557-571.
[8] MILES R D,HENRY P R,SAMPATH V C,et al.Rel?ative bioavailability of novel amino acid chelates of manganese and copper for chicks[J].The Journal of Applied Poultry Research,2003,12(4):417-423.
[9] CHENG J B,MA H,FAN C Y,et al.Effects of differ?ent copper sources and levels on plasma superoxide dismutase,lipid peroxidation,and copper status of lambs[J].Biological Trace Element Research,2011,144(1/2/3):570-579.
[10] 張鐵濤,張志強,任二軍,等.飼糧蛋白質水平對育成期水貂營養(yǎng)物質消化率及生長性能的影響[J].動物營養(yǎng)學報,2010,22(4):1101-1106.
[11] 楊穎,劉匯濤,曲勃,等.不同能量水平的干粉料對生長期母貂生長性能、毛皮質量及血清生化指標的影響[J].吉林農業(yè)大學學報,2014,36(2):205-212.
[12] 吳學壯,張鐵濤,楊穎,等.飼糧鋅添加水平對繁殖期雄性水貂繁殖性能、營養(yǎng)物質消化率及氮代謝的影響[J].動物營養(yǎng)學報,2013,25(8):1817-1824.
[13] KLEVAY L M,SAARI J T.Comparative responses of rats to different copper intakes and modes of supple?mentation[J].Experimental Biology and Medicine,1993,203(2):214-220.
[14] O'DELL B L,SUNDE R A.Handbook of nutritionally essential mineral elements[M].Florida,USA:CRC Press,1997.
[15] KEGLEY E B,SPEARS J W.Bioavailability of feed?grade copper sources(oxide,sulfate,or lysine)in growing cattle[J].Journal of Animal Science,1994,72(10):2728-2734.
[16] ARTHINGTON J D,PATE F M,SPEARS J W.Effect of copper source and level on performance and copper status of cattle consuming molasses?based supplements [J].Journal of Animal Science,2003,81(6):1357-1362.
[17] FENG J,MA W Q,GU Z L,et al.Effects of dietary copper(Ⅱ)sulfate and copper proteinate on perform?ance and blood indexes of copper status in growing pigs[J].Biological Trace Element Research,2007,120(1/2/3):171-178.
[18] 王夕國.雌性水貂繁殖期飼糧中錳適宜需要量的研究[D].碩士學位論文.鎮(zhèn)江:江蘇科技大學,2012.
[19] MEJBORN H.Effect of copper addition to mink feed during the growth and moulting period on growth,skin production,and copper retention[J].Scientifur,1989,13(3):229-234.
[20] WU X Z,LIU Z,ZHANG T T,et al.Effects of dietary copper on nutrient digestibility,tissular copper deposi?tion and fur quality of growing?furring mink(Mustela vison)[J].Biological Trace Element Research,2014,158(2):166-175.
[21] 崔偉,李敏,彭西,等.高銅對雛雞腎臟組織結構及生化指標影響的研究[J].畜牧獸醫(yī)學報,2010,41 (1):86-91.
[22] 蔣清奎.繁殖期雌性水貂日糧中適宜蛋白質水平的研究[D].碩士學位論文.北京:中國農業(yè)科學院,2011.
[23] 周明榮,王金法,王宗元,等.銅、鋅、錳、硒對肉雞生長性能和血液中某些生理生化指標等影響的研究[J].畜牧獸醫(yī)學報,1993,24(5):412-422.
[24] 張鐵濤,張志強,劉匯濤,等.飼糧蛋白質水平對冬毛期水貂部分血清生化指標的影響[J].動物營養(yǎng)學報,2011,23(6):1052-1057.
[25] VIVOLI G,BERGOMI M,ROVESTI S,et al.Zinc,copper,and zinc?or copper?dependent enzymes in hu?man hypertension[J].Biological Trace Element Re?search,1995,49(2/3):97-106.
[26] SANTI E,VIERA I,MOMBRù A,et al.Synthesis and characterization of heteroleptic copper and zinc com? plexes with saccharinate and aminoacids.Evaluation of SOD?like activity of the copper complexes[J].Biolog?ical Trace Element Research,2011,143(3):1843-1855.
[27] MEYER L A,DURLEY A P,PROHASKA J R,et al.Copper transport and metabolism are normal in aceru?loplasminemic mice[J].The Journal of Biological Chemistry,2001,276(39):36857-36861.
[28] DAS D,TAPRYAL N,GOSWAMI S K,et al.Regula?tion of ceruloplasmin in human hepatic cells by redox active copper:identification of a novel AP?1 site in the ceruloplasmin gene[J].The Biochemical Journal,2007,402(1):135-141.
[29] KIRCHGESSNER M,KIM J J,GRASSMANN E.Contents of copper and iron and activities of cerulo?plasmin and catalase in blood of growing rats receiv?ing different amounts of iron and copper[J].Zentralbl Veterinarmed A,1983,30(1):15-25.
[30] DISILVESTRO R A.Influence of dietary copper,cop?per injections and inflammation on rat serum cerulo?plasmin activity levels[J].Nutrition Research,1990,10(3):355-358.
[31] 鐘偉,劉鳳華,趙靖波,等.不同銅源對育成期雌性銀狐生長性能、營養(yǎng)物質消化率及血液生化指標的影響[J].動物營養(yǎng)學報,2013,25(10):2489-2496.
[32] 徐晨晨,王寶維,葛文華,等.飼糧中不同水平銅對5~16周齡五龍鵝脂類代謝、抗氧化能力與免疫功能的影響[J].動物營養(yǎng)學報,2014,26(4):908-917.
