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      miRNA在大腸癌中的作用△

      2016-10-17 09:45:22唐林黃維康楊帆孟靜巖
      癌癥進展 2016年2期
      關(guān)鍵詞:癌基因大腸癌耐藥性

      唐林 黃維康 楊帆 孟靜巖

      天津中醫(yī)藥大學,天津300193

      miRNA在大腸癌中的作用△

      唐林黃維康楊帆孟靜巖#

      天津中醫(yī)藥大學,天津300193

      近年來,隨著MicroRNA(miRNA)在大腸癌中作用的深入研究以及在大腸癌中調(diào)控機制變得更加清晰,miRNA的功能也得到更全面的了解。研究表明,miRNA在大腸癌中存在異常表達的情況,但是不同miRNA的異常表達對大腸癌的調(diào)控效果存在差異,有的可能發(fā)揮癌基因的作用,有的則可能發(fā)揮抑癌基因的作用。此外,與正常組織相比,同一個miRNA在大腸癌的不同時期也可能存在表達量完全相反的現(xiàn)象。異常表達的miRNA可能成為結(jié)直腸腺瘤或者大腸癌的診斷、預(yù)后以及治療療效的指標,檢測血液循環(huán)中miRNA的表達可能成為一種精確度高、無創(chuàng)性的檢測手段。在大腸癌治療方面,miRNA可能對大腸癌細胞的耐藥性存在影響?,F(xiàn)從調(diào)控、診斷、預(yù)后及耐藥四個方面,對miRNA與大腸癌的關(guān)系研究進行綜述。

      miRNA;大腸癌;調(diào)控;診斷;預(yù)后;耐藥

      世界衛(wèi)生組織下屬的國際癌癥研究機構(gòu)GLOBOCAN于2012年公布的最新數(shù)據(jù)顯示,在全球范圍內(nèi),大腸癌居男性惡性腫瘤發(fā)病率第三位,居女性惡性腫瘤發(fā)病率第二位;并且大腸癌的發(fā)病率存在地域間差異,發(fā)達國家大腸癌的發(fā)病率高于發(fā)展中國家。這可能與人們不健康的飲食、肥胖、吸煙有關(guān)[1]。從分子水平研究發(fā)現(xiàn),大腸癌的發(fā)生是由于癌基因和抑癌基因的突變逐漸積累而成[2]。此外,某些癌基因或抑癌基因可能成為miRNA的靶基因,在miRNA的調(diào)控下發(fā)揮作用。

      miRNA是一類單鏈非編碼小RNA,其長度在22個核苷酸左右。miRNA通過調(diào)控相關(guān)基因的表達,進而在細胞增殖、分化、轉(zhuǎn)移過程中發(fā)揮作用[3-5]。研究發(fā)現(xiàn),在腫瘤發(fā)展和預(yù)后過程中,miRNA發(fā)揮不可忽視的作用[6-8]。因此,一些研究人員正探尋用于大腸癌診斷及預(yù)后判斷的miRNA。還有研究試圖運用靶向治療的方法,作用于相關(guān)的miRNA來達到抑制或消除腫瘤的目的[9]?,F(xiàn)將與大腸癌相關(guān)miRNA的研究進展進行歸納闡述,以期能為大腸癌的研究、診斷、治療以及預(yù)防提供重要的新思路。

      1 與大腸癌相關(guān)的miRNA

      miRNA通過調(diào)控癌基因或抑癌基因的表達,在癌癥中起到致癌作用或抑癌作用[10]。因此,miRNA可以分為致癌miRNA和抑癌miRNA兩大類。在大腸癌的研究中,可以運用基因表達譜分析或者基因芯片技術(shù)篩選出表達異常的miRNA,進而研究其對轉(zhuǎn)錄后水平的調(diào)控作用[11-12]。常見與大腸癌相關(guān)的miRNA,見表1。

