程西永,呼曉賢,李海霞,董中東,任 妍,陳樹林,詹克慧,許海霞
(河南農(nóng)業(yè)大學(xué)/小麥玉米作物學(xué)國家重點實驗室/河南糧食作物協(xié)同創(chuàng)新中心, 河南鄭州 450002)
?
低溫脅迫下小麥幼穗中差異表達(dá)蛋白質(zhì)的鑒定
程西永,呼曉賢,李海霞,董中東,任 妍,陳樹林,詹克慧,許海霞
(河南農(nóng)業(yè)大學(xué)/小麥玉米作物學(xué)國家重點實驗室/河南糧食作物協(xié)同創(chuàng)新中心, 河南鄭州 450002)
為探究低溫脅迫下小麥幼穗中脅迫響應(yīng)差異表達(dá)蛋白,采用IEF/SDS-PAGE雙向凝膠電泳及質(zhì)譜技術(shù),以低溫敏感品種SW601和低溫不敏感品種隴麥157為材料,對常溫生長、0 ℃低溫脅迫12 h和72 h 的幼穗全蛋白進(jìn)行了分析。結(jié)果表明,在pH 4~7時,SW601和隴麥157各處理幼穗蛋白圖譜中均可重復(fù)檢測到800~900個有效蛋白質(zhì)點;低溫脅迫12 h、72 h后,SW601和隴麥157中上調(diào)表達(dá)的蛋白點分別有120個和101個,下調(diào)表達(dá)的蛋白點分別有92個和60個。對2種脅迫處理下均差異表達(dá)且Ratio>2的54個蛋白點進(jìn)行質(zhì)譜分析,成功鑒定出43個差異蛋白。經(jīng)數(shù)據(jù)庫搜索匹配和蛋白質(zhì)鑒定,這43個差異蛋白分別屬于脅迫應(yīng)激/防御相關(guān)蛋白、光合作用蛋白、蛋白代謝相關(guān)蛋白、碳水化合物代謝相關(guān)蛋白、信號傳導(dǎo)相關(guān)蛋白、能量產(chǎn)生和運輸相關(guān)蛋白和未知功能蛋白等7類蛋白。其中,抗壞血酸過氧化物酶、Cu/Zn超氧化物歧化酶和胚胎后期發(fā)育富集(LEA)同源蛋白14-A等蛋白的表達(dá)量在低溫不敏感材料隴麥157中變化顯著,而在低溫敏感材料SW601中沒有表達(dá),這可能與小麥幼穗在低溫逆境下的代謝調(diào)控和低溫敏感特性有一定關(guān)系。
小麥;幼穗;低溫脅迫;雙向電泳;脅迫響應(yīng)蛋白
小麥?zhǔn)俏覈饕Z食作物之一,提高小麥產(chǎn)量對保證我國糧食安全具有重要意義。小麥生長過程中經(jīng)常遭遇干旱、極端溫度(低溫和高溫)和高鹽等非生物脅迫,使小麥生長發(fā)育和代謝受到抑制,甚至導(dǎo)致植株死亡[1]。在各種非生物脅迫中,低溫對小麥產(chǎn)量的影響尤為突出,是制約小麥高產(chǎn)、穩(wěn)產(chǎn)的重要因素[2]。小麥發(fā)育進(jìn)程中,低溫會影響穗部發(fā)育和結(jié)實,在二棱末期-雌雄蕊分化期遭遇低溫,會直接影響小麥的產(chǎn)量和品質(zhì)[3]。近年來,黃淮麥區(qū)春季低溫發(fā)生頻率呈增加趨勢,探究小麥春季低溫受害機理,選育抗春季低溫能力較強的新品種,可有效降低“倒春寒”對小麥生產(chǎn)的危害。低溫逆境下,植物組織內(nèi)部生理生化代謝和蛋白質(zhì)表達(dá)都會發(fā)生變化。目前,雙向凝膠電泳和質(zhì)譜技術(shù)是研究逆境脅迫下蛋白質(zhì)組學(xué)的核心技術(shù)之一。Cui等[4]對漸進(jìn)溫度處理下水稻幼苗葉片差異表達(dá)蛋白研究中,獲得60個與低溫誘導(dǎo)相關(guān)的差異蛋白點,質(zhì)譜分析發(fā)現(xiàn)分子伴侶蛋白有利于提高植物的低溫耐受性。韓巧霞等[5]對-5 ℃冷凍處理1 d和3 d小麥葉片的全蛋白進(jìn)行了分離,質(zhì)譜鑒定發(fā)現(xiàn)與應(yīng)激脅迫相關(guān)的抗壞酸過氧化物酶(APX)、超氧化物歧化酶和LEA蛋白等在適應(yīng)低溫脅迫過程中發(fā)揮了重要作用。Cabane等[6]的研究表明,熱休克蛋白HSP70與大豆抗寒性密切相關(guān)。前人在油菜、菠菜、番茄、楊樹等植物中也鑒定出大量耐冷相關(guān)蛋白[7-8],這些蛋白通過感知逆境轉(zhuǎn)導(dǎo)信號,并通過信號轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑中的關(guān)鍵轉(zhuǎn)錄因子來調(diào)控細(xì)胞內(nèi)逆境脅迫響應(yīng)蛋白的表達(dá),從而響應(yīng)脅迫條件下植物生長和代謝[9]。因此,尋找逆境脅迫響應(yīng)相關(guān)蛋白對于提高植物的抗逆性具有重要意義。
