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      響應(yīng)面法對大豆花粉離體萌發(fā)主要影響因子的優(yōu)化

      2016-05-03 18:00王昌陵曹永強(qiáng)張立軍王文斌閆春娟
      江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué) 2016年3期
      關(guān)鍵詞:萌發(fā)響應(yīng)面法優(yōu)化

      王昌陵+曹永強(qiáng)+張立軍+王文斌+閆春娟+孫旭剛+宋書宏

      摘要: 以遼寧省審定的大豆品種遼豆15號花粉為材料,探討大豆花粉在離體培養(yǎng)條件下萌發(fā)、生長的主要影響因子。采用單因素試驗篩選出大豆花粉萌發(fā)培養(yǎng)基最佳碳源為蔗糖,Ca2+源為CaCl2,有效植物生長調(diào)節(jié)劑為GA3。通過Plackett-Burman設(shè)計法對影響大豆花粉管生長的8個因素進(jìn)行了評價,篩選出具有顯著效應(yīng)的3個因素:初始pH值、蔗糖、GA3。用最陡爬坡路徑逼近花粉管長度響應(yīng)區(qū)域,通過響應(yīng)面法確定主要影響因素的最佳水平組合。結(jié)果表明,大豆花粉離體萌發(fā)的各影響因子的最佳水平組合為蔗糖濃度19.2%、GA3 68.9 mg/L、初始pH值6.47、H3BO4 0.015%、CaCl2 0.05%、PEG-4000 7.5%、溫度25 ℃、時間3 h。優(yōu)化后離體培養(yǎng)花粉管長度達(dá)391.95 μm,比優(yōu)化前提高32.68%。

      關(guān)鍵詞: 大豆花粉;萌發(fā);Plackett-Burman設(shè)計;響應(yīng)面法;優(yōu)化

      中圖分類號: S565.103 文獻(xiàn)標(biāo)志碼: A

      文章編號:1002-1302(2016)03-0094-05

      高等植物有性生殖過程中,花粉萌發(fā)是極為重要的環(huán)節(jié)[1]。花粉萌發(fā)率、花粉管長度是直接反映植物生殖活力的主要標(biāo)志。在大豆常規(guī)育種過程中,對親本進(jìn)行選擇配制以及開展雜交大豆育種、不育系研究,都涉及到大豆花粉的萌發(fā)問題[2-4]?;ǚ勖劝l(fā)時花粉粒吸水膨大,花粉粒內(nèi)壁沿萌發(fā)孔向外突出,最后形成花粉管[5],是極為復(fù)雜的生理過程[6]。花粉離體萌發(fā)需要碳源[7]、礦物質(zhì)元素及生長調(diào)節(jié)劑[8]的參與,只有在培養(yǎng)基中含有足量且合適的營養(yǎng)組分并在適宜的pH值、溫度等條件下,花粉才能正常萌發(fā)生長[9]。由于涉及到多個可變因子,如何快速有效地篩選出主要因素并進(jìn)行優(yōu)化是該研究領(lǐng)域的關(guān)鍵問題之一。Plackett-Burman(PB)設(shè)計法是一種經(jīng)濟(jì)有效的二水平試驗設(shè)計方法[10],可以利用最少的試驗次數(shù),從眾多考察因素中快速有效地篩選出主要的影響因素[11-12]。響應(yīng)面法(response surface methodology,RSM)是一種優(yōu)化生物過程的綜合技術(shù),可同時對影響生物產(chǎn)量的因子水平及交互作用進(jìn)行優(yōu)化與評價[13],快速有效地確定多因子系統(tǒng)的最佳條件,該法已被廣泛應(yīng)用于生物過程優(yōu)化[14]。大豆花粉萌發(fā)能力的差異直接影響對大豆有性繁殖能力及育種價值評價結(jié)果。前人對于大豆花粉離體培養(yǎng)報道較少。本研究應(yīng)用Plackett-Burman(PB)設(shè)計法篩選影響大豆花粉萌發(fā)的主要因素,并通過響應(yīng)面法確定主要影響因素的最佳水平組合,對大豆花粉萌發(fā)培養(yǎng)條件進(jìn)行優(yōu)化,旨在為大豆雜交育種、親本配制研究提供參考依據(jù)。

