吳超琛,張 曉
(廣東省人民醫(yī)院風濕內科,廣州 510080)
間質性肺病(interstitial lung disease,ILD)是一類具有相似的影像學、病理學和臨床表現特點的肺臟薄壁組織炎癥性疾病。結締組織病(connective tissue disease,CTD)作為一類病因明確的疾病,包括硬皮病(systemic sclerosis,SSc)、皮肌炎/多發(fā)性肌炎(dermatomysitis/polymysitis,DM/PM)、類風濕關節(jié)炎(rheumatoid arthritis,RA)、系統(tǒng)性紅斑狼瘡(systemic lupus erythematosus,SLE)、原發(fā)性干燥綜合征(primary Sj?gren syndrome,pSS)、混合性結締組織病(mixed connective tissue disease,MCTD)和未分化的結締組織病(undifferentiated connective tissue disease,UCTD)等,其合并ILD的發(fā)生率分別為SSc 55%~65%,DM/PM 5%~30%,RA 10%~12%,SLE 3%,pSS 0.1%~3%[1]。研究認為,結締組織病相關間質性肺病(connective tissue disease-associated interstitial lung disease,CTD-ILD)的發(fā)生、發(fā)展由炎癥啟動,造成肺泡上皮受損,激活原位肺成纖維細胞及肌成纖維細胞,通過轉化生長因子β(transforming growth facfor-β,TGF-β)依賴的經典通路調節(jié)受損肺組織的纖維化相關的微環(huán)境;此外還發(fā)現,自身抗體與CTD-ILD具有相關性,但是具體機制尚不明確[2]。2013年美國胸科學會-歐洲呼吸學會(American Thoracis-European Respiratory Society,ATS-ERS)對特發(fā)性間質性肺炎的分類進行了重新修訂,這次新分類把特發(fā)性間質性肺炎分為主要的、罕見的和不可分類三大類,而所有肺間質病變的病理類型在CTD-ILD中都可找到,并且在同一例患者身上可同時出現多種病理類型,目前主要分為尋常型間質性肺炎(usual interstitial pneumonia,UIP)、非特異性間質性肺炎(fibrotic non-specific interstitial pneumonia,NSIP)及其他類型如淋巴細胞性間質性肺炎(lymphoid interstitial pneumonia,LIP)、隱源性機化性肺炎(cryptogenic organizing pneumonia,COP)等[3]。目前臨床上診斷CTD-ILD主要依靠高分辨率CT(high-resolution computed tomography,HRCT)、肺活檢和肺功能檢測。HRCT和肺活檢病理在UIP的診斷上特異度高達96%,由于HRCT高度敏感,一些亞臨床的征象被過度解讀,且其具有放射性,費用較高,患者接受度不佳[2]。目前獲取肺組織的方法包括開胸肺活檢、胸腔鏡下肺活檢及CT引導下經皮肺穿刺活檢三種,開胸肺活檢創(chuàng)傷大且患者不易接受,現臨床已很少開展;胸腔鏡下肺活檢極少引起開胸肺活檢常見的并發(fā)癥,同時取材滿意,但患者對有創(chuàng)檢查的接受度及配合度低;而CT引導下經皮肺活檢,簡單易行且損傷小,并可提前確定和調整進針角度及深度,具有更高的安全性,但缺點是無法做到多點取材。肺功能檢查安全易行,且彌散功能下降是診斷CTD-ILD公認的依據之一,但肺功能檢查的重復性較差,在不同實驗室進行的肺功能檢查,一氧化碳彌散量(carbon monoxide diffusing capacity,DLCO)變異很大,這種差異受具體機器型號及患者的配合程度等影響[2]。肺泡灌洗液(bronchoalveolar lavage fluid,BALF)的細胞計數由于變化大、特異性小,其診斷和預后價值仍具有爭議[4]。因此尋找簡便、易行、可靠的早期診斷方法成為一種趨勢。