目前,蛋白質(zhì)表達(dá)的研究大多集中在植物葉片、根、莖、胚乳、花藥、花粉、種子等器官中,而關(guān)于低溫敏感期小麥幼穗受到低溫脅迫后差異蛋白的研究較少。本研究以低溫敏感和不敏感的兩個小麥品種為供試材料,采用IEF/SDS-PAGE雙向凝膠電泳技術(shù),對常溫及低溫脅迫12 h和72 h的小麥幼穗全蛋白進(jìn)行分離,利用質(zhì)譜技術(shù)對差異表達(dá)蛋白進(jìn)行分析和鑒定,旨在尋找小麥幼穗中與低溫脅迫誘導(dǎo)相關(guān)的差異蛋白,從蛋白質(zhì)組學(xué)水平研究小麥幼穗的抗寒機理,以期為小麥抗寒育種提供一定的理論依據(jù)。
1.1 試驗材料與設(shè)計
試驗材料為低溫敏感品種SW601和低溫不敏感品種隴麥157,均由河南農(nóng)業(yè)大學(xué)小麥遺傳育種研究室提供。
試驗于2013-2014年在河南農(nóng)業(yè)大學(xué)科教園區(qū)試驗田進(jìn)行。采用盆栽,盆直徑24 cm,高20 cm,底部各打6個小孔,每盆裝土10 kg左右,埋入土中,盆內(nèi)土壤與大田持平。2013年10月10號播種,每個材料種植9盆,每盆定苗10株。2014年3月20日開始通過形態(tài)學(xué)觀察和鏡檢判斷幼穗的發(fā)育時期,幼穗發(fā)育至雌雄蕊分化期時,進(jìn)行室內(nèi)低溫脅迫處理。
低溫脅迫溫度設(shè)為0 ℃,處理時間為12 h和72 h,每個處理3次重復(fù),以常溫條件下生長的幼穗材料為對照(CK);低溫處理結(jié)束后,在冰上剝?nèi)⌒←溣姿?并立即放入離心管中液氮速凍,-80 ℃冰箱保存待用。
1.2 試驗方法
1.2.1 小麥幼穗蛋白質(zhì)的提取
采用TCA/丙酮沉淀法[10]進(jìn)行蛋白質(zhì)提取。取-80 ℃冰箱保存的雌雄蕊分化期小麥幼穗1 g,加入少量的PVPP和石英砂,在研缽中迅速研磨成細(xì)粉,加入5 mL預(yù)冷的10%(w/v)的TCA和0.07% DTT的丙酮溶液,-20 ℃沉淀過夜;4 ℃, 16 000 r·min-1離心30 min,棄上清液,沉淀中加入2 mL預(yù)冷的80%丙酮(含0.07% DTT),充分混合后,放在-20 ℃靜置過夜;4 ℃,16 000 r·min-1離心15 min,棄上清液,洗滌沉淀,重復(fù)洗滌2~3次至蛋白為純白色;用純丙酮替代80%丙酮洗滌,沉淀后真空冷凍干燥成干粉,向蛋白干粉中加入裂解液[8 mol·L-1urea,2 mol·L-1Thisoua, 4% CHAPS(w/v),40 mmol·L-1DTT],25 ℃水浴2 h,期間振蕩數(shù)次,室溫14 000 r·min-1離心40 min,取上清液保存于-80 ℃冰箱備用[11]。蛋白含量的測定參考Bradford法[12],用BSA(牛血清蛋白)標(biāo)準(zhǔn)品配制不同濃度蛋白溶液,繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。
1.2.2 幼穗全蛋白的雙向凝膠電泳
第一向等電聚焦(IEF)電泳:按照Bio-rad公司的電泳操作指南進(jìn)行,采用pH 4~7、24 cm的膠條,根據(jù)已測蛋白濃度,取900 μg蛋白樣品和一定體積的緩沖液[8 mol·L-1urea,2 mol·L-1thisoua,4% CHAPS(w/v),40 mmol·L-1DTT、Bio-lyte pH 3~7]至總體積450 μL,在室溫20 ℃泡脹IPG膠條,12~14 h后進(jìn)行等電聚焦,設(shè)置聚焦程序為250 v/30 min、500 v/90 min、1 000 v/2 h、9 000 v/5 h、9 000 v/99 000 Vh、500 v/12 h,采用50 uA電流進(jìn)行電泳。
