?
綠色糖單孢菌麥芽糖α-淀粉酶基因在枯草芽孢桿菌中的高效分泌表達(dá)*
0引言
【研究意義】α-淀粉酶不能切割α-1,6糖苷鍵,但可以跨越α-1,6糖苷鍵作用于分支鏈內(nèi)部的α-1,4糖苷鍵,產(chǎn)生的水解產(chǎn)物一般為麥芽糖、少量葡萄糖以及一些寡糖[1-2]。α-淀粉酶廣泛應(yīng)用于食品加工、紡織和制藥行業(yè)[3-5]。麥芽糖α-淀粉酶是指能水解淀粉得到主要產(chǎn)物為麥芽糖和少量葡萄糖的一類酶的總稱,來源于綠色糖單孢菌的麥芽糖α-淀粉酶水解淀粉的產(chǎn)物中麥芽糖含量可達(dá)70%(文獻(xiàn)[6]),在麥芽糖漿和麥芽糖的工業(yè)生產(chǎn)上具有一定的應(yīng)用前景?!厩叭搜芯窟M(jìn)展】目前,應(yīng)用大腸桿菌表達(dá)α-淀粉酶已經(jīng)非常成熟,但是也存在一定的不足,如自身代謝產(chǎn)生內(nèi)毒素、容易形成包涵體、產(chǎn)物分離純化工藝復(fù)雜等。而應(yīng)用枯草芽孢桿菌作為表達(dá)宿主具有很多優(yōu)勢,例如枯草芽孢桿菌被GRAS認(rèn)定為安全級別的微生物、無明顯的密碼子偏好性、因蛋白分泌系統(tǒng)功能完善而具有很好的分泌能力等[7-8],因此,枯草芽孢桿菌被廣泛應(yīng)用于食品、醫(yī)藥、飼料和環(huán)境保護(hù)等領(lǐng)域[9-12]。Kim等[13]將來源于枯草芽孢桿菌SHU4-2的麥芽糖α-淀粉酶基因在Bacillus subtilis168中表達(dá),研究發(fā)現(xiàn)當(dāng)培養(yǎng)基中出現(xiàn)淀粉、麥芽糖或者β-環(huán)糊精時,基因能夠表達(dá),而當(dāng)存在葡萄糖、果糖或者蔗糖時,該基因不表達(dá),說明該基因可能受到代謝產(chǎn)物的反饋抑制。2009年訾楠等[14]從地衣芽孢桿菌ATCC14580中克隆到一個麥芽糖α-淀粉酶基因,并成功在大腸桿菌中誘導(dǎo)表達(dá);2011年轉(zhuǎn)入枯草芽孢桿菌中表達(dá),生成的麥芽糖α-淀粉酶幾乎全部分泌到培養(yǎng)基中,采用HPLC檢測產(chǎn)物,結(jié)果表明該酶催化水解淀粉的主要產(chǎn)物為麥芽糖;對菌株的產(chǎn)酶條件進(jìn)行優(yōu)化后,最高酶活達(dá)到5.9 U/mL?!颈狙芯壳腥朦c】目前研究的麥芽糖α-淀粉酶大多是在大腸桿菌表達(dá)系統(tǒng)進(jìn)行胞內(nèi)表達(dá),也有在枯草芽孢桿菌中進(jìn)行分泌表達(dá),但是表達(dá)量不高,同時,鑒于大腸桿菌表達(dá)系統(tǒng)存在的不足,因此有必要研究麥芽糖α-淀粉酶在枯草芽孢桿菌中的高效分泌表達(dá)?!緮M解決的關(guān)鍵問題】克隆綠色糖單孢菌麥芽糖α-淀粉酶基因sva,并構(gòu)建重組質(zhì)粒pHCMCO4-Pglv-sva,使其在宿主B.subtilis 1A857中表達(dá),并對其發(fā)酵條件進(jìn)行優(yōu)化,期望得到高產(chǎn)麥芽糖α-淀粉酶的工程菌株。
1材料與方法
1.1材料
1.1.1菌株和質(zhì)粒
營養(yǎng)缺陷型表達(dá)宿主枯草芽孢桿菌1A857(培養(yǎng)時需添加必需氨基酸leuA、metB和trpC)和pHCMCO4大腸桿菌-枯草芽孢桿菌穿梭載體均購自BGSC;大腸桿菌Trans-10為本實驗室保存;pSE-sva重組質(zhì)粒和pHCMCO4-Pglv表達(dá)載體為本實驗室構(gòu)建并保存。
1.1.2主要酶和試劑
PrimerSTARHMHS DNA聚合酶和限制性內(nèi)切酶SacⅠ均購自TaKaRa公司;DNA小量提取試劑盒、膠回收試劑盒和PCR純化試劑盒等購自BioFlux博日公司。
1.1.3培養(yǎng)基
LB培養(yǎng)基(W/V):胰蛋白胨1%,酵母提取物0.5%,氯化鈉1%;枯草芽孢桿菌1A857生長培養(yǎng)基和發(fā)酵培養(yǎng)基:葡萄糖1.5%(W/V),蛋白胨15 g/L,酵母抽提物25 g/L,氯化鈉10 g/L,(NH4)2SO420 g/L,另外再添加3種必需氨基酸leuA、metB、trpC,終濃度均為0.5%(W/V)。
1.2方法
1.2.1目的基因的擴(kuò)增及重組質(zhì)粒的構(gòu)建