      1.1促進大腸癌發(fā)展的miRNA

      現(xiàn)研究發(fā)現(xiàn),在大腸癌中高表達的miRNA可能促進細胞增殖、抑制細胞凋亡,又因促進細胞侵襲和轉(zhuǎn)移,從而誘導大腸癌的發(fā)生和轉(zhuǎn)移。Jahid等[13]發(fā)現(xiàn),在老鼠腸腺癌、人Ⅰ/Ⅱ期原位大腸癌、大腸癌細胞系以及腫瘤干細胞中,miR-23a表達量均增加;分析其功能發(fā)現(xiàn),miR-23a可以促進大腸癌的侵襲和轉(zhuǎn)移。Valeri等[14]實驗發(fā)現(xiàn)在動物模型和大腸癌患者中,miR-135b都呈高表達狀態(tài),這可能與APC、PTEN、p53等抑癌基因的缺失或突變有關(guān);通過體內(nèi)外實驗發(fā)現(xiàn),miR-135b的高表達會抑制細胞凋亡,促進細胞增殖。有多項研究發(fā)現(xiàn),高表達的miR-21可以通過抑制抑癌基因PDCD4的表達,促進大腸癌的轉(zhuǎn)化、生長和轉(zhuǎn)移[15-17]。在大腸癌中還存在許多致癌的miRNA,如miR-17-5p[18]、miR-95[19]、miR-499-5p[20]等,以及一些尚未被發(fā)現(xiàn)的致癌miRNA。

      1.2抑制大腸癌發(fā)展的miRNA

      大量研究表明,大腸癌中低表達的miRNA可能具有抑癌基因的作用。let-7是人類細胞或組織中發(fā)現(xiàn)較早的、存在較為廣泛的miRNA。let-7a是let-7家族的一員。有研究發(fā)現(xiàn),與正常組織相比,let-7a在腫瘤組織(包括大腸癌)中呈現(xiàn)低表達狀態(tài),增加let-7a的表達量將會抑制腫瘤細胞的生長[21]。Long等[22]分別檢測了人大腸癌組織和大腸癌細胞系。結(jié)果發(fā)現(xiàn)miR-138均表達下降;體內(nèi)外實驗發(fā)現(xiàn),異位表達miR-138會抑制大腸癌的侵襲和轉(zhuǎn)移。Ke等[5]研究發(fā)現(xiàn),抑癌基因APC的缺失可能導致miR-224的低表達,異位表達miR-224會降低大腸癌細胞的轉(zhuǎn)移能力,但是對細胞增殖的影響較小。此外,研究發(fā)現(xiàn)miR-139[23]、miR-143[24-25]、miR-145[26]、miR-342[27]、miR-365[28]、miR-497[29]、miR-638[30]等多種miRNA在大腸癌中都呈現(xiàn)低表達,并從不同的方面抑制大腸癌的發(fā)展和轉(zhuǎn)移。從以上多項研究可以得知低表達的miRNA抑制大腸癌發(fā)展和轉(zhuǎn)移的機制不盡相同。通過不斷地探尋和挖掘潛在抑制大腸癌發(fā)展的miRNA,可能為抑制大腸癌發(fā)展和轉(zhuǎn)移提供新的作用靶點。

      表1 與大腸癌相關(guān)的miRNA

      2 miRNA在大腸癌篩查診斷中的作用

      大腸癌的篩查有助于早期發(fā)現(xiàn)腫瘤,是降低大腸癌死亡率的關(guān)鍵。Yang等[31]研究美國1976—2009年大腸癌篩查情況與大腸癌發(fā)病率之間的關(guān)系發(fā)現(xiàn),隨著納入癌癥篩查項目的人數(shù)增多,大腸癌的發(fā)病率出現(xiàn)大幅度下降,并估算這期間通過大腸癌篩查,成功預(yù)防了236 000~550 000例大腸癌的發(fā)生。因此可以看出大腸癌篩查的重要性。