      1 材料與方法

      1.1 材料

      供試大豆品種為遼豆15號,為筆者所在單位選育的北方春大豆品種,種植于遼寧省農(nóng)業(yè)科學(xué)院試驗田內(nèi)。

      1.2 花粉采集方法

      7月中上旬R2時期(盛花期),于發(fā)育正常的植株上選取花蕾,花蕾大小盡量一致,并符合當(dāng)日可做雜交父本的標(biāo)準(zhǔn),用鑷子取下后置于干凈離心管內(nèi)放于4 ℃冰箱保存,當(dāng)日使用。

      1.3 花粉培養(yǎng)方法

      采用液體培養(yǎng)基培養(yǎng)花粉[15]。按照不同試驗處理配制液體培養(yǎng)基,用移液器滴1滴在凹形載玻片上。將花蕾的萼片、花瓣剝開,用鑷子夾取花藥在液滴表面快速輕蘸一下,使花粉在培養(yǎng)基上分散開即可。為保持濕度,將載玻片放在鋪有濕濾紙的培養(yǎng)皿中,置于恒溫培養(yǎng)箱內(nèi)25 ℃靜置培養(yǎng) 3 h。培養(yǎng)結(jié)束放4 ℃冰箱保存。

      1.4 花粉發(fā)育指標(biāo)的測定

      1.4.1 萌發(fā)率的測定 培養(yǎng)后使用萊卡DM750型顯微鏡進(jìn)行觀測。當(dāng)花粉管的長度大于花粉粒的直徑時計為萌發(fā)。統(tǒng)計萌發(fā)、未萌發(fā)的花粉粒數(shù),萌發(fā)率計算公式如下:萌發(fā)率=萌發(fā)的花粉數(shù)/總的花粉數(shù)×100%。每個試驗處理隨機(jī)選取3個視野,每個視野所統(tǒng)計的花粉粒不少于100粒。

      1.4.2 花粉管長度的測定 選取已萌發(fā)的花粉,用顯微鏡隨機(jī)選取3個視野拍照,用Image-Pro Plus圖像分析軟件測量花粉管的長度。每個樣品至少測定50個花粉管,計算平均長度、標(biāo)準(zhǔn)差。

      1.5 單因素試驗

      以30 mmol/L MES為母液,加入10%蔗糖+0.05% CaCl2+0.02%H3BO4+10%PEG-4000等成分,pH值調(diào)至6.0,作為基礎(chǔ)培養(yǎng)基。探討碳源、Ca2+、植物生長調(diào)節(jié)劑等單因素對大豆花粉萌發(fā)率及花粉管長度的影響時,保持基礎(chǔ)培養(yǎng)基的其他組分不變,只改變探討因素的種類、濃度,在相同條件下培養(yǎng)并測定花粉發(fā)育指標(biāo)[16]。

      1.5.1 碳源的選擇試驗 分別使用蔗糖、麥芽糖、葡萄糖、可溶性淀粉、山梨醇作為碳源,濃度均為10%。

      1.5.2 Ca2+源的選擇試驗 分別使用CaCl2、Ca(NO3)2作為Ca2+來源,Ca2+濃度均為0.05%。

      1.5.3 植物生長調(diào)節(jié)劑的選擇試驗 分別在基礎(chǔ)培養(yǎng)基(CK)中加入10 mg/L萘乙酸(NAA)、100 mg/L赤霉素(GA3)、10 mg/L 2,4-D、50 mg/L 6-BA等植物生長調(diào)節(jié)劑[17]。

      1.6 Plackett-Burman(PB)設(shè)計[18]

      根據(jù)單因素試驗確定的培養(yǎng)基組分及前期研究確定的各組分濃度范圍,對影響花粉萌發(fā)的8個因素進(jìn)行考察。按PB設(shè)計安排主要影響因素的篩選試驗,每個因素選取低濃度和高濃度分別作為PB試驗中的低水平“-1” “+1”,響應(yīng)值為花粉管長度(μm),自變量及其代號編碼和水平見表1[ 19]。

      1.7 最陡爬坡試驗

      根據(jù)PB試驗所得的回歸模型,由主要影響因素的偏回歸系數(shù)確定蔗糖、GA3、初始pH值的最速增長步長[20],試驗設(shè)計見表2。

      1.8 響應(yīng)面法(RSM)

      通過最陡爬坡試驗趨近最優(yōu)點的臨近區(qū)域后,采用中心組合設(shè)計(central composite design,CCD)構(gòu)建模型,以響應(yīng)面法尋找最優(yōu)培養(yǎng)條件[21]。選取花粉管長度為響應(yīng)值,自變量為主要影響因素的水平。各因素編碼水平見表3。

