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      金線蓮多倍體誘導(dǎo)研究

      2016-11-28 01:35:57何碧珠楊超朱萍蔣繼宏
      江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué) 2016年9期
      關(guān)鍵詞:秋水仙素多倍體

      何碧珠+楊超+朱萍+蔣繼宏

      摘要:采用秋水仙素溶液浸泡法、涂抹法、加入培養(yǎng)基法誘導(dǎo)金線蓮多倍體,研究不同秋水仙素濃度、處理時(shí)間、處理方式金線蓮多倍體的誘導(dǎo)效果,并將誘變植株進(jìn)行繁殖。結(jié)果表明:以700 mg/L秋水仙素加入培養(yǎng)基處理15 h誘變率最高,達(dá)53.00%;以500 mg/L浸泡法處理24 h,誘導(dǎo)效果最佳,誘變率為51.67%;以700 mg/L涂抹法涂抹在金線蓮莖節(jié)處誘導(dǎo)效果較好,誘變率為35.00%;3種多倍體誘導(dǎo)的效果順序?yàn)榧尤肱囵B(yǎng)基法>浸泡法>涂抹法。

      關(guān)鍵詞:金線蓮;多倍體;秋水仙素;誘變率

      中圖分類號: S567.23+9.043 文獻(xiàn)標(biāo)志碼: A

      文章編號:1002-1302(2016)09-0070-05

      金線蓮(Anoectochilus roxburghii)是我國傳統(tǒng)珍貴藥材,屬蘭科(Orchidaceae)開唇蘭屬(Anoectochilus)植物[1]。由于人為掠奪性采挖,金線蓮生境遭受嚴(yán)重破壞,加上金線蓮自身繁殖特性,種子細(xì)小,發(fā)育不完全,自然狀態(tài)下萌發(fā)率和繁殖率低下等特點(diǎn),野生金線蓮存量已越來越少[2-5]。多倍體植物具有營養(yǎng)器官大、抗逆性強(qiáng)、藥用活性成分含量高等特性[6]。金線蓮組織培養(yǎng)方面報(bào)道雖多[7-13],但尚未見將一次性成苗培養(yǎng)技術(shù)應(yīng)用于多倍體植株誘導(dǎo)方面應(yīng)用的報(bào)道。本研究運(yùn)用秋水仙素對一次性成苗培養(yǎng)植株進(jìn)行多倍體誘導(dǎo),以期為多倍體金線蓮工廠化生產(chǎn)提供參考。

      1 材料與方法

      1.1 材料

      將在福建省永泰藤山自然保護(hù)區(qū)赤壁景區(qū)內(nèi)采集的野生苗一次性成苗培養(yǎng)的第二代瓶苗作為試驗(yàn)材料,選擇生長一致、莖部粗壯的植株進(jìn)行試驗(yàn)處理。

      1.2 方法

      采用3種方法進(jìn)行多倍體誘導(dǎo)試驗(yàn),每種方法均設(shè)置若干組處理時(shí)間和濃度梯度,研究不同取材部位(莖段、莖尖)、處理方法、秋水仙素濃度及處理時(shí)間對多倍體誘變率的影響。

      1.2.1 秋水仙素溶液浸泡法 選取生長一致、莖節(jié)粗壯組培瓶苗,在無菌條件下將瓶苗植株切成長1~2 cm的帶節(jié)莖段,放入經(jīng)過高壓滅菌濃度為300、500、700 mg/L的秋水仙素溶液分別浸泡10、20、30、40、50、60 h,每個(gè)處理重復(fù)3次,以無菌水浸泡處理材料為對照(CK)。將各處理后材料在超凈工作臺上用無菌水沖3~4遍后,接種在一次性成苗培養(yǎng)基MS+1 mg/L 6-BA+1.5 mg/L NAA+150 g/L土豆+3%蔗糖+0.65%瓊脂+0.2%活性炭上培養(yǎng),將莖節(jié)和頂芽分開培養(yǎng)。培養(yǎng)條件:溫度(23±2) ℃,光照強(qiáng)度1 000~1 500 lx,光照時(shí)間10 h/d。每瓶接種4個(gè)莖段或4個(gè)頂芽,每個(gè)處理接種5瓶,每個(gè)處理重復(fù)3次。

