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      雞α—干擾素在畢赤酵母中的表達(dá)及其表達(dá)條件優(yōu)化

      2016-01-27 15:39:26董亞青朱文斗王琳琳等
      江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué) 2015年11期
      關(guān)鍵詞:基因表達(dá)干擾素

      董亞青 朱文斗 王琳琳等

      摘要:選擇畢赤酵母表達(dá)系統(tǒng),根據(jù)酵母密碼子偏愛(ài)性合成ChIFN-α成熟肽的基因序列,連接至載體pPIC9K中,構(gòu)建重組質(zhì)粒pPIC9K-α,將重組載體酶切線性后克隆至畢赤酵母GS115,篩選高拷貝轉(zhuǎn)化子及其甲醇利用型,對(duì)其表達(dá)條件進(jìn)行優(yōu)化。結(jié)果表明:雞α-干擾素在畢赤酵母中成功表達(dá),在含2%酸水解酪蛋白,經(jīng)0.5%甲醇在28 ℃誘導(dǎo)表達(dá)72 h后,重組蛋白表達(dá)量最多,抗病毒活性最高。

      關(guān)鍵詞:雞;α-干擾素;畢赤酵母;基因表達(dá);表達(dá)條件

      中圖分類號(hào): S858.31文獻(xiàn)標(biāo)志碼: A文章編號(hào):1002-1302(2015)11-0275-03

      收稿日期:2014-11-27

      基金項(xiàng)目:江蘇省科技支撐計(jì)劃(編號(hào):BE2014380);江蘇農(nóng)牧科技職業(yè)學(xué)院2014年度重點(diǎn)支持項(xiàng)目(編號(hào):NSFZD1405);揚(yáng)州朝天歌農(nóng)牧科技有限公司橫向合作課題(編號(hào):00010114012)。

      作者簡(jiǎn)介:董亞青(1980—),女,江蘇興化人,碩士,講師,主要從事預(yù)防獸醫(yī)學(xué)研究。E-mail: 156815306@qq.com。

      通信作者:王永娟,博士,副教授,主要從事生物工程技術(shù)研究。E-mail:43088591@qq.com。干擾素(IFN)是1種具有抗病毒、調(diào)節(jié)免疫等作用的細(xì)胞因子,由英國(guó)科學(xué)家Isaacs和Lindemann于1957年首次發(fā)現(xiàn)[1]。Lamp等于1963年純化了這種細(xì)胞因子,并證明其為蛋白質(zhì)[2]。干擾素具有一定的特異性,只有同種的生物細(xì)胞產(chǎn)生的干擾素才能起到保護(hù)作用,對(duì)異種生物細(xì)胞則無(wú)作用[3]。根據(jù)細(xì)胞來(lái)源、生化特性及生物學(xué)活性可將其分為兩大類:Ⅰ類、Ⅱ類[4]。雞α-干擾素(ChIFN-α)全基因?yàn)?82個(gè)堿基,編碼193個(gè)氨基酸,包含31個(gè)氨基酸的信號(hào)肽、162個(gè)氨基酸的成熟蛋白[5]。ChIFN-α屬于Ⅰ類干擾素,是禽類主要干擾素,具有抑制病毒復(fù)制、加強(qiáng)NK細(xì)胞殺傷力的能力[6]。本試驗(yàn)根據(jù)酵母密碼子偏愛(ài)性合成ChIFN-α成熟肽的基因序列,克隆至畢赤酵母分泌表達(dá)型載體pPIC9K中,構(gòu)建重組質(zhì)粒pPIC9K-α,電轉(zhuǎn)化至畢赤酵母GS115,篩選并鑒定其甲醇利用型,優(yōu)化其表達(dá)條件,以期獲得表達(dá)量多、抗病毒活性高的重組蛋白,旨在為干擾素應(yīng)用研究提供基礎(chǔ)。

      1材料與方法

      1.1材料

      ChIFN-α序列合成由生工生物工程上海(股份)有限公司完成;畢赤酵母GS115由筆者所在實(shí)驗(yàn)室保存;限制性內(nèi)切酶、連接酶、Preatained Protein 分子量marker均購(gòu)自Fermentas公司;Wizard DNA Clean-up System均購(gòu)自美國(guó)Promega公司;質(zhì)粒提取試劑盒、膠回收試劑盒、培養(yǎng)基等均購(gòu)自北京康為世紀(jì)生物科技有限公司。

