鐘雪梅+代其林+馬明莉+滕守鎮(zhèn)+閆寧+呂旭才+馮帥+王勁
摘要: 以興油177品種油菜為材料,研究不同濃度外源NO供體硝普鈉(0、100、200、300、400、500、600 μmol/L SNP)浸種處理對100 mmol/L NaCl脅迫下油菜種子萌發(fā)及幼苗生長的影響。結(jié)果顯示,外源NO可顯著緩解鹽脅迫造成的損傷,促進種子萌發(fā)及幼苗生物量的積累;顯著提高幼苗葉片脯氨酸、可溶性蛋白的含量,以及抗氧化酶(SOD、POD、CAT)的活性;顯著降低MDA含量,其中以200 μmol/L SNP浸種處理的效果最為顯著。外源NO處理能夠顯著緩解鹽脅迫傷害,200 μmol/L SNP浸種處理效果最佳。
關鍵詞: 油菜;外源NO;NaCl脅迫;種子萌發(fā);生理特性
中圖分類號: S634.301 文獻標志碼: A
文章編號:1002-1302(2016)03-0102-05
一氧化氮(NO)是植物體內(nèi)分布較廣的一種氧化還原信號分子,在植物體內(nèi)主要通過硝酸還原酶途徑、一氧化氮合酶途徑、非酶促途徑產(chǎn)生[1-4]。NO對植物具有保護和毒害的雙重效應,低濃度NO可作為抗氧化劑清除超氧陰離子(O-2[KG-*2]· )等活性氧,并通過誘導抗氧化酶基因的表達對植物起到保護作用[5];高濃度NO則與O-2[KG-*2]· 相互作用生成過氧亞硝酸陰離子,后者經(jīng)質(zhì)子化形成具有強氧化性的過氧亞硝酸,破壞生物大分子的結(jié)構(gòu)與功能。但NO的最終生理作用與植物細胞的生理條件及NO的濃度有關[6]。已有研究表明,NO廣泛存在于植物組織中,參與種子萌發(fā)及植株的生長發(fā)育、衰老、對各種逆境脅迫的應答過程[7-9]。 NO能顯著促進滲透脅迫下黃瓜、苜蓿、油松、小桐子、板藍根、小麥等種子的萌發(fā)和幼苗生長,緩解葉片氧化損傷,顯著提高SOD等保護酶的活性,增加脯氨酸等滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)以增強幼苗的抗逆性[10-16]。NO還可增強番茄對光能的捕獲和轉(zhuǎn)換[17],顯著促進棉花幼苗葉、根生長,增加根長、根表面積、根體積以緩解缺氮脅迫造成的傷害[18]。而目前關于NO用于油菜種子萌發(fā)的研究鮮有報道。以油菜為材料,通過NaCl模擬鹽脅迫,研究外源NO對鹽脅迫下油菜種子萌發(fā)的作用機制,以及對幼苗生長生理特性的影響,探討NO緩解鹽脅迫的生理機理,為生產(chǎn)實踐提供依據(jù)。
1 材料與方法
1.1 試驗材料
供試油菜品種為興油177,購自四川省榮春種業(yè)有限責任公司。NO供體亞硝基鐵氰化鈉(SNP)購自上海市阿拉丁生化科技股份有限公司。NaCl為國產(chǎn)分析純。
1.2 試驗方法
選取飽滿均勻的油菜種子,采用75%乙醇消毒2 min,用蒸餾水沖洗3次。再用0.1% HgCl2溶液消毒 10 min,用蒸餾水沖洗5~6次,并用無菌吸水紙吸干備用。
1.2.1 最適鹽脅迫濃度篩選試驗 用蒸餾水分別配制濃度為0(對照)、50、100、150、200 mmol/L的NaCl溶液。每個培養(yǎng)皿放置100粒已消毒種子,加入25 mL處理液,每個處理3次重復,置于(25±1) ℃、16 h光照/8 h黑暗、相對濕度80%的組織培養(yǎng)溫室內(nèi)進行試驗。處理液每24 h更換1次。
處理后連續(xù) 7 d觀察種子萌發(fā)情況,以胚根凸出種皮長度大于等于種子長度的一半為發(fā)芽,計算發(fā)芽勢、發(fā)芽率。發(fā)芽8 d時于每個培養(yǎng)皿隨機選取5株幼苗,測定其芽長、根長,每個處理3次重復。
發(fā)芽勢=4 d內(nèi)正常發(fā)芽種子數(shù)/供試種子數(shù)×100%;發(fā)芽率=7 d內(nèi)正常發(fā)芽種子數(shù)/供試種子數(shù)×100%。