      1.2.2 培養(yǎng)基添加 選取生長一致、莖節(jié)粗壯組培瓶苗,在無菌條件下將瓶苗切成長1~2 cm的帶節(jié)莖段,接種到分別添加300、500、700 mg/L秋水仙素溶液的上述一次性成苗培養(yǎng)基上培養(yǎng)的植株,培養(yǎng)時(shí)間分別為5、10、15、20、25、30 d,以不加秋水仙素培養(yǎng)基為對照(CK),將處理后的材料轉(zhuǎn)入不含秋水仙素的培養(yǎng)基中繼續(xù)培養(yǎng),將莖節(jié)和頂芽分開培養(yǎng),培養(yǎng)條件同“1.2.1”節(jié)。每瓶接種4個(gè)莖段或4個(gè)頂芽,每個(gè)處理接種5瓶、重復(fù)3次。

      1.2.3 秋水仙素蘸在材料處 選取生長一致、莖節(jié)粗壯組培瓶苗,在無菌條件下將瓶苗切成長1~2 cm的帶節(jié)莖段,在超凈工作臺中用無菌棉簽蘸上經(jīng)高壓滅菌的秋水仙素溶液,涂抹在莖節(jié)處,再將涂抹過秋水仙素的材料接種到“1.2.1”節(jié)所述一次性成苗培養(yǎng)基上培養(yǎng)的植株,將莖節(jié)和頂芽分開培養(yǎng),秋水仙素溶液濃度分別為300、500、700 mg/L,共3個(gè)處理。每瓶接種4個(gè)莖段或4個(gè)頂芽,每個(gè)處理接種5瓶、重復(fù)3次,以無菌水處理材料為對照(CK)。

      1.3 多倍體鑒定

      1.3.1 形態(tài)學(xué)觀察 從植株大小以及葉片大小、顏色、厚度等形態(tài)特征上比較經(jīng)過秋水仙素處理的植株與對照植株的差異,從而初步篩選出誘導(dǎo)植株。分別測量培養(yǎng)3、5個(gè)月二倍體苗和四倍體苗葉長、葉寬、葉厚、莖直徑、株高。

      選擇生長一致的誘導(dǎo)植株和對照植株,分別撕取葉片下表皮,置于載玻片上制成臨時(shí)裝片,在日本產(chǎn)Olympus倒置式生物顯微鏡下觀察。在10×10倍鏡下,隨機(jī)選擇10個(gè)視野,計(jì)算每個(gè)視野中的氣孔數(shù)目;在10×40倍鏡下,隨機(jī)選擇10個(gè)視野,測量視野中的氣孔長度、寬度。

      1.3.2 染色體觀察 對外部形態(tài)和氣孔明顯變大的植株,采用改良苯酚品紅染色法進(jìn)行根尖染色體鑒定。在08:00—10:00切取植株根尖,先置于4 ℃冰箱中預(yù)處理8 h,后用卡諾固定液(冰乙酸 ∶乙醇=1 ∶3,V ∶V)在室溫下固定18 h,蒸餾水漂洗2~3次后,用90%、80%、70%乙醇溶液各浸泡30 min,再用蒸餾水漂洗2~3次,用1 mol/L HCl溶液在60 ℃ 水浴中解離處理30 min,解離好的根尖用蒸餾水洗凈并吸干水分,用改良苯酚品紅溶液染色5 min壓片,將壓片置于顯微鏡下鏡檢觀察染色條數(shù)。

      2 結(jié)果與分析

      2.1 金線蓮多倍體誘導(dǎo)研究

      2.1.1 浸泡處理對金線蓮多倍體離體誘導(dǎo)效果 不同濃度秋水仙素溶液浸泡處理后培養(yǎng)1個(gè)月時(shí),莖節(jié)處未出現(xiàn)芽萌動現(xiàn)象,頂芽沒有伸長生長。培養(yǎng)2個(gè)月后,40%莖節(jié)間開始膨脹,腋芽發(fā)白,逐漸突起并伸長,抽出主芽,隨后分化出二級、三級側(cè)芽;5%生長出畸形芽;一部分出現(xiàn)褐化現(xiàn)象;一部分出現(xiàn)玻璃化現(xiàn)象;一部分剛開始有芽分化出來,隨后逐漸萎蔫死亡。與對照相比,處理2、12 h對材料抑制作用不明顯,芽長勢好,側(cè)芽多,部分處理長出叢生芽;處理24、36、48、60 h對材料生長抑制作用明顯,莖段芽萌動緩慢,生長慢,側(cè)芽較少。