      Du等[32]通過Meta分析發(fā)現(xiàn),在大腸癌早期診斷中,miR-21(AUC=0.867)比miR-92a(AUC= 0.803)診斷率更高;并通過進一步實驗說明了miR-21在血漿中的高表達有可能成為早期大腸癌診斷的生物指標。Kanaan等[33]為探究循環(huán)中miRNA作為結(jié)直腸腺瘤生物標志物的潛在應(yīng)用價值,采用微流控陣列技術(shù)在篩查組篩查380個miRNA的表達情況,結(jié)果發(fā)現(xiàn)一組血清miRNA組合(miR-532-3p、miR-331、miR-195、miR-17、miR-142-3p、miR-15b、miR-532、miR-652)能夠準確地區(qū)分結(jié)直腸腺瘤與正常對照[AUC=0.868(95%CI 0.76~0.98)];miR-431、miR-15b和miR-139-3p這三個miRNA組合則可以很好地將結(jié)直腸癌與正常對照區(qū)別開[AUC=0.896(95%CI 0.78~1.0)]。這些實驗結(jié)果表明血漿miRNA是檢測結(jié)直腸腺瘤和大腸癌的有效生物指標。Zeng等[34]采用Meta分析方法研究了19篇文章的24項研究,其中包括1558例大腸癌患者和1085例對照患者,經(jīng)過亞組和回歸分析顯示,多種miRNA[AUC=0.92(95%CI 0.89~0.94)]比單種miRNA[AUC=0.84(95%CI 0.81~0.87)]預(yù)測大腸癌的準確性更高;此外還發(fā)現(xiàn),在通過檢測血液循環(huán)中miRNA的方法來篩查大腸癌時,選用血清[AUC=0.92(95%CI 0.89~0.94)]作為檢測基質(zhì)可能比血漿[AUC=0.87(95%CI 0.84~0.90)]效果更好。

      對于異常表達miRNA是否可以作為大腸癌診斷的標志物這一問題,學者們從不同的方面進行了研究和探討,雖然研究結(jié)果可能存在差異性,但是總體研究的趨勢均是miRNA在大腸癌診斷中存在價值。至于選用何種檢測手段準確性更高、依從性更好,還有待進一步研究確定。

      3 miRNA在判斷大腸癌預(yù)后中的作用

      miRNA表達的穩(wěn)定性和差異性已經(jīng)被人們所認知。近年來,研究人員通過分析腫瘤組織中一個或多個異常表達的miRNA,來探尋可能存在的大腸癌預(yù)后標志物。Chu等[35]調(diào)查miR-630在大腸癌中的表達模式以及對預(yù)后評估的價值,通過采用206例大腸癌患者腫瘤組織和鄰近正常組織比較發(fā)現(xiàn),miR-630在腫瘤組織中表達增高;在大腸癌患者中,miR-630高表達的患者比低表達的患者總生存率要低,因此推斷miR-630可能作為大腸癌患者預(yù)后的生物標志物。但有的miRNA在術(shù)前和術(shù)后表達情況截然相反。Yang等[36]檢測分析miRNA-29c與大腸癌患者術(shù)后復發(fā)情況之間的關(guān)系,發(fā)現(xiàn)早期復發(fā)患者血清內(nèi)的miRNA-29c水平要明顯高于沒有早期復發(fā)患者的miRNA-29c水平,但miRNA-29c在大腸癌組織中的表達情況與血清檢測結(jié)果正好相反,這種現(xiàn)象存在的原因尚不清楚,研究者猜測術(shù)后患者預(yù)后越差,miRNA-29c水平越高,這種現(xiàn)象可能是機體的一種自我防御機制的體現(xiàn)。

      Jinushi等[37]研究發(fā)現(xiàn)人乳脂肪球EGF因子蛋白(MFGE8)的表達水平在切除大腸癌組織的患者中比未切除患者明顯降低;此外,評估大腸癌患者體內(nèi)miRNA表達水平與總生存率的關(guān)系,利用血漿和甲醛水溶液固定石蠟包埋的組織樣品檢測相關(guān)miRNA(包括miR-16、miR-21、miR-26a、miR-34a、miR-98、miR-101-3p、miR-101-5p、miR-124-5p、miR-126-3p、miR-126-5p、miR-210、miR-217和miR-630),發(fā)現(xiàn)高表達的miR-26a和低表達的miR-124-5p與低生存率有關(guān),因此推測聯(lián)合檢測血漿中MFGE8、miR-26a和miR-124-5p表達水平,可以有助于判斷大腸癌患者預(yù)后的情況。