表面活性蛋白A(surfactant protein A,SP-A)和SP-D是由Ⅱ型肺泡上皮細胞合成和分泌的一種脂蛋白,不僅能夠降低肺泡表面張力,而且在肺的宿主防御反應中起重要作用。在SSc-ILD患者中,SP-D檢測ILD的敏感度高于SP-A,特異度低于SP-A[5- 6];SP-D水平與HRCT最大纖維化評分呈正相關,與用力肺活量(forced vital capacity,FVC)、肺活量(vital capacity,VC)、DLCO等指標呈負相關[5]。研究表明,在SSc-ILD、DM/PM-ILD患者中血清SP-A和SP-D升高,提示肺纖維化的活動度及惡化趨勢[5,7]。Arai等[7]證實,DM/PM-ILD患者SP-D水平在開始治療4周內持續(xù)升高,提示治療效果不佳,應當結合其他指標考慮調整治療方案。
糖蛋白(Krebs vonden lungen- 6,KL- 6)是由Ⅱ型肺泡細胞和呼吸性細支氣管上皮細胞分泌的一種大分子量糖蛋白(200 kDa),在細胞增生或損傷后增加,具有促進纖維母細胞增殖,抑制其凋亡,介導成肌纖維細胞分化的功效,且在不同類型的CTD-ILD疾病中均升高。一項單中心的回顧性縱向研究顯示,SSc-ILD患者KL- 6滴度升高的試驗組死亡風險增加,環(huán)磷酰胺治療后滴度可降低,故認為KL- 6有望成為肺纖維化嚴重程度評估的指標,但此研究對ILD的活動度評價價值尚不能確定[8]。亦有研究表明,血清KL- 6升高同SSc-ILD患者的BALF嗜酸粒細胞計數增加及HRCT顯示磨玻璃樣變的結果相一致,認為KL- 6對ILD的發(fā)生和發(fā)展有評估作用[9];Oyama等[10]研究發(fā)現,血清KL- 6值升高的RA患者大部分被診斷為活動性間質性肺炎,且隨著肺間質改變累及范圍的增加血清值亦升高,認為KL- 6的異常升高可反映間質性肺炎肺細胞損傷及肺部受累的程度。另外DM/PM-ILD患者血清KL- 6水平與其肺功能參數呈負相關,且對診斷ILD的敏感度及特異度均較高[11]。
目前已經認識到自身抗體參與CTD的病理生理過程和組織損傷,其中不同類型的抗體提示不同CTD-ILD的發(fā)生、發(fā)展及預后情況。現有研究發(fā)現,與DM/PM-ILD相關的自身抗體有:抗臨床無肌病性皮肌炎-140(clinically amyopathic DM-140,CADM-140)、抗氨酰tRNA合成酶(aminoacyl-tRNA synthetases antibodies,ARS)、抗Mi-2、抗p155/140(TIF1γ)抗體;與SSc-ILD相關的自身抗體有:抗U11/U12 RNP、抗Scl-70、抗ACA/CENP(A-E)、抗histone抗體;與RA-ILD相關的自身抗體有:抗環(huán)瓜氨酸肽(cysic citrullinated peptides,CCP)、抗PAD3/4XR抗體[12](表1)。其中相關性較高、預測能力較強的抗體為抗ARS、抗CADM-140、抗CCP抗體。
表1 自身抗體與CTD-ILD的關系Table 1 Relationship of autoantibody and CTD-ILD
++表示嚴重ILD;+表示與ILD相關;SSc:硬皮病;RA:類風濕關節(jié)炎;PM/DM:多發(fā)性肌炎/皮肌炎;MCTD:混合性結締組織炎;pSS:原發(fā)性干燥綜合征;SLE:系統(tǒng)性紅斑狼瘡;UCTD:未分化的結締組織病;CTD-ILD:結締組織病-間質性肺病
抗ARS抗體屬于肌炎特異性抗體(myositis-specific autoantibodies,MSAs),目前已經確認和報道的有八種類型:抗Jo-1、抗PL-7、抗EJ、抗PL-12、抗KS、抗OJ、抗ZO和抗Ha抗體[13]。其中抗Jo-1抗體對肌炎相關的ILD預測能力最強[13];而抗PL-7、抗EJ抗體陽性與有肺臟受累的肌炎患者更相關[14];抗PL-12、抗KS和抗OJ抗體在人群中陽性率低,但抗體檢測陽性高度提示孤立性的ILD[15]。有研究發(fā)現,抗ARS抗體陽性患者的預后及免疫抑制劑對其治療效果好[16]。而抗Jo-1抗體陰性組患者的生存率比抗Jo-1抗體陽性組低,作者將其歸因于對抗Jo-1抗體陰性組ILD診斷的滯后[17]。