設(shè)計一對引物擴(kuò)增pHCMCO4-Pglv表達(dá)載體,上游引物與下游引物各自含有與目的基因重疊的21個堿基(下劃線部分),即
Plvse-up:CACGTCGGCGCTCGCGTATGAA-
TATTACTTAGAGGATACTATTGAGA;
Plvse-down:GTCGCGTTCGCCGGGTGGTGCTGCCGCCGCTGCTGCAGAAT。
設(shè)計一對引物擴(kuò)增麥芽糖α-淀粉酶基因sva,即
Sva-up:GCACCACCCGGCGAACGCGA;
Sva-down:TCATACGCGAGCGCCGACGTG。
以pHCMCO4-Pglv表達(dá)載體為模板,PCR擴(kuò)增體系:5×PrimeSTAR buffer 10 μL,dNTP Mixture(各2.5 mmol/L)4 μL,Plvse-up 1 μL,Plvse-down 1 μL,template 1 μL,PrimeSTAR DNA Polymerase 0.5 μL,加ddH2O至50 μL。載體PCR退火溫度和延伸時間分別為68℃,7 min。以pSE-sva重組質(zhì)粒為模板,采用兩步法PCR擴(kuò)增目的基因,PCR體系:5×PrimeSTAR buffer 10 μL,dNTP Mixture(各2.5 mmol/L)4 μL,Sva-up 1 μL,Sva-down 1 μL,template 1 μL,PrimeSTAR DNA Polymerase 0.5 μL,加ddH2O至50 μL。退火和延伸同時進(jìn)行,溫度為68℃,時間為2 min。各取2.5 μL PCR產(chǎn)物進(jìn)行瓊脂糖凝膠電泳,驗證PCR成功后用膠回收試劑盒回收目的條帶,并用瓊脂糖凝膠電泳分析驗證回收目的片段的純度。
花椒精油中還含有大量的酯類化合物,其中含有的乙酸芳樟酯化學(xué)性質(zhì)較穩(wěn)定,常溫下不會變色,在皂用香精和高檔香料產(chǎn)品的制造中經(jīng)常會用到。精油中還有一些其他酯類化合物,比如乙酸松油酯,它是帶有類似檸檬、薰衣草清香,氣味有一些甜的物質(zhì),其香氣停留時間相對較長,是我國頒布的《食品添加劑使用衛(wèi)生標(biāo)準(zhǔn)》所允許使用的食品香料之一。此外,花椒精油中還含有乙酸異龍腦酯、乙酸香葉酯、乙酸-1-甲基-4-(1-甲基乙烯基)環(huán)己酯等酯類化合物,它們均為花椒香味的主要來源之一。除此之外,這些酯類化合物在醫(yī)學(xué)上還具有鎮(zhèn)靜和止痙攣的治療功效[7]。
采用Clontech公司的In-fusion HD cloning kit 融合連接兩個目的片段,10 μL連接體系:5×In-fusion Enzyme Premix 2 μL,穿梭載體pHCMCO4-Pglv線性載體5 μL,sva 3 μL。將體系混勻置37℃恒溫水浴15 min,然后立即于50℃水浴15 min,冰上冷卻后轉(zhuǎn)化2.5 μL大腸桿菌Trans-10感受態(tài)細(xì)胞。取200 μL轉(zhuǎn)化產(chǎn)物涂布于帶有Amp抗性的LB平板上,再置于37℃恒溫培養(yǎng)箱倒置培養(yǎng)過夜。挑取單菌落提質(zhì)粒進(jìn)行SacⅠ單酶切驗證正確后送測序。1.2.2重組酶的表達(dá)及SDS-PAGE分析
將重組質(zhì)粒pHCMCO4-Pglv-sva轉(zhuǎn)化枯草芽孢桿菌1A857進(jìn)行表達(dá),并以空質(zhì)粒pHCMCO4-Pglv作為對照,分別以1%(V/V)的接種量轉(zhuǎn)接于100 mL的LB培養(yǎng)基中(含有17 μg/mL的氯霉素Cm),37℃,220 r/min搖床振蕩培養(yǎng),培養(yǎng)6 h后加入1.5%(W/V)麥芽糖誘導(dǎo)表達(dá),從接種后開始每隔12 h取樣,并用DNS[15]測定發(fā)酵液粗酶的酶活力。取麥芽糖誘導(dǎo)24 h的發(fā)酵液1 mL通過真空濃縮機(jī)濃縮至50 μL左右,與上樣緩沖液按照1∶1(V/V)混合處理后進(jìn)行10%(W/V)SDS-PAGE分析。
麥芽糖α-淀粉酶活力定義:在最適條件下,每分鐘生成1 μmoL葡萄糖所需的酶量為一個酶活單位(1 U)。酶活力的計算公式為
其中,G為葡萄糖含量(mg/mL);n為稀釋倍數(shù)(mg/mL);198.17為葡萄糖分子量;10為反應(yīng)時間(min);0.01為酶液體積(mL)。