      4 miRNA對大腸癌耐藥性的影響

      目前化學療法常被作為惡性腫瘤的輔助療法,但由于部分腫瘤細胞對化療藥物存在耐藥性,易導致腫瘤復發(fā)。miRNA在大腸癌發(fā)生發(fā)展中發(fā)揮著重要的調(diào)控作用。因此,許多研究從miRNA的角度對大腸癌耐藥性問題展開了探索研究。

      轉(zhuǎn)錄因子FOXO3a與FOXM1均屬于叉頭框(forkhead box,F(xiàn)OX)轉(zhuǎn)錄因子蛋白家族的一員,但是二者在腫瘤和DNA損傷修復中的作用相反。FOXO3a具有抑制腫瘤和抑制DNA損傷修復的作用,而FOXM1則有較強的致癌作用,并在腫瘤耐藥細胞中高表達,與腫瘤細胞耐藥存在相關(guān)性[38]。通過體內(nèi)外實驗發(fā)現(xiàn),miR-153可以促進大腸癌耐藥性增加,其耐藥性機制可能是直接抑制FOXO3a表達所致。后期試驗也顯示在大腸癌樣本中miR-153與FOXO3a的表達呈現(xiàn)負相關(guān)[39]。另一體外實驗發(fā)現(xiàn),miR-320可能通過抑制FOXM1的表達,增強人大腸癌細胞對化療藥的敏感性[40]。另有研究發(fā)現(xiàn),miR-17-5p可能通過抑制PTEN的表達來促進大腸癌患者的化療耐藥[18]。miR-145可能作為E3泛素連接酶(RAD18)的抑制劑,改善化療后大腸癌細胞的耐藥性[41]。

      5 小結(jié)

      miRNA在轉(zhuǎn)錄后水平調(diào)節(jié)基因表達,一個miRNA可以調(diào)控多個靶基因,同時多個miRNA也可以作用于同一個靶基因。miRNA通過調(diào)控相關(guān)靶基因,在細胞增殖、凋亡、遷移和侵襲中發(fā)揮重要作用。由于miRNA存在表達差異性,使得miRNA有可能作為大腸癌早期臨床診斷及預(yù)后的分子標志物。在治療方面,miRNA可能直接或間接地影響癌細胞對化療藥物的敏感性。miRNA對大腸癌的調(diào)控是一個復雜的網(wǎng)絡(luò),之前的研究使我們對miRNA與大腸癌的關(guān)系有了一定的了解和認識,但仍有許多問題值得進一步發(fā)現(xiàn)和深入研究。

      [1]Torre LA,Bray F,Siegel RL,et al.Global cancer statistics,2012[J].CACancer J Clin,2015,65(2):87-108.

      [2]Sj?blom T,Jones S,Wood LD,et al.The consensus coding sequences of human breast and colorectal cancers[J].Science,2006,314(5797):268-274.

      [3]Croce CM,Calin GA.miRNAs,cancer,and stem cell division[J].Cell,2005,122(1):6-7.

      [4]Bartel DP.MicroRNAs:genomics,biogenesis,mechanism,and function[J].Cell,2004,116(2):281-297.

      [5]Ke TW,Hsu HL,Wu YH,et al.MicroRNA-224 suppresses colorectal cancer cell migration by targeting Cdc42[J].Dis Markers,2014(2014):617150.

      [6]Zhang ZL,Bai ZH,Wang XB,et al.miR-186 and 326 predict the prognosis of pancreatic ductal adenocarcinoma and affect the proliferation and migration of cancer cells[J]. PLoS One,2015,10(3):e118814.