      比較秋水仙素溶液對莖節(jié)、頂芽生長的影響,莖節(jié)較頂芽容易分化出側(cè)芽,頂芽未分化出芽,主要表現(xiàn)為伸長生長,生長較快。試驗(yàn)發(fā)現(xiàn),秋水仙素對頂芽毒害作用比對莖節(jié)嚴(yán)重,頂芽生長受到明顯抑制,頂芽膨大后,部分生長停止并逐漸死亡,相同秋水仙素溶液濃度、相同處理時(shí)間下,頂芽成活率明顯低于莖節(jié)(圖1)。

      由表1可知,材料成活率隨著秋水仙素溶液濃度升高、處理時(shí)間延長而逐漸降低,尤其以700 mg/L秋水仙素溶液處理60 h下,材料成活率最低,僅為13.33%。相同秋水仙素濃度下,隨著處理時(shí)間延長,材料成活率也逐漸降低,300 mg/L秋水仙素溶液處理2 h下材料成活率為96.67%,而處理60 h時(shí)材料成活率降至35.00%;500 mg/L秋水仙素溶液處理2 h下材料成活率為93.33%,而處理60 h時(shí)材料成活率降至25.00%;700 mg/L秋水仙素溶液處理2 h下材料成活率為88.33%,而處理60 h時(shí)材料成活率降至13.33%。相同處理時(shí)間下,隨著秋水仙素溶液濃度升高,材料成活率顯著降低。

      由表1可知,不同濃度秋水仙素溶液處理不同時(shí)間后,對四倍體誘變率的影響有顯著差異。在相同秋水仙素濃度下,隨著處理時(shí)間延長,四倍體誘變率先升高后降低。300 mg/L秋水仙素溶液處理2 h,誘變率為0%,而其他時(shí)間處理下誘變率為3.33%~48.33%,尤其是處理36 h下誘變率最高,為48.33%。500 mg/L秋水仙素溶液處理2 h,誘變率為0%,而其他時(shí)間處理下誘變率為8.33%~51.67%,尤其是處理24 h 下誘變率最高,為51.67%。700 mg/L秋水仙素溶液處理下誘變率為8.33%~50.00%,尤其是處理12 h下誘變率最高,為50.00%。秋水仙素對試驗(yàn)材料有一定傷害,隨著秋水仙素濃度升高和處理時(shí)間延長,傷害程度加重,導(dǎo)致死亡率升高,因此四倍體誘變率反而降低。

      2.1.2 加入培養(yǎng)基法對多倍體離體誘導(dǎo)的效果 與對照相比,處理5 d對材料抑制作用不明顯,芽長勢好,側(cè)芽多,部分長出叢生芽;處理10~30 d對材料生長抑制作用明顯,莖段萌動緩慢,側(cè)芽較少,頂芽生長慢。

      將秋水仙素加入培養(yǎng)基中對莖節(jié)和頂芽生長產(chǎn)生一定影響,莖節(jié)較頂芽容易分化出側(cè)芽,頂芽未分化出芽,主要表現(xiàn)為伸長生長,生長較快。觀察發(fā)現(xiàn),將秋水仙素加入培養(yǎng)基中對莖段毒害作用比對頂芽嚴(yán)重,莖段萌動受到明顯抑制,部分不萌動并逐漸死亡,相同秋水仙素濃度、處理時(shí)間下,莖段成活率明顯降低,這與浸泡處理結(jié)果相反。

      由表2可知,將材料接種到加入不同濃度秋水仙素的培養(yǎng)基,培養(yǎng)時(shí)間對材料死亡率產(chǎn)生影響。隨著秋水仙素溶液濃度升高、培養(yǎng)時(shí)間延長,材料死亡率隨之升高,尤其以700 mg/L 秋水仙素處理30 d,材料死亡率最高,為80.00%。低濃度秋水仙素下,延長處理時(shí)間,材料死亡率保持在相對較低水平;高濃度秋水仙素下,延長處理時(shí)間,材料死亡率升高很快。