第二向SDS-PAGE凝膠電泳:第一向等電聚焦電泳結(jié)束后,將膠條放在平衡液I[6 mol·L-1urea,2%(w/v)SDS,20%(v/v)甘油,1.5 mol·L-1Tris-HCl(pH 8.8),2%(w/v) DTT]中平衡15 min,平衡結(jié)束后潤洗膠條2~3 min,再放入平衡液II[6 mol·L-1urea,2%(w/v)SDS,20%(v/v)甘油,1.5 mol·L-1Tris-HCl(pH 8.8),2.5%(w/v)碘乙酰胺]中平衡15 min,用鑷子將平衡結(jié)束的膠條轉(zhuǎn)移至12%的垂直SDS-PAGE凝膠中,加入少量低熔點瓊脂糖固定膠條,凝固后20 ℃水浴電泳,待溴酚藍(lán)指示劑達(dá)到底部邊緣時停止電泳,進(jìn)行凝膠的固定、染色和脫色。
1.2.3 圖像掃描及差異蛋白點篩選
采用UMAX PowerLook 2100XL凝膠成像系統(tǒng)掃描圖像,用PDQuest 7.3 software(Bio-Rad)軟件對圖像進(jìn)行斑點檢測、背景扣除、凝膠匹配和差異蛋白點的定量分析。電泳重復(fù)3次,從各處理中選取一張質(zhì)量高的膠圖進(jìn)行PDQuest軟件分析,以常溫下SW601和隴麥157幼穗蛋白電泳圖為對照(CK),利用PDQuest軟件篩選低溫脅迫后蛋白表達(dá)豐度變化在2倍以上的差異蛋白點。
1.2.4 質(zhì)譜分析和數(shù)據(jù)庫檢索
將在2種低溫處理下均差異表達(dá)且Ratio>2的蛋白點用修剪過的Eppdorf槍頭挖出,置于盛有少量去離子水的1.5 mL離心管中,標(biāo)記序號送往中國科學(xué)院上海生命科學(xué)研究所進(jìn)行質(zhì)譜分析,獲得肽指紋圖譜。檢測儀器型號為5800 MALDI-TOF/TOF/質(zhì)譜儀,檢測方式為正離子反射模式。質(zhì)譜鑒定結(jié)果利用MASCOT(http://www.matrixscience.com)網(wǎng)站的相關(guān)軟件,在NCBI數(shù)據(jù)庫中檢索,獲得差異蛋白的種類等相關(guān)信息。
1.2.5 差異蛋白質(zhì)功能鑒定和分類
鑒定成功的蛋白質(zhì)利用UniProt(http://www.ebi.uniprot.org)軟件來確定其功能,利用COG(cluster of orthologous groups of proteins)功能分類軟件進(jìn)行功能分類。
2.1 低溫脅迫下小麥幼穗差異表達(dá)蛋白分析
采用雙向電泳技術(shù)對CK和低溫脅迫12 h、72 h的小麥幼穗全蛋白進(jìn)行分離(圖1)。利用PDQuest software(Bio-Rad)軟件對圖像進(jìn)行蛋白點匹配和檢測,在CK和低溫脅迫12 h、72 h的SW601和隴麥157的幼穗中均檢測到800~900個有效蛋白質(zhì)點。與CK對比發(fā)現(xiàn),SW601和隴麥157中分別有41個和52個蛋白點在低溫脅迫12 h和72 h后均呈差異表達(dá),其中Ratio>2的蛋白點分別有23個和31個。利用MALDA-TOF-MS技術(shù)對Ratio>2的蛋白點進(jìn)行質(zhì)譜分析和蛋白質(zhì)鑒定,在SW601和隴麥157中分別成功鑒定出18個和25個蛋白點(表1和表2)。
從表1可以看出,低溫脅迫處理后,隴麥157中上調(diào)表達(dá)的蛋白點為抗壞血酸過氧化物酶(點17、18)、Cu/Zn超氧化物歧化酶(點19)、胚胎后期發(fā)育富集同源蛋白14-A(點13、14)、T-complex蛋白1γ亞基(點1)、T-complex蛋白1亞基(點4)、1,6-二磷酸果糖轉(zhuǎn)移酶β亞基(點2)、5-同型半胱氨酸甲基轉(zhuǎn)移酶(點3)、40S核糖體蛋白(點15)、烯醇化酶(點5)、 2,3-二磷酸甘油酸不依賴甘油酸變位酶(點6)、蛋白酶β亞基type-7-A(點22)和細(xì)胞周期依賴性蛋白激酶(點23)。表達(dá)量下調(diào)的蛋白點為真核轉(zhuǎn)運起始因子4A-1(點7)、蛋白質(zhì)二硫鍵異構(gòu)酶TaPDIL1-1(點9)、放氧增強蛋白(點16)、β-微管蛋白5、1、3(點10、11、12)、Rubisco大亞基(點24)、核酮糖-1,5-二磷酸羧化酶/加氧酶大亞基(點25)和磷酸丙糖異構(gòu)酶(點20、21)。