1.2.2 外源NO(SNP)浸種處理鹽脅迫試驗 用蒸餾水分別配制濃度為0、100、200、300、400、500、600 μmol/L的SNP溶液。將已消毒種子置于不同濃度SNP溶液中,于25 ℃恒溫培養(yǎng)箱中黑暗浸種12 h。浸種處理后將種子取出晾干,置于墊有 2層無菌濾紙的培養(yǎng)皿中,每皿 100 粒種子。加入100 mmol/L 的NaCl溶液25 mL(NaCl最適濃度由第1階段試驗得出),每個處理3次重復,置于組培室內(nèi)進行試驗,鹽脅迫溶液每24 h更換1次。試驗共設7個處理,分別命名為CK、T1、T2、T3、T4、T5、T6。處理后連續(xù)7 d觀察種子的萌發(fā)情況,計算發(fā)芽勢、發(fā)芽率。發(fā)芽8 d時,每皿隨機選取10 株幼苗測定其芽長、根長,稱量苗鮮質(zhì)量、根鮮質(zhì)量后置于恒溫干燥箱,于105 ℃殺青10 min,并于80 ℃烘干48 h,分別稱其干質(zhì)量。
處理10 d后,取樣并測定相關生理指標。采用氮藍四唑法測定超氧化物歧化酶(SOD)活性,采用愈創(chuàng)木酚法測定過氧化物酶(POD)活性,采用雙氧水法測定過氧化氫酶(CAT)活性。采用硫代巴比妥酸(TBA)法測定丙二醛(MDA)含量[19],采用酸性茚三酮法測定脯氨酸含量[20],采用考馬斯亮藍法測定可溶性蛋白含量[21]。
1.3 數(shù)據(jù)處理
采用OriginPro 9.1軟件繪圖,采用DPS 7.5軟件進行方差分析和多重比較(Duncans法)。
2 結(jié)果與分析
2.1 外源NO對油菜種子發(fā)芽勢及發(fā)芽率的影響
由圖1可知,不同濃度的外源NO浸種均可提高油菜種子的發(fā)芽勢、發(fā)芽率,且整體隨外源NO濃度的升高呈先上升、后下降的趨勢。其中,100~300 μmol/L的外源NO浸種效果較好,而200 μmol/L的外源NO浸種使發(fā)芽勢、發(fā)芽率達到最高值,分別比對照提高了15.33%、14.33%, 差異達顯著性水平(P<0.05)。
2.2 外源NO對油菜幼苗芽長和根長的影響
由圖2可知,外源NO浸種增加了鹽脅迫下油菜幼苗的芽長和根長,且隨著處理濃度的升高呈峰形變化,兩者變化趨勢一致。芽長、根長在200 μmol/L的外源NO浸種濃度下達到峰值,分別比對照高27.80%、30.33%,差異達顯著水平(P<0.05)。與對照相比,100~300 μmol/L濃度的作用效果較好,400~600 μmol/L濃度的效果次之,但均高于對照。
2.3 外源NO對油菜幼苗生物量的影響
由表1可知,外源NO浸種顯著提高了鹽脅迫下幼苗的生物量,整體呈先上升、后下降的趨勢。在200 μmol/L的外源NO浸種處理下,各項指標達到最高值,苗鮮質(zhì)量、苗干質(zhì)量分別高于對照55.46%、39.02%;根鮮質(zhì)量、根干質(zhì)量分別高于對照100%、75%。當NO浸種濃度大于200 μmol/L時,生物量的積累呈下降趨勢,但仍高于對照。
2.4 外源NO對油菜幼苗丙二醛和脯氨酸的影響
由圖3可知,在鹽脅迫下植物積累了大量膜脂過氧化的終產(chǎn)物MDA,而外源NO浸種處理顯著降低了MDA含量,T1至T6處理與CK相比均差異顯著(P<0.05)。200 μmol/L的外源NO作用效果最佳,MDA含量比對照降低56.08%。
脯氨酸是植物細胞內(nèi)的一類重要滲透調(diào)節(jié)物質(zhì),可調(diào)節(jié)胞內(nèi)滲透勢保護蛋白分子,具有穩(wěn)定生物大分子結(jié)構(gòu)、清除活性氧的功能。由圖3可知,外源NO顯著促進了脯氨酸的積累,且200 μmol/L處理下作用最明顯,脯氨酸含量比對照高211.89%。
2.5 外源NO對油菜幼苗抗氧化酶及可溶性蛋白的影響