抗CADM-140抗體以黑色素瘤分化相關基因5 anti-citrullinated protein/peptide autoantibodies,(melanoma differentiation-associated gene 5,MDA5)為靶抗原,多見于東亞地區(qū)人群。在DM患者中,抗CADM-140抗體是急性進展性ILD(rapidly progressive interstitial lung disease,RPILD)的獨立危險因素,抗體滴度高可提示疾病活動及嚴重程度,治療后抗體滴度水平下降可表明疾病緩解[18]。
抗瓜氨酸化蛋白/肽抗體(ACPAs)是機體針對瓜氨酸化的蛋白、肽鏈產生的抗體。RA-ILD患者中,抗CCP抗體滴度越高的患者其CT評分越高,且這些患者常伴有肺功能障礙和彌散功能受損[12]。英國一項多中心研究納入230例RA-ILD患者,研究發(fā)現抗CCP抗體與是否合并ILD具有強相關性(OR=4)[19]。
Harlow等[20]從RA患者的瓜氨酸化抗CCP抗體的蛋白提取物中分離出抗瓜氨酸化的熱休克蛋白90的同型抗體(anti-citrullinated Hsp90 α/β antibodies),認為該抗體在肺臟產生和成熟,可將其作為區(qū)分ILD陽性組與ILD陰性組的自身抗體標志物,其診斷RA-ILD的敏感度和特異度分別為54%和75%。
基質金屬蛋白酶(matrixmetalloproteinases,MMPs)是一類鋅依賴的蛋白酶,具有降解細胞外基質和裂解膠原分子的功能,基質金屬蛋白酶組織抑制因子(tissue inhibitor of metalloproteinasas,TIMPs)是MMPs抑制劑,在炎癥反應時炎性細胞和巨噬細胞MMPs和TIMPs表達增加,加劇炎癥反應和促進纖維化進程,引起肺組織損傷和重構,導致肺功能下降[21]。在SSc-ILD患者中,血清MMP-12水平的上升與FVC的下降更為相關,而BALF中MMP-9濃度上升與中性粒細胞、肥大細胞計數升高保持一致,與肺總量(total lung capacity,TLC)下降也呈明顯正相關性[22]。RA-ILD患者MMP-7的血清濃度上升時,患者肺部臨床表現加重,DLCO和FVC也下降顯著[21]。Oka等[23]研究發(fā)現CTD-ILD死亡組中,處于急性起病期的患者血清MMP-3/TIMP-1比值相較于穩(wěn)定期患者明顯下降,而在生存組中不同疾病時期的比值無差異,所以認為該比值可反映CTD-ILD患者急性起病的預后。
去整合素樣金屬蛋白酶12(A disintegrin and metalloproteinase domain 12,ADAM12)又稱融合素α,是一類細胞膜表面具備多功能的糖蛋白家族成員之一,具有金屬蛋白酶的特性,在細胞分化、黏附、融合和相互作用過程中發(fā)揮重要作用。Taniguchi等[24]對61例SSc患者血清ADAM12-S進行檢測,發(fā)現病程≤6年的SSc患者血清ADAM12-S水平相對于健康組有明顯升高,且與HRCT評分、FVC、C-反應蛋白(C-reactive protein,CRP)水平有顯著相關性,但病程>6年的SSc患者ADAM12-S水平同健康組并無明顯差異,所以認為ADAM12-S的血清值能一定程度反映ILD疾病的炎癥活動情況。
CCL和CXCL家族的趨化因子對單核細胞、T淋巴細胞等有較強的趨化作用,參與CTD患者受損肺組織的修復和重構過程,其血清和BALF的水平變化能反映ILD疾病的活動及預后情況。
CCL2又稱為單核細胞趨化因子(monocyte chemotactic protein 1,MCP1),SSc-ILD疾病終末期的CCL2濃度升高相對于穩(wěn)定期和進展期有統(tǒng)計學意義,同時伴有HRCT評分升高,DLCO、FVC、TLC下降,對臨床上評估ILD嚴重程度有一定的提示作用[25]。CCL18又稱肺活化調節(jié)的趨化因子(pulmonary and activation regulated chemokine,PARC),一項回顧性隊列研究發(fā)現,血清CCL18水平>187 ng/ml時能獨立預測SSc-ILD的病情惡化,敏感度和特異度分別為53%和96%,隨后對該組患者平均隨訪(33.4±10.8)個月,患者肺功能惡化風險增加,校正風險比為5.36[26]。