1.2.3重組菌株培養(yǎng)條件的優(yōu)化
1.2.3.1最適葡萄糖濃度
首先挑取單菌落轉(zhuǎn)接于5 mL左右的LB培養(yǎng)基中過夜培養(yǎng)活化菌種,于500 mL三角瓶中加入30 mL葡萄糖濃度(W/V)分別為0.5%,1.0%,1.5%的發(fā)酵培養(yǎng)基(加入Cm終濃度為50 μg/mL),同時加入3%(V/V)過夜培養(yǎng)的菌種,培養(yǎng)至菌體OD600值約為0.6時加入1.5%(W/V)麥芽糖誘導(dǎo)表達(dá)。每間隔6 h分別取樣,在波長λ=600 nm下,將菌液適當(dāng)稀釋后,測定其OD600值,同時取發(fā)酵液測定胞外粗酶活。從含有1.5%(W/V)的葡萄糖這一組發(fā)酵液中取樣,通過真空濃縮機(jī)濃縮至50 μL左右,與上樣緩沖液按照1∶1(V/V)混合處理后進(jìn)行10%(W/V)SDS-PAGE分析。
1.2.3.2最適氯霉素濃度
將重組菌株過夜活化后以3%(V/V)的接種量轉(zhuǎn)接入到含有氯霉素濃度分別為50 μg/mL、100 μg/mL、200 μg/mL、400 μg/mL的發(fā)酵培養(yǎng)基中,培養(yǎng)6 h至菌體OD600值約為0.6時加入1.5%(W/V)麥芽糖,在35℃,200 r/min恒溫?fù)u床進(jìn)行誘導(dǎo)表達(dá),收集菌液測定不同氯霉素濃度濃度下菌體的OD600值,并收集發(fā)酵液用DNS法測定粗酶的酶活力。
1.2.4重組菌株發(fā)酵條件優(yōu)化
1.2.4.1單因素試驗
(1)誘導(dǎo)溫度:將重組菌株過夜活化后以接種量為3%(V/V)接入到發(fā)酵培養(yǎng)基(Cm終濃度為200 μg/mL)中,培養(yǎng)6 h菌體OD600值約為6時加入1.5%麥芽糖誘導(dǎo)表達(dá),分別放置25℃,30℃,35℃,40℃恒溫培養(yǎng)箱進(jìn)行誘導(dǎo)表達(dá),培養(yǎng)66 h后用DNS法測定粗酶活力。
(2)接種量:將重組菌株過夜活化后以1%,2%,4%,8%的接種量(V/V)接入到含有200 μg/mL氯霉素的發(fā)酵培養(yǎng)基中,培養(yǎng)6 h菌體OD600值約為6時加入1.5%麥芽糖在最適溫度條件下恒溫誘導(dǎo)表達(dá),培養(yǎng)66 h后收集發(fā)酵液用DNS法測定粗酶活力。(3)裝液量:將重組菌株過夜活化后以最適接種量轉(zhuǎn)接于分別含有30 mL、50 mL、70 mL、90 mL發(fā)酵培養(yǎng)基(Cm終濃度為200 μg/mL)的500 mL三角瓶中,培養(yǎng)6 h菌體OD600值約為6時,加入1.5%麥芽糖在最適溫度條件下恒溫誘導(dǎo)表達(dá),培養(yǎng)66 h后收集發(fā)酵液用DNS法測定粗酶活力。
1.2.4.2正交試驗
在單因素試驗的基礎(chǔ)上,選擇誘導(dǎo)溫度、接種量和裝液量進(jìn)行L9(34)的正交實驗,每組設(shè)計3個平行然后取平均值,按照表1進(jìn)行試驗,從而確定最優(yōu)的發(fā)酵條件。
表1正交試驗設(shè)計
Table 1The design of orthogonal test
因素Factor水平Level123裝液量Liquidvolume(A,mL)253035接種量Inoculumsize(B,%)345誘導(dǎo)溫度Inductiontemperature(C,℃)333537誤差Error(E)---
2結(jié)果與分析
2.1目的基因的擴(kuò)增和重組質(zhì)粒的構(gòu)建
如圖1所示,PCR擴(kuò)增得到大小約為1.4 kb和6.4 kb的兩個DNA片段,這與預(yù)期目的基因的大小一致。
M1:λDNA/HindⅢ DNA Maker;1:PCR product of pHCMCO4-Pglv;M2:W2003 DNA Marker; 2:PCR product of sva
圖1PCR產(chǎn)物分析
Fig.1Digestion of PCR products
如圖2所示,重組質(zhì)粒經(jīng)Sac Ⅰ單酶切后得到一條約為7.8 kb的條帶,與預(yù)期的大小一致,說明目的片段已經(jīng)連接到載體pHCMCO4-Pglv上,重組質(zhì)粒pHCMCO4-Pglv-sva構(gòu)建成功。