由圖4可知,外源NO浸種顯著提高了鹽脅迫下幼苗的抗氧化酶活性及可溶性蛋白含量,整體呈先上升、后下降的趨勢,4個指標的變化趨勢一致。200 μmol/L的NO處理作用效果最好,SOD、POD、CAT的活性及可溶性蛋白含量分別比對照增加了69.73%、480.84%、150.61%、324.10%。
3 討論
鹽分對種子的萌發(fā)主要產(chǎn)生離子效應和滲透效應2種作用[22]。發(fā)芽勢和發(fā)芽率是衡量種子活力的重要指標。由表2可知,種子萌發(fā)及幼苗生長的受抑程度隨鹽脅迫濃度的升高逐漸增強。當NaCl濃度達50 mmol/L時,發(fā)芽勢、發(fā)芽率、芽長、根長均高于對照,表明適宜的離子濃度有利于種子萌發(fā)??赡苁怯捎陔x子滲入種子而降低了胞內(nèi)滲透勢,從而促進種子吸脹吸水[23];也可能由于微量的Na離子對呼吸酶有激活作用,促使萌發(fā)所需物質(zhì)的合成更為充分[24-25]。當NaCl處理濃度達200 mmol/L時,油菜種子的萌發(fā)明顯受到抑制,各項指標與對照相比顯著降低,幼苗子葉發(fā)黃、卷曲、脫落,部分幼苗全株死亡??梢姡啕}濃度的離子起到毒害作用,使膜蛋白及膜透性的正常生理結(jié)構(gòu)與功能發(fā)生改變[26]。幼苗芽與根的生長在鹽脅迫下均受到抑制,且芽長的受抑程度大于根長(表2),即隨著鹽脅迫濃度的升高,芽長的下降幅度大于根長,這與已有研究的結(jié)論[27-28]相一致。有研究表明這是植物耐鹽的一種機制,在鹽生植物中較為普遍。植物會主動利用攝入的鹽離子調(diào)節(jié)滲透壓,在不同組織及器官中協(xié)調(diào)分配離子以維護幼根生長,這使植物根中的NaCl含量低于地上部分[29-31]。綜上所述,低濃度NaCl對種子萌發(fā)及幼苗生長具有促進作用,高濃度則具有抑制作用,這與已有研究的結(jié)論[32-39]相一致。
鹽脅迫通過滲透脅迫和離子毒害抑制種子萌發(fā)及幼苗生長,而NO作為一種植物體內(nèi)的重要信號分子,能顯著緩解鹽脅迫造成的損傷。本研究結(jié)果表明,外源NO促進了 100 mmol/L NaCl脅迫下油菜的種子萌發(fā)及幼苗生長,其中低濃度(100~300 μmol/L)NO作用效果較好,400~600 μmol/L的NO次之,而200 μmol/L的NO處理效果最顯著,這與 Kazemi 等[40]、劉穎等[14]、蘇桐等[41]的研究結(jié)論一致。湯紹虎等研究發(fā)現(xiàn),0.1 mmol/L SNP處理能顯著緩解滲透脅迫對黃瓜種子萌發(fā)及幼苗生長造成的傷害,而0.5 mmol/L SNP處理的作用顯著降低[10]。王文等研究表明,50~100 μmol/L的NO處理顯著減輕了苯丙烯酸對黃瓜幼苗的毒害,而200~400 μmol/L NO的緩解作用明顯降低,甚至抑制幼苗生長,其中100 μmol/L NO的作用效果最顯著[11]。徐艷等研究發(fā)現(xiàn),300 μmol/L的SNP處理能顯著緩解滲透脅迫對梭梭種子萌發(fā)及幼苗生長的傷害,提高種子的萌發(fā)率,促進幼苗生物量的積累[42]。劉開力等研究表明,0.4 mmol/L SNP浸種處理種子可明顯緩解鹽脅迫下水稻幼苗的生長[43]。這可能是由不同種類植物對NO的敏感程度不同,且各試驗的具體處理方法不同造成的。
本試驗中,隨著外源NO處理濃度的升高,其緩解效應逐漸減小,表明NO調(diào)節(jié)植物生長具有雙重效應,這與已有研究的結(jié)論[10-18]相一致??赡苁怯捎贜O通過質(zhì)外體作用于細胞壁組分,使細胞壁松弛,從而促進細胞擴展[44]。隨著NO濃度升高,NO作用于細胞膜的磷脂雙分子層,使膜的流動性增強。當NO濃度升高至一定程度,NO與超氧陰離子、過氧亞硝酸鹽作用,產(chǎn)生毒害效應[45]。