[33] 崔學平,陳代文,余冰.日糧添加高銅對產蛋雞生產性能和脂質代謝的影響[J].中國畜牧雜志,2007,43(21):30-33.
[34] KIM S,CHAO P Y,ALLEN K G.Inhibition of elevat?ed hepatic glutathione abolishes copper deficiency cholesterolemia[J].The Faseb Journal,1992,6(7):2467-2471.
[35] RANJI P,RAUTHAN M,PITOT C,et al.Loss of HMG?CoA reductase in C.elegans causes defects in protein prenylation and muscle mitochondria[J].PloS One,2014,9(2):e100033.
[36] 曹揚,貝偉劍.膽固醇7α-羥化酶調節(jié)的研究進展[J].廣東藥學院學報,2011,27(6):658-661.
[37] TANG Z R,GASPERKOVA D,XU J,et al.Copper defi?ciency induces hepatic fatty acid synthase gene transcrip?tion in rats by increasing the nuclear content of mature sterol regulatory element binding protein 1[J].The Jour?nal of Nutrition,2000,130(12):2915-2921.
[38] 李清宏,羅緒剛,劉彬,等.飼糧甘氨酸銅對斷奶仔豬血液生理生化指標和組織銅含量的影響[J].畜牧獸醫(yī)學報,2004,35(1):23-27.
[39] 林月霞,呂林,羅緒剛,等.堿式氯化銅對肉仔雞的生物學有效率、飼料中維生素E的氧化穩(wěn)定性和生物安全性研究[J].畜牧獸醫(yī)學報,2006,37(2):141-145.
(責任編輯 武海龍)
[40] GUO R,HENRY P R,HOLWERDA R A,et al.Chemical characteristics and relative bioavailability of supplemental organic copper sources for poultry[J].Journal of Animal Science,2001,79(5):1132-1141.[41] LIU S B,LU L,LI S F,et al.Copper in organic pro?teinate or inorganic sulfate form is equally bioavailable for broiler chicks fed a conventional corn?soybean meal diet[J].Biological Trace Element Research,2012,147(1/2/3):142-148.
A Study of Different Copper Sources Relative Bioavailability and Serum Biochemical Indices of Minks in Late Growing Period
WU Xuezhuang1,2ZHANG Tietao2YU Miao2LIU Zhi1GUO Jungang1GAO Xiuhua1?YANG Fuhe2XING Xiumei2
(1.Institute of Feed Research,Chinese Academy of Agriculture Science,Beijing,100081,China;2.State Key Laboratory for Molecular Biology of Special Economic Animals,Institute of Economic Animal and Plant Science,Chinese Academy of Agriculture Science,Changchun 130112,China)
?Corresponding author,professor,E?mail:xiuhuagao@126.com
Abstract:This experiment was conducted to study the effects of different copper sources and levels on serum copper,zinc and iron contents,nitrogen metabolism,lipid and antioxidant indices of minks in late growing pe?riod,and different copper sources relative bioavailability of minks.Two hundred and forty 60?day?old minks were randomly divided into 10 groups with 24 replicates per group and 1 mink per replicate.The experiment was used in a 3×3+1 factorial experiment design,minks in the control group were fed a basal diet,and minks in other nine groups were fed basal diets supplemented with 3 sources(copper sulfate,tribasic copper chloride and copper methionine)and 3 levels(10,25,and 40 mg/kg).The pre?test period lasted for 7 days,and the trial lasted for 45 days.The results showed as follows:the serum copper content of minks was significant linear increased with dietary copper supplemental level increased(P=0.000 4),the contents of total cholesterol(P=0.001 5),triglyceride(P=0.002 1)and high density lipoprotein cholesterol(P=0.010 1)in serum of minks were significant linear decreased with dietary copper supplemental level increased,but dietary copper supple?mental level had no significant effect on serum high density lipoprotein cholesterol content of minks(P=0.579 0).The activities of ceruloplasmin(CRE)and copper zinc superoxide dismutase(Cu?Zn SOD)in ser?um of minks were significant linear increased with dietary copper supplemental level increased(P=0.000 1).Compared with copper sulfate(100%),the relative bioavailability of tribasic copper chloride and copper me?thionine were 109.93%and 131.06%based on serum CER activity,respectively.Compared with copper sul?fate(100%),the relative bioavailability of tribasic copper chloride and copper methionine were 111.01%and 118.10%based on serum Cu?Zn SOD activity,respectively.The results indicate that dietary supplemented with 40 mg/kg copper(copper content in basal diet is 8.05 mg/kg)can improve serum antioxidant enzyme activity of minks in late growing period,the relative bioavailability of 3 copper sources is copper methionine>tribasic copper chloride>copper sulfate.[Chinese Journal of Animal Nutrition,2015,27(2):485?494]
Key words:minks;copper sulfate;tribasic copper chloride;copper methionine;relative bioavailability;ser?um biochemical indices
通信作者:?高秀華,研究員,博士生導師,E?mail:xiuhuagao@126.com
作者簡介:吳學壯(1985—),男,山東聊城人,博士研究生,從事單胃動物營養(yǎng)研究。E?mail:wuxuezhuang@126.com
基金項目:國家自然資源平臺專項“特種經濟動物種質資源共享平臺”(2005DKA21102)
收稿日期:2014-09-28
doi:10.3969/j.issn.1006?267x.2015.02.019
文章編號:1006?267X(2015)02?0485?10
文獻標識碼:A
中圖分類號:S816.7