從表2可以看出,低溫脅迫后,SW601中上調(diào)表達(dá)的蛋白點為谷胱甘肽S-轉(zhuǎn)移酶(點33)、冷休克主導(dǎo)蛋白2(點30)、α-1,4-葡聚糖蛋白合酶(點38)、3-磷酸甘油醛脫氫酶(點39)和14-3-3蛋白(點32)。表達(dá)量下調(diào)的蛋白點為40S核糖體蛋白(點26)、亞精胺合酶1(點27)、真核轉(zhuǎn)運起始因子3亞基(點28)、核酮糖二磷酸羧化酶α亞基結(jié)合蛋白(點29)、核酮糖二磷酸羧化酶β亞基結(jié)合蛋白(點31)、70 kDa熱激同源蛋白1(點43)、烯醇化酶(點34、35)、胞質(zhì)3-磷酸甘油酸激酶(點36)、異檸檬酸脫氫酶(點41)和ATP合成酶CF1α亞基(點42)。
隴麥157中的蛋白點17和18(抗壞血酸過氧化物酶)、13和14(胚胎后期發(fā)育富集同源蛋白)以及SW601中的蛋白點34和35(烯醇化酶),這些蛋白點雖然在同一塊凝膠的不同位置,但卻具有相同的分子量(Mr)和PI值,質(zhì)譜鑒定結(jié)果顯示為同一種蛋白質(zhì)。
a、b、c分別代表CK和低溫脅迫12 h、72 h的隴麥157幼穗2-DE圖譜;d、e、f 分別代表CK和低溫脅迫12 h、72 h的SW601幼穗2-DE圖譜。
a, b, c represent the 2-DE map of Longmai 157 spike with low temperature for 0 h, 12 h and 72 h,respectively; d, e, f represent the 2-DE map of SW601 spike with low temperature for 0 h, 12 h and 72 h,respectively.
圖1 低溫脅迫下隴麥157和SW601幼穗蛋白質(zhì)雙向凝膠電泳圖譜
表2 低溫脅迫下SW601幼穗差異蛋白點質(zhì)譜分析結(jié)果
2.2 不同小麥品種幼穗差異表達(dá)蛋白的功能分析
低溫脅迫后,40S核糖體蛋白、烯醇化酶和真核轉(zhuǎn)運起始因子蛋白在2個小麥材料中(隴麥157 中蛋白點15、5、7,SW601中蛋白點26、34、35、28)均出現(xiàn)差異表達(dá)??箟难徇^氧化物酶(蛋白點17和18)、Cu/Zn超氧化物歧化酶(蛋白點19)和胚胎后期發(fā)育富集同源蛋白(蛋白點13和14)等脅迫應(yīng)激蛋白在隴麥157中的表達(dá)量發(fā)生了明顯變化,而在SW601中的CK和低溫處理圖譜中均沒檢測到這些蛋白質(zhì)。冷休克主導(dǎo)蛋白2(蛋白點30)、70 kDa熱激同源蛋白1(蛋白點43)和谷胱甘肽S-轉(zhuǎn)移酶(蛋白點33)在SW601中發(fā)生了差異表達(dá),而在隴麥157中則沒有檢測到(表1和表2)。
從差異表達(dá)蛋白的功能分類來看,低溫敏感材料SW601和低溫不敏感材料隴麥157 在蛋白種類和數(shù)量上均存在一定的差異。SW601中18個差異表達(dá)蛋白點的功能可以分為7類,其中碳水化合物代謝相關(guān)蛋白所占例最大(33.3%),隴麥157中25個差異表達(dá)蛋白點的功能可以分為6類,蛋白質(zhì)代謝相關(guān)蛋白所占比例最大(40%)。低溫脅迫后SW601中存在1個能量產(chǎn)生和運輸?shù)鞍缀?個光合作用相關(guān)蛋白,而隴麥157中不存在能量產(chǎn)生和運輸?shù)鞍?但增加了1個光合作用相關(guān)蛋白(3個)。