植物體內(nèi)MDA含量的高低反映了細胞膜氧化損傷的程度。本研究添加NO處理顯著降低了MDA含量,表明NO對細胞膜具有一定修復作用。可能是NO與活性氧(ROS)或脂質(zhì)過氧化自由基發(fā)生反應中斷了氧化脅迫,從而減輕了質(zhì)膜受氧化損傷的程度[46]。脯氨酸是植物體內(nèi)的一類滲透調(diào)節(jié)物質(zhì),其含量高低一定程度上反映了植物的抗逆性。本研究結(jié)果表明,外源NO處理顯著提高了植物體內(nèi)脯氨酸的含量。脯氨酸不僅可作為滲透調(diào)節(jié)物質(zhì),還在清除活性氧、提高抗氧化能力、穩(wěn)定大分子結(jié)構(gòu)、降低細胞酸性等方面起重要作用[47]。
逆境條件下,植物體內(nèi)ROS水平升高,膜脂過氧化程度加劇,導致細胞膜損傷與破壞[48]。SOD、POD、CAT是清除ROS的重要酶類。本研究結(jié)果表明,NO處理可顯著提高抗氧化酶的活性。NO可通過調(diào)節(jié)含血紅素鐵的CAT活性來抑制含非血紅素鐵的順烏頭酸酶等靶酶的活性,從而參與植物體內(nèi)的代謝調(diào)節(jié)過程[49]。大多數(shù)可溶性蛋白是參與各種代謝的酶類,具有較強的親水性,可提高細胞保水力并防止細胞脫水。本研究中,NO處理顯著提高了可溶性蛋白的含量,從而增強了植物的抗逆性。
4 結(jié)論
200 μmol/L的NO處理能顯著緩解100 mmol/L NaCl脅迫造成的損傷,顯著促進鹽脅迫下油菜種子的萌發(fā),顯著提高幼苗葉片脯氨酸、可溶性蛋白的含量及SOD、POD、CAT的活性,顯著降低MDA的含量,多方面修復幼苗受到的損傷,從而增強幼苗的抗氧化脅迫能力。本研究對逆境中栽培作物具有一定參考價值,外源NO浸種處理在生產(chǎn)中簡便易行,是一種鹽脅迫下促進種子萌發(fā)及增強幼苗抗性的良好方法,具有一定潛在應用價值。
參考文獻:
[1]Wendehenne D,Pugin A,Klessig D F,et al. Nitric oxide:comparative synthesis and signaling in animal and plant cells[J]. Trends in Plant Science,2001,6(4):177-183.
[2]Yamasaki H,Shaniohi S Y,Takahashi S. An alternative pathway for nitric oxide production in plants:new feature of an old enzyme[J]. Trends in Plant Science,1999,4(4):128-129.
[3]Chandok M R,Ytterberg A J,Van W K J,Klessig D F. The pathogen-inducible nitric oxide synthase(iNOS)in plants is a variant of the P protein of the glycine decarboxylase complex[J]. Cell,2003,113(4):1380-1384.
[4]Wojtasek O. Nitric oxide in plants to NO or not to NO[J]. Phytochemistry,2000,54(1):1-4.
[5]Beligni M V,Lamattina L. Nitric oxide counteracts cytotoxic processes mediated by reactive oxygen species in plant tissues[J]. Planta,1999,208:337-344.
[6]Zhang Y Y,Liu Y L. Source and function of nitric oxide in plants[J]. Acta Botanica Boreali-Occidentalia Sinica,2004,24(5):921-929.