      1.9 數(shù)據(jù)分析

      采用Design-Expert軟件和Microsoft Excel軟件統(tǒng)計分析數(shù)據(jù)。

      2 結(jié)果與分析

      2.1 花粉萌發(fā)及花粉管生長的單因素選擇試驗

      2.1.1 碳源的選擇 由圖1可知,幾種常見碳源中,蔗糖最易被大豆花粉利用,蔗糖處理下大豆花粉萌發(fā)率(68.96±3.01)%及花粉管長度(295.41±26.51) μm均為最高值;其次為麥芽糖,萌發(fā)率為(60.00±4.22)%,花粉管長度為(249.77±15.23) μm;葡萄糖、山梨醇等碳源對大豆花粉萌發(fā)的促進(jìn)作用較小。各碳源對萌發(fā)率、花粉管長度的影響達(dá)極顯著水平。由此確定大豆花粉萌發(fā)培養(yǎng)中選擇蔗糖作為碳源。

      2.1.2 Ca2+源的選擇 使用CaCl2作為Ca2+來源進(jìn)行培養(yǎng),大豆花粉萌發(fā)率為(68.96±3.01)%,花粉管長度為(295.41±26.51) μm,均高于使用Ca(NO3)2作為Ca2+來源的萌發(fā)率(57.98±4.93)%和花粉管長度(219.33±29.61) μm。由此確定選擇CaCl2在大豆花粉萌發(fā)培養(yǎng)中作為Ca2+來源。

      2.1.3 植物生長調(diào)節(jié)劑的選擇 由圖2可以看出,不同的植物生長調(diào)節(jié)劑對大豆花粉萌發(fā)影響不同。添加GA3后,大豆花粉萌發(fā)率、花粉管長度分別為(75.65±2.74)%、(325.19±13.59) μm,均高于對照的萌發(fā)率(68.96±3.01)%、花粉管長度(295.41±26.51) μm;添加NAA后,萌發(fā)率(72.32±3.74)%比對照略有增加,花粉管長度(277.61±13.81) μm有所降低;添加2,4-D、6-BA均抑制了大豆花粉萌發(fā)。因此在培養(yǎng)基中加入合適濃度的GA3對大豆花粉萌發(fā)有促進(jìn)作用。

      2.2 大豆花粉萌發(fā)主要影響因素的確定

      利用Design-Expert軟件對Plackett-Burman試驗結(jié)果(表4)進(jìn)行分析,得到響應(yīng)值(花粉管長度)與各因素間的回歸模型:

      式中:y為花粉管長度的預(yù)測值,x1、x2、…、x8為自變量編碼值。

      由表5可知,該模型極顯著(P<0.01);模型的調(diào)整確定系數(shù)為R2Adj=0.961 4,說明該模型能解釋96.14%響應(yīng)值的變化,試驗誤差小,因而該模型是合適的。x1、x5、x6為顯著影響因素(P<0.05),且均為正效應(yīng),因此選取這3個因素的中心水平為原點進(jìn)行下步優(yōu)化。x3為負(fù)效應(yīng),取低水平值;其他因素取中間水平。

      2.3 最陡爬坡試驗

      根據(jù)模型(1),得出x1、x5、x6的最速增長步長,由此形成12個試驗點的最陡爬坡試驗方案,實施結(jié)果見表6。由表6可以看出,直到第10個試驗點響應(yīng)值都是增加的,以后花粉管長度逐漸減小,說明花粉萌發(fā)的最優(yōu)條件在蔗糖18.75%、GA3 62 mg/L、初始pH值為6.5附近區(qū)域,因此采用RSM擬合新的二階模型進(jìn)一步優(yōu)化。

      2.4 響應(yīng)面法優(yōu)化培養(yǎng)條件

      2.4.2 響應(yīng)面交互作用分析及優(yōu)化 RSM圖形是響應(yīng)值(y)對各試驗因素x1、x5、x6所構(gòu)成的三維空間曲面圖,從RSM分析圖上可以找出最佳參數(shù)以及各參數(shù)之間的相互作用,從RSM等高線圖上可以直觀地反映出各因素對響應(yīng)值的影響,從而分析各交互作用對花粉管長度的影響。