      1.2重組質(zhì)粒pPIC9K-α的構(gòu)建

      根據(jù)酵母密碼子偏愛(ài)性合成ChIFN-α成熟肽的基因序列,在其末端加入設(shè)計(jì)好的酶切位點(diǎn),經(jīng)過(guò)酶切、連接將ChIFN-α的基因序列克隆至畢赤酵母分泌表達(dá)型載體pPIC9K中,轉(zhuǎn)化至大腸桿菌DH5α中進(jìn)行擴(kuò)增,提取質(zhì)粒進(jìn)行酶切鑒定。

      1.3重組質(zhì)粒pPIC9K-α的轉(zhuǎn)化及篩選

      制備畢赤酵母感受態(tài),-70℃保存。將鑒定正確的重組質(zhì)粒pPIC9K-α大量制備并純化,經(jīng)SalⅠ 酶切線性并純化后電轉(zhuǎn)化至畢赤酵母GS115感受態(tài)中,將轉(zhuǎn)化菌涂布于不含組氨酸的MD瓊脂平板上,30℃孵育3 d。用含不同濃度G418的YPD平板篩選高拷貝轉(zhuǎn)化子。用MD、MM平板鑒定其甲醇利用型,通常在MD平板上生長(zhǎng)快且MM平板上生長(zhǎng)緩慢或不生長(zhǎng)的為Muts,生長(zhǎng)速度一樣的為Mut+。

      1.4重組質(zhì)粒pPIC9K-α的表達(dá)及抗病毒試驗(yàn)

      挑取生長(zhǎng)于YPD平板上的單菌落,接種于BMGY培養(yǎng)基中培養(yǎng)24 h左右,至D600 nm值為2~6,3 000 g離心3 min,收集菌體沉淀,懸浮于含甲醇的BMMY液體培養(yǎng)基中,至D600 nm值約為1,30 ℃ 230 r/min進(jìn)行誘導(dǎo)表達(dá),每隔24 h補(bǔ)加甲醇至終濃度為0.5%,96 h后收獲培養(yǎng)液,3 000 g離心5 min,收集上清。在雞胚成纖維細(xì)胞-水皰性口炎病毒(CEF-VSV)系統(tǒng)中檢測(cè)重組ChIFN-α的抗病毒活性,在生長(zhǎng)正常的CEF中,分別加入重組的ChIFN-α、病毒和重組ChIFN-α、病毒,培養(yǎng)約36 h,觀察細(xì)胞的生長(zhǎng)情況。

      1.5ChIFN-α成熟肽表達(dá)條件的優(yōu)化

      挑取生長(zhǎng)于YPD平板上的高拷貝重組菌的單菌落,接種于BMGY培養(yǎng)基中培養(yǎng)至D600 nm值為2~6,3 000 g離心3 min,收集菌體沉淀,懸浮于含0.5%甲醇的BMMY培養(yǎng)基中,至D600 nm值約為1,分別從第1天起每隔1 d取發(fā)酵液上清進(jìn)行抗病毒試驗(yàn)。挑取高拷貝重組菌單菌落,同上進(jìn)行誘導(dǎo)表達(dá),誘導(dǎo)溫度分別設(shè)定為20、22、24、26、28、30 ℃,取誘導(dǎo)后72 h培養(yǎng)上清測(cè)其抗病毒活性。挑取高拷貝重組菌單菌落,同上進(jìn)行誘導(dǎo)表達(dá),甲醇質(zhì)量分?jǐn)?shù)分別設(shè)置為0.5、1.0、1.5、2.0、2.5%,取誘導(dǎo)后72 h培養(yǎng)上清測(cè)其抗病毒活性。在培養(yǎng)基中加入酸水解酪蛋白作為競(jìng)爭(zhēng)性底物,酸水解酪蛋白的質(zhì)量分?jǐn)?shù)分別設(shè)置為1%、2%、3%,誘導(dǎo)表達(dá)方法同上。

      2結(jié)果與分析

      2.1重組質(zhì)粒pPIC9K-α的構(gòu)建

      將連接有ChIFN-α基因的pPIC9K轉(zhuǎn)化至大腸桿菌DH5α中,挑去陽(yáng)性菌落進(jìn)行擴(kuò)增,提取質(zhì)粒,用EcoRⅠ、SnalBⅠ進(jìn)行雙酶切,顯示結(jié)果正確(圖1)。