[7]Pagnussat G C,Simontacchi M,Puntarulo S,et al. Nitric oxide is required for root organogenesis[J]. Plant Physiology,2002,129(3):954-956.
[8]Lamattina L,García-Mata C,Graziano M,et al. Nitric oxide:the versatility of an extensive signal molecule[J]. Annual Review of Plant Biology,2003,54:109-136.
[9]Stohr C,Stremlau S. Formation and possible roles of nitric oxide in plant Roots[J]. Journal of Experimental Botany,2006,57(3):463-470.
[10]湯紹虎,周啟貴,孫 敏,等. 外源NO對滲透脅迫下黃瓜種子萌發(fā)、幼苗生長和生理特性的影響[J]. 中國農(nóng)業(yè)科學,2007,40(2):419-425.
[11]王 文,陳振德,羅慶熙,等. 外源一氧化氮對苯丙烯酸脅迫下黃瓜幼苗生長及活性氧代謝的影響[J]. 中國農(nóng)業(yè)科學,2010,43(17):3677-3683.
[12]蔡卓山,師尚禮,謝森林,等. 外源NO對水分脅迫下苜蓿種子萌發(fā)的影響[J]. 核農(nóng)學報,2013,27(11):1777-1782.
[13]裴樂樂,韓鋒溪,胡景江. 外源NO對滲透脅迫下油松種子萌發(fā)及幼苗生理特性的作用[J]. 西北林學院學報,2013,28(1):58-62.
[14]劉 穎,鄧明華,龔 明,等. 外源NO對Cu2+脅迫下小桐子幼苗抗氧化能力的影響[J]. 西北植物學報,2013,33(7):1409-1414.
[15]賈海鳳,張海艷. 外源NO對NaCl脅迫下板藍根種子萌發(fā)和幼苗生理特性的影響[J]. 中草藥,2014,45(1):118-124.
[16]王俊紅,魏小紅,龍瑞軍,等. 外源一氧化氮對滲透脅迫下小麥幼苗葉片膜脂過氧化的影響[J]. 甘肅農(nóng)業(yè)大學學報,2008,43(1):77-81.
[17]吳雪霞,朱月林,朱為民,等. 外源一氧化氮對NaCl脅迫下番茄幼苗生長和光合作用的影響[J]. 西北植物學報,2006,26(6):1206-1211.
[18]陳 靜,劉連濤,孫紅春,等. 外源NO對缺氮脅迫下棉花幼苗形態(tài)及生長的調(diào)控效應[J]. 中國農(nóng)業(yè)科學,2014,47(23):4565-4575.
[19]李合生,孫 群,趙世杰. 植物生理生化實驗原理和技術(shù)[M]. 北京:高等教育出版社,2000.
[20]張蜀秋,李 云. 植物生理學實驗技術(shù)教程[M]. 北京:科學出版社,2011:187-188.
[21]鄒 琦. 植物生理學實驗指導[M]. 北京:中國農(nóng)業(yè)出版社,2000:72-75.
[22]Levitt J. Response of pants to environmental stress[M]. 2nd Ed. New York:Academic Press,1980:365-435.
[23]Mohammed B J. Ionic effects of NaCl on germination. Early seedling growth,and ion con-tent of Atriplex halimus(Chenopodiaceae)[J]. Canadian Journal of Botany,2002,80(3):297-304.
[24]劉祖祺,張石城. 植物抗性生理學[M]. 北京:中國農(nóng)業(yè)出版社,1994:251-254.
[25]趙可夫. NaCl抑制棉花幼苗生長的機理——鹽離子效應[J]. 植物生理學報,1989,15(2):173-178.
[26]王寶山,鄒 琦. NaCl脅迫對高粱根、葉鞘和葉片液泡膜ATP酶和焦磷酸酶活性的影響[J]. 植物生理學報,2000,26(3):181.
[27]朱 義,譚貴娥,何池全,等. 鹽脅迫對高羊茅(Festuca arundinacea)幼苗生長和離子分布的影響[J]. 生態(tài)學報,2007,27(12):5447-5454.
[28]苗海霞,孫明高,夏 陽,等. 鹽脅迫對苦楝根系活力的影響[J]. 山東農(nóng)業(yè)大學學報:自然科學版,2005,36(1):9-12,18.