M:λDNA/HindⅢ DNA Marker;1,3:pHCMCO4-Pglv-svarecombinant plasmid;2,4:pHCMCO4-Pglv-svarecombinant plasmid digested withSacⅠ
圖2重組質(zhì)粒酶切分析
Fig.2Digestion of the recombinant plasmids
2.2重組酶活力的測定和SDS-PAGE分析
如圖3所示,重組菌株在LB培養(yǎng)基中的酶活力隨著培養(yǎng)時間的延長呈現(xiàn)先上升后下降的趨勢,在培養(yǎng)120 h時達(dá)到最高酶活力,約為24 U/mL。SDS-PAGE分析發(fā)現(xiàn),在55 kDa處出現(xiàn)一條蛋白條帶,與預(yù)期目標(biāo)蛋白大小相符(圖4),推斷為綠色糖單孢菌麥芽糖α-淀粉酶。
圖3培養(yǎng)時間對重組酶活力的影響
Fig.3Effect of culture time on recombinant enzyme activity
M:Protein marker;1:Total soluble proteins of B.subtilis 1A857 containing plasmid pHCMCO4-Pglv-sva;2:Total soluble proteins of B.subtilis 1A857 containing plasmid pHCMCO4-Pglv
圖4重組酶的SDS-PAGE電泳分析
Fig.4SDS-PAGE analysis of recombinant enzyme
2.3重組菌株培養(yǎng)條件的優(yōu)化
2.3.1最適葡萄糖濃度
根據(jù)相關(guān)文獻(xiàn),添加一定濃度的葡萄糖有助于營養(yǎng)缺陷型枯草芽孢桿菌的生長,但是葡萄糖濃度過高會產(chǎn)生代謝物反饋抑制。由圖5和圖6可知,當(dāng)葡萄糖濃度為1.5%(W/V)時,菌體OD600值最大,約為27,酶活力也最高,達(dá)100 U/mL,均明顯高于葡萄糖濃度為0.5%和1.0%(W/V)時的菌體OD600值和粗酶活力。說明1.5%(W/V)的葡萄糖濃度對重組菌產(chǎn)酶量的抑制作用還不是很明顯,主要是作為碳源供菌體生長。此外,SDS-PAGE分析發(fā)現(xiàn),在55 kDa左右出現(xiàn)明顯的蛋白條帶,與核酸序列理論推算的蛋白質(zhì)分子量相符(圖7)。
2.3.2最適氯霉素濃度
如圖8所示,重組酶活力和菌體生長量均隨著氯霉素濃度的增加呈現(xiàn)先上升后下降的趨勢,當(dāng)氯霉素濃度為200 μg/mL時,最高酶活力達(dá)到272 U/mL;重組菌在氯霉素濃度為100 μg/mL時生長最快。
圖5 葡萄糖濃度對菌體生長的影響
圖6葡萄糖濃度對重組酶活力的影響
Fig.6Effect of glucose concentrations on recombinant enzyme activity
M:Protein marker;1:Total soluble proteins of B.subtilis 1A857 containing plasmid pHCMCO4-Pglv-sva;2:Total soluble proteins of B.subtilis 1A857 containing plasmid pHCMCO4-Pglv
圖7重組酶的SDS-PAGE電泳分析
Fig.7SDS-PAGE analysis of recombinant enzyme
2.4重組菌株發(fā)酵條件優(yōu)化
2.4.1單因素試驗
如圖9所示,重組菌的最適誘導(dǎo)溫度為35℃,此時酶活力最高可以達(dá)到224 U/mL。當(dāng)接種量為4%時酶活力最高,為265 U/mL,當(dāng)接種量過大時,營養(yǎng)物質(zhì)消耗快,后期產(chǎn)酶的積累減少,接種量較少時,菌體積累量不夠,也影響產(chǎn)酶量的積累。裝液量間接反映溶氧量對菌株產(chǎn)酶量的影響,試驗結(jié)果表明,當(dāng)裝液量為30 mL時,培養(yǎng)66 h可以達(dá)到最高酶活力257 U/mL,說明重組菌對氧氣的需求量很大。
圖8不同氯霉素濃度下重組酶酶活力和菌體OD600
Fig.8The recombinant enzyme activity and OD600in different chloride concentration