      [7]Tejero R,Navarro A,Campayo M,et al.miR-141 and miR-200c as markers of overall survival in early stage non-small cell lung cancer adenocarcinoma[J].PLoS One,2014,9(7):e101899.

      [8]Hanahan D,Weinberg RA.Hallmarks of cancer:the next generation[J].Cell,2011,144(5):646-674.

      [9]Cheng CJ,Bahal R,Babar IA,et al.MicroRNA silencing for cancer therapy targeted to the tumour microenvironment[J].Nature,2015,518(7537):107-110.

      [10]Schetter AJ,Okayama H,Harris CC.The role of microRNAs in colorectal cancer[J].Cancer J,2012,18(3):244-252.

      [11]Chang KH,Mestdagh P,Vandesompele J,et al.MicroRNA expression profiling to identify and validate reference genes forrelativequantificationincolorectalcancer[J].BMCCancer,2010(10):173.

      [12]Arndt GM,Dossey L,Cullen LM,et al.Characterization of global microRNA expression reveals oncogenic potential of miR-145 in metastatic colorectal cancer[J].BMC Cancer,2009(9):374.

      [13]Jahid S,Sun J,Edwards RA,et al.miR-23a promotes the transition from indolent to invasive colorectal cancer[J]. Cancer Discov,2012,2(6):540-553.

      [14]Valeri N,Braconi C,Gasparini P,et al.MicroRNA-135b promotes cancer progression by acting as a downstream effector of oncogenic pathways in colon cancer[J].Cancer Cell,2014,25(4):469-483.

      [15]Allgayer H.Pdcd4,a colon cancer prognostic that is regulated by a microRNA[J].Crit Rev Oncol Hematol,2010,73(3):185-191.

      [16]Fassan M,Pizzi M,Giacomelli L,et al.PDCD4 nuclear loss inversely correlates with miR-21 levels in colon carcinogenesis[J].Virchows Arch,2011,458(4):413-419.

      [17]Peacock O,Lee AC,Cameron F,et al.Inflammation and MiR-21 pathways functionally interact to downregulate PDCD4 in colorectal cancer[J].PLoS One,2014,9(10):e110267.

      [18]Fang L,Li H,Wang L,et al.MicroRNA-17-5p promotes chemotherapeutic drug resistance and tumour metastasis of colorectal cancer by repressing PTEN expression[J]. Oncotarget,2014,5(10):2974-2987.

      [19]Huang Z,Huang S,Wang Q,et al.MicroRNA-95 promotes cell proliferation and targets sorting Nexin 1 in human colorectal carcinoma[J].Cancer Res,2011,71(7):2582-2589.

      [20]Liu X,Zhang Z,Sun L,et al.MicroRNA-499-5p promotes cellular invasion and tumor metastasis in colorectal cancer by targeting FOXO4 and PDCD4[J].Carcinogenesis,2011,32(12):1798-1805.

      [21]Wang F,Zhang P,Ma Y,et al.NIRF is frequently upregulated in colorectal cancer and its oncogenicity can be suppressed by let-7a microRNA[J].Cancer Lett,2012,314(2):223-231.

      [22]Long L,Huang G,Zhu H,et al.Down-regulation of miR-138 promotes colorectal cancer metastasis via directly targeting TWIST2[J].J Transl Med,2013(11):275.

      [23]Guo H,Hu X,Ge S,et al.Regulation of RAP1B by miR-139 suppresses human colorectal carcinoma cell proliferation[J].Int J Biochem Cell Biol,2012,44(9):1465-1472.

      [24]Gregersen LH,Jacobsen A,F(xiàn)rankel LB,et al.MicroRNA-143 down-regulates Hexokinase 2 in colon cancer cells[J]. BMC Cancer,2012(12):232.

      [25]Zhang Y,Wang Z,Chen M,et al.MicroRNA-143 targets MACC1 to inhibit cell invasion and migration in colorectal cancer[J].Mol Cancer,2012(11):23.