CXCL10又稱為干擾素γ誘導蛋白10(interferon gamma-induced protein 10,IP10),由Th1淋巴細胞分泌,Antonelli等[27]將72例新診斷的SSc患者與健康者進行性別和年齡的配對后,檢測發(fā)現SSc新確診患者血清CXCL10水平相對健康組有明顯上升,其中SSc-ILD的患者CXCL10水平顯著高于未合并ILD的患者,研究人員認為CXCL10高水平有助于臨床判斷SSc合并肺受累,隨后對SSc患者隨訪5年,復測CXCL10水平反而明顯下降,考慮疾病由早期炎癥主導階段(Th1為主)向后期非炎癥和纖維化階段(Th2為主)轉換。CXCL12又稱為基質細胞衍生因子-1(stromal cell derived factor 1,SDF-1),SSc-ILD患者肺組織CXCL12及其受體CXCR4表達上調,通過CXCL12/CXCR4生物軸能促進纖維細胞向肌成纖維細胞轉化和細胞外基質沉積,加速肺纖維化發(fā)病進程[28]。
CXCL4即血小板因子4(platelet factor 4),抑制具有抗纖維化功能的細胞因子INF-γ表達,上調白細胞介素(interleukin,IL)- 4、IL-13,刺激抑制功能受損的調節(jié)性T細胞增殖,van Bon等[29]研究發(fā)現,CXCL4不僅與SSc患者皮膚和肺部疾病強相關,還能預測不同類型SSc的疾病進展,提出檢測CXCL4對SSc-ILD早期診斷、纖維化評估和采取何種臨床治療方案均有較好的指導作用。
IL是由單核巨噬細胞和T淋巴細胞分泌的具有某些非特異性免疫調節(jié)作用且在炎癥反應中起關鍵作用的細胞因子,對細胞的生長、分化起重要調節(jié)作用。SSc-ILD患者血清IL-21水平升高,IL-17、IL-23水平明顯降低,且IL-17水平與疾病病程長短呈負相關,與HRCT評分呈正相關,IL-23濃度與DLCO、TLC、6分鐘步行試驗呈負相關,認為這些Th17相關的細胞因子參與SSc-ILD的發(fā)生[30]。DM/PM-ILD患者IL- 6、IL- 8水平明顯升高,其中IL- 8水平在抗MDA5抗體相關的ILD組顯著高于抗ARS抗體相關的ILD組,而IL- 4/IFN-γ比值結果相反,故認為IL- 4、IFN-γ之間的平衡和IL- 8參與不同抗體相關的ILD組的病理生理過程[31]。
賴氨酰氧化酶(lysyl-oxidase,LOX)是銅離子依賴的胺氧化酶,能夠在細胞外基質氧化膠原蛋白和彈性蛋白上的特殊氨基酸殘基,目前有望成為預測SSc相關纖維化和疾病嚴重程度的新興生物標志物。已有研究報道SSc患者血清LOX水平升高與皮膚纖維化明確相關,Rimar等[32]研究發(fā)現,大部分血清LOX水平升高的患者合并有肺纖維化,且同時伴有FVC下降,但仍需后續(xù)研究證實LOX與肺纖維化的關系。
小窩蛋白-1(caveolin-1)是支架蛋白,介導單核細胞及其來源的細胞的功能和信號轉導。SSc-ILD患者,單核細胞中caveolin-1水平下降,單核細胞表型及遷移活性改變,分化為纖維細胞聚集于肺臟促進ILD的發(fā)生[28]。此外,非裔美國人單核細胞中caveolin-1基線水平低,使得SSc患者更易合并ILD[33]。
幾丁質酶1(chitinase 1)為真性甲殼素酶,甲殼質酶3類似物1(YKL- 40)屬于甲殼素酶樣蛋白。Nordenbk等[34]研究發(fā)現,SSc-ILD組患者血清YKL- 40水平較非ILD組明顯升高,平均生存時間縮短。
S100A8/A9又名鈣結合蛋白(calprotectin),是Toll樣受體4(TLR4)的內源性配體,而TLR4信號通路能促進纖維母細胞增殖和肺纖維化的發(fā)生[35]。而在SSc-ILD患者中,發(fā)現血清和BALF中S100A8/A9濃度明顯升高[9,35]。