圖9單因素試驗結(jié)果
Fig.9Result of single factor experiment
2.4.2正交試驗
根據(jù)正交試驗數(shù)據(jù)可以看出,最佳的發(fā)酵條件組合為A1B3C3,即最佳的發(fā)酵條件為裝液量25 mL、接種量5%、誘導(dǎo)溫度37℃,在此條件下,發(fā)酵液粗酶活力達(dá)到257.3698 U/mL(表2)。方差分析結(jié)果顯示,SA>SB>SC,說明3個因素中對酶活力影響順序為裝液量>接種量>誘導(dǎo)溫度;因為FA>F0.9(2,8)=3.110>FB>FC,所以裝液量對重組菌的產(chǎn)酶量有顯著影響,而接種量和誘導(dǎo)溫度對產(chǎn)酶量的影響不顯著(表3)。
表2正交試驗結(jié)果分析
Table 2Results and analysis of orthogonal test
實驗號TestnumberABCE酶活力Enzymeactivity(U/mL)11111189.32521222215.93931333257.37042123184.38652231194.70862312204.11573132107.60583213118.55193321121.765K1220.878160.421170.677168.599K2194.416176.399174.030175.881K3115.956194.430186.543186.769R104.92234.00915.86618.170
表3正交試驗方差分析
Table 3Variance analysis of orthogonal test
因素Factor偏差平方和Quadraticsum自由度VarianceF比FratioF臨界值Fcriticalvalue顯著性O(shè)bviousnessA17864.92823.4823.110*B1737.01320.3393.110C419.54620.0823.110E501.72320.0983.110總和Sum20523.218
注:*表示影響顯著
Note:*means significant influence
3討論
麥芽糖α-淀粉酶有來源于細(xì)菌和真菌,細(xì)菌來源的麥芽糖α-淀粉酶基因主要有枯草芽孢桿菌(Bacillus subtilis)、蠟狀芽孢桿菌(Bacillus cereus)、地衣芽孢桿菌(Bacillus licheniformis)、嗜熱脂肪芽孢桿菌(Geobacillus stearothermophilus)、嗜熱放線菌(Thermus vulgaris)等[16-17]。而真菌麥芽糖α-淀粉酶幾乎來源于絲狀真菌中的曲霉屬微生物,例如黑曲霉(Aspergillusniger)和米曲霉(Aspergillus oryzae)。而本研究中麥芽糖α-淀粉酶來源于綠色糖單孢菌,屬于細(xì)菌,它作用于20%淀粉后生成的主要產(chǎn)物為麥芽糖、麥芽三糖和少量葡萄糖,其中麥芽糖的含量可以達(dá)到67.15%。
大腸桿菌因自身產(chǎn)生內(nèi)毒素,從而限制了其在食品方面的應(yīng)用。目前商業(yè)化的大腸桿菌表達(dá)系統(tǒng)主要用IPTG進(jìn)行誘導(dǎo)表達(dá),而IPTG不僅價格昂貴而且有毒,基于安全考慮,這也限制其在醫(yī)療和食品方面的重組蛋白表達(dá)的應(yīng)用。另外因為大腸桿菌自身問題,在表達(dá)異源蛋白時很容易形成包涵體,從而使得可溶性蛋白表達(dá)量減少。
相較于大腸桿菌表達(dá)宿主,枯草芽孢桿菌因自身不產(chǎn)生內(nèi)毒素而沒有致病性,也沒有明顯的密碼子偏好性,而且還具有很好的分泌能力[18],能夠?qū)⒌鞍踪|(zhì)直接分泌到胞外,避免了包涵體的形成,因此被認(rèn)為是表達(dá)外源蛋白的理想宿主。根據(jù)文獻(xiàn)[6]報道,sva在大腸桿菌宿主中表達(dá)的最高酶活力為168.699 U/mL,本研究在枯草芽孢桿菌中實現(xiàn)sva的高效分泌表達(dá),胞外粗酶活力為257 U/mL。外源蛋白在枯草芽孢桿菌內(nèi)表達(dá)量仍然不高,主要是因為:(1)枯草芽孢桿菌自身在對數(shù)生長期分泌表達(dá)大量的蛋白酶,能夠?qū)⒛康牡鞍捉到猓?2)質(zhì)粒的分化和結(jié)構(gòu)不穩(wěn)定;(3)信號肽的適配性選擇。因此,目前研究熱點一方面是尋找一個強(qiáng)啟動子,包括誘導(dǎo)型的蔗糖啟動子,木糖啟動子,淀粉啟動子以及組成型啟動子P43;另外一方面是得到與目的基因高度適配的信號肽[19]。