      [26]Xu Q,Liu LZ,Qian X,et al.MiR-145 directly targets p70S6K1 in cancer cells to inhibit tumor growth and angiogenesis[J].Nucleic Acids Res,2012,40(2):761-774.

      [27]Wang H,Wu J,Meng X,et al.MicroRNA-342 inhibits colorectal cancer cell proliferation and invasion by directly targeting DNA methyltransferase 1[J].Carcinogenesis,2011,32(7):1033-1042.

      [28]Nie J,Liu L,Zheng W,et al.microRNA-365,down-regulated in colon cancer,inhibits cell cycle progression and promotes apoptosis of colon cancer cells by probably targeting Cyclin D1 and Bcl-2[J].Carcinogenesis,2012,33(1):220-225.

      [29]GuoST,JiangCC,WangGP,etal.MicroRNA-497targetsinsulin-likegrowthfactor1receptorandhasatumoursuppressive role in human colorectal cancer[J].Oncogene,2013,32(15):1910-1920.

      [30]Ma K,Pan X,F(xiàn)an P,et al.Loss of miR-638 in vitro promotes cell invasion and a mesenchymal-like transition by influencing SOX2 expression in colorectal carcinoma cells[J].Mol Cancer,2014(13):118.

      [31]Yang DX,Gross CP,Soulos PR,et al.Estimating the magnitude of colorectal cancers prevented during the era of screening:1976 to 2009[J].Cancer,2014,120(18):2893-2901.

      [32]Du M,Liu S,Gu D,et al.Clinical potential role of circulating microRNAs in early diagnosis of colorectal cancer patients[J].Carcinogenesis,2014,35(12):2723-2730.

      [33]Kanaan Z,Roberts H,Eichenberger MR,et al.A plasma microRNA panel for detection of colorectal adenomas:a step toward more precise screening for colorectal cancer[J].Ann Surg,2013,258(3):400-408.

      [34]Zeng W,Tu Y,Zhu Y,et al.Predictive power of circulating miRNAs in detecting colorectal cancer[J].Tumour Biol,2015,36(4):2559-2567.

      [35]Chu D,Zheng J,Li J,et al.MicroRNA-630 is a prognostic marker for patients with colorectal cancer[J].Tumour Biol,2014,35(10):9787-9792.

      [36]Yang IP,Tsai HL,Huang CW,et al.The functional significance of microRNA-29c in patients with colorectal cancer:a potential circulating biomarker for predicting early relapse[J].PLoS One,2013,8(6):e66842.

      [37]Jinushi T,Shibayama Y,Kinoshita I,et al.Low expression levels of microRNA-124-5p correlated with poor prognosis in colorectal cancer via targeting of SMC4[J].Cancer Med,2014,3(6):1544-1552.

      [38]Nestal de Moraes G,Bella L,Zona S,et al.Insights into a critical role of the FOXO3a-FOXM1 axis in DNA damage response and genotoxic drug resistance[J].Curr Drug Targets,2016,17(2):164-177.

      [39]Zhang L,Pickard K,Jenei V,et al.miR-153 supports colorectal cancer progression via pleiotropic effects that enhance invasion and chemotherapeutic resistance[J].Cancer Res,2013,73(21):6435-6447.

      [40]Wan LY,Deng J,Xiang XJ,et al.miR-320 enhances the sensitivity of human colon cancer cells to chemoradiotherapy in vitro by targeting FOXM1[J].Biochem Biophys Res Commun,2015,457(2):125-132.

      [41]Liu RL,Dong Y,Deng YZ,et al.Tumor suppressor miR-145 reverses drug resistance by directly targeting DNA damage-related gene RAD18 in colorectal cancer[J].Tumour Biol,2015,36(7):5011-5019.

      R735.3

      A

      10.11877/j.issn.1672-1535.2016.14.02.12

      2015-07-28)

      國家自然青年基金(81403301);天津市科技計劃項目(12ZCDZSY16800)

      (corresponding author),郵箱:mengjy@163.com

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