另外,有研究發(fā)現生長分化因子15(GDP-15)、Clara細胞蛋白16(Clara-cell protein 16,CC16)、固生蛋白(tenascin-C)、軟骨寡聚基質蛋白(cartilage oligomeric matrix protein,COMP)、胸腺素(thymosin β4)、可溶性選擇素糖蛋白配體(soluble p-selection glycoprotein ligand-1,sPSGL-1)等與CTD-ILD發(fā)病機制可能相關,是否可成為生物標志物還有待進一步研究。
目前,KL- 6、SP-D等作為ILD的生物標志物,因其較高的敏感度和特異度已被廣泛證實且逐步應用于臨床,對并發(fā)ILD發(fā)生率較高的SSc和DM/PM具有較好的指導意義,但大多數生物標志物尚處于實驗室研究認證階段,且缺乏疾病特異性(表2)。生物標志物在CTD-ILD的診斷、嚴重度的評估、疾病進展的預測、治療效果的評估等方面的作用尚需多中心、大樣本的研究及長期的隨訪去驗證。近年精準醫(yī)學被重視,基因組學、蛋白質組學等多種技術平臺逐漸應用于生物標志物的研究,這也給發(fā)現有價值的生物標志物帶來了契機。
[1]Bryson T,Sundaram B,Khanna D,et al.Connective Tissue Disease-Associated Interstitial Pneumonia and Idiopathic Interstitial Pneumonia:Similarity and Difference[J].Semin Ultrasound CT MR,2014,35:29-38.
[2]Wells AU,Denton CP.Interstitial lung disease in connective tissue disease—mechanisms and management[J].Nat Rev Rheumatol,2014,10:728-739.
[3]Travis WD,Costabel U,Hansell DM,et al.An official American Thoracic SocietyEuropean Respiratory Society statement:Update of the international multidisciplinary classification of the idiopathic interstitial pneumonias[J].Am J Respir Crit Care Med,2013,188:733-748.
[4]Bonella F,Costabel U.Biomarkers in Connective Tissue Disease-Associated Interstitial Lung Disease[J].Semin Respir Crit Care Med,2014,35:181-200.
[5]Elhaj M,Charles J,Pedroza C,et al.Can Serum Surfactant Protein D or CC-Chemokine Ligand 18 Predict Outcome of Interstitial Lung Disease in Patients with Early Systemic Sclerosis?[J].J Rheumatol,2013,40:1114-1120.
[6]Takahashi H,Kuroki Y,Tanaka H,et al.Serum levels of surfactant proteins A and D are useful biomarkers for interstitial lung disease in patients with progressive systemic sclerosis[J].Am J Respir Crit Care Med,2000,162:258-263.
