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      干旱鹽堿共脅迫下玉米miR398的表達(dá)

      2016-10-20 01:21:23張潔
      江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué) 2016年7期
      關(guān)鍵詞:干旱鹽堿玉米

      張潔

      摘要:分析干旱鹽堿共脅迫下玉米miR398的表達(dá)變化,闡明miR398與玉米水勢(shì)脅迫生理指標(biāo)關(guān)系。干旱鹽堿共脅迫處理72 h,利用qRT-PCR技術(shù)分別驗(yàn)證了miR398及其他對(duì)應(yīng)的靶基因在鹽脅迫條件下的表達(dá)變化情況;應(yīng)用ELISA和茚三銅方法分別檢測(cè)玉米的ABA (脫落酸)和脯氨酸含量。結(jié)果表明:經(jīng)過(guò)干旱鹽堿共脅迫處理,玉米出現(xiàn)了明顯的水分虧缺癥狀,24、48、72 h各處理組玉米ABA和脯氨酸含量與對(duì)照組比較上升明顯,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。說(shuō)明干旱鹽堿共脅迫條件下玉米miR398表達(dá)下調(diào),可能參與抗逆相關(guān)基因ABA的調(diào)控。試驗(yàn)為后續(xù)抗旱抗鹽堿玉米遺傳性狀研究提供了基礎(chǔ)數(shù)據(jù)。

      關(guān)鍵詞:玉米;干旱;鹽堿;miR398

      中圖分類(lèi)號(hào): S513.032 文獻(xiàn)標(biāo)志碼: A 文章編號(hào):1002-1302(2016)07-0045-03

      玉米(Zea mays L.)是世界三大糧食作物之一,它的產(chǎn)量對(duì)世界糧食的供給有著重要的影響[1]。非生物因子中干旱是引起玉米減產(chǎn)的最為重要的脅迫因子[2],干旱脅迫是植物逆境最普遍的形式,在許多地區(qū)是農(nóng)業(yè)發(fā)展的瓶頸,每年全世界玉米產(chǎn)量損失中的幾乎一半是由干旱造成的。特別是在實(shí)際生產(chǎn)中干旱脅迫往往也伴隨著鹽堿的脅迫危害。統(tǒng)計(jì)現(xiàn)實(shí)表明,我國(guó)平均每年受旱面積0.22億hm2,成災(zāi)面積0.09億hm2,直接減收糧食100億kg以上[3]。應(yīng)用分子遺傳學(xué)方法研究作物抗旱抗鹽堿機(jī)制并通過(guò)基因工程培育新的作物品種已成為現(xiàn)代農(nóng)業(yè)研究的重要目標(biāo)。

      Small RNA是一類(lèi)非編碼的、能夠在轉(zhuǎn)錄水平和轉(zhuǎn)錄后水平調(diào)控基因表達(dá)的小分子RNA。最近的研究表明,植物在多種逆境脅迫下存在著miceo RNA(miRNA)的誘導(dǎo)表達(dá)并證實(shí)了某些miRNA在植物感受逆境脅迫而作出適應(yīng)性調(diào)整的過(guò)程中發(fā)揮著重要的作用[4-5]。隨著研究的深入,miRNA將為我們闡明植物耐脅迫機(jī)理和提高植物耐脅迫能力提供重要的參考。

      1 材料與方法

      1.1 試驗(yàn)試劑與儀器

      玉米幼苗營(yíng)養(yǎng)液培養(yǎng)所需試劑及藥品:液氮,Trizol(Invitrogen),三氯甲烷,異丙醇,無(wú)水乙醇,DEPC,無(wú) RNA 酶雙蒸水。試劑盒:Reverse Transcription System(Promega),TaqMan RmicroRNA Reverse Transcription Kit (Applied Biosystems),SYBR Premmix Ex TaqTMⅡ (TaKaRa)。主要儀器:NANO 2000 紫外分光光度計(jì)(Thermo),普通 PCR 儀(伯樂(lè)),ABI 7300 熒光定量 PCR 儀(Applied Biosystems)。