4結(jié)論
本研究利用PCR技術(shù)成功克隆到目的基因sva,連接到大腸桿菌-枯草芽孢桿菌穿梭載體pHCMCO4-Pglv,成功構(gòu)建pHCMCO4-Pglv-sva,以B.subtilis 1A857為表達(dá)宿主實現(xiàn)分泌表達(dá),并且通過菌體生長條件和發(fā)酵條件優(yōu)化后,確定最佳的發(fā)酵條件為誘導(dǎo)溫度37℃、接種量5%、裝液量25 mL,在此條件下獲得的胞外粗酶最高酶活力達(dá)到257 U/mL。
參考文獻(xiàn):
[1]TONKOVA A.Bacterial cyclodextrin glucanotransfera-
se[J].Enzyme and Microbial Technology,1998,22(8):678-686.
[2]MALHOTRA R,NOORWEZ S,SATYANARAYANA T.Production and partial characterization of thermostable and calcium-independent α-amylase of an extreme thermophile Bacillus thermooleovorans NP54[J].Letters in Applied Microbiology,2000,31(5):378-384.
[3]MURAKAMI S,NISHIMOTO H,TOYAMA Y,et al.Purification and characterization of two alkaline,thermotolerant α-amylases from Bacillus halodurans 38C-2-1 and expression of the cloned gene in Escherichia coli[J].Bioscience,Biotechnology,and Biochemistry,2007,71(10):2393-2401.
[4]STEIN T,HEINZMANN S,DüSTERHUS S,et al.Expression and functional analysis of the subtilin immunity genes spaIFEG in the subtilin-sensitive host Bacillus subtilis MO1099[J].Journal of Bacteriology,2005,187(3):822-828.
[5]BONGERS R S,VEENING J W,VAN WIERINGEN M,et al.Development and characterization of a subtilin-regulated expression system in Bacillus subtilis:Strict control of gene expression by addition of subtilin [J].Applied and Environmental Microbiology,2005,71(12):8818-8824.
[6]汪小波,李美蓉,李雪,等.綠色糖單孢菌高產(chǎn)麥芽糖α-淀粉酶基因的克隆表達(dá)及酶學(xué)性質(zhì)[J].應(yīng)用與環(huán)境生物學(xué)報,2013,19(2):342-345.
WANG X B,LI M R,LI X,et al.Gene cloning,expression and enzymatic characterization of a high maltose-producing α-amylase from Saccharomonospora viridis[J].Chin J Appl Environ Biol,2013,19(2):342-345.
[7]OLEMPSKA-BEER Z S,MERKER R I,DITTO M D,et al.Food-processing enzymes from recombinant microorganisms—A review[J].Regulatory Toxicology and Pharmacology,2006,45(2):144-158.