低溫脅迫下,植物的形態(tài)結(jié)構(gòu)、生理生化代謝以及與脅迫相關(guān)蛋白質(zhì)的表達(dá)均會發(fā)生變化,且植物抗寒能力高低與脅迫響應(yīng)相關(guān)蛋白的合成和表達(dá)有直接關(guān)系。研究表明,參與蛋白合成、蛋白折疊和細(xì)胞壁合成有關(guān)的蛋白與水稻葉片對低溫的耐受性密切相關(guān)[5],蛋白表達(dá)量的變化與小麥自身耐冷性強弱有直接的關(guān)系[13]。
3.1 參與脅迫應(yīng)激或防御的蛋白
低溫逆境下抗壞血酸過氧化物酶、Cu/Zn超氧化物歧化酶的過量表達(dá)可有效清除環(huán)境脅迫下植物體內(nèi)產(chǎn)生的ROS,提高植物抗逆性[14-15],LEA蛋白在低溫條件下具有保護(hù)細(xì)胞膜及維持蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)穩(wěn)定性的作用[16]。本研究結(jié)果表明,低溫處理后,抗壞血酸過氧化物酶、Cu/Zn超氧化物歧化酶和胚胎后期發(fā)育富集同源蛋白14-A在低溫不敏感材料隴麥157的幼穗中均上調(diào)表達(dá),而在低溫敏感材料SW601幼穗中沒有表達(dá)。推測隴麥157中抗壞血酸過氧化物酶、Cu/Zn超氧化物歧化酶參與了低溫脅迫下氧化應(yīng)激反應(yīng),在清除H2O2和ROS中發(fā)揮了一定作用。
在低溫敏感材料SW601中鑒定出了熱激同源蛋白、冷休克主導(dǎo)蛋白2和谷胱甘肽S-轉(zhuǎn)移酶。熱激蛋白主要在動物疾病和寄生蟲中研究較多[17],具有分子伴侶的功能,逆境脅迫下可形成具有一定空間結(jié)構(gòu)的蛋白質(zhì),增強細(xì)胞對逆境脅迫的耐受性[18-19]。低溫脅迫可誘導(dǎo)植物中熱激蛋白(HSP70)的蛋白質(zhì)合成。本研究中,低溫脅迫后敏感材料SW601中70 kD熱激同源蛋白下調(diào)表達(dá),這可能與低溫敏感材料SW601中的熱激蛋白在低溫脅迫下蛋白質(zhì)合成受到抑制有關(guān)。
3.2 參與光合作用的相關(guān)蛋白
光合作用對低溫最為敏感,低溫逆境下植物葉綠體光化學(xué)結(jié)構(gòu)遭到破壞,光合速率下降,CO2的利用受阻, 同時可使光合系統(tǒng)中多種酶的活性受到抑制,從而影響光合作用過程中一系列電子傳遞系統(tǒng)[20-21],最終導(dǎo)致核酮糖二磷酸羧化酶(Rubisco)發(fā)生降解[22]。本研究中,隴麥157中鑒定出3個參與卡爾文循環(huán)的蛋白,分別為Rubisco 大亞基、核酮糖-1,5-二磷酸羧化酶/加氧酶大亞基和放氧增強蛋白;而SW601中僅鑒定出2個,即核酮糖二磷酸羧化酶亞基結(jié)合蛋白的α、β亞基。其中,Rubisco大亞基、Rubisco α、β亞基結(jié)合蛋白的亞基等都是光合作用過程中影響CO2固定的關(guān)鍵酶[23]。Santos等[24]通過對6 ℃低溫處理6 h、24 h的水稻葉片差異表達(dá)蛋白的研究發(fā)現(xiàn),Rubisco大亞基和Rubisco亞基結(jié)合蛋白大亞基的表達(dá)都下調(diào),且降解加速。在本研究中,隴麥157和SW601中的5個光合作用相關(guān)蛋白在低溫脅迫12 h和72 h后均下調(diào)表達(dá),這與Santos的研究結(jié)果基本一致,表明低溫脅迫下植物光合系統(tǒng)受到了破壞。
3.3 碳水化合物代謝相關(guān)蛋白
碳水化合物代謝主要控制糖的代謝、轉(zhuǎn)化及分配,磷酸丙糖異構(gòu)酶是糖代謝過程的關(guān)鍵酶,在糖酵解途徑中發(fā)揮重要作用。研究表明,小麥在長期低溫馴化過程中磷酸丙糖異構(gòu)酶會增加[25]。低溫脅迫下,烯醇化酶、2,3-二磷酸甘油酸不依賴磷酸甘油酸變位酶和磷酸丙糖異構(gòu)酶等參與糖酵解途徑的蛋白,在低溫不敏感材料隴麥157中上調(diào)表達(dá);而烯醇化酶、胞質(zhì)3-磷酸甘油酸激酶和D-3-磷酸甘油醛脫氫酶則在低溫敏感材料SW601中下調(diào)表達(dá)。在糖酵解過程中,磷酸丙糖異構(gòu)酶可將二羥丙酮磷酸轉(zhuǎn)變?yōu)楦视腿?3-磷酸,只有甘油醛-3-磷酸才可繼續(xù)進(jìn)入糖酵解途徑。然而,SW601中沒有出現(xiàn)磷酸丙糖異構(gòu)酶,可能與低溫脅迫下其表達(dá)量太低或其表達(dá)受到抑制有關(guān),這將使SW601糖酵解途徑中糖代謝及能量產(chǎn)生和運輸無法順利進(jìn)行,從而導(dǎo)致SW601糖代謝途徑相關(guān)蛋白酶的表達(dá)量下調(diào),最終影響植物生長發(fā)育,使其抗性減弱。