      1.2 方法

      1.2.1 玉米處理和收集 試驗(yàn)選用玉米品系YQ7-96,玉米種子催芽后待根長(zhǎng)2~3 cm時(shí),點(diǎn)種于營(yíng)養(yǎng)盤(pán)中,用Hoagland營(yíng)養(yǎng)液培養(yǎng),置于網(wǎng)室。處理組在三葉一心期(苗期,長(zhǎng)度為 20 cm),每盆澆5 L含100 mmol/L混合鹽(50 mmol/L NaCl,50 mmol/L Na2SO4) 的Hoagland液作為鹽脅迫處理組和含 25 mmol/L NaHCO3、25 mmol/L Na2CO3的Hoagland液(pH值11,水勢(shì)為-0.7 MPa)作為堿共脅迫處理。0、24、48、72 h后分別取根莖和葉組織,立即用液氮冷凍后保存于-80 ℃?zhèn)溆?,每個(gè)樣品取3次生物學(xué)重復(fù)。

      1.2.2 總 RNA 提取 miRNA反轉(zhuǎn)錄莖環(huán)RT引物設(shè)計(jì)依據(jù)50 nt可自行折疊成莖環(huán)結(jié)構(gòu)的寡核苷酸,序列如下:5′-GTCGTATCCAGTGCAGGGTCCGAGGTATTCGCACTGGATACGACNNNNNN-3′,3′端的6個(gè)N代表與成熟miRNA 3′端反向互補(bǔ)的6個(gè)堿基。用于miRNA熒光定量的反向引物為5′-GTGCAGGGTCCGAGGTATTC-3′,該引物實(shí)際上為RT引物上的一部分,對(duì)所有miRNA來(lái)說(shuō)是通用的。正向引物利用Primer Express 3.0 (Applied Biosystems,F(xiàn)oster City,CA,USA) 設(shè)計(jì),基礎(chǔ)序列為目標(biāo)miRNA成熟序列,根據(jù)對(duì)引物的長(zhǎng)度、Tm值及GC含量的要求再用軟件進(jìn)行調(diào)整,可在5′端加2~3個(gè)GC以增加退火溫度,平衡GC含量。

      1.2.3 miRNA反轉(zhuǎn)錄 利用TaqMan RmicroRNA Reverse Transcription Kit (Applied Biosystems,F(xiàn)oster City,CA,USA)試劑盒反轉(zhuǎn)錄miRNA,內(nèi)參選擇18S rRNA。

      1.2.4 miRNA 熒光定量PCR 利用ABI 7300 Sequence Detection System (Applied Biosystems,F(xiàn)oster City,CA,USA)熒光定量PCR儀進(jìn)行miRNA熒光定量PCR反應(yīng)。熒光定量PCR試劑盒采用TaKaRa公司的SYBR Premmix ExTaqTMⅡ,并以18S rRNA 作為內(nèi)參對(duì)照,miR398a引物序列如下:5′-ATTCGCACTGGATACGACCGGGGG-3′,5′-GCCGCTGTGTTCTCAGGTC-3′,退火溫度為58 ℃。

      1.2.5 脫落酸(ABA)的含量 ABA含量測(cè)定方法依據(jù)中國(guó)農(nóng)業(yè)大學(xué)的ELISA試劑盒說(shuō)明書(shū),并參考酶聯(lián)免疫吸附測(cè)定法(enzyme-linked immunosorbent assay,ELISA)測(cè)定內(nèi)源植物激素。

      1.2.6 脯氨酸的含量 脯氨酸含量測(cè)定方法是依據(jù)茚三酮比色法[6]。

      1.2.7 數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì) PCR反應(yīng)結(jié)束后,手動(dòng)設(shè)置合適的閾值,之后導(dǎo)出CT值數(shù)據(jù),利用ΔΔCT法衡量miRNA及其靶基因在不同樣品中的差異表達(dá)水平。對(duì)于特定時(shí)間點(diǎn)的處理樣品,有以下表達(dá)式:

      ΔΔCT=(CT,miRNA干旱鹽堿處理組-CT,18S rRNA,干旱鹽堿處理組)-(CT,miRNA,對(duì)照組-CT,18S rRNA,對(duì)照組)。