[8]TOSATO V,BRUSCHI C.Knowledge of the Bacillus
subtilis genome:Impacts on fundamental science and biotechnology[J].Applied Microbiology and Biotechnology,2004,64(1):1-6.
[9]劉國紅,林營志,林乃銓,等.芽胞桿菌分類研究進(jìn)展[J].福建農(nóng)業(yè)學(xué)報,2011,26(5):911-917.
LIU G H,LIN Y Z,LIN N Q,et al.Study on genus Bacillus classification[J].Fujian Journal of Agriculture Sciences,2011,26(5):911-917.
[10]SCHALLMEY M,SINGH A,WARD O P.Developme-
nts in the use of Bacillus species for industrial production[J].Canadian Journal of Microbiology,2004,50(1):1-17.
[11]李明,雙寶,李海濤,等.枯草芽孢桿菌的研究與應(yīng)用[J] .東北農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報,2009,40(9):111-114.
LI M,SHUANG B,LI H T,et al.Progress and application of Bacillus subtilis in different fields[J].Journal of Northeast Agricultural Univercity,2009,40(9):111-114.
[12]王艷娜,張梁,丁重陽,等. 不同啟動子調(diào)控羰基還原酶基因在枯草芽胞桿菌中的表達(dá)水平[J].生物加工過程,2013,11(3):46-51.
WANG Y N,ZHANG L,DING C Y,et al.Expression of carbonyl reductase in Bacillus subtilis with different promotes[J].生物加工過程,2013,11(3):46-51.
[13]KIM D Y,CHA C H,OH W S,et al.Expression of the promoter for the maltogenic amylase gene in Bacillus subtilis 168 [J].Journal of Microbiology (Seoul,Korea),2004,42(4):319-327.
[14]訾楠,沈微,石貴陽,等.地衣芽孢桿菌生麥芽糖α-淀粉酶的基因克隆與鑒定[J].應(yīng)用與環(huán)境生物學(xué)報,2009,15(1):130-133.
ZI N,SHEN W,SHI G Y,et al.Gene cloning and characterization of Bacillus licheniformis maltogenic α-amylase[J].Chin J Appl Environ Biol,2009,15(1):130-133.
[15]鞏莉,華穎,劉大群,等.3,5-二硝基水楊酸法測定番茄廢渣中糖分含量的研究[J].保鮮與加工,2014,14(3):37-42.
GONG L,HUA Y,LIU D Q,et al.Study on determination of sugar content from tomato residue with 3,5-dinitrosalicylic acid colorimetry[J].Storage and Process,2014,14(3):37-42.
[16]CHO H Y,KIM Y W,KIM T J,et al.Molecular characterization of a dimeric intracellular maltogenic amylase of Bacillus subtilis SUH4-2 [J].Biochimica et Biophysica Acta (BBA)-Protein Structure and Molecular Enzymology,2000,1478(2):333-340.
[17]KIM Y W,CHOI J H,KIM J W,et al.Directed evolution of Thermus maltogenic amylase toward enhanced thermal resistance[J].Applied and Environmental Microbiology,2003,69(8):4866-4874.
[18]POHL S,HARWOOD C R.Heterologous protein secretion by Bacillus species:From the cradle to the grave[J].Advances in Applied Microbiology,2010,73:1-25.
[19]KIM J H,HWANG B Y,ROH J,et al.Comparison ofPapr E,Pamy E,and PP43 promoter strength for β-galactosidase and staphylokinase expression in Bacillus subtilis[J].Biotechnology and Bioprocess Engineering,2008,13(3):313-318.