3.4 蛋白代謝相關(guān)蛋白
蛋白質(zhì)二硫鍵在二硫鍵及氨基酸支鏈的結(jié)合與形成方面發(fā)揮著重要作用[26]。低溫脅迫對植物核糖體蛋白的合成具有較大影響,在大豆中發(fā)現(xiàn)3個受低溫脅迫誘導(dǎo)的核糖體蛋白[27]。低溫脅迫下,40S核糖體蛋白SA在隴麥157幼穗中呈上調(diào)表達(dá),而在SW601中則呈下調(diào)表達(dá),這可能與參與蛋白質(zhì)翻譯的核糖體蛋白在對低溫敏感度不同材料中的表達(dá)模式有關(guān),上調(diào)表達(dá)可能有利于提高小麥幼穗抗低溫的能力。二硫鍵異構(gòu)酶在隴麥157中下調(diào)表達(dá),在SW601中沒有表達(dá),這與Yan等[28]的研究結(jié)果基本相似。
3.5 能量運輸與信號轉(zhuǎn)導(dǎo)蛋白
ATP合酶是一種膜結(jié)合轉(zhuǎn)運蛋白,在葉綠體和線粒體能量轉(zhuǎn)換中可以催化ATP的合成和水解,進(jìn)行跨膜質(zhì)子運輸,同時緩解植物脅迫傷害[29]。信號轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑中,14-3-3蛋白和某些蛋白激酶可以作為信號轉(zhuǎn)導(dǎo)中介,通過不同的關(guān)鍵轉(zhuǎn)錄因子協(xié)調(diào)逆境脅迫下細(xì)胞的正常代謝和響應(yīng)[30]。
低溫脅迫處理后,SW601中的ATP合酶CF1α亞基表達(dá)下調(diào),這可能與逆境脅迫下植物原生質(zhì)結(jié)構(gòu)遭到破壞,ATP的合成以及光合作用受到抑制有關(guān)。SW601中的14-3-3 蛋白和隴麥157中細(xì)胞周期依賴性蛋白激酶的表達(dá)豐度都有所增加,推測低溫脅迫下它們在信號轉(zhuǎn)導(dǎo)過程中通過調(diào)控耐冷相關(guān)基因表達(dá)而提高植物抗逆性方面發(fā)揮了一定作用。
[1]潘瑞熾,董愚得.植物生理學(xué)[M].北京:高等教育出版社,1995:322.
PAN R Z,DONG Y D.Plant Physiology [M].Beijing:Higher Education Press,1995:322.
[2]安飛飛,李庚虎,陳 霆,等.植物耐寒生理及蛋白質(zhì)組學(xué)研究進(jìn)展[J].中國農(nóng)學(xué)通報,2015,31(14):96.
AN F F,LI G H,CHENG T,etal.Research progress on physiology and proteomics for cold tolerance in plants [J].ChineseAgriculturalScienceBulletin,2015,31(14):96.
[3]KOO B C,PARK M W,LEE C W,etal.Classification for types of damages caused by cold stress at different young spike development stages of barley and wheat [J].KoreanJournalofCropScience,2003,48(3):252.
[4]CUI S X,HUANG F,WANG J,etal.A proteomic analysis of cold stress response in rice seedlings [J].Proteomics,2005,12(5):3162.