[7]Arai S,Kurasawa K,Maezawa R,et al.Marked increase in serum KL- 6 and surfactant protein D levels during the first 4 weeks after treatment predicts poor prognosis in patients with active interstitial pneumonia associated with polymyositisdermatomyositis[J].Mod Rheumatol,2013,23:872- 883.
[8]Kumanovics G,Gorbe E,Minier T,et al.Follow-up of serum KL- 6 lung fibrosis biomarker levels in 173 patients with systemic sclerosis[J].Clin Exp Rheumatol,2014,32:138-144.
表2 CTD-ILD相關的主要生物標志物Table 2 Key biomarkers related to CTD-ILD
DLCO:一氧化碳彌散量;FVC:用力肺活量;PFT:肺功能檢測;TLC:肺總量;6MWT:6分鐘步行試驗;CTD-ILD:結締組織病-間質性肺病;SSc:硬皮病;DM:多發(fā)性肌炎;RA:類風濕關節(jié)炎;MCTD:混合性結締組織炎;BALF:支氣管肺泡灌洗液
[9]Hesselstrand R,Wildt M,Bozovic G,et al.Biomarkers from bronchoalveolar lavage fluid in systemic sclerosis patients with interstitial lung disease relate to severity of lung fibrosis[J].Respir Med,2013,107:1079-1086.[10] Oyama T,Kohno N,Yokoyama A,et al.Detection of interstitial pneumonitis in patients with rheumatoid arthritis by measuring circulating levels of KL- 6,a human MUC1 mucin[J].Lung,1997,175:379-385.
[11] Fathi M,Barbasso Helmers S,Lundberg IE.KL- 6:a serological biomarker for interstitial lung disease in patients with polymyositis and dermatomyositis[J].J Intern Med,2012,271:589-597.
[12] Giles JT,Danoff SK,Sokolove J,et al.Association of fine specificity and repertoire expansion of anticitrullinated peptide antibodies with rheumatoid arthritis associated interstitial lung disease[J].Ann Rheum Dis,2014,73:1487-1494.
[13] Cruellas M,Viana V,Levy-Neto M,et al.Myositis-specific and myositis-associated autoantibody profiles and their clinical associations in a large series of patients with polymyositis and dermatomyositis[J].Clinics (Sao Paulo),2013,68:909-914.
[14] de Souza F,Cruellas M,Levy-Neto M,et al.Anti-synthetase syndrome:anti-PL-7,anti-PL-12 and anti-EJ[J].Rev Bras Reumatol,2013,53:352-357.
[15] Hamaguchi Y,Fujimoto M,Matsushita T,et al.Common and distinct clinical features in adult patients with anti-aminoacyl-tRNA synthetase antibodies:heterogeneity within the syndrome[J].PLoS One,2013,8:e60442.
[16] Schneider F,Yousem SA,Bi D,et al.Pulmonary pathologic manifestations of anti-glycyl-tRNA synthetase (anti-EJ)-related inflammatory myopathy[J].J Clin Pathol,2014,67:678- 683.
[17] Aggarwal R,Cassidy E,Fertig N,et al.Patients with non-Jo-1 anti-tRNA-synthetase autoantibodies have worse survival than Jo-1 positive patients[J].Ann Rheum Dis,2013,73:227-232.
[18] Sato S,Kuwana M,Fujita T,et al.Anti-CADM-140MDA5 autoantibody titer correlates with disease activity and predicts disease outcome in patients with dermatomyositis and rapidly progressive interstitial lung disease[J].Mod Rheumatol,2013,23:496-502.
[19] Kelly CA,Saravanan V,Nisar M,et al.Rheumatoid arthritis-related interstitial lung disease:associations,prognostic factors and physiological and radiological characteristics-a large multicentre UK study[J].Rheumatology (Oxford),2014,53:1676-1682.
[20] Harlow L,Gochuico BR,Rosas IO,et al.Anti-citrullinated heat shock protein 90 antibodies identified in bronchoalveolar lavage fluid are a marker of lung-specific immune responses[J].Clin Immunol,2014,155:60-70.