      統(tǒng)計(jì)分析采用Stata統(tǒng)計(jì)分析軟件,比較各試驗(yàn)組與對(duì)照組間的差異。

      2 結(jié)果與分析

      2.1 非生物脅迫處理的玉米和正常條件下玉米

      玉米種子經(jīng)過(guò)催芽后盆栽于溫室中。待苗生長(zhǎng)至雌雄分化盛期(大喇叭口期,約12張真葉),觀察玉米生長(zhǎng)情況,以保證玉米生長(zhǎng)良好且均一,無(wú)明顯形態(tài)差異,此時(shí)將玉米材料分為處理組和對(duì)照組。48 h后,對(duì)照組玉米葉片舒展生長(zhǎng)良好;處理組玉米葉片卷蔫,且有黃葉出現(xiàn),表現(xiàn)為典型的水分虧缺癥狀(圖1)。

      2.2 在干旱和鹽堿共脅迫條件下玉米miR398表達(dá)模式

      熔解曲線(xiàn)可用來(lái)衡量引物質(zhì)量的好壞,較好的引物具有較高的擴(kuò)增效率,不會(huì)形成引物二聚體或產(chǎn)生錯(cuò)配。可從曲線(xiàn)形狀看出miR398和內(nèi)參(18S rRNA)PCR擴(kuò)增過(guò)程熔解曲線(xiàn)呈現(xiàn)“S”形(圖2),這表明PCR擴(kuò)增試驗(yàn)進(jìn)行良好。

      為了進(jìn)一步探索miRNA在鹽脅迫條件下的表達(dá)變化情況,利用 qRT-PCR 技術(shù)檢測(cè)玉米miR398b在干旱鹽堿共脅迫條件下(0、24、48、72 h)變化情況。圖3結(jié)果顯示,24、48、72 h的處理組miR398表達(dá)量與對(duì)照組相比明顯下降,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P

      2.3 干旱鹽堿共脅迫下玉米脫落酸和脯氨酸含量的變化

      在干旱鹽堿共脅迫處理后,通過(guò)ELISA技術(shù)測(cè)定對(duì)照和處理2組玉米幼苗樣品的細(xì)胞內(nèi)源ABA、脯氨酸含量。圖4結(jié)果表明,與對(duì)照組相比,24、48、72 h的處理組玉米脫落酸累積量與對(duì)照組相比明顯上升,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P

      3 討論

      植物中的小RNA在植物的生長(zhǎng)發(fā)育、組織器官的形態(tài)建成、逆境應(yīng)答和信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)等過(guò)程中發(fā)揮重要的調(diào)控作用。通過(guò)對(duì)靶基因預(yù)測(cè)和功能分析后發(fā)現(xiàn),某些脅迫(旱、鹽堿、熱、冷、凍)誘導(dǎo)的miRNA還直接參與植物逆境脅迫下的適應(yīng)性反應(yīng)。尤其是miRNA在植物非生物環(huán)境脅迫應(yīng)答中的調(diào)控作用日益受到重視[7]。miRNA389可以同時(shí)受這4種非生物因素脅迫的調(diào)控。在轉(zhuǎn)基因擬南芥中研究進(jìn)一步揭示miRNA398在調(diào)控CSD2基因表達(dá)中和氧化脅迫中的重要作用。而干旱、嚴(yán)寒和鹽分則會(huì)影響植物 miR319c、miR393、miR395、miR397b和miR402 的表達(dá)水平[8]。實(shí)際上,Sunkar等構(gòu)建了擬南芥幼苗經(jīng)脫水、高鹽、低溫和ABA脅迫處理后的小分子RNA文庫(kù)并對(duì)文庫(kù)的測(cè)序結(jié)果進(jìn)行分析,發(fā)現(xiàn)了26個(gè)新的miRNAs,它們來(lái)源于15個(gè)新的miRNA家族[9]。但是,miRNA在植物抗逆反應(yīng)中作用的分子機(jī)制目前還不清楚,有待進(jìn)一步研究。