      由表2還可知,低濃度秋水仙素下,延長處理時(shí)間,誘變率沒有明顯增加;高濃度秋水仙素下,延長處理時(shí)間,誘變率先升高后降低。300 mg/L秋水仙素溶液處理5~30 d,誘變率為0%~13.33%;而700 mg/L秋水仙素溶液處理5~30 d,誘變率從8.33%上升至53.33%后,又降至15.00%。秋水仙素對材料有一定傷害,隨著濃度升高和處理時(shí)間延長,傷害程度加重,導(dǎo)致死亡率升高,因此四倍體誘變率反而降低。

      2.1.3 涂抹法對多倍體離體誘導(dǎo)效果的影響 涂抹法較浸泡法、加入培養(yǎng)基法對材料傷害作用較輕,且節(jié)約藥品,但對四倍體誘導(dǎo)效果明顯較差。由表3可見,秋水仙素濃度為300 mg/L時(shí),四倍體誘變率為13.33%,隨著秋水仙素濃度升高誘變率逐漸增加,當(dāng)秋水仙素濃度為700 mg/L時(shí),誘變率為35.00%,誘導(dǎo)效果明顯不如浸泡法、加入培養(yǎng)基法,因此該方法不適用于金線蓮多倍體誘導(dǎo)。

      2.2 誘導(dǎo)植株形態(tài)學(xué)觀察

      與對照相比,處理組植株在株高、莖粗、葉片大小、葉片厚度、莖節(jié)等外部形態(tài)特征上發(fā)生明顯變化。對莖段處理后,前期誘導(dǎo)分化慢,營養(yǎng)器官明顯增大,主要表現(xiàn)在植株高大,莖稈粗壯,莖節(jié)明顯且長,葉片肥厚,葉片變小,葉脈金色加深等,與二倍體差異明顯(表4)。

      氣孔大小、氣孔密度及保衛(wèi)細(xì)胞大小等可作為鑒定多倍體與二倍體的間接指標(biāo)[14-17]。鏡檢發(fā)現(xiàn),誘導(dǎo)植株氣孔明顯增大,氣孔長度、寬度均明顯大于對照植株(圖2-a至圖2-d)。由表5可見,誘導(dǎo)植株氣孔為44.64 μm×27.78 μm,對照植株氣孔為32.24 μm×17.36 μm,誘導(dǎo)植株氣孔長度、寬度分別比正常植株增加38.46%、37.51%。每個(gè)視野氣孔數(shù)量明顯少于對照植株,為對照植株的53.85%。

      2.3 誘導(dǎo)植株根尖染色體數(shù)目觀察

      從形態(tài)學(xué)和解剖學(xué)上初步篩選出誘導(dǎo)植株,進(jìn)行根尖染色體鑒定。曾雅娟等研究表明,金線蓮染色體數(shù)目為2n=40[18]。對誘導(dǎo)植株和對照植株進(jìn)行根尖染色體制片(圖2-e、圖2-f),由于金線蓮染色體數(shù)目較多,染色體出現(xiàn)重疊,未能清晰算出染色體數(shù)目,但可以明顯看出誘導(dǎo)植株根尖細(xì)胞體積變大,細(xì)胞核增大,部分細(xì)胞形態(tài)發(fā)生變化,染色體數(shù)目增多。

      3 結(jié)論與討論

      將化學(xué)誘導(dǎo)劑和組織培養(yǎng)技術(shù)相結(jié)合進(jìn)行人工誘導(dǎo)多倍體,已經(jīng)在許多植物上取得成功。以往研究表明,掌握秋水仙素濃度及處理時(shí)間是多倍體誘導(dǎo)成功的關(guān)鍵[19-21]。秋水仙素濃度太低或處理時(shí)間太短無法達(dá)到誘導(dǎo)目的;而秋水仙素濃度過高或處理時(shí)間太長,雖能達(dá)到誘導(dǎo)效果,但植株受傷害嚴(yán)重,死亡率高。秋水仙素誘導(dǎo)處理方法有浸泡法、涂抹法、注射法、加入培養(yǎng)基等方法,在實(shí)際操作中常需要根據(jù)植物材料和部位選擇適宜的處理方法。