      2.2重組質(zhì)粒pPIC9K-α的轉(zhuǎn)化及篩選

      將重組質(zhì)粒pPIC9K-α電轉(zhuǎn)化至畢赤酵母GS115感受態(tài)細(xì)胞中,將MD瓊脂平板上的陽(yáng)性克隆用含不同質(zhì)量濃度G418的YPD平板篩選高拷貝轉(zhuǎn)化子,獲得4株抗4 mg/mL G418的高拷貝轉(zhuǎn)化子及5株抗3 mg/mL G418的高拷貝轉(zhuǎn)化子。用MD、MM平板鑒定其甲醇利用型,結(jié)果顯示均為Mut+。

      2.3重組質(zhì)粒pPIC9K-α的表達(dá)及細(xì)胞毒性試驗(yàn)

      接毒約36 h后,正常生長(zhǎng)的GEFs基本未出現(xiàn)病變(圖2-1),加入了重組ChIFN-α的正常生長(zhǎng)的CEFs情況更加良好(圖2-2),加入了病毒和重組ChIFN-α的細(xì)胞(圖2-3)與只加病毒組細(xì)胞(圖2-4) 相比, 細(xì)胞殘缺程度明顯較輕。4mg/mLG418抗性的重組酵母菌株的表達(dá)水平

      與3 mg/mL G418抗性重組酵母菌株相當(dāng),不存在拷貝數(shù)依賴性。

      2.4ChIFN-α成熟肽表達(dá)條件的優(yōu)化

      誘導(dǎo)24 h所得的抗病毒效果不明顯,1~3 d重組蛋白的活性增強(qiáng),3 d后活性有所下降(圖3)。不同溫度誘導(dǎo) 3 d 后,28 ℃搖瓶發(fā)酵培養(yǎng)時(shí),重組蛋白的活性最高(圖4)。不同甲醇質(zhì)量分?jǐn)?shù)時(shí),0.5%甲醇誘導(dǎo)表達(dá)的重組蛋白活性最高(圖5)。在培養(yǎng)基中加入酸水解酪蛋白作為競(jìng)爭(zhēng)性底物時(shí),當(dāng)酪蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù)為2%時(shí),重組蛋白活性最強(qiáng)(圖6)。

      綜上所述,重組蛋白ChIFN-α最佳誘導(dǎo)表達(dá)條件為:在含2%酸水解酪蛋白、經(jīng)0.5%甲醇28 ℃誘導(dǎo)表達(dá)3 d后,重組蛋白表達(dá)量最多,抗病毒活性最高。

      3結(jié)論與討論

      我國(guó)養(yǎng)禽業(yè)規(guī)模及總量均居世界首位[7],但禽病仍然阻礙養(yǎng)禽業(yè)發(fā)展,給養(yǎng)禽業(yè)帶來(lái)了巨大的經(jīng)濟(jì)損失。一些禽病的治療及預(yù)防缺乏有效手段。因此,尋求安全、高效的治療制

      劑和預(yù)防制劑迫在眉睫。干擾素是多功能的糖蛋白,與免疫球蛋白不同,它不具有免疫球蛋白的抗體特異性,但其具備廣譜的抗病毒活性及強(qiáng)大的免疫調(diào)節(jié)作用[8-10],對(duì)防治禽病具有重要意義。由于天然的干擾素在機(jī)體內(nèi)表達(dá)量甚微,無(wú)法滿足臨床需要,因此人們利用基因工程技術(shù)來(lái)研究開(kāi)發(fā)高效生產(chǎn)干擾素,用于防治病毒性疾病[11]。本研究利用畢赤酵母表達(dá)體系表達(dá)制備了ChIFN-α,構(gòu)建了畢赤酵母分泌型表達(dá)載體pPIC9K-α,獲得了高拷貝重組酵母菌株,對(duì)重組酵母菌進(jìn)行誘導(dǎo),使重組蛋白獲得了較高水平表達(dá),且具有良好的抗病毒活性,解決了原核表達(dá)系統(tǒng)抗菌肽生產(chǎn)過(guò)程中普遍存在的表達(dá)量低、活性低、成本高等問(wèn)題,為禽病防治奠定了良好的基礎(chǔ)。

      參考文獻(xiàn):

      [1]Isaaca A,Lindenmann J. Virus interference:1. The interferon[J]. Proc R Soc Lond Ser,1957,147:258-263.

      [2]Lamp S P,TytellA A,Nemes M M,et al. Purification and characterization of chick embryo interferon[J]. Proceedings of the Society for Experimental Biology and Medicine,1963,112:468-478.

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      :278-280.

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