[21] Chen J,Ascherman DP.Peripheral blood biomarkers of rheumatoid arthritis-associated interstitial lung disease[J].Arthritis Rheumatol,2013,6510:S174.
[22] Manetti M,Guiducci S,Romano E,et al.Increased serum levels and tissue expression of matrix metalloproteinase-12 in patients with systemic sclerosis:correlation with severity of skin and pulmonary fibrosis and vascular damage[J].Ann Rheum Dis,2012,71:1064-1072.
[23] Oka S,Furukawa H,Shimada K,et al.Serum biomarker analysis of collagen disease patients with acute-onset diffuse interstitial lung disease[J].BMC Immunol,2013,14:9.
[24] Taniguchi T,Asano Y,Akamata K,et al.Serum levels of ADAM12-S:possible association with the initiation and progression of dermal fibrosis and interstitial lung disease in patients with systemic sclerosis[J].J Eur Acad Dermatol Venereol,2013,27:747-753.
[25] Schmidt K,Martinez-Gamboa L,Meier S,et al.Bronchoalveoloar lavage fluid cytokines and chemokines as markers and predictors for the outcome of interstitial lung disease in systemic sclerosis patients[J].Arthritis Res Ther,2009,11:R111.
[26] Tiev KP,Hua-Huy T,Kettaneh A,et al.Serum CC chemokine ligand-18 predicts lung disease worsening in systemic sclerosis[J].Eur Respir J,2011,38:1355-1360.
[27] Antonelli A,Ferri C,Fallahi P,et al.CXCL10 (α) and CCL2 (β) chemokines in systemic sclerosis a longitudinal study[J].Rheumatology (Oxford),2008,47:45- 49.
[28] Tourkina E,Bonner M,Oates J,et al.Altered monocyte and fibrocyte phenotype and function in scleroderma interstitial lung disease:reversal by caveolin-1 scaffolding domain peptide[J].Fibrogenesis Tissue Repair,2011,4:15.
[29] van Bon L,Affandi AJ,Broen J,et al.Proteome-wide Analysis and CXCL4 as a biomarker in systemic sclerosis[J].N Engl J Med,2014,370:433- 443.
[30] Olewicz-Gawlik A,Danczak-Pazdrowska A,Kuznar-Kaminska B,et al.Interleukin-17 and interleukin-23:importance in the pathogenesis of lung impairment in patients with systemic sclerosis[J].Int J Rheum Dis,2014,17:664- 670.
[31] Gono T,Kaneko H,Kawaguchi Y,et al.Cytokine profiles in polymyositis and dermatomyositis complicated by rapidly progressive or chronic interstitial lung disease[J].Rheumatology (Oxford),2014,53:2196-2203.
[32] Rimar D,Rosner I,Nov Y,et al.Brief report:lysyl oxidase is a potential biomarker of fibrosis in systemic sclerosis[J].Arthritis Rheumatol,2014,66:726-730.
[33] Reese C,Perry B,Heywood J,et al.Caveolin-1 Deficiency May Predispose African Americans to Systemic Sclerosis-Related Interstitial Lung Disease[J].Arthritis Rheumatol,2014,66:1909-1919.
[35] van Bon L,Cossu M,Loof A,et al.Proteomic analysis of plasma identifies the Toll-like receptor agonists S100A8A9 as a novel possible marker for systemic sclerosis phenotype[J].Ann Rheum Dis,2014,73:1585-1589.
[36] Antonelli A,Fallahi P,Ferrari SM,et al.Systemic sclerosis fibroblasts show specific alterations of interferon-gamma and tumor necrosis factor-alpha-induced modulation of interleukin 6 and chemokine ligand 2[J].J Rheumatol,2012,39:979-985.
[37] De Lauretis A,Sestini P,Pantelidis P,et al.Serum interleukin 6 is predictive of early functional decline and mortality in interstitial lung disease associated with systemic sclerosis[J].J Rheumatol,2013,40:435- 446.