(責(zé)任編輯:陸雁)
High Level Secretion Expression of Maltogenic α-amylase from Saccharomonospora viridis in Bacillus subtilis
柳梅梅1,2,謝敏1,2,楊燕芳1,2,劉滔滔1,2,杜麗琴1,2,梁智群1,2,韋宇拓1,2**
LIU Meimei1,2,XIE Min1,2,YANG Yanfang1,2,LIU Taotao1,2,DU Liqin1,2,LIANG Zhiqun1,2,WEI Yutuo1,2
(1.廣西大學(xué)生命科學(xué)與技術(shù)學(xué)院,廣西南寧530005;2.亞熱帶農(nóng)業(yè)生物資源保護(hù)與利用國家重點實驗室,廣西南寧530005)
(1.College of Life Science and Technology,Guangxi University,Nanning,Guangxi,530005,China;2.State Key Laboratory for Conservation and Utilizaiton of Subtropical Agro-bioresources,Nanning,Guangxi,530005,China)
摘要:【目的】構(gòu)建高產(chǎn)麥芽糖α-淀粉酶的工程菌株并實現(xiàn)高效分泌表達(dá)?!痉椒ā縋CR擴(kuò)增麥芽糖α-淀粉酶基因sva,再與大腸桿菌-枯草芽孢桿菌麥芽糖誘導(dǎo)型穿梭載體pHCMCO4-Pglv連接,構(gòu)建重組質(zhì)粒pHCMCO4-Pglv-sva并轉(zhuǎn)入枯草芽孢桿菌進(jìn)行表達(dá),對重組酶進(jìn)行SDS-PAGE分析,然后對重組菌株的生長及發(fā)酵條件進(jìn)行優(yōu)化?!窘Y(jié)果】成功構(gòu)建重組質(zhì)粒pHCMCO4-Pglv-sva并在枯草芽孢桿菌中實現(xiàn)分泌表達(dá),SDS-PAGE分析發(fā)現(xiàn),在55 kDa處得到特異性蛋白條帶。單因素試驗結(jié)果顯示,重組菌的最適誘導(dǎo)溫度為35℃,最適接種量為4%(V/V),最適裝液量為30 mL。正交實驗結(jié)果顯示,重組菌的最佳發(fā)酵條件組合是誘導(dǎo)溫度37℃、接種量5%(V/V)、裝液量25 mL,在此條件下發(fā)酵液粗酶活力達(dá)到257.3698 U/mL。裝液量對重組菌的產(chǎn)酶量影響顯著?!窘Y(jié)論】成功構(gòu)建能高效分泌表達(dá)麥芽糖α-淀粉酶的枯草芽孢桿菌工程菌株,經(jīng)發(fā)酵條件優(yōu)化后,重組酶產(chǎn)量顯著提高10倍左右。
關(guān)鍵詞:麥芽糖α-淀粉酶枯草芽孢桿菌高效表達(dá)優(yōu)化
Abstract:【Objective】 Engineering strains for high yield of maltose alpha amylase were constructed in order to implement efficient secrection expression.【Methods】The gene that had a length of 1 440 bp was amplified by PCR.The recombinant plasmid pHCMCO4-Pglv-sva was constructed and transformed into Bacillus subtilis.The recombinant protein was analyzed by SDS-PAGE,and the growing conditions of recombinant strains were further optimized.【Results】The recombinant strain pHCMCO4-Pglv-sva was successfully constructed and expressed in Bacillus subtilis.The molecular weight of the recombinant protein was approximately 55 kDa by SDS-PAGE analyis.Single factor optimization of fermentation conditions revealed that the recombinant strain had the optimal induction temperature at 35℃,the optimal inoculated quantity of 4%(V/V) and the optimal loading fluid amount of 30 mL.Orthogonal experiment results showed that the optimum fermentation conditions were induction temperature at 37℃,quantity of 5%(V/V) and fluid volume 25 mL,under which the enzyme activity of recombinant maltose alpha amylase reached to 257.3698 U/mL.Among them,liquid loading quantity had significant effects on enzyme activity of maltose alpha amylase.【Conclusion】The recombinant plasmid pHCMCO4-Pglv-sva was successfully built and maltose alpha amylase was highly increased to ten times after optimizing fermentation condition.
Key words:maltose α-amylase,Bacillus subtilis,high efficient expression,optimization
中圖分類號:Q786
文獻(xiàn)標(biāo)識碼:A
文章編號:1005-9164(2016)01-0012-07
作者簡介:柳梅梅(1989-),女,碩士研究生,主要從事基因工程菌的構(gòu)建和酶工程研究。
收稿日期:2015-11-16
修回日期:2016-02-28
*國家自然科學(xué)基金項目(31160311)和廣西自然科學(xué)基金項目(2012GXNSFAA053051)資助。
**通訊作者:韋宇拓(1971-),男,教授,主要從事發(fā)酵與酶工程研究,E-mail:weiyutuo@gxu.edu.cn。
廣西科學(xué)Guangxi Sciences 2016,23(1):12~18
網(wǎng)絡(luò)優(yōu)先數(shù)字出版時間:2016-03-15
網(wǎng)絡(luò)優(yōu)先數(shù)字出版地址:http://www.cnki.net/kcms/detail/45.1206.G3.20160315.1511.016.html