      氧化應(yīng)激反應(yīng)是玉米在多種逆境脅迫環(huán)境下的生理反應(yīng),氧化應(yīng)激反應(yīng)可導(dǎo)致玉米體內(nèi)脯氨酸的含量顯著增加。植物體內(nèi)脯氨酸含量在一定程度上反映了植物的抗逆性,抗旱性強(qiáng)的品種往往積累較多的脯氨酸。因此測(cè)定脯氨酸含量可以作為抗旱育種的生理指標(biāo)。同時(shí),在玉米葉片中ABA誘導(dǎo)產(chǎn)生的H2O2能通過(guò)促發(fā)促分裂原活化蛋白激酶(MAPK)引起的級(jí)聯(lián)反應(yīng)來(lái)調(diào)節(jié)一些抗氧化酶類(lèi)基因的表達(dá),進(jìn)一步增強(qiáng)抗氧化酶類(lèi)的活性,最終啟動(dòng)氧化防御系統(tǒng)[10]。本試驗(yàn)結(jié)果顯示,miR398在干旱鹽堿脅迫過(guò)程中參與靶基因ABA和脯氨酸的抗氧化防御機(jī)制的調(diào)控。因此我們認(rèn)為:miR398可以通過(guò)增加ABA的累積,進(jìn)而激活A(yù)BA誘導(dǎo)的抗氧化防御系統(tǒng),且此過(guò)程還涉及到脯氨酸。

      試驗(yàn)過(guò)程中玉米鹽堿處理濃度是獲得相關(guān)基因表達(dá)的重要因素。目前,國(guó)內(nèi)外對(duì)玉米耐鹽堿性鑒定還沒(méi)有形成統(tǒng)一的、權(quán)威的耐鹽堿鑒定濃度,大部分研究者都是根據(jù)自身的鑒定方法、處理溶液選取不同的鑒定濃度,而且在操作過(guò)程中的誤差或人為因素都有可能造成鑒定濃度的不同[11-13]。因此,本試驗(yàn)中對(duì)耐鹽堿性鑒定濃度的篩選是很必要的。本研究最終確定的玉米苗期鹽性處理濃度為100 mmol/L,確定的玉米苗期堿處理濃度為35 mmol/L;劉芳等研究表明,NaCl濃度為 250 mmol/L 是玉米苗期耐鹽性篩選的理想濃度[14];崔美燕的研究表明,Na2CO3濃度為25 mmol/L可以作為玉米苗期耐堿性鑒定的理想濃度[15]。另外,玉米在苗期的耐鹽堿性很重要,因?yàn)橹仓昝缙诘纳L(zhǎng)情況影響其最終的產(chǎn)量。本試驗(yàn)是在選取玉米對(duì)鹽堿脅迫最敏感的“3葉1心”期進(jìn)行鹽堿脅迫處理3 d。

      本試驗(yàn)中使用的耐鹽堿性鑒定濃度與其他人的研究存在一定的差異,并使用較重的脅迫參數(shù)。這樣更有利于獲得特異性相關(guān)miRNA表達(dá)。此外,崔美燕等采用苗情評(píng)價(jià)的方法對(duì)玉米自交系幼苗進(jìn)行耐鹽、堿性鑒定,根據(jù)鹽或堿脅迫處理 7 d 后苗情觀察來(lái)評(píng)價(jià)玉米材料的耐鹽、堿性性狀,非常直觀、簡(jiǎn)單[15-16]。為了檢測(cè)玉米對(duì)干旱鹽堿脅迫的早期反應(yīng),在試驗(yàn)中收集處理3 d后的玉米混合組織作為抽提RNA的材料。

      本研究建立了鹽、堿和旱共脅迫下的玉米品系YQ7-96模型,檢測(cè)miR398在不同處理時(shí)期的表達(dá)水平,并驗(yàn)證miR398表達(dá)與多個(gè)玉米抗旱指標(biāo)(ABA和脯氨酸)的相關(guān)性。研究發(fā)現(xiàn),在玉米幼苗植株中miR398表達(dá)在干旱鹽堿共處理后被抑制,而基因ABA和脯氨酸在處理組的玉米葉片中也被大量誘導(dǎo)表達(dá)。試驗(yàn)將初步闡明由miRNA介導(dǎo)的玉米幼苗干旱脅迫響應(yīng)機(jī)制的調(diào)控網(wǎng)絡(luò),為更好地理解植物耐旱分子機(jī)理提供試驗(yàn)數(shù)據(jù)。

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