      本研究采用浸泡、涂抹、加入培養(yǎng)基等3種方法來誘導(dǎo)多倍體。其中浸泡法以500 mg/L秋水仙素溶液處理24 h下誘導(dǎo)效果最佳,誘變率為51.67%,這與蔡文燕等的研究結(jié)果略有差異,蔡文燕等用0.1%、0.2%的秋水仙素溶液浸泡,結(jié)果表明,用0.1%秋水仙素浸泡48 h條件下,誘導(dǎo)效果最好,誘變率為48%[22]。這說明相同處理方法下,秋水仙素濃度不同,誘導(dǎo)效果也會不同,誘導(dǎo)效果還與培養(yǎng)時(shí)間、培養(yǎng)方法有關(guān),金線蓮品種差異、取材部位與時(shí)間不同等都會影響試驗(yàn)結(jié)果。在秋水仙素加入培養(yǎng)基試驗(yàn)中,以700 mg/L秋水仙素處理15 d誘變率最高,達(dá)53%。王麗芳等用300 mg/L秋水仙素處理金線蓮莖段、頂芽3~19 d,結(jié)果表明處理13 d的加倍效果最好,加倍率為72%[23];而本研究中用300 mg/L秋水仙素處理15 d,誘變率僅為5%,這與王麗芳等研究結(jié)果不一致。涂抹法中,以700 mg/L秋水仙素涂抹在莖節(jié)的誘導(dǎo)效果較好,誘變率為35%,涂抹法的誘變率較浸泡法、加入培養(yǎng)基法低,但對材料傷害作用較輕,同時(shí)也節(jié)省藥品。

      秋水仙素處理后外植體前期誘導(dǎo)分化慢,后期生長較快,營養(yǎng)器官明顯增大,表現(xiàn)為植株高大、莖稈粗壯、莖節(jié)多且明顯,葉片變多、變短且肥厚,葉脈金色加深等特點(diǎn);誘導(dǎo)植株氣孔明顯增大,氣孔長度和寬度均顯著大于對照,其形態(tài)和氣孔特征的誘導(dǎo)與通常的多倍體誘導(dǎo)結(jié)果一致[24-26]。

      測得組培苗階段二倍體苗、多倍體苗的多糖含量分別從10.13%、14.05%上升到15.91%、18.91%,多倍體瓶苗在大棚栽培6個(gè)月后多糖含量為9.69%,而二倍體苗在大棚栽培6個(gè)月后多糖含量僅為8.77%,可見在相同栽培環(huán)境下,多倍體植株栽培6個(gè)月多糖含量高于二倍體植株。由此可知,多倍體金線蓮的多糖含量高于二倍體植株,得出多倍體苗多糖含量高于二倍體植株,這與多倍體營養(yǎng)成分增加的特點(diǎn)一致,多倍體瓶苗多糖含量高于二倍體瓶苗,這與Olimpienko等研究發(fā)現(xiàn)四倍體鐵皮石斛的可溶性糖含量高于二倍體的研究結(jié)果[27]一致。

      測得二倍體苗、多倍體苗總黃酮含量分別從1.17%、1.24%上升到1.27%、1.38%。得出多倍體苗總黃酮含量高于二倍體植株,這進(jìn)一步證明了多倍體營養(yǎng)成分增加的特點(diǎn),測得大棚栽培6個(gè)月的二倍體栽培苗、多倍體栽培苗總黃酮含量分別為1.47%、1.92%,栽培6個(gè)月時(shí)多倍體植株多糖、總黃酮含量高于二倍體植株(多倍體苗總黃酮含量接近野生苗的1.97倍)。對赤壁金線蓮組培苗和栽培苗進(jìn)行總黃酮含量的測定,發(fā)現(xiàn)其均含有黃酮類物質(zhì),這與曾建軍等研究認(rèn)為金線蓮組培苗富含黃酮類物質(zhì)的報(bào)道[8]一致。組培苗黃酮含量隨著培養(yǎng)時(shí)間延長而增多,移栽后總黃酮含量進(jìn)一步增加,黃酮是植物體內(nèi)的次生代謝產(chǎn)物,其含量變化受外界條件影響,如光照刺激等對其合成有幫助[28-29]。將金線蓮移栽到光照等條件較好的外界環(huán)境中,有利于黃酮積累。

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