[5]HAN Q X,KANG G Z,GUO T C.Proteomic analysis of spring freeze-stress responsive proteins in leaves of bread wheat(TritiumaestivumL.) [J].PlantPhysiologyandBiochemistry,2013,63:236.
[6]CABANE M,CALVET P,VINCENS P,etal.Characterization of chilling-acclimation related protein sin soybean and identification of one as a member of the heat shock protein(HSP70) family [J].Planta,1993,190(3):346.
[7]王 巍,魏力軍,王俊敏,等.空間誘變水稻多蘗矮突變體不同分蘗期蛋白質(zhì)組研究[J].核農(nóng)學(xué)報,2011,25(3):405.
WANG W,WEI L J,WANG J M,etal.Comparative proteomic analysis of a high-tillering dwarf mutant induced by spaceflight at different tillering stages [J].JournalofNuclearAgricultureSciences,2011,25(3):405.
[8]阮松林,馬華升,王世恒,等.植物蛋白質(zhì)組學(xué)研究進(jìn)展Ⅱ.蛋白質(zhì)組技術(shù)在植物生物學(xué)研究中的應(yīng)用[J].遺傳,2006,28(12):1633.
RUAN S L,MA H S,WANG S H,etal.Advances in plant proteomicsⅡ.Application of proteomics techniques to plant biology research in research of plant biology [J].Hereditas,2006,28(12):1633.
[9]程思思,乙 引,張習(xí)敏,等.雙向電泳技術(shù)在植物應(yīng)答非生物脅迫蛋白質(zhì)組學(xué)研究中的應(yīng)用[J].安徽農(nóng)業(yè)科學(xué)報,2010,38(3):1135.
CHENG S S,YI Y,ZHANG X M,etal.Application of two-dimensional electrophoresis technology in plant resistance to abiotic stress proteomical research [J].JournalofAnhuiAgriculturalSciences,2010,38(3):1135.
[10]陳蕊紅,張改生,劉 衛(wèi),等.小麥花藥蛋白質(zhì)組雙向電泳技術(shù)體系的優(yōu)化[J].核農(nóng)學(xué)報,2008,22(4):404.
CHENG R H,ZHANG G S,LIU W,etal.Optimization of two-dimensional gel electrophoresis for Proteome from wheat anthers [J].JournalofNuclearAgricultureSciences,2008,22(4):404.
[11]LI G Z,PENG Q X,GUO T C,etal.Proteomic analysis of leaves and roots of common wheat(TriticumaestivumL.) under copper-stress conditions [J].JournalofProteomeResearch,2013,12(11):4846.
[12]BRADFORD M M.A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principal of protein-dye binding [J].AnalyticalBiochemistry,1976,72:248.
[13]DANYLUK J,RASSART E,SARHAN F.Gene expression during cold and heat shock in wheat [J].BiochemistryCellBiology,1991,69(5-6):383.
[14]李澤琴,李靜曉,張根發(fā).植物抗壞血酸過氧化物酶的表達(dá)調(diào)控以及對非生物脅迫的耐受作用[J].遺傳,2013,35(1):45.
LI Z Q,LI J X,ZHANG G F.Expression regulation of plant ascorbate peroxidase and its tolerance to abiotic stresses [J].Hereditas,2013,35(1):45.
[15]GEPSTEIN S,GLICK B R.Strategies to ameliorate abiotic stress induced plant senescence [J].PlantmolecularBiology,2013,82(6):623.
[16]張林生,趙文明.LEA蛋白與植物的抗旱性[J].植物生理學(xué)通訊,2003,39(1):61.
ZHANG L S,ZHAO W M.LEA protein functions tolerance drought of the plants [J].PlantPhysiologyCommunicatio,2003,39(1):61.
[17]練冬梅,王會芳,陳綿才.植物寄生線蟲Hsp70研究進(jìn)展[J].基因組學(xué)與應(yīng)用生物學(xué),2013,32(6):820.
LIAN D M,WANG H F,CHEN M C.Research progress on Hsp70 in plant parasiticNematodes[J].GenomicsandAppliedBiology,2013,32(6):820.
[18]WATERS E R,LEE G J,VIERLING E.Evolution,structure and function of the small heat shock proteins in plants [J].JournalofExperimentalBotany,1996,47(3):325.
[19]BALLINGER D G,PARDUE M L.The control of protein synthesis during heat-shock in drosophila cells involves altered polypeptide elongation rates [J].Cell,1983,33(1):103.
[20]ALLEN D J,ORT D R.Impacts of chilling temperatures on photosynthesis in warm-climate plants [J].TrendsinPlantScience,2001,6(1):36.