[29]Flowers T J,Yeo A R. Solute transport in plants[M]. Glasgow,Scotland:Blackie,1992:176.
[30]Adams P,Thomas J C,Vernon D M,et al. Distinct cellular and organismic responses to salt stress[J]. Plant & Cell Physiology,1992,33:1215-1223.
[31]McCue K F,Hanson A D. Drought and salt tolerance:towards under-standing and application[J]. Biotechnology,1990,8:358-362. [HJ1.65mm]
[32]秦 嶺,張華文,楊延兵,等. 不同高梁品種種子萌發(fā)耐鹽能力評價[J]. 種子,2009,28(11):7-10.
[33]苗昊翠,李利民,宋 彬,等. NaCl脅迫對兩種錦雞兒種子萌發(fā)的影響[J]. 新疆農(nóng)業(yè)科學,2011,48(3):498-503.
[34]顧閩峰,鄭佳秋,郭 軍,等. 鹽脅迫對8個辣椒品種種子萌發(fā)的影響[J]. 江蘇農(nóng)業(yè)科學,2010(6):259-261.
[35]王廣印,周秀梅,張建偉,等. NaCl脅迫對不同品種黃瓜種子發(fā)芽的影響[J]. 干旱地區(qū)農(nóng)業(yè)研究,2005,23(1):121-124,133.
[36]王喜濤,周秀艷,辛 明,等. 鹽脅迫對甜瓜種子發(fā)芽的影響[J]. 北方園藝,2014(9):7-11.
[37]那桂秋,寇 賀,曹敏建. 不同大豆品種種子萌發(fā)期耐鹽堿性鑒定[J]. 大豆科學,2009,28(2):352-356.
[38]肖鑫輝,李向華,王克晶. 渤海灣津唐沿海野生大豆(Glycine soja)種群高鹽堿脅迫反應[J]. 植物遺傳資源學報,2010,11(3):290-297,304.
[39]杜景紅,李北齊,薛慶喜. NaCl浸種對水稻種子發(fā)芽的影響[J]. 中國農(nóng)學通報,2013,29(3):33-35.
[40]Kazemi N,Khavari-Nejad R A,F(xiàn)ahimi H A,et al. Effects of exogenous salicylic acid and nitric oxide on lipid peroxidation and antioxidant enzyme activities in leaves of Brassica napus L. under nickel stress[J]. Scientia Horticulturae,2010,126(3):402-407.
[41]蘇 桐,龍瑞軍,魏小紅,等. 外源NO對NaCl脅迫下燕麥幼苗氧化損傷的保護作用[J]. 草業(yè)學報,2008,17(5):48-53.
[42]徐 艷,余學軍,高 巖,等. NO對滲透脅迫下梭梭種子萌發(fā)及幼苗生長的影響[J]. 北京林業(yè)大學學報,2011,33(6):65-69.
[43]劉開力,凌騰芳,劉志兵,等. 外源NO供體SNP浸種對鹽脅迫下水稻幼苗生長的影響[J]. 植物生理學通訊,2004,40(4):419-422.
[44]Leshem Y Y,Haramaty E. The characterization and contrasting effects of the nitric oxide free radical invegetative stress and senescence of Pisum sativum Linn. foliage[J]. Journal of Plant Physiology,1996,148:258-263.
[45]張少穎,任小林,程順昌,等. 外源一氧化氮供體浸種對玉米種子萌發(fā)和幼苗生長的影響[J]. 植物生理學通訊,2004,40(3):309-310.
[46]García M C,García M C,Lamattina L. Nitric oxide induces stomatal closure and enhances the adaptive plant responses against drought stress[J]. Plant Physiology,2001,126(3):1196-1204.
[47]阮海華,沈文飚,葉茂炳,等. 一氧化氮對鹽脅迫下小麥葉片氧化損傷的保護效應[J]. 科學通報,2001,46(23):1993-1997.
[48]吳雪霞,朱月林,朱為民,等. 外源一氧化氮對NaCl脅迫下番茄幼苗生理影響[J]. 中國農(nóng)業(yè)科學,2006,39(3):575-581.
[49]Clark D,Durner J,Navarre D A,et al. Nitric oxide inhibition of tobacco catalase and ascorbate peroxidase[J]. Molecular Plant-Microbe Interactions,2000,13(12):1380-1384.