      由圖3、圖4、圖5可以看出,蔗糖濃度、GA3濃度、初始pH值各因素之間存在著明顯的交互作用,且在低水平范圍內(nèi),同時升高各因素可以提高花粉管生長量;提高過大會抑制花粉管生長。通過對模型(2)求導(dǎo)和解逆矩陣,可以得到模型的極值點:蔗糖19.2%、GA368.9 mg/L、初始pH值6.47、H3BO4 0.015%、CaCl2 0.05%、PEG-4000 7.5%、溫度25 ℃、時間 3 h,此時模型預(yù)測的最大響應(yīng)值為394.56 μm。采用上述優(yōu)化條件進(jìn)行培養(yǎng)驗證試驗,得到花粉管長度為 391.95 μm,與預(yù)測值相近,證明該模型能較好地預(yù)測花粉管生長;優(yōu)化后花粉萌發(fā)水平(花粉管長度391.95 μm)比優(yōu)化前(花粉管長度295.41 μm)提高32.68%。

      3 結(jié)論與討論

      植物花藥中花粉發(fā)育過程積累的淀粉是其萌發(fā)時重要的能量來源,淀粉積累的程度也可作為衡量花粉成熟的標(biāo)志之一[22]。但在離體培養(yǎng)環(huán)境下,只具備內(nèi)源的能量供給時難以完成花粉萌發(fā)和花粉管生長的過程,還需要通過人工技術(shù)盡量滿足植物激素、pH值、溫度等條件。對于一些自然環(huán)境下花粉難以萌發(fā)的珍貴物種,要以人工手段模擬甚至超越自然條件才能輔助其完成生殖過程。因此對于花粉離體培養(yǎng)萌發(fā)中涉及的各種因素及其重要性,需要進(jìn)行系統(tǒng)地分析優(yōu)化。生物過程優(yōu)化常用單因素法、正交法。單因素法只針對某一因素的影響,常用于確定某一因素的范圍,不能反映多因素的綜合效應(yīng),難以取得優(yōu)化的最佳結(jié)果。正交法研究多因素多水平組合是一種高效率、經(jīng)濟(jì)的試驗方法,但只能對孤立的試驗點進(jìn)行分析,考慮因素之間的交互作用時,正交試驗次數(shù)會大大增加。單因素試驗確定初始培養(yǎng)條件后,采用Plackett-Burman設(shè)計法,可以用較少的試驗次數(shù)從眾多相關(guān)影響因素中篩選出主要影響因素,為進(jìn)一步的優(yōu)化試驗指明方向。響應(yīng)面分析法是1951年Box-Wilson開發(fā)的一種用于化學(xué)過程因子優(yōu)化的綜合性方法,采用多元二次回歸模型的方法,擬合各因素與響應(yīng)值之間的函數(shù)關(guān)系,可連續(xù)地對試驗的各個水平進(jìn)行分析,能快速對主要影響因素進(jìn)行優(yōu)化和評價,用于研究多因子系統(tǒng)中因子交互作用達(dá)到最大響應(yīng)值時所對應(yīng)的最佳條件[23],是降低開發(fā)成本、優(yōu)化試驗條件、提高生產(chǎn)效率、解決實際生產(chǎn)問題的更為有效的方法。近幾年,響應(yīng)面法不僅在化學(xué)工業(yè)、生物學(xué)、醫(yī)學(xué)以及生物制藥領(lǐng)域得到廣泛應(yīng)用,而且在食品學(xué)、工程學(xué)、生態(tài)學(xué)等方面也得到了應(yīng)用[24]。同時,響應(yīng)面法不僅用于各行業(yè)的優(yōu)化,還可以用于動力學(xué)常數(shù)的確定、酶穩(wěn)定性、動力學(xué)研究。本試驗采用Plackett-Burman設(shè)計法、最陡爬坡路徑法和響應(yīng)面分析法(RSM)中的Central-Composite設(shè)計相結(jié)合,對大豆花粉萌發(fā)的影響因素進(jìn)行研究,確定了培養(yǎng)基中添加蔗糖、CaCl2、GA3可以促進(jìn)花粉萌發(fā);并篩選出蔗糖、GA3、初始pH值為影響花粉萌發(fā)的主要因素,且三者均為正效應(yīng)。響應(yīng)面法確定最佳培養(yǎng)條件為:蔗糖濃度19.2%、GA3濃度68.9 mg/L、初始pH值6.47、H3BO4 0.015%、CaCl2 0.05%、PEG-4000 7.5%、溫度25 ℃、時間3 h,此條件下,花粉管長度達(dá)391.95 μm,比優(yōu)化前 295.41 μm 提高32.68%。

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