[21]OQUIST G,HUNER N P A.Photosynthesis of overwintering evergreen plants [J].AnnualReviewofPlantBiology,2003,54(1):329.
[22]姜籽竹,朱恒光,張 倩,等.低溫脅迫下植物光合作用的研究進(jìn)展[J].作物雜志,2015(3):23.
JIANG Z Z,ZHU H G,ZHANG Q,etal.Progress of influence of low temperature on plant photosynthesis [J].Crops,2015(3):23.
[23]孫 勇,王 丹,仝 征,等.香蕉幼苗葉片響應(yīng)低溫脅迫的比較蛋白質(zhì)組學(xué)研究[J].中國農(nóng)學(xué)通報,2015,31(34):216.
SUN Y,WANG D,TONG Z,etal.Proteomic analysis of banana seedling leaf response to low temperature [J].ChineseAgriculturalScienceBulletin,2015,31(34):216.
[24]SANTOS E,REMY S,THIRY E,etal.Characterization and isolation of a T-DNA tagged banana promoter active during in vitro culture and low temperature stress [J].BMCPlantBiology,2009,9(1):77.
[26]HOUSTON N L,FAN C Z ,XIANG QY ,etal.Phylogenetic analyses identify 10 classes of the protein disulfide isomerase family in plants,including single-domain protein disulfide isomerase-related proteins [J].PlantPhysiology,2005,137(2):762.
[27]KIM K Y,PARK S W,CHUNG Y S,etal.Molecular cloning of low-temperature-inducible ribosomal proteins from soybean [J].JournalofExperimentalBotany,2004,55(399):1153.
[28]YAN S P,ZHANG Q Y,TANG Z C,etal.Comparative proteomic analysis provides new insights into chilling stress responses in rice [J].MolecularCellProteomics,2006,5:484.
[29]CHIVASA S,HAMILTON J M,SLABAS A R,etal.Proteomic analysis of extracellular ATP-regulated proteins identifies ATP synthase β-subunit as a novel plant cell death regulator [J].Molecular&CelularlProteomics,2010,10:1.
[30]WANG C,MA Q H,LIN Z B,etal.Cloning and characterization of a cDNA encoding 14-3-3 protein with leaf and stem specific expression from wheat [J].DNASequence,2008,19(2):130.
Identification and Analysis of Differentially Expressed Proteins in Wheat Young Spike under Cold Stress
CHENG Xiyong, HU Xiaoxian, LI Haixia, DONG Zhongdong,REN Yan, CHEN Shulin, ZHAN Kehui, XU Haixia
(Henan Agricultural University/National Key Laboratory of Wheat and Maize Crop Science/Collaborative Innovation Center of Henan Grain Crops, Zhengzhou, Henan 450002, China)
In order to study the proteins responsing to low temperature(LT) in wheat(TriticumaestivumL.) spike, two varieties SW601(LT sensitive ) and Longmai 157(LT insensitive) were used to analyze the total protein profile under low temperature at 0 ℃ for 12 h and 72 h by two-dimensional electrophoresis and matrix-assisted laser desorption/ionisation time-of-flight mass spectrometry method,the spike under normal growth temperature conditions was control. The results show that there are 800 to 900 protein spots for each variety within pH 4 to 7. After 12 h and 72 h low temperature stress treatment,120 up-regulated and 92 down-regulated protein spots were found in SW601, while 101 up-regulated and 60 down-regulated protein spots were detected in Longmai 157. Fifty-four proteins spots which were significantly expressed with the expression ratio more than 2 under two temperature stress conditions were selected. There were 43 protein spots identified by mass spectrometry analysis.Using protein blast methods, the identified cold stress responsive proteins were classified into seven groups including stress/defense, photosynthesis, protein metabolism, carbohydrate metabolism, signal transduction, energy pathways and other unknown function. Some of the expressed proteins were enhanced significantly in LT insensitive varieties Longmai 157,such as ascorbate peroxidase,Cu/Zn superoxide dismutase,and late embryogenesis abundant,while they were not expressed in LT sensitive SW601.These protein may related to metabolic regulation or response characteristics of wheat spike under low temperature stress.
Wheat; Young spike; Low-temperature stress; Two-dimensional electrophoresis; Stress response protein
時間:2016-10-08
2016-03-12
2016-04-14
國家重點基礎(chǔ)研究發(fā)展計劃(973計劃)項目(2014CB138105);河南省教育廳重點項目(15A180039)
E-mail:xyc634@163.com
許海霞(E-mail:hauxhx@163.com)
S512.1;S330
A
1009-1041(2016)10-1342-08
網(wǎng)絡(luò)出版地址:http://www.cnki.net/kcms/detail/61.1359.S.20